Name: Preparação e caracterização de Lipofílica Doxorrubicina micelas Pro-drogas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Aprenda a preparar e caracterizar micelas lipofílicas de pro-fármaco da doxorrubicina. Este método melhora a carga e estabilidade do fármaco, facilitando a liberação direcionada a tumores e reduzindo toxicidades no tratamento do câncer.

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Este trabalho foi apoiado pelas seguintes bolsas: bolsa NIH-SC3, bolsa NSF-PREM, bolsa de pesquisa do corpo docente da Universidade de Hampton. Gostaríamos de agradecer à Sra. Michele A. Cochran, do Instituto de Ciências Marinhas da Virgínia (VIMS), pelo uso do analisador de tamanho de partículas. Também gostaríamos de agradecer à Sra. Corinne R. Ramaley pela revisão do manuscrito.

1. Síntese de DOX-PA <ol><li> Pesar 390 mg de doxorrubicina e 243 mg de hidrazida de ácido palmítico, e transferir para um balão de fundo redondo. </li><li> Adicionar 150 ml de metanol anidro para o balão com uma seringa de vidro. Adicionar 39 ul de ácido trifluoroacético (TFA), com uma pipeta. Usando um agitador magnético, agita-se a mistura de reacção durante 18 horas à temperatura ambiente no escuro. NOTA: As quantidades de materiais de reacção podem ser ampliados ou reduzidos para se obter diferentes quantidades de DOX-PA. A proporção dos reagentes deve ser mantida nas mesmas proporções. As reacções que utilizam quantidades de DOX na gama de 78 mg a 1170 mg pode ser realizado num laboratório normal química. </li><li> Purificação de DOX-PA usando uma coluna de gel de sílica. 17 <ol><li> Remover o solvente na mistura de reacção com um evaporador rotativo. Adicionar 3 g de gel de sílica após o volume da mistura é reduzida para cerca de 20 ml. Continue a evaporação rotativa para se obter pós secos e para permitir que tele adsorção de produtos sobre o gel de sílica. Manter a amostra sob vácuo durante mais 30 min após os pós secos são formados. </li><li> Pacote de 50 g de gel de sílica numa coluna usando diclorometano como solvente. Cuidadosamente adicionar a amostra de gel de sílica contendo o produto adsorvida para a coluna. </li><li> Elui-se a coluna com uma mistura de diclorometano e metanol, aumentando gradualmente a percentagem de metanol, aumentando assim a polaridade do solvente (Tabela 1). </li><li> Recolha fracções de eluente em tubos de ensaio (25 ml / tubo) e monitorizar o progresso por cromatografia de camada fina (TLC). </li><li> Combinar todas as fracções contendo DOX-PA puro e remover o solvente usando um evaporador rotativo até o pó seca é formada. Além disso secar o produto sob um vácuo O / N. </li></ol></li><li> Análise de DOX-PA por TLC. <ol><li> Corte um x 8 cm secção de 4 cm de placa de TLC. soluções de amostra spot 0,5 cm da parte inferior da placa com TLC capilares mancha usando conheceuhanol como o solvente. </li><li> Colocar a placa de TLC para uma câmara de desenvolvimento contendo uma mistura de diclorometano e metanol (3/1, v / v). A profundidade do solvente deve ser apenas menos de 0,5 cm. </li><li> Remova a placa da câmara de revelação quando a frente de solvente atingir o topo da placa. Marcar a localização da frente de solvente com um lápis e permitem que a placa secar. Colocar a placa de TLC para uma câmara de coloração contendo vapor de iodo saturada, a fim de visualizar amostras. </li></ol></li><li> Análise de DOX-PA com um H-Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy (1H-RMN). 18 <ol><li> Dissolve-se 15 mg de DOX-PA em 1 ml de sulfóxido de metil-d6 (DMSO) e transferir a amostra para um tubo de RMN. </li><li> Insira o tubo de RMN para o ímã do instrumento de RMN. Medir o espectro de protões, seleccionando de DMSO como um solvente. Retire o tubo de RMN do ímã. Analise o resultado RMN 18. </li></ol></li></ol> 2. Preparação de micelas de DOX-PA pelo método de película-dispersão <ol><li> Dissolve-se DSPE-PEG (40 mg) e DOX-PA (4 mg) com 2 ml de metanol em um frasco de vidro de 10 ml. </li><li> Remover o solvente orgânico sob vácuo utilizando um evaporador rotativo, até se formar um filme fino no frasco. NOTA: Como alternativa, evapora-se os solventes orgânicos sob gás inerte (por exemplo, árgon ou azoto gasoso) para formar uma película e manter o frasco em um exsicador de vácuo para remover adicionalmente o solvente residual. </li><li> Transferência de 2 ml de solução salina de Dulbecco tamponada com fosfato (pH 7,4, DPBS) para o frasco de vidro. </li><li> Colocar o frasco num banho de ultra-sons durante 3 minutos à temperatura ambiente para gerar micelas. NOTA: A energia de ultra-som varia entre os diferentes modelos de banhos ultra-sônicos. Seleccionar uma unidade que pode gerar energia ultra-sónica suficiente para dispersar o filme de polímero / fármaco fina. O poder de banho ultra-sônico usado neste protocolo de saída é de 110 W. </li><li> Manter micelas a 4 ° C para armazenagem de curta duração e -20 ° C durante longoarmazenamento -termo. NOTA: Como alternativa, micelas também podem ser liofilizados e reconstituídos com água antes da utilização. Normalmente, não cryoprotectant ou lioprotector é necessário para esta formulação. </li></ol> 3. Caracterização de DOX-PA As micelas <ol><li> Determinação da concentração de DOX-PA em micelas e eficiência de encapsulação de drogas <ol><li> Dissolve DOX-PA sintetizados nos passos anteriores em DMSO para se preparar soluções de DOX-PA de cinco concentrações diferentes: 1 ug / ml, 5 ug / ml, 20 ug / ml, 50 ug / ml, e 100 ug / ml. Medir a absorção de soluções de DOX-PA com um espectrómetro de UV-VIS a 490 nm. Gerar uma curva padrão baseada nas concentrações de droga DOX-PA e o seu correspondente de absorção a 490 nm. </li><li> Diluir 25 uL de micelas carregadas com fármaco com 500 ul de DMSO. Medir a absorção a 490 nm com um espectrómetro UV-VIS. Calcule as concentrações de droga com a curva padrão gerada no ponto 3.1.1. </li><li> Calcular a eficiência de encapsulação usando a seguinte equação: Eficiência de encapsulamento de droga (%) = (quantidade de drogas em micelas) / (quantidade de fármaco adicionado) x 100% </li></ol></li><li> Caracterização do tamanho de partícula com dispersão de luz dinâmica (DLS) <ol><li> Diluir micelas com DPBS (pH 7,4) até uma concentração final de DSPE-PEG de 1 mg / ml. Analisar uma amostra de 2 ml com um analisador de tamanho de partículas para se obter o tamanho e a polidispersidade índice médio Z (PDI). </li></ol></li><li> Avaliação in vitro actividade anti-cancro NOTA: Use técnica estéril apropriada e operar dentro de uma cabine de segurança biológica. <ol><li> Remover o meio de cultura celular a partir de um frasco de cultura de células (por exemplo, T25) contendo células DU-145 de cancro da próstata humano e lavar as células com 2 mL de DPBS (pH 7,4). </li><li> Aspirar DPBS, adicionar 1 ml de solução de tripsina (0,25%), e incuba-se durante 2 min a 37 ° C para separar as células. </li><li> Adicionar 10 ml de meio de cultura celular (RPMI 1640 + 10% de Soro Fetal Bovino + 1% de antibiótico-antimicótico), quando a maioria das células são separadas do balão. Transferir as células para um tubo de centrífuga de 15 ml e centrifugar as células a 1000 xg durante 5 min. </li><li> Re-suspender o sedimento de células com 5 ml de meio de cultura celular e remover uma amostra para a contagem do número de células com um hemocitómetro. Dilui-se as células com meio de cultura celular a uma densidade de 50.000 células / ml. Adicionar as suspensões de células diluídas em uma placa de cultura celular de 96 poços (100 ul / poço). Incubam-se as células numa incubadora de cultura de células (37 ° C, 5% CO 2) durante 18 h, para permitir a fixação das células. </li><li> Diluir DOX dimetil sulfóxido solução (DMSO) e solução de DOX-PA DMSO com meio de cultura de células para se obter concentrações finais da droga de 0,1 uM, 0,5 uM, 2 uM, 5 uM, 10 uM e, respectivamente. Manter a concentração final de DMSO em todas as amostras acima de 0,5%. Diluir micela DOX-PA com meio de cultura de células para se obter co farmacológico finalncentrations de 0,1 uM, 0,5 uM, 2 uM, 5 uM, 10 uM e, respectivamente. Utilizar o meio de cultura de células em branco um controlo. </li><li> Remova a placa de cultura celular de 96 poços a partir do incubador e substituir o meio de cultura de células com 100 ul de meio contendo diferentes agentes de tratamento preparado no passo 3.3.5 (n = 4 para cada grupo). Incubam-se as células na incubadora de cultura de células (37 ° C, 5% CO 2) durante uma 72 horas adicionais. </li><li> Aspirar o meio e adicionar 100 uL de meio contendo 0,5 mg / ml de 3- (4,5-dimetil-tiazol-2-il) -2,5-difenil (MTT). </li><li> Incubam-se as células na incubadora de cultura de células durante mais 2 h. Remova cuidadosamente o meio e adicionar 100 ul de DMSO para dissolver cristais de formazano. </li><li> Medir a absorvância com o espectrofotómetro de microplacas a um comprimento de onda de 570 nm e um comprimento de onda de referência de 670 nm. </li><li> Calcula-se a viabilidade celular utilizando a seguinte equação: <strong&gt; Viabilidade celular (%) = (A Teste / controlo) × 100% NOTA: Comparar a viabilidade celular entre os diferentes grupos usando uma análise de uma via de variância (ANOVA) teste estatístico. Calcula-se a CI 50 com base na viabilidade celular comparada dados de concentração de droga. </li></ol></li></ol>

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Os autores não têm nada a divulgar.

Neste trabalho, nós descrevemos, um método de filme rápida dispersão simples para a preparação de micelas. Este método utiliza as propriedades de auto-montagem de um polímero anfifílico (por exemplo, DSPE-PEG) para formar micelas com núcleo e camadas estruturadas num ambiente aquoso. Este método de preparação de micelas tem várias vantagens. 1. Trata-se de um processo de formulação simples, o que evita a utilização de passos de redução de tamanho (complicados, tais como extrusão ou homogeneização) vulgarmente u...

A quimioterapia é utilizada para tratar várias formas de cancro. A maioria, se não todos, os fármacos de quimioterapia têm efeitos secundários tóxicos que podem variar de pequenas condições controláveis, tais como náusea e diarreia, condições que ameaçam a vida mais. Uma vez que a maioria dos fármacos anti-cancerígenos são tóxicos, não-exposição selectiva destes fármacos ao tecido normal, inevitavelmente, provoca toxicidade. Por conseguinte, existe uma grande necessidade de uma abordagem terapêutica que possa entregar drogas selectivamente em células cancerosas. Um outro desafio com a administração de fármacos anti-cancro é a sua fraca solubilidade em água. Normalmente, os agentes de solubilização são necessários para formular estes fármacos pouco solúveis. No entanto, a maioria dos agentes de solubilização, tais como o sulfóxido de dimetilo (DMSO), Cremophor EL, e polissorbato 80 (Tween 80) podem causar toxicidade hepática e renal, hemólise, as reacções de hipersensibilidade aguda e neuropatias periféricas. 1 Assim, formulações seguros e biocompatíveis são necessários para o uso clínico de máfármacos anti-cancerígenos ly solúveis. Nanocarriers são promissores sistemas de entrega de drogas para enfrentar os desafios acima. Estes nanocarriers incluem lipossomas, 2 nanopartículas, 3 micelas, 4-7 conjugados de polímero-droga, 8 e materiais inorgânicos. 9 Vários produtos nanomedicina (por exemplo, DOXIL, Abraxane e Genexol) foram aprovados pelas agências reguladoras para tratar pacientes com câncer. 10 As micelas poliméricas são promissores transportadores de distribuição de drogas de nano-escala, que têm sido utilizados com êxito para a administração de fármacos anti-cancro. 4-7,11,12 micelas poliméricas típicas são preparadas a partir de polímeros anfifílicos através de um processo de auto-montagem. Os core-shell micelas poliméricas estruturadas incluem uma camada hidrófila e um núcleo hidrofóbico. A camada hidrófila pode estabilizar estereoquimicamente micelas e prolongar a sua circulação na corrente sanguínea. O núcleo hidrofóbico pode encapsular eficazmente d hidrofóbicotapetes. Devido ao pequeno tamanho de micelas (normalmente inferiores a 200 nM) e propriedades de longa circulação, micelas poliméricas são acreditados para atingir tumores direccionamento por meio de efeitos de retenção (EPR) (tumor passivo segmentação) e permeabilidade aumentada. A carga de droga a estabilidade é crítica para a capacidade de direccionamento tumoral de micelas. Para alcançar segmentação tumor ideal, micelas deve ter vazamento de drogas mínima antes de chegar ao local do tumor, mas liberte rapidamente a droga depois de entrar células cancerosas. Além disso, a estabilidade da formulação é também um requisito essencial para o desenvolvimento do produto, porque a estabilidade da formulação determina a viabilidade do desenvolvimento do produto, bem como a vida de prateleira de produtos desenvolvidos. Recentemente, muitos esforços têm sido feitos para melhorar o carregamento de medicamentos em transportadores de entrega. A abordagem de pró-fármaco lipofílico é uma estratégia que tem sido explorado para melhorar a carga de fármaco em nanopartículas de lípidos e emulsões. 13,14 O conjugation de lipídios com drogas pode melhorar significativamente a sua lipofilicidade e aumentar a carga e retenção nos componentes lipofílicos de nanocarriers. Aqui, descrevemos um protocolo para a preparação de doxorrubicina lipofílico pró-drogas micelas carregadas. Em primeiro lugar, é descrito o procedimento de síntese para a doxorubicina lipofílico pró-droga. Então, um protocolo para a geração de micelas com um método de película-dispersão é introduzida. Este método tem sido utilizado com sucesso nos estudos anteriores. 5 DSPE-PEG foi seleccionado como o material transportador para a preparação de micelas porque tem sido utilizado com sucesso para a entrega de drogas micela 15,16. Finalmente, descreve-se vários testes in vitro utilizados para caracterizar micela formulações e para avaliar a atividade anticâncer.

<table><tbody><tr><td>DSPE-PEG2K</td><td>Cordenpharm</td><td>LP-R4-039</td><td>>95%</td></tr><tr><td>Doxorrubicina</td><td>LC Laboratories</td><td>D-4000</td><td>>99%</td></tr><tr><td>Hidrazida de Ácido Palmítico</td><td>TCI AMERICA&nbsp; &nbsp;</td><td>P000425G</td><td>>98.0%</td></tr><tr><td>Metanol</td><td>ACROS Organics</td><td>610981000</td> Cloreto de Metileno <td>Anidro</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>FISHER&nbsp;</td><td>D151-4</td><td>99.90%</td></tr><tr><td>Metil sulfóxido-d6</td><td>ACROS Organics</td><td>AC320760075</td><td>Solvente NMR</td></tr><tr><td>Ácido Trifluoroacético&nbsp;</td><td>ACROS Organics</td><td>AC293811000</td><td>99.50%</td></tr><tr><td>Sílica Gel</td><td>FISHER&nbsp;</td><td>L-7446</td><td>230-400 mesh</td></tr><tr><td>Baker Flex TLC Plates</td><td>FISHER&nbsp;</td><td></td><td></td>NC9990129</tr><tr><td>DPBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>DU 145&nbsp; Células de Câncer de Próstata</td><td>ATCC</td><td>HTB-81</td><td></td></tr><tr><td>MTT</td><td>ACROS Organics</td><td>158990050</td><td>98%</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Médio</td><td>MEDIATECH INC&nbsp;</td><td>10041CV</td><td></td></tr><tr><td>Antibiótico-Antimicótico&nbsp;</td><td>LIFE TECHNOLOGIES&nbsp;</td><td>15240062</td><td>solução estoque 100x</td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino</td><td>LIFE TECHNOLOGIES&nbsp;</td><td></td><td></td>10437077</tr><tr><td>Espectroscopia de Ressonância Magnética Nuclear</td><td>Varian, Inc</td><td></td><td>300 NMR&nbsp;</td></tr><tr><td>B&uuml; chi R-3 Rotavapor</td><td>Buchi</td><td>1103022V1&nbsp;</td><td>Evaporador rotativo</td></tr><tr><td>Banho Ultrassônico</td><td>BRANSON ULTRASONICS CORPORATION&nbsp;</td><td></td><td></td>CPX952318R</tr><tr><td>espectrômetro UV-VIS Biomate 3</td><td>Thermo Spectronic</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zetasizer Nano ZS90&nbsp;</td>Espectrofotômetro de Microplacas <td>Analisador de Tamanho de Partículas</td> <td>da Malvern Instruments</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Rio-Rad</td><td>Benchmark Plus&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de Cultura</td><td>de Células Napco</td><td>CO2 6000</td><td></td></tr><tr><td>Gabinete de Segurança Biológica</td><td>Nuaire</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SigmaPlot&nbsp;</td><td>Systat Software, Inc.</td><td></td><td>Software Analítico</td></tr><tr><td>Placa de Cultura de Células de 96 Poços</td><td>Becton Dickinson</td><td>353072</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina&nbsp; 0.25%</td><td>Corning Cellgro</td><td>25-053-CI</td><td></td></tr></tbody></table>

preparação e caracterização de lipofílica doxorrubicina micelas pro-drogas

Preparation and Characterization of Lipophilic Doxorubicin Pro-drug Micelles

As micelas têm sido usadas com sucesso para a administração de medicamentos anticâncer. Os polímeros anfifílicos formam micelas estruturadas em núcleo-casca em um ambiente aquoso por meio de automontagem. O núcleo hidrofóbico das micelas funciona como um reservatório de drogas e encapsula drogas hidrofóbicas. A casca hidrofílica impede a agregação de micelas e também prolonga sua circulação sistêmica in vivo. Neste protocolo, descrevemos um método para sintetizar um pró-fármaco lipofílico de doxorrubicina, o ácido palmítico doxorrubicina (DOX-PA), que aumentará a carga do fármaco nas micelas. Um ligante de hidrazona sensível ao pH foi usado para conjugar a doxorrubicina com o lipídio, o que facilita a liberação de doxorrubicina livre dentro das células cancerígenas. O DOX-PA sintetizado foi purificado com uma coluna de sílica gel usando diclorometano/metanol como eluente. O DOX-PA purificado foi analisado com cromatografia em camada delgada (TLC) e 1espectroscopia de ressonância magnética nuclear H (1H-RMN). Um método de dispersão de filme foi usado para preparar micelas DSPE-PEG carregadas com DOX-PA. Além disso, vários métodos para caracterizar formulações de micelas são descritos, incluindo determinação da concentração de DOX-PA e eficiência de encapsulação, medição do tamanho e distribuição de partículas e avaliação de atividades anticancerígenas in vitro. Este protocolo fornece informações úteis sobre a preparação e caracterização de micelas carregadas de drogas e, portanto, facilitará a pesquisa e o desenvolvimento de novos nanomedicamentos contra o câncer à base de micelas.

A Figura 1 mostra o esquema de síntese de DOX-PA. DOX-PA foi sintetizada por conjugação de ácido palmítico com doxorrubicina através de uma ligação de hidrazona sensível a pH. Um ligeiro excesso de hidrazida de ácido palmítico foi usada para facilitar a finalização da reacção. Este método de reacção tem uma eficiência muito elevada e apenas uma pequena quantidade de doxorubicina permaneceu após uma reacção de 18 h (Figura 2). O rendimento foi de aproxima...

Um protocolo para a preparação e caracterização de doxorrubicina lipofílico pró-fármaco carregado 1,2-distearoyl--sn-glicero-3-phosphoethanolamine- N - [amino (polietileno glicol) -2000] (DSPE-PEG) micelas é descrito.

Preparação e caracterização de Lipofílica Doxorrubicina micelas Pro-drogas

Micelles have been successfully used for the delivery of anticancer drugs. Amphiphilic polymers form core-shell structured micelles in an aqueous ...

O objetivo geral deste protocolo é descrever os procedimentos para a preparação e caracterização de formulações de micelas carregadas com pró-fármaco lipofílico de doxorubicina. Este método fornece uma abordagem simples e confiável para a formulação de micelas. A síntese do pró-fármaco lipofílico de doxorubicina pode aumentar o carregamento do fármaco e a estabilidade, superando assim um desafio significativo no desenvolvimento de formulações micelares.A formulação em micelas pode melhorar o direcionamento do fármaco para tumores e, portanto, reduzir as toxicidades do tratamento do câncer. Além da aplicação descrita neste projeto, esta técnica também pode ser usada para preparar a nanomedicina para os agentes. Para sintetizar o pró-fármaco lipofílico de doxorrubicina DOX-PA, pese 390 miligramas de doxorrubicina e 243 miligramas de hidroxida de ácido palmítico e transfira-os para um balão de fundo redondo.Adicione 150 mililitros de metanol anidro ao frasco com uma seringa de vidro. Em seguida, adicione 39 microlitros de ácido trifluoroacético, ou TFA, com uma pipeta. Utilizando um agitador magnético, agite a mistura de reação por 18 horas à temperatura ambiente e no escuro.Para purificar o DOX-PA usando uma coluna de gel de sílica, remova primeiro o solvente da mistura reacional com um evaporador rotativo. Adicione três gramas de gel de sílica após o volume da mistura ser reduzido a aproximadamente 20 mililitros. Continue a evaporação rotativa até obter pós secos e permitir a absorção dos produtos ao gel de sílica.Mantenha a amostra sob vácuo por mais 30 minutos após a formação dos pós secos. Empacote 50 gramas de gel de sílica em uma coluna usando diclorometano como solvente. Adicione cuidadosamente a amostra de gel de sílica contendo o produto absorvido à coluna.Elua a coluna com uma mistura de diclorometano e metanol, aumentando gradualmente a porcentagem de metanol, aumentando assim a polaridade do solvente. Colete frações do eluente em tubos de ensaio com 25 mililitros por tubo e monitore o andamento por cromatografia em camada delgada, ou CCD. Combine todas as frações contendo DOX-PA puro e remova o solvente utilizando um evaporador rotativo até que um pó seco seja formado.Seque o produto adicionalmente sob vácuo durante a noite. Para preparar micelas, dissolva 40 miligramas de DSPE-PEG e quatro miligramas de DOX-PA com dois mililitros de metanol em um frasco de vidro de 10 mililitros. Remova o solvente orgânico sob vácuo utilizando um evaporador rotativo, até que se forme uma película fina no frasco.Em seguida, transfira dois mililitros de solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco, pH 7,4 para o frasco de vidro. Selecione um banho ultrassônico capaz de gerar potência ultrassônica suficiente para dispersar a película fina do fármaco polimérico. A potência de saída do banho ultrassônico utilizado neste protocolo é de 110 watts.Coloque o frasco em um banho ultrassônico por três minutos à temperatura ambiente para gerar micelas. Mantenha as micelas a quatro graus Celsius para armazenamento de curto prazo e a menos 20 graus Celsius para armazenamento de longo prazo. Após o preparo das micelas, realize diversas caracterizações para determinar a concentração do fármaco nas micelas, os tamanhos das partículas e as atividades antitumorais in vitro.Para determinar a concentração de DOX-PA e a eficiência de encapsulação do fármaco, dilua 25 microlitros de micelas carregadas com fármaco em 500 microlitros de DMSO. Meça a absorção em 490 nanômetros com um espectrômetro UV-VIS e calcule as concentrações de fármaco e a eficiência de encapsulação conforme descrito no protocolo textual. Para avaliar a atividade anticâncer in vitro, adicione as suspensões celulares diluídas em uma placa de cultura celular de 96 poços, com 100 microlitros por poço.Incube as células em uma estufa de cultura celular por 18 horas para permitir a adesão celular. Em seguida, dilua uma solução de DOX em DMSO e uma solução de DOX-PA em DMSO com meio de cultura celular para obter as concentrações finais do fármaco. Mantenha a concentração final de DMSO em todas as amostras em 0,5%. Em seguida, dilua micelas de DOX-PA com meio de cultura celular para obter as concentrações finais do fármaco.Utilize o meio de cultura celular sem células como controle. Remova a placa de cultura celular de 96 poços da incubadora e substitua o meio de cultura celular por 100 microlitros de meio contendo diferentes agentes de tratamento. Incube as células na incubadora de cultura celular por mais 72 horas.Em seguida, aspire o meio e adicione 100 microlitros de meio contendo 0,5 miligramas por mililitro de MTT. Incube as células no incubador de cultura celular por mais duas horas. Remova cuidadosamente o meio e adicione 100 microlitros de DMSO para dissolver os cristais de formazano.Meça a absorbância com o espectrofotômetro de microplacas em um comprimento de onda de 570 nanômetros e um comprimento de onda de referência de 670 nanômetros. Por fim, calcule a viabilidade celular conforme descrito no protocolo textual. O esquema de síntese do DOX-PA é mostrado aqui.O ácido palmítico é conjugado à doxorrubicina por meio de um ligador hidrazina sensível ao pH. A estrutura do DOX-PA foi posteriormente confirmada por espectro de RMN de próton. São observados picos característicos de RMN provenientes tanto da doxorrubicina quanto do ácido palmítico.As letras indicam os picos e a respectiva porção dentro da estrutura. Os micélos DSPE-PEG sem fármaco aparecem como um líquido transparente, enquanto os micélos DSPE-PEG com DOX-PA aparecem como um líquido vermelho, devido à carga de DOX-PA nos micélos. O tamanho médio das partículas dos micélos DSPE-PEG sem fármaco é de aproximadamente 17,0 nanômetros.O carregamento de DOX-PA aumentou ligeiramente o tamanho das partículas micelares, com um tamanho médio de partícula de aproximadamente 25,7 nanômetros para micelas de DOX-PA DSPE-PEG. Uma redução dependente da concentração na viabilidade celular foi obtida ao tratar células DU145 com doxorrubicina livre, DOX-PA livre ou micelas de DOX-PA. Embora a doxorrubicina livre seja mais eficaz do que o DOX-PA livre ou micelas de DOX-PA em concentrações mais baixas, os grupos de DOX-PA mostraram maior redução na viabilidade celular do que a doxorrubicina livre em concentrações mais altas.Além disso, parece não haver diferença significativa entre DOX-PA e micelas de DOX-PA em ambas as concentrações mais altas e mais baixas. Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como preparar formulações de micelas utilizando o método de dispersão de filme. É importante lembrar que o método descrito pode ser usado para preparar micelas com diferentes fármacos e materiais carreadores.O design do material transportador é fundamental para melhorar o desempenho da formulação. Após este procedimento, a formulação micelar pode ser avaliada in vivo com modelos animais de tumor para testar a atividade anticâncer.

preparation-characterization-lipophilic-doxorubicin-pro-drug

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

O objetivo deste protocolo é descrever a preparação e caracterização de fármacos fisicamente aprisionados e pouco solúveis em água em sistemas micelares de liberação de fármacos compostos por copolímeros em bloco anfifílico.

Preparação e caracterização de Individual e Multi-carregadas com droga Fisicamente Entrapped poliméricos Micelles

Relatamos uma aplicação inteligente de nanotubos de carbono para estabilização cinética de partículas lipídicas que contêm nanoestruturas automontadas em seus núcleos. A preparação de partículas lipídicas requer concentrações bastante baixas de nanotubos de carbono, permitindo seu uso em aplicações biomédicas, como administração de medicamentos.

Preparação Facile da Internamente auto-montados Lipid partículas estabilizada por nanotubos de carbono

Os principais passos da vida polimerização aniônica de éter fenil glicidílico (PheGE) sobre metoxi-polietileno glicol (MPEG-b -PPheGE) são descritos. As micelas de copolímero em bloco resultante (SGCN) foram carregados com doxorrubicina 14% (% em peso) e de libertação sustentada de fármaco durante 4 dias sob condições f isiologicamente relevantes foi obtido.

Aniônico polimerização de um copolímero anfifílicas para Preparação de copolímero em bloco As micelas estabilizada por interacções de empilhamento π-¸

Para fornecer medicamentos contra o câncer a locais de tumor com alta especificidade e efeitos colaterais reduzidos, são necessários novos métodos baseados em nanopartículas. Aqui, descrevemos micelas reticuladas de dissulfeto que podem ser facilmente preparadas por oxidação mediada por peróxido de hidrogênio e são capazes de se dissociar eficientemente sob um ambiente tumoral redutor para liberar cargas úteis.

Uma abordagem fácil e eficiente para a produção de micelas reversível Disulfide Cross-linked

Uma nanopartícula cristal líquido (LCNP) nanocarrier é utilizado como um veículo para a libertação controlada de uma carga hidrofóbico à membrana plasmática de células vivas.

Targeted Plasma Membrane entrega de um hidrofóbica Carga encapsulado em um cristal líquido nanopartículas Transportador

Imagem latente da viver-pilha é uma poderosa ferramenta para visualizar processos dinâmicos. O exame das células fixos fornece apenas imagens estáticas, que podem levar a má interpretação e confusão sobre o processo. Este trabalho apresenta um método para estudar a absorção, liberação de drogas e localização intracelular de nanopartículas lipossomas em pilhas vivas.

Usando em Vitro viver-pilha de imagem para explorar Chemotherapeutics entregues por nanopartículas de lipídios-baseado

Este protocolo descreve um processo analítico eficiente e conveniente de extração de amostra e determinação simultânea de múltiplas drogas, doxorrubicina (DOX), mitomicina C (MMC) e um metabólito tóxico cardio DOX, doxorubicinol (DOXol), no biológico amostras de um modelo de tumor de mama pré-clínico tratadocom com formulações de nanopartículas de combinação sinérgica de drogas.

Extração de amostra e quantificação cromatográfica simultânea de doxorrubicina e mitomicina C após entrega de combinação de drogas em nanopartículas para ratos de Tumor-rolamento

Este estudo descreve a hidratação clássica utilizando o método de filme lipídico fino para preparo de nanolipoalguns seguido de caracterização de nanopartículas. Uma proteína 47 kDa-hidrófilo e globular, Tarin, é encapsulada com sucesso como uma estratégia para melhorar a estabilidade, evitar o afastamento rápido, e promover a liberação controlada. O método pode ser adaptado ao encapsulamento de moléculas hidrofóbicas.

Preparação e caracterização de Nanolipossomas para a aprisionamento de proteínas globulares hidrofílicas bioativas

O protocolo apresenta os parâmetros otimizados para a preparação de liposomos termosensíveis usando o dispositivo microfluido de microfluidos de micromixer herringbone escalonado. Isso também permite o coencapsulamento de doxorubicina e verde indocianina nos liposomos e a liberação fototérmica de doxorubicina para liberação controlada/desencadeada de drogas.

Produção microfluida de liposomos sensíveis à temperatura contendo lisolipóides

Neste protocolo, as nanopartículas de ouro modificadas AS1411-g-PEI-g-PEG são sintetizadas através de reações de meio-médio de três etapas. Em seguida, a doxorubicina é carregada e entregue às células cancerígenas alvo para a terapia contra o câncer.

Síntese de Nanopartículas de ouro modificada Aptamer-PEI-g-PEG carregadas com doxorubicina para entrega de drogas direcionadas

Aprenda a preparar e caracterizar micelas lipofílicas de pro-fármaco da doxorrubicina. Este método melhora a carga e estabilidade do fármaco, facilitando a liberação direcionada a tumores e reduzindo toxicidades no tratamento do câncer.

Preparação e caracterização de Lipofílica Doxorrubicina micelas Pro-drogas

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