Name: Tridimensional Cultura Ensaio para Explorar Cancer Invasividade celular e formação de tumor Satélite (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Aprenda a criar um sistema de cultura 3D com células cancerígenas em colágeno e fibrina para monitorar invasividade e formação de tumores satélite. Este método permite estudar migração celular e avaliar terapias anticâncer.

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Trabalho parcialmente financiado pelo Prostate Cancer Canada (concessão # D2014-4 para SG e CJD) e pelos Institutos Canadenses de Pesquisa em Saúde (concessão # MOP-111069 para SG). Gostaríamos de agradecer ao Dr. Richard Poulin pela assistência editorial e à Sra. Chanel Dupont pela assistência técnica.

NOTA: Não ética consideração, pois as células cancerosas em animais e humanos foram adquiridos ou gentilmente cedido para nós. 1. Fazendo Collagen Plugs (Tumor Pseudo-primário) <ol><li> Prepara-se uma dispersão de colagénio. Colágeno tipo I de tendões da cauda de rato (RTT) podem ser extraídos e esterilizados conforme relatado anteriormente 17, ou comprada. Dispersar colagénio liofilizado RTT (3,25-3,50 mg / ml em 0,02 N de ácido acético) usando um misturador (ajuste de alta velocidade; cinco mínimo de duas vezes), para uma mistura uniforme. </li><li> Colheita (tripsina-EDTA, geralmente) e usar a exclusão de azul de tripano para a contagem de células viáveis ​​utilizando um hemacitómetro. Ajustar a densidade celular desejada (5 x 10 4 culas por tampão). </li><li> Preparar todas as soluções (NaOH, soro de bovino fetal, meio DMEM 5x, NaHCO3) separadamente (Tabela 1) sob condições estéreis e mantê arrefecida em gelo. Nota: A ordem de adição dos vários soluções é importante para evitar choques osmóticos ou ácidas em células. </li><li> Realizar dispersão de células (1,25 x 10 6 células) na solução de colagénio final (5 ml) tão rapidamente quanto possível. Misture bem (por pipetagem para cima e para baixo), evitando bolhas de ar, e, em seguida, distribuir rapidamente 200 pi da solução pronta para uso, em cada poço de uma placa de 96 poços. Suavemente atacar a placa multi-poços na superfície da capa de cultura de célula a área de trabalho para remover as bolhas de ar e para espalhar a solução uniformemente dentro dos poços. </li><li> Depois de preencher todos os poços (esta etapa leva cerca de 15-20 minutos por placa de 96 poços), armazená-lo para a incubadora. </li><li> Incubar a placa a 37 ° C a partir de 2 horas até durante a noite. O colagénio de gelificação (ou seja, a fibrilogénese) ocorre dentro de 30 min. Adicionar meio de cultura (100 ul / cavidade) à cultura para realizar uma incubação de um dia para o outro. </li></ol> 2. primeira camada de fibrina Gel <ol><li> Fibrinogênio Preparação Solution. NOTA: O mesmo lote de gel de fibrina devem, idealmente, ser utilizado para Resul mais reprodutívelTS, como formação de gel de fibrina pode variar entre os diferentes lotes de fibrinogénio liofilizado comercial. <ol><li> Sempre use uma solução de fibrinogénio preparados na hora. Traga o fibrinogénio liofilizado até à temperatura ambiente antes de abrir o frasco para evitar a formação de cristais de hidrato. </li><li> Progressivamente dissolver o fibrinogénio em pré-aquecido (37 ° C) Solução Salina Equilibrada de Hank (HBSS) com Ca2 + / Mg2 + a uma concentração de trabalho de 3 mg / ml (considerar a preparação de um excesso de 15% do volume final mínima necessária : por exemplo, 17,25 mg em 5,75 ml de uma solução 5 ml). <ol><li> Adicionar pré-aquecido, gota a gota HBSS em primeiro lugar para solubilizar fragmentos de fibrinogénio. Quebrar fragmentos maiores com uma espátula no copo. Agitar o recipiente de tempos a tempos para facilitar a mistura. Não use um disco de agitação durante o procedimento. Dissolver o pó restante pipetando a suspensão para cima e para baixo. </li></ol></li><li> Manter a solução de fibrinogénio morna enquanto SteriLIZING a solução por passagem através de um filtro de 0,22 um. Nota: Se o HBSS não está suficientemente quente ou o fibrinogênio não completamente dissolvido, a solução pode obstruir o filtro. Se for o caso, substituir o filtro de uma ou duas vezes, o que pode diminuir a concentração de fibrinogênio e rigidez, assim, coágulo de fibrina. </li><li> Suspender as células de interesse (por exemplo, células endoteliais) em solução de fibrinogénio pronto-para-uso durante o ajuste do seu volume final, tal como um procedimento alternativo. </li></ol></li><li> Preparar as soluções de trombina. <ol><li> Prepara-se uma solução estoque em ddH2O (50 NIH unidades / ml), em seguida, esterilizá-lo utilizando um filtro de 0,22 um. </li><li> Usar uma proporção / trombina do fibrinogénio ≥1: 0,0075 (v / v), a fim de gerar o gel de fibrina. </li></ol></li><li> Gerando o gel de fibrina. <ol><li> Mantenha o fibrinogênio estéril e trombina soluções estoque em gelo durante todas as etapas seguintes. Os geles de fibrina são permitidos para formar em placas de 24 poços. </li><li> th prontamente sobreposiçãoe a superfície de cada cavidade com a solução de fibrinogénio (200 ul / poço), evitando a formação de bolhas de ar. Processo 6 poços a uma hora. </li><li> Uma vez que a solução de fibrinogénio cobre completamente a superfície dos poços, inclinar a placa a um ângulo de 45 ° e adicionar 1,5 ml de solução de trombina para o primeiro poço soltando a trombina para o centro do poço, e em seguida rodar suavemente a placa horizontalmente para 1-2 seg. <ol><li> Deixar a placa numa posição estável sob a câmara de fluxo laminar (5-10 minutos) até que o processo de gelificação / coagulação foi concluída (NB: o processo de polimerização não deve ser perturbado, por exemplo, através do transporte da placa para a incubadora). </li></ol></li><li> Uma vez que os primeiros seis poços polimerizado, repetir a mesma sequência (ou seja, as 3 etapas anteriores) para os próximos seis poços até que todos os poços foram processadas. </li></ol></li></ol> 3. segunda camada de fibrina Gel e imprensado Collagen plug <ol><li> OpçãoA: (A utilização do colágeno Ligue imediatamente). <ol><li> Certifique-se de que a primeira camada de gel de fibrina polimerizada em todos os poços por delicadamente da inclinação da placa. Colocar a placa de 96 poços contendo lado os tampões de gel de colagénio a lado com a placa de 24 cavidades (contendo os geles de fibrina) para facilitar a transferência das fichas de colagénio. </li><li> Adicionar uma gota de HBSS a cada poço da placa contendo as fichas de colagénio. </li><li> Remover cada vela de colagénio do poço com uma agulha fina montado numa seringa (usado como um identificador) ou usando um micro-colher (veja o vídeo). Transfira cada vela de colágeno para a primeira camada de gel de fibrina usando um ou dois micro-colheres, assegurando ao mesmo tempo que a ficha colágeno é bem centrado no poço e que a esterilidade é bem conservado. </li><li> Overlay o gel de fibrina previamente formada com a segunda camada de solução de fibrinogénio (300 ul / poço) e introduzir a trombina como descrito em 2.3, mantendo um mínimo de 1:. Relação de 0,0075 e uma sequência de seis poços de cada vez &lt;/ Li&gt; </ol></li><li> Opção B (Revestimento do Collagen Plug com uma fina camada de Fator de Crescimento reduzido membrana basal (GFRBM)). <ol><li> Frescos todas as soluções preparadas e instrumentos de antemão e mantê-los a 4 ° C ou em gelo (por exemplo, pipetas, pontas, tubos de ensaio) durante o manuseio desde alíquotas congeladas de GFRBM são muito sensíveis à taxa de aquecimento excessivo durante a descongelação (siga as instruções do fabricante) . </li><li> Após a remoção a partir dos poços da placa, mergulhar cada vela de colagénio durante 2 min num tubo de centrífuga de 1,5 ml em gelo contendo 100 uL de uma solução GRFBM puro. </li><li> Transferir cada vela revestida sobre a primeira camada de fibrina, enquanto assegurando que é bem centralizada, tal como descrito anteriormente. Incubar as placas contendo os plug a 37 ° C durante 5 min para permitir a GRFBM para formar um gel. Adicione a segunda camada de fibrina como no passo 3.1.4. </li></ol></li></ol> 4. Cultura Celular condições do meio <ol><li> Encher cada poço com meio de cultura (quatro00 uL). Os meios de cultura e suplementos serão seleccionados com base na linha celular e as condições experimentais. </li><li> Adicionar aprotinina, um agente antifibrinolítica, ao meio de cultura a uma concentração final de 100 unidades de inibidor de calicreína (KIU) / ml. NOTA: Armazenar as placas numa incubadora de cultura de células de acordo com as condições utilizadas para a linha de células testada. </li><li> Reabastecer culturas com meio fresco a cada dois dias ou de acordo com o programa experimental, e adicionar aprotinina. Antes de adicionar meio fresco, inclinar ligeiramente a placa (com um ângulo de 30-35 °) e inclinar a pipeta contra o lado de aspiração do poço, enquanto cuidadosamente o meio condicionado sob observação constante. </li></ol>

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Os autores não têm divulgação.

Como uma nota importante técnica, é essencial que nenhum intervalo está presente na interface entre a central e os géis periféricos. Caso contrário, pode reduzir a capacidade das células para migrar / invadem o gel de fibrina. Um espaço entre o colagénio e os geles de fibrina podem formar durante as primeiras 24 h de cultura, se a trombina não foi apropriadamente diluído. É também possível que a linha de células testada pode levar o gel de colagénio para contrair durante a cultura, fazendo assim com que um espaço relati...

Investigando as características fundamentais e biomédicas de invasão da célula cancerosa / migração e subsequente criação metástase é objecto de um 1,2 intensa pesquisa. A metástase é o último estágio do câncer e seu manejo clínico permanece indefinida. Uma melhor compreensão de metástases nos níveis celulares e moleculares permitirá o desenvolvimento de terapias mais eficazes 3. Várias propriedades de células metastáticas pode ser explorada in vitro, incluindo a sua stemness 4 e potencial para adquirir um estado de transição (por exemplo, a transição epitelióide-mesenquimal) para migrar e invadem dentro e a partir do tumor primário 5. No entanto, a avaliação in vitro de processos / metástase de invasão tem sido um desafio, uma vez que praticamente exclui a contribuição da circulação de sangue / linfático. culturas organotípicas que incorporam fragmentos de tumor em géis de colagénio têm Previously sido utilizada para monitorizar a agressividade do cancro. Embora a complexidade dos tumores é preservada (por exemplo, a presença de células não-cancerosas), fragmentos tumorais são expostas a difusão forma limitada, a variação de amostragem, e a um crescimento excessivo de células estromais 6. Um método alternativo consiste em crescer as células cancerosas no interior de componentes da matriz extracelular (ECM), que imita o ambiente celular tridimensional (3D). A proliferação de linhas celulares de cancro da mama num gel de colagénio e / ou uma matriz de membrana basal é derivada entre os exemplos mais bem caracterizados de cultura de células 3D. Através da utilização de ambientes de cultura de células específicas 3D, o conjunto desorganizado observado para as células de cancro da mama cultivadas sob condições padrão pode ser revertida para a formação espontânea de ácinos mamaria e estruturas tubulares 7-10. Além disso, a formação de esferóides multicelulares de tumores derivados de células de cancro de adenocarcinoma congregados utilizando técnicas diferentes (por exemplo, pendurado gotas, esferóides flutuante, agar embedment) constitui agora o ensaio de cultura de células 3D mais utilizada 11-13. No entanto, este ensaio é limitado pelo conjunto restrito de linhas celulares de cancro que podem formar esferóides e pela curto período disponível para estudar células nestas condições. Nesta técnica visualizada, que aqui se introduzir um ensaio de cultura de células 3D sofisticado, onde as células cancerosas de interesse são incorporados num gel de colagénio para permitir a formação in vitro de um tumor pseudo-primário que pode ser alternativamente revestido com uma matriz derivada de membrana basal. Uma vez formado, o tumor pseudo-primário é, em seguida, colada em uma matriz acelular (gel de fibrina, no presente caso), o que permite que as células cancerosas para atravessar a interface entre os dois compartimentos da matriz (ver Figura 1). Curiosamente, as estruturas semelhantes a tumores, secundárias provenientes do tumor pseudo-primário, juntamente com as células cancerosas agressivas aparecem nagel de fibrina. Um tal sistema de cultura 3D oferece a flexibilidade necessária para investigar, por exemplo, fármacos anti-cancerígenos, de expressão de genes e célula-célula e / ou interacções célula-ECM 14-16. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/54322/54322fig1.jpg" /> Figura 1:.. Visão Geral do Método resumo esquemático do método para gerar o sistema de cultura celular 3D como um modelo para estudos de câncer <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54322/54322fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

<table><tbody><tr><td>Colágeno liofilizado</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7661</td><td>do tendão da cauda de rato (dispersão solúvel) ou caseiro (ver Rajan et al., ref.#14)</td></tr><tr><td>Fibrinogênio (liofilizado)</td><td>Sigma-Aldrich&nbsp;</td><td>F8630</td><td>Tipo I-S, 65 - 85% de proteína com &ge; 75% de proteína é coagulável</td></tr><tr><td>Trombina</td><td>EMD Chemicals Inc.</td><td>605157</td><td>&nbsp; Gibbstown, Nova Jérsia; NIH unidades/mg de peso seco&nbsp;</td></tr><tr><td>Matrigel reduzido por fator de crescimento&nbsp;</td><td>Corning</td><td>356234</td><td>Anteriormente da BD Biosciences</td></tr><tr><td>Aprotinin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6279&nbsp;</td><td>&nbsp; solução a 5 - 10T UI/ml (Unidade Inibidora de Tripsina)&nbsp;</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; Microcolheres</td><td>Fisher Scientific</td><td>2140115</td><td>Fisherbrand Handi-Hold Microespátula</td></tr><tr><td>Placa de 96 poços, base redonda</td><td>Sarstedt</td><td>3925500</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 24 poços</td><td>Sarstedt</td><td>3922</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's modified Eagle's Medium Sigma</td><td>Chemical, Co.</td><td>D5546</td><td>DMEM</td></tr><tr><td>Fetal Soro Bovino</td><td>VWR</td><td>CAA15-701</td><td>FBS, origem canadense.</td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA</td><td>Sigma Química, Co.</td><td>T4049</td><td></td></tr><tr><td>Hank' s Solução salina balanceada</td><td>Sigma Química, Co.</td><td>H8264</td><td>HBSS</td></tr></tbody></table>

tridimensional cultura ensaio para explorar cancer invasividade celular e formação de tumor satélite

Three-Dimensional Culture Assay to Explore Cancer Cell Invasiveness and Satellite Tumor Formation

a cultura de células de mamífero em monocamadas é amplamente utilizado para estudar vários processos fisiológicos e moleculares. No entanto, esta abordagem para estudar as células que crescem frequentemente gera artefactos indesejados. Portanto, a cultura de células em um ambiente tridimensional (3D), muitas vezes o uso de componentes da matriz extracelular, surgiu como uma alternativa interessante devido à sua estreita semelhança com o nativo no tecido vivo ou órgão. Foi desenvolvido um sistema de cultura celular 3D utilizando dois compartimentos, a saber, (i) um compartimento central contendo células cancerosas embebidas numa actuação gel de colagénio como um tumor macrospherical pseudo-primário e (ii) um compartimento livre de células periférica feita de um gel de fibrina, isto é, um componente de matriz extracelular diferente do utilizado no centro, no qual as células cancerígenas podem migrar (invasão frente) e / ou formar microparticulas tumores representam tumores secundários ou satélite. A formação de tumores satélite no compartimento periférico énotavelmente correlacionados com a agressividade conhecido ou origem metastático das células tumorais nativas, que faz com que este sistema de cultura 3D original. Esta abordagem de cultura de células pode ser considerada para avaliar a capacidade de invasão de células do cancro e a motilidade, as interacções célula-matriz extracelular e como um método para avaliar as propriedades de drogas anti-cancro.

Como mencionado anteriormente, uma característica interessante deste ensaio de cultura de células 3D é que as células de cancro não só podem migrar a partir do bujão de colagénio para o gel de fibrina adjacente, mas também estabelecer tumores secundários (por exemplo, estruturas, por satélite tumoral). Isto pode ser directamente observado com um microscópio de contraste de fase invertida com ampliações de baixa e alta, através da espessura do gel, especialmente com um condensado...

As células cancerígenas são incorporadas em um gel de colágeno e, em seguida, ensanduichadas em um gel de fibrina acelular para gerar um sistema de cultura 3D no qual a invasividade e a formação de tumores satélites podem ser monitoradas.

Tridimensional Cultura Ensaio para Explorar Cancer Invasividade celular e formação de tumor Satélite

Mammalian cell culture in monolayers is widely used to study various physiological and molecular processes. However, this approach to study growing cells ...

O objetivo geral deste procedimento é colocar células cancerígenas embutidas em colágeno entre uma camada de gel de fibrina para gerar um sistema de cultura 3D para o monitoramento da invasividade e formação de tumores satélites. Nosso sistema de imagem 3D pode oferecer novas possibilidades para investigar diversas células e muitas variantes-chave durante a apoptose ou migração de células cancerígenas ou para avaliar a eficácia da perda de células cancerígenas. Um aspecto atrativo deste modelo de cultura celular 3D é a capacidade de alterar a concentração da matriz extracelular ou utilizar outra matriz extracelular para a montagem do sistema 3D.Quem demonstrará o procedimento será Marie-France Cote, assistente de pesquisa do meu laboratório, e Audrey Turcotte, aluna de pós-graduação sob minha supervisão. Comece misturando colágeno do tipo I de tendão de cauda de rato liofilizado por cinco misturas de dois minutos cada, na velocidade máxima, para dispersar uniformemente o colágeno.Enquanto o colágeno está sendo incorporado, colete as células tumorais de interesse com a solução enzimática de desanexação apropriada. Em seguida, realize a exclusão com azul de tripano na contagem. Dilua as células dissociadas para uma concentração de 50.000 células por plugue em DMEM.Quando o colágeno estiver pronto, adicione rapidamente 1.250.000 células à solução de colágeno com pipetagem para dispersar homogeneamente as células. Dispense imediatamente 200 microlitros da suspensão celular individual em cada poço de uma placa de 96 poços. Bata suavemente a placa na superfície da área de trabalho após cada adição para remover quaisquer bolhas de ar e distribuir a solução uniformemente pelos poços.Quando todas as células tiverem sido adicionadas, coloque a placa em um incubador a 37 graus Celsius por pelo menos duas horas, adicionando 100 microlitros de meio de cultura em cada poço após as primeiras duas horas, caso as células devam ser cultivadas durante a noite. Para preparar a primeira camada de gel de fibrina, leve o fibrinogênio liofilizado à temperatura ambiente antes de abrir o frasco, a fim de evitar a formação de cristais de hidrato. Em seguida, transfira o fibrinogênio para um béquer de vidro e adicione HBSS a 37 graus Celsius gota a gota ao pó para solubilizar os fragmentos de fibrinogênio.Em seguida, utilize uma espátula para desagregar os pedaços maiores de proteína, agitando o béquer de tempos em tempos conforme necessário para facilitar a mistura. Pipete a suspensão várias vezes para dissolver a proteína remanescente e filtre o líquido em esterilidade através de um filtro de 22 micrômetros. Em seguida, recubra imediatamente a superfície de cada poço de uma placa de 24 poços com 200 microlitros de fibrinogênio, tomando cuidado para evitar bolhas de ar.Após todos os poços terem sido revestidos completamente, incline a placa em um ângulo de 45°, então adicione 1,5 microlitro de solução de trombina no centro de um poço e agite suavemente a placa na horizontal por um a dois segundos. Após tratar mais cinco poços com trombina da mesma maneira, coloque a placa em posição horizontal estável sob uma capela de fluxo laminar por cinco a 10 minutos, até que as soluções formem gel. Para a colocação imediata do tampão de colágeno, incline cuidadosamente a placa para confirmar que os géis de fibrina estão completamente polimerizados.Em seguida, coloque a placa de 96 poços com tampões de gel de colágeno ao lado da placa de 24 poços com géis de fibrina e adicione uma gota de HBSS em cada poço com tampão de colágeno. A seguir, use uma microespátula para transferir um único tampão de colágeno para o centro de cada uma das primeiras camadas de gel de fibrina na placa de 24 poços. Quando todos os tampões tiverem sido transferidos, adicione 300 microlitros de solução de fibrinogênio a cada poço, seguido pela adição de 2,25 microlitros de trombina, conforme demonstrado anteriormente.Para revestir as tampas de colágeno com uma camada fina de membrana basal com fatores de crescimento reduzidos antes de sua colocação, transfira cada tampa para um tubo de centrífuga de 1,5 mililitro sobre gelo contendo 100 microlitros de membrana basal pura com fatores de crescimento reduzidos. Após dois minutos de imersão, transfira uma única tampa de colágeno revestida para o centro de cada camada de fibrina e incube as tampas a 37 graus Celsius por cinco minutos para solidificar a membrana basal com fatores de crescimento reduzidos. Em seguida, adicione a segunda camada de fibrina conforme demonstrado anteriormente.Quando os géis estiverem completamente polimerizados, preencha cada poço com 400 microlitros do meio de cultura apropriado e suplementos. Em seguida, adicione um agente antifibrinolítico aos poços. E incube as culturas tridimensionais nas condições apropriadas para a linhagem celular tumoral em teste.Nos dias apropriados de alimentação celular, incline a placa em um ângulo de 30 a 35 graus e apoie uma pipeta contra a parede de cada poço para aspirar o meio sem perturbar os géis. Em seguida, adicione 400 microlitros de meio fresco de cultura celular e agente antifibrinolítico a cada cultura de gel. Este ensaio de cultura celular tridimensional permite a visualização direta da migração de células cancerígenas do tampão de colágeno para o gel de fibrina adjacente, para o estabelecimento de tumores secundários, possibilitando a comparação do comportamento de células metastáticas conhecidas com o de células não metastáticas ou fracamente metastáticas.Por exemplo, neste experimento, numerosos tumores satélites dispersaram-se aleatoriamente por todo o gel de fibrina contendo a linhagem celular metastática B16 F10, enquanto nenhum tumor satélite foi observado para a linhagem celular B16 F0 fracamente metastática. Em contraste, essas células de carcinoma da glândula mamária murina, que são pouco metastáticas mas altamente invasivas localmente, formam uma frente de migração que se estende radialmente para dentro do gel de fibrina. Após 14 dias de cultivo, as células do carcinoma da glândula mamária afastam-se da frente migratória para formar estruturas em formato estelar, semelhantes de perto às estruturas da glândula mamária.Agentes quimioterápicos podem ser testados em células cancerígenas incorporadas, como neste experimento representativo, no qual foi observado um aumento progressivo na fragmentação do DNA concomitantemente ao aumento dos casos de apoptose de células cancerígenas induzida por agentes quimioterápicos. Quando dominada, esta técnica pode ser concluída em aproximadamente seis horas ou distribuída ao longo de dois dias, dependendo do período inicial de incubação do coágulo de colágeno.Embora eu esteja realizando este procedimento, é importante impedir a formação de lacunas na interface entre os géis central e periférico, pois elas podem reduzir a capacidade das células cancerígenas de invadir o gel de fibrina. Após este procedimento, análises metalográficas ou proteômicas podem ser realizadas nas colônias satélites, nos tampões de colágeno ou nas células cancerígenas para identificar a expressão diferencial de genes e proteínas de interesse. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área da biologia do câncer explorarem a migração, apoptose, expressão gênica supressora de metástase e a capacidade de induzir angiogênese em uma variedade de linhagens celulares cancerígenas.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como incorporar células cancerígenas em um gel de colágeno e colocá-las entre camadas de um gel de fibrina para monitorar a invasividade e a formação de tumores satélites.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

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Aqui apresentamos um protocolo de co-cultura em três dimensões, que é útil para investigar interações multicelulares e modulação dependente de matriz extracelular do comportamento das células cancerígenas. Neste modelo experimental, as células cancerígenas são cultivadas em géis de colágeno incorporados com fibroblastos associados ao câncer humano.

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Tridimensional (3D) Tumor Esferóide Invasion Assay

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Sistema de cultura de células 3D para estudar a invasão e avaliação terapêutica em câncer de bexiga

A abordagem apresentada avalia simultaneamente a invasão de células cancerígenas em ensaios esferoides 3D e citotoxicidade de células T. Esferoides são gerados em um elenco multi-microwell livre de andaimes. A cocultura e a incorporação na matriz de colágeno tipo I são realizadas dentro do mesmo dispositivo que permite monitorar a invasão de células cancerígenas e a citotoxicidade mediada por células T.

Monitoramento da invasão celular cancerígena e citotoxicidade de células T na cultura 3D

Aprenda a criar um sistema de cultura 3D com células cancerígenas em colágeno e fibrina para monitorar invasividade e formação de tumores satélite. Este método permite estudar migração celular e avaliar terapias anticâncer.

Tridimensional Cultura Ensaio para Explorar Cancer Invasividade celular e formação de tumor Satélite

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