October 7th, 2016
Descrevemos um protocolo in vivo para medir a dorsiflexão do pé após estimulação do nervo fibular e contração do compartimento crural anterior do membro posterior do rato. Essas medições são uma ferramenta translacional indispensável para avaliar a patologia do músculo esquelético e as abordagens de engenharia de tecidos para reparo e regeneração muscular.
O objetivo do teste de função muscular in vivo é fornecer uma avaliação precisa do estado funcional do músculo de interesse para estudar os efeitos da idade, doença, lesão e tratamentos reparadores. Este método é um componente chave para os estudos multidisciplinares necessários para entender melhor o curso do tempo e os mecanismos responsáveis pelo reparo e regeneração do músculo esquelético em uma variedade de contextos. A principal vantagem dessa técnica é que ela permite medidas repetidas da função muscular no mesmo animal ao longo do tempo.
Isso fornece um poderoso paradigma experimental para avaliar o dano muscular e a recuperação em um ambiente fisiológico otimizado. As implicações dessa técnica se estendem para a terapia do músculo lesionado porque a avaliação precisa do grau de recuperação muscular funcional é fundamental para o desenvolvimento e avaliação de novas terapias para a regeneração muscular. Geralmente, os indivíduos novos neste método terão dificuldades porque a colocação do eletrodo é escalavelmente variável de animal para animal e é crucial para o sucesso do procedimento.
Para esses experimentos, considere o uso de ratos Lewis de 11 semanas de idade. Independentemente disso, existe uma correlação linear entre massa muscular e força, portanto, esteja ciente do tamanho do rato. Depois de anestesiar o rato, remova completamente os pelos da lateral da perna planejada para experimentação entre o tornozelo e a pelve.
Agora, posicione o aparelho de pedal. Use dois controles para ajustar o pedal para a posição mais à esquerda e mais baixa que o aparelho permitir. A partir desta posição, o terceiro controle move o aparelho conforme necessário para o posicionamento adequado do pedal.
Agora, limpe a perna com três trocas de iodo e álcool. Cada aplicação de iodo deve ter cerca de 30 segundos de duração. Em seguida, ajuste a posição do animal para que, quando a perna for estendida, a sola esteja em contato completo com o pedal.
Em seguida, use fita adesiva para prender o pé ao pedal. É crucial que o calcanhar esteja nivelado com o pedal com todo o pé plano. Também é fundamental que o pé esteja bem preso.
Para estabilizar a perna, use o pino ajustável para travá-la no lugar. Agora, faça a perna paralela ao pedal. Primeiro, use os botões de ajuste grosso e fino para mover lentamente o tornozelo até que o pé e a tíbia estejam em uma posição de 90 graus.
Em seguida, continue a mover a perna até que o fêmur e a tíbia estejam em um ângulo perpendicular de 90 graus. Neste ponto, o animal está pronto para os eletrodos. No software de controle do eletrodo, ative a estimulação instantânea clicando no botão laranja claramente identificado.
Agora, posicione o primeiro eletrodo de estimulação logo após a rótula e logo lateral à tíbia, de modo que fique adjacente e ortogonal à planície do nervo perineal que corre lateralmente do joelho e é perpendicular à tíbia. Continue ajustando a localização da posição superficial até que os picos sejam vistos em torno de 0,4 Newtons. Em seguida, insira a segunda agulha no limite do tibial anterior e no gastrocnêmio muito superficialmente, de modo que fique mal na camada muscular.
Ajuste a posição até que o eletrodo mostre pico próximo a 0.6 Newtons. Uma vez ajustados, prenda os eletrodos no lugar usando grampos de hobby ou fita médica. Agora, ajuste os ajustes para encontrar a saída de força máxima da perna.
No estimulador bifásico de alta potência, encontre a faixa e ajuste os botões. Primeiro, ajuste o botão de alcance para obter a amperagem máxima desejada. A amperagem máxima é o nível em que três ou mais estímulos consecutivos resultam em respostas contráteis idênticas.
Em seguida, gire o botão de ajuste para girar a porcentagem da faixa necessária para estimular o músculo. Faça ajustes até que a força no músculo seja de cerca de 1,0 Newtons. Antes de prosseguir, verifique se os eletrodos ainda estão seguros.
Agora no software, pare o estímulo instantâneo, vá para a janela de dados ao vivo e clique em Iniciar sequência. Continue monitorando as curvas voltando para a tela de controle e clicando no botão Análise localizado acima do botão laranja Instant Stim. A curva tetânica deve começar a tomar forma em torno da estimulação de 60 hertz.
A curva tetânica pode ser usada para distinguir resultados ótimos de resultados subótimos. Essa curva geralmente começa a se formar em torno de uma frequência de 60 hertz e é totalmente formada em 100, e continuará a permanecer totalmente formada em frequências superiores a 100 hertz. A curva ideal deve ter uma elevação vertical acentuada ininterrupta no momento da estimulação, seguida por uma fase de platô plano com osculações mínimas e um período de diminuição vertical acentuada ininterrupta no término da estimulação.
A chave para bons resultados é a capacidade de estimular o músculo até a força máxima e manter essa força durante o tétano. Desvios normais da curva ideal podem indicar que o músculo está fatigado. Os desvios que resultam em curvas incompletas geralmente são devidos ao posicionamento incorreto do eletrodo, levando à falha do recrutamento máximo das fibras musculares durante a estimulação e, portanto, menor que a contração máxima.
Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como realizar habilmente testes musculares in vivo para entender melhor o impacto de diversas lesões e condições na função muscular, bem como avaliar o impacto de possíveis tratamentos reparadores. Uma vez dominada, essa técnica pode ser feita em 30 minutos se for executada corretamente. Após esse procedimento, outros métodos, como análise histológica e estudos de expressão gênica, podem ser realizados para melhor compreensão da miogênese, formação de fibras e matrizes musculares, além de identificar mecanismos moleculares de reparo e regeneração muscular.
Este artigo apresenta um protocolo in vivo para medir a dorsiflexão do pé em ratos após a estimulação do nervo peroneal. Este método é crucial para avaliar a patologia muscular e para avaliar estratégias de engenharia de tecidos para a reparação muscular.
Accurate in vivo functional assessment of skeletal muscle is critical for de-risking tissue-engineered repair strategies in preclinical development. This method enables longitudinal, quantitative evaluation of muscle recovery, supporting mechanistic target validation and predictive confidence in regenerative therapeutics. By providing reproducible force measurements in a physiologically relevant model, it bridges discovery biology with translational decision-making for muscle repair innovations.
This method fits within the discovery-to-preclinical continuum, supporting hypothesis testing in early discovery, assay validation in screening, and efficacy confirmation in preclinical studies of muscle repair technologies.