7 de outubro de 2016
Descrevemos um protocolo para obter imagens volumétricas de células marcadas com proteínas fluorescentes profundamente dentro de corações embrionários e pós-natais intactos. Utilizando métodos de limpeza de tecido em combinação com coloração de montagem inteira, células marcadas com proteína fluorescente única dentro de um coração embrionário ou pós-natal podem ser visualizadas com clareza e precisão.
O objetivo geral deste procedimento é obter imagens volumétricas de células marcadas com proteínas fluorescentes profundamente dentro de corações intactos, para estudar a função do gene em resolução de célula única durante o desenvolvimento cardíaco e em corações pós-natais. Este método pode ajudar a responder a questões-chave durante o desenvolvimento cardíaco, como o estudo das funções dos genes e ajudar a imagem na resolução de uma única célula durante o desenvolvimento cardíaco e artefatos animidais. A principal vantagem deste método é que ele é relativamente simples, barato e pró-sábio em que a análise temporal especial das funções do gene e da proteína na resolução de uma única célula em embrião ou coração intacto.
Embora usemos esse sistema para estudar o desenvolvimento do coração em camundongos, você também pode usá-lo para estudar outros sistemas de órgãos, como músculos, cérebro e pulmões e em outros organismos modelo também. Embriões positivos de proteína fluorescente de barragens de confete R-26 Cre-RET2 tratadas com Tamoxifren são usados aqui. Comece a coloração imergindo cada embrião fixado em paraformaldeído em um mililitro de 0,1% PBST nos poços de uma placa de 48 poços.
Incubar durante duas horas num agitador de placas à temperatura ambiente para permeabilizar o tecido. Em seguida, substitua a solução de permeabilização por um mL de tampão bloqueador e incube, com agitação, por duas horas em temperatura ambiente ou durante a noite a quatro graus Celsius. Em seguida, prepare uma diluição de um a 100 do anticorpo específico da célula endotelial, PECAM, em 0,3 mililitros de tampão de bloqueio para cada poço e adicione-o aos poços que contêm os embriões.
Incubar por 48 horas com agitação a quatro graus Celsius. Após a incubação, lave os embriões cinco vezes com PBST por 30 minutos de cada vez para remover o excesso de anticorpo primário do tecido. Em seguida, mergulhe os embriões em solução de anticorpo secundário antivato de cabra Alexa Fluor 647 e incube com agitação por 48 horas a quatro graus Celsius, enquanto protegido da luz.
48 horas depois, após a lavagem antes, pós-fixar os embriões com 4% de PFA por uma hora em temperatura ambiente com agitação. Em seguida, depois de lavar duas vezes com PBS por cinco minutos de cada vez, incubar os embriões com coloração nuclear DAPI por dez minutos. Em seguida, faça duas lavagens de PBS de cinco minutos cada, depois prossiga para a limpeza do tecido.
A limpeza do tecido é a etapa mais crítica neste protocolo para obter imagens do coração em uma resolução de célula única. Além disso, a seleção do método de clareamento em escala ou CUBIC também é muito importante para preservar os sinais fluorescentes no coração embrionário intacto. Transfira os embriões lavados e corados para um frasco de cintilação envolto em papel alumínio, que contém um mililitro de solução de escala A2.
Incube a quatro graus Celsius com agitação suave ocasional com a mão por 48 horas. Após a incubação da escala A2, substitua a solução no frasco para injetáveis por um mililitro de solução da escala B4 e incube a quatro graus Celsius com agitação suave ocasional por mais 48 horas. Incube os embriões por mais 48 horas com um mililitro de escala 70 a quatro graus Celsius com agitação suave ocasional como antes.
Por fim, mergulhe a amostra limpa da balança em um mililitro de glicerol a 90% e armazene a quatro graus Celsius até a imagem. Para obter a imagem, transfira a amostra para uma placa de Petri com fundo de vidro com uma quantidade mínima de 90% de glicerol e a imagem com um microscópio confocal equipado com recursos de dois fótons. Para limpeza CÚBICA, mergulhe cada embrião em um mililitro de CÚBICO com agitação suave ocasional por 48 horas a 37 graus Celsius.
Após 48 horas, substituir a solução pelo mesmo volume de reagente CÚBICO fresco e incubar a amostra durante mais 48 horas, como antes. Após a incubação, lave os embriões tratados com CUBIC one com PBS várias vezes com agitação suave com a mão para remover o excesso de solução CUBIC one. Em seguida, mergulhe os embriões em solução CUBIC dois por 48 horas a 37 graus Celsius com agitação suave ocasional com a mão.
Se houver um atraso antes da imagem, incube sequencialmente as amostras com um mililitro de glicerol a 30% 50% e 70% e PBS por 30 minutos cada. Depois de passar pela série, transfira para solução de glicerol a 90% para armazenamento a quatro graus Celsius. Quando estiver pronto, imagem em uma placa de Petri com fundo de vidro com 90% de glicerol, como antes.
Este filme mostra seções ópticas de um coração E 8,75 tratado com escamas, da superfície do coração ao lúmen. O amarelo marca a expressão de PECAM e todos os cardiomiócitos aparecem em verde. A profundidade é de 110,4 mícrons e existem 93 fatias no total.
Esta é a imagem da superfície 3D do coração reconstruído que acabamos de mostrar. Novamente, o amarelo marca a expressão de PECAM e o verde marca todos os cardiomiócitos. Este filme mostra seções de um único clone progenitor de um coração E 9.5 tratado com escamas na região do trato de saída.
Amarelo marca a expressão PECAM e o clone aparece em verde. A profundidade é de 36 mícrons e há 10 fatias no total. Este filme mostra seções de um coração P dois tratado com CUBIC da superfície ao lúmen.
A profundidade é de 130 mícrons com três mícrons por seção. Este filme mostra seções de um coração E 17.5 tratado com CUBIC da superfície ao lúmen. A profundidade é de 630 mícrons com seis mícrons por seção.
Esta é uma imagem da superfície 3D do coração que acabamos de mostrar, reconstruída por meio do software de reconstrução 3D. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar que o embrião é frágil e a patologia cardíaca pode ser perturbada facilmente. Após este procedimento, outras proteínas podem ser realizadas, usando coloração para estudar a função do gene em uma pós-osteologia e espuma.
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Este artigo apresenta um protocolo para a imagem volumétrica de células marcadas com proteínas fluorescentes em corações intactos embrionários e pós-natais. O método combina técnicas de clareamento de tecidos com coloração em montagem inteira para obter imagens nítidas com resolução em nível celular.
A obtenção de imagens de corações embrionários e pós-natais clarificados com resolução de única célula permite uma análise detalhada do comportamento e diferenciação de células progenitoras cardíacas durante o desenvolvimento. Esta abordagem auxilia na validação de alvos ao esclarecer os mecanismos celulares e moleculares subjacentes à morfogênese cardíaca normal e anormal. O método fornece confiança preditiva em modelos pré-clínicos ao associar a função gênica a resultados estruturais em tecido intacto.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a verificação inicial da hipótese do alvo até a identificação de compostos promissores e validação pré-clínica, ao permitir leituras quantitativas e com resolução espacial da função gênica em tecido cardíaco intacto.