15 de outubro de 2016
PI (4,5) P 2 regula várias funções celulares, mas a sua organização em nanoescala na membrana plasmática da célula é mal compreendida. Por rotulagem PI (4,5) P 2 com uma sonda fluorescente de duas cores fundido com o domínio de homologia plecstrina, descrevemos uma nova abordagem para estudar o PI (4,5) P 2 em distribuição espacial da membrana plasmática em escala nanométrica .
O objetivo geral deste trabalho é emitir a distribuição em nanoescala de fosfatidilinositol 4, 5-bifosfato na membrana plasmática celular usando microscopia de localização de fluorescência de molécula única. Este método ajuda a responder a perguntas-chave sobre a sinalização de fosfoinositídeos. Como qual é a organização em nanoescala de fosfoinositídeos sob o complexo de sinalização na membrana celular?
As principais vantagens desta técnica são a alta resolução espacial e o desvio do tratamento com detergente, que é uma grande preocupação nos estudos morfológicos de fosfolipídios. Essa abordagem inclui três etapas principais. Primeiro passo: A preparação da folha de membrana plasmática a partir de células vivas.
Etapa dois: Marcação de fosfoinositídeos e imagens de florescência de molécula única. Etapa três: Localização de molécula única e reconstrução de imagem. No dia do experimento, lamínulas de cobertura com meio a um mililitro de PDL.
Uma ou duas horas depois, absorva o excesso de PDL com papel de seda da borda da lamínula. Em seguida, guarde as lamínulas em uma placa de metal a quatro graus Celsius. Em seguida, lave as células INS-1 pré-transspectadas que foram cultivadas em lamínulas com meio a um mililitro de PBS gelado contendo um EGTA milimolar.
Repita esta lavagem três vezes e absorva o excesso de PBS. Agora, usando uma pinça, coloque as lamínulas com as células cultivadas nas lamínulas revestidas com PDL, com o lado da célula voltado para baixo. Faça isso na placa de metal resfriada.
Em seguida, transfira a placa para quatro graus Celsius por sete a dez minutos para dar tempo às células de se fixarem. Em seguida, use uma pinça para retirar suavemente a lamínula carregada com células, o que deixará para trás uma fina camada de membrana celular na lamínula revestida com PDL. Em seguida, lave suavemente as folhas de membrana com meio a um mililitro de PBS gelado.
Agora fixe cada folha de membrana em aproximadamente 150 microlitros de PFA gelado a quatro por cento com 0,2 por cento de glutaraldeído em PBS. Deixe as membranas se fixarem por 15 minutos a quatro graus Celsius. Após a fixação, proceda imediatamente à imagem ou cubra as preparações com PBS gelado e armazene-as a quatro graus Celsius.
Se as sondas de pH estiverem em uso, a imagem imediata é altamente recomendada. Para este procedimento, um sistema SMLM baseado em microscópio TIRF é colocado em uso. Antes de obter imagens das membranas, diluir um microlitro de solução fluorescente em 10 mililitros de PBS com 50 milimolares de cloreto de magnésio.
Em seguida, carregue uma amostra na câmara de imagem e adicione 200 microlitros da solução diluída e aguarde 10 minutos. Em seguida, lave a amostra com PBS três vezes. Agora inicie o sistema de imagem PALM.
No software de imagem associado, selecione o botão do canal iRFP. Em seguida, encontre a membrana celular que expressa as sondas de pH no canal iRFP, use as esferas fluorescentes para correção de desvio. Defina um ângulo TIRF normal como 2140, que é 1,5 mais profundo que o ângulo crítico do TIRF e deve ser o ângulo padrão.
Em seguida, use o botão de captura para coletar uma imagem TIRF convencional no canal iRFP como referência. Em seguida, mude para o canal PAm-Cherry1 clicando no botão do canal RFP. Em seguida, ajuste a barra de rolagem no pad AOTF totalmente para a direita para iluminação total e aplique o laser por cerca de 10 a 20 segundos para branquear a florescência da membrana de fundo.
Em seguida, defina a configuração ideal da câmera na guia de formato para dois por dois. Em seguida, defina o protocolo de aquisição rápida na guia ND Sequence Acquisition para 30.000 imagens a 20 hertz. Em seguida, aplique 0,1 a um por cento de potência ao laser de 405 nanômetros durante a aquisição da imagem para que pontos espacialmente isolados em cada quadro sejam facilmente identificáveis.
Agora adquira imagens PAm-Cherry1 clicando no botão Executar agora. O número de moléculas que podem ser ativadas diminuirá gradualmente durante as aquisições. Em resposta, aumente gradualmente a intensidade do laser de 405 nanômetros para manter uma densidade ideal de sinais.
Adquira imagens até que todo o sinal PAm-Cherry1 seja ativado. Posteriormente, ao passar pelo processamento e reconstrução da imagem, identifique e localize os eventos moleculares individuais de cada quadro. Defina o limite de intensidade de filtragem com o número do limite na wavelet.
Mais detalhes são fornecidos no protocolo de texto. A distribuição espacial de PIP2 é sensível a diferentes fixações com fixação adequada descrita no texto, as sondas PIP2 mostraram uma distribuição consistente quando marcadas por anticorpos PIP2 ou domínios de pH específicos. Em comparação, as células vivas marcadas com domínios de pH marcados com EGFP não apresentam imagens muito diferentes.
Todas as amostras apresentaram uma distribuição uniforme das sondas. Em contraste, a fixação não ideal resultou em clusters PIP2 de densidade aguda e uma diminuição na intensidade do sinal. Sob condições ideais de fixação, as imagens de super-resolução de PIP2 em células fixas revelaram uma distribuição homogênea de sondas em uma porção significativa da membrana plasmática com apenas gradientes de concentração limitados.
Alguns remendos de membrana enriquecidos com sondas PIP2 foram esparsamente distribuídos e tinham vários tamanhos. As imagens PALM de células vivas exibiram uma distribuição espacial semelhante às células fixas. A análise detalhada dos sinais PIP2 revelou que sua dinâmica era rápida em áreas locais, mas isso não resultou em mudanças significativas em sua abundância geral.
Esta técnica introduz uma nova maneira para os pesquisadores no campo dos fosfolipídios explorarem a distribuição e a atividade de outros subtipos de fosfoinositídeos em condições fisiológicas.
Este estudo investiga a distribuição em escala nanométrica do fosfatidilinositol 4,5-bisfosfato (PI(4,5)P2) na membrana plasmática celular utilizando microscopia de localização de fluorescência de molécula única. O método fornece informações sobre o sinalização de fosfoinositídeos e a organização dos fosfoinositídeos nas membranas celulares.
Compreender a organização em escala nanométrica de fosfoinositídeos como o PI(4,5)P2 é essencial para reduzir os riscos na validação de alvos em vias de transdução de sinal. Este método permite obter informações mecanicistas sobre a dinâmica dos lipídios da membrana sem artefatos induzidos por detergentes, aumentando a confiança preditiva no estágio inicial da descoberta. Ele aborda um ponto crítico na validação de alvos ao esclarecer a organização espacial relevante para as interações fármaco-alvo na membrana plasmática.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação da hipótese do alvo até o desenvolvimento de ensaios e a validação mecanicista pré-clínica, especialmente para alvos envolvendo sinalização por fosfoinositóis.