Name: Indução de Aterosclerose Acelerada em Camundongos: O Modelo de Lesão por Fio (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-08-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 s
Description: Aprenda a induzir aterosclerose acelerada em camundongos por lesão mecânica da artéria carótida. Este método reprodutível permite estudar mecanismos moleculares da reestenose e formação de placa em modelo animal.

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Este trabalho foi apoiado pelo Centro Interdisciplinar de Pesquisa Clínica IZKF Aachen (grupo de pesquisa júnior da E.A.L.) dentro da faculdade de Medicina da Universidade RWTH Aachen. Agradecemos também à Sra. Roya Soltan pela ajuda com a mancha imunohistoquímica.

Os experimentos apresentados neste artigo são realizados de acordo com a legislação alemã e com as diretrizes europeias de cuidados com animais. Os animais são criados na instalação animal do Instituto de Ciência Animal do Laboratório de Zootecnia, Hospital Universitário de Aachen, Alemanha, sob supervisão do Prof. Dr. R. Tolba e do Dr. A. Teubner (oficial de bem-estar animal).
1. Cuidados com animais
<ol><li>Mantenha os camundongos em uma unidade de atendimento especializado, garantindo acesso adequado aos alimentos e controle e tratamento veterinário especializado. Se os animais forem movidos ou comprados de terceiros, por favor, garanta um período de acomodação de uma semana antes de se submeterem ao procedimento.</li>
</ol>2. Indução de hiperlipidemia
<ol><li>Alimentação 6 - 8 semanas de idade, 18 - 20 g, fêmea (opcionalmente) ApoE-/- camundongos com dieta aterogênica (21% de gordura, 0,15% colesterol, 19,5% caseína, wt/wt) uma semana antes do procedimento cirúrgico e continuar a dieta até que a análise da placa aterosclerótica seja realizada.</li>
</ol>3. Preparação Cirúrgica
<ol><li>Anestesiar os camundongos usando uma injeção intraperitoneal de 100 mg/kg de cetamina por peso corporal e 10 mg/kg de xilazina por peso corporal. Confirme a anestesia adequada antes da cirurgia pela falta de reflexos e movimento do bigode. Coloque uma pequena quantidade de pomada ocular estéril no olho para minimizar a secagem.</li>
	<li>Certifique-se da manutenção de condições estéreis para evitar infecções durante a cirurgia usando materiais e instrumentos estéreis.</li>
	<li>Raspe os ratos na região do pescoço ventral. Desinfete a pele com betadina antes da incisão. Faça uma incisão de pele de 1 cm na região mediana da região do pescoço, em cima da traqueia.</li>
	<li>Separe os dois corpos gordos para garantir uma visão adequada sobre a região traqueal. Use retráteis para segurar a camada muscular e expor a artéria carótida. Se estiver presente, realize a dissecção contundente da fina camada muscular que cobre a artéria carótida.</li>
	<li>Use fórceps curvos afiados para separar a artéria carótida do nervo vago e da veia jugular. Assim, a área de bifurcação com a artéria carótida interna e externa deve ser visível. Use 0,9% de NaCl para evitar o ressecamento do tecido durante o procedimento cirúrgico.</li>
</ol>4. Lesão de fio
<ol><li>Coloque uma sutura de seda de 7 cm de comprimento 0/5 sob a artéria carótida, proximal ao arco aórtico. Faça um loop aberto, pronto para ser fechado a qualquer momento.</li>
	<li>Coloque duas suturas de seda 0/7 (cada 1,5 cm de comprimento) ao redor da artéria carótida externa: uma alça perto do ponto de bifurcação e uma alça o mais distal possível. Prepare-os como um laço aberto, pronto para ser fechado a qualquer momento.</li>
	<li>Coloque uma sutura de seda de 0/7 (1,5 cm de comprimento) sob a artéria carótida interna. Prepare-o como um laço aberto, pronto para ser fechado a qualquer momento.</li>
	<li>Posicione a tabela do mouse com a cabeça do mouse em direção ao operador para garantir o posicionamento adequado para a inserção do fio-guia durante a desnudação(Figura 1A).</li>
	<li>Sob a visão microscópica, pare o fluxo sanguíneo através da artéria carótida comum segurando e puxando as extremidades da sutura de seda 0/5 com fórceps hemostat.</li>
	<li>Imediatamente após a ligadura da artéria carótida comum, feche as alças de sutura colocadas na artéria carótida interna e a sutura distal na artéria carótida externa firmemente(Figura 1B).</li>
	<li>Realizar uma pequena incisão (arteriotomia, metade do diâmetro do vaso) distal à artéria carótida externa, entre as duas alças, utilizando tesoura pequena(Figura 1C). Se a incisão for muito grande, siga as instruções de solução de problemas (veja a Discussão).</li>
	<li>Use fios-guia polidos comercialmente ou use pessoal especializado interno para polir os fios-guia. Desinfete o fio-guia flexível polido de 14 polegadas com álcool e umedeça-o em uma gota de 0,9% NaCl para garantir o deslizamento adequado no vaso.</li>
	<li>Insira o fio-guia na artéria carótida comum através da arteriotomia transversal da artéria carótida externa(Figura 1D). Obtenha denudação endotelial passando o fio-guia ao longo do vaso enquanto gira. Repita este procedimento três vezes. Mantenha a mesma amplitude de movimento rotacional em cada mouse para aumentar a reprodutibilidade.</li>
	<li>Feche o laço proximal na artéria carótida externa firmemente. Restaure o fluxo sanguíneo na artéria carótida cortando a sutura em torno da artéria comum e a sutura ao redor da artéria carótida interna.</li>
</ol>5. Sutura e Recuperação
<ol><li>Remova os retráteis e devolva a camada muscular e os dois corpos de gordura à posição fisiológica.</li>
	<li>Feche a pele com três suturas separadas 0/6, se forem necessárias medidas ecocardiográficas. Se não for necessário fazer uma imagem, use clipes metálicos para fechar a pele.</li>
	<li>Coloque o mouse no lado esquerdo sob a luz infravermelha até acordar. Não deixe um animal sozinho nem na companhia de outros animais até que esteja totalmente recuperado.</li>
	<li>Para identificação futura, marque o mouse usando o sistema local. Pergunte ao oficial de bem-estar animal da instituição local.</li>
</ol>6. Análise da Placa Aterosclerótica
<ol><li>Anestesiar os camundongos no ponto final usando uma injeção intraperitoneal de 100 mg/kg de cetamina por peso corporal e 10 mg/kg de xilazina por peso corporal. Confirme a anestesia adequada pela falta de reflexos e movimento do bigode.</li>
	<li>Realize a exsanguinação por punção retro-orbital ou cardíaca e colete o sangue para análise posterior2.</li>
	<li>Desinfete a pele com betadina. Abra a cavidade torácica e remova o auriculo direito do coração. Solução tamponada de fosfato perfuse através do ventrículo esquerdo para remover o restante do sangue do vaso e, em seguida, perfundir 4% PFA para fixar o tecido.</li>
	<li>Se não for necessária fixação, explane a artéria carótida imediatamente após a lavagemde 2,4,11. Realizar protocolos padrão com análises de interesse: incorporação de parafina, criosection, mRNA ou análise de proteína, etc.</li>
	<li>Para medições morfométricas, explane cuidadosamente a artéria carótida, incluindo a bifurcação, com manipulação mínima, como proximal ao arco aórtico usando fórceps curvas e tesouras pequenas.</li>
	<li>Incorpore a artéria carótida no bloco de parafina usando protocolos de incorporação padrão. Para realizar a secção transversal, coloque a artéria carótida ereto sobre a bifurcação. Corte seções seriais de 5 μm de espessura começando com a bifurcação e colete todas elas em lâminas histológicas revestidas(Figura 2A).</li>
	<li>Colorisse a cada 10seções usando a coloração de Movat para destacar as lâminas2,4,11. Após a coleta de imagens microscópicas de todos os vasos (utilizando um objetivo de 10X), meça o lúmen, bem como a lamina interna e externa para cada seção, utilizando um software especialprojetado 2,4,11, conforme mostrado na Figura 2B. Calcule o crescimento íntimo e a mídia dos vasos.</li>
	<li>Analise células musculares lisas e teor de macrófago, ou recuperação endotelial em seções seriais, utilizando coloração imunohistológica usual2 (Figura 2C).</li>
</ol>

<ol><li>Simsekyilmaz, S., Liehn, E. A., Militaru, C., Vogt, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progress+in+interventional+cardiology%3A+challenges+for+the+future%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Progress in interventional cardiology: challenges for the future.</a> Thromb Haemost. 113 (3), 464-472 (2015).</li>
<li>Kubo, N., McCurdy, S., Boisvert, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+Fas+Expression+on+Bone+Marrow+Derived+Cells+Alters+Atherosclerotic+Plaque+Morphology+in+Hyperlipidemic+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Discoveries%22%5BJournal%5D)">Defective Fas Expression on Bone Marrow Derived Cells Alters Atherosclerotic Plaque Morphology in Hyperlipidemic Mice.</a> Discoveries. 3 (1), e37(2015).</li>
<li>Saffarzadeh, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+rapid+neutrophil+extracellular+trap+formation+and+its+cooperation+with+phagocytosis+in+human+neutrophils%5BTitle%5D)+AND+%22Discoveries%22%5BJournal%5D)">Characterization of rapid neutrophil extracellular trap formation and its cooperation with phagocytosis in human neutrophils.</a> Discoveries. 2 (2), e19(2014).</li>
<li>Lindner, V., Fingerle, J., Reidy, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+model+of+arterial+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Mouse model of arterial injury.</a> Circ Res. 73 (5), 792-796 (1993).</li>
<li>Schwartz, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+evaluation+of+drug-eluting+stents+for+peripheral+applications%3A+recommendations+from+an+expert+consensus+group%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Preclinical evaluation of drug-eluting stents for peripheral applications: recommendations from an expert consensus group.</a> Circulation. 110 (16), 2498-2505 (2004).</li>
<li>Schwartz, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restenosis+and+the+proportional+neointimal+response+to+coronary+artery+injury%3A+results+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Restenosis and the proportional neointimal response to coronary artery injury: results in a porcine model.</a> J Am Coll Cardiol. 19 (2), 267-274 (1992).</li>
<li>Curaj, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+molecular+ultrasound+monitoring+of+vessel+healing+after+intravascular+surgical+procedures+in+a+preclinical+setup%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive molecular ultrasound monitoring of vessel healing after intravascular surgical procedures in a preclinical setup.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 35 (6), 1366-1373 (2015).</li>
<li>Liehn, E. A., Schober, A., Weber, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blockade+of+keratinocyte-derived+chemokine+inhibits+endothelial+recovery+and+enhances+plaque+formation+after+arterial+injury+in+ApoE-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Blockade of keratinocyte-derived chemokine inhibits endothelial recovery and enhances plaque formation after arterial injury in ApoE-deficient mice.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 24 (10), 1891-1896 (2004).</li>
<li>Liehn, E. A., Zernecke, A., Postea, O., Weber, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemokines%3A+inflammatory+mediators+of+atherosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Physiol+Biochem%22%5BJournal%5D)">Chemokines: inflammatory mediators of atherosclerosis.</a> Arch Physiol Biochem. 112 (4-5), 229-238 (2006).</li>
<li>Simsekyilmaz, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+extracellular+RNA+in+atherosclerotic+plaque+formation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Role of extracellular RNA in atherosclerotic plaque formation in mice.</a> Circulation. 129 (5), 598-606 (2014).</li>
<li>Wu, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhodamine-loaded+intercellular+adhesion+molecule-1-targeted+microbubbles+for+dual-modality+imaging+under+controlled+shear+stresses%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Cardiovasc+Imaging%22%5BJournal%5D)">Rhodamine-loaded intercellular adhesion molecule-1-targeted microbubbles for dual-modality imaging under controlled shear stresses.</a> Circ Cardiovasc Imaging. 6 (6), 974-981 (2013).</li>
<li>Schober, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crucial+role+of+the+CCL2%2FCCR2+axis+in+neointimal+hyperplasia+after+arterial+injury+in+hyperlipidemic+mice+involves+early+monocyte+recruitment+and+CCL2+presentation+on+platelets%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Crucial role of the CCL2/CCR2 axis in neointimal hyperplasia after arterial injury in hyperlipidemic mice involves early monocyte recruitment and CCL2 presentation on platelets.</a> Circ Res. 95 (11), 1125-1133 (2004).</li>
<li>Ali, Z. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+in-stent+stenosis+in+ApoE+knockout+mice%3A+insights+from+a+novel+mouse+model+of+balloon+angioplasty+and+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Increased in-stent stenosis in ApoE knockout mice: insights from a novel mouse model of balloon angioplasty and stenting.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 27 (4), 833-840 (2007).</li>
<li>Chamberlain, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+mouse+model+of+in+situ+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">A novel mouse model of in situ stenting.</a> Cardiovasc Res. 85, 38-44 (2010).</li>
<li>Rodriguez-Menocal, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+mouse+model+of+in-stent+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">A novel mouse model of in-stent restenosis.</a> Atherosclerosis. 209 (2), 359-366 (2010).</li>
<li>Simsekyilmaz, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+model+of+stent+implantation+in+the+carotid+artery+for+the+study+of+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A murine model of stent implantation in the carotid artery for the study of restenosis.</a> J Vis Exp. , e50233(2013).</li>
<li>Schroder, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NADPH+oxidase+Nox2+is+required+for+hypoxia-induced+mobilization+of+endothelial+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">NADPH oxidase Nox2 is required for hypoxia-induced mobilization of endothelial progenitor cells.</a> Circ Res. 105 (6), 537-544 (2009).</li>
</ol>

Não há revelações dos autores.

Neste artigo, fornecemos dicas úteis para realizar o procedimento de lesão por fio até mesmo por pessoas com experiência mínima em cirurgias animais. Existem duas etapas críticas na realização deste procedimento: a incisão da artéria carótida externa e a inserção do fio. A incisão na artéria carótida externa precisa ser realizada o mais longe possível da bifurcação, a fim de garantir material suficiente restante(Figura 1C). A incisão não deve ser muito grande, devido ao risco de cortar toda a embarcação. O segundo passo crítico é o alto risco de sangramento durante a arteriotomia e a inserção do fio-guia se o fluxo sanguíneo não for eficientemente descontinuado. Além disso, a denudação endotelial pode não ocorrer ou a ruptura arterial é possível se o fio guia não for introduzido adequadamente no vaso de lúmen. Para evitar isso, a superfície do fio-guia deve ser cuidadosamente polida antes da operação.
Para otimizar o protocolo, a posição da mesa de operação com o mouse-head em direção ao cirurgião garante uma melhor visão, acessibilidade e controle para a manipulação adequada do fio guia. Além disso, para aumentar a reprodutibilidade, use o mesmo fio-guia em todos os estudos. Como o tamanho do fio não muda, é importante considerar e eliminar todas as possíveis diferenças entre os camundongos usando o mesmo sexo, idade e peso para todos os camundongos incluídos em um estudo. Depois disso, a coloração Evans-Blue ajudará o cirurgião a determinar a eficiência da desnudação. A existência de equipamentos adequados é um pré-requisito para o sucesso do procedimento. Um estereómico 10X é essencial para a realização deste procedimento. A preparação adequada do fio-guia (por exemplo, polimento) é crucial. Por isso, recomendamos fortemente que a preparação do fio guia seja realizada por pessoal técnico especializado quando disponível.
Há muitas etapas de solução de problemas neste protocolo. Se incisar a artéria carótida externa perto da bifurcação, amarre cuidadosamente a externa, perto da bifurcação, para que não ocorra sangramento. Durante o corte, a artéria carótida externa não pode ser vista. Portanto, considere a bifurcação ao nível da sutura de seda. Colete seções quando a sutura de seda desaparecer. Se a incisão na artéria carótida externa for muito grande e o vaso for rompido, certifique-se de que o fluxo sanguíneo para a comuna carótida e artéria carótida interna seja efetivamente interrompido e tente encontrar a abertura do vaso usando fórceps. Depois de introduzir o fio guia e realizar a desnudação, amarre o vaso perto da bifurcação. Durante o corte, comece a coletar quando a seda da sutura começar a desaparecer. Se ocorrer ruptura arterial durante a desnudação com o fio-guia, verifique sob o microscópio se o fio guia está devidamente polido.
Apesar da semelhança do modelo de lesão de arame com situações clínicas, muitos grupos estão focados na aterosclerose nativa em camundongos, ou escolhem induções invasivas de aterosclerose, como angioplastia de balão em ratos ou coelhos, devido à falta de pessoal treinado que possa realizar pequenas cirurgias animais. Apesar dos benefícios do uso de coelhos/ratos, por exemplo, não há necessidade de equipamentos miniaturizados, nem modelos de ratos nem de coelhos oferecem uma variedade de diferentes cepas de knock-out, em termos de estudo de mecanismos moleculares envolvidos no crescimento de neointima e trombose de stent.
Os modelos existentes para estudar restenose de stent em camundongos são difíceis, requerem altas habilidades cirúrgicas e têm altos riscos de complicações, como sangramento ou paralisia. Por exemplo, a lesão mecânica ou implantação de stent na aorta torácica via artéria femoral é acompanhada por uma alta taxa de mortalidade (35%) devido à paralisia da perna traseira ou sangramento13-15. Também descrevemos a implantação de stent na artéria carótida de um rato16. O procedimento é semelhante; no entanto, o processamento de tecidos para análise é complicado e não está disponível para todos os laboratórios16. A artéria carótida é diretamente acessível, não apenas para procedimentos de operação, mas também para métodos de imagem existentes, como a imagem de ultrassom. Outras induções de lesões nas artérias carótidas em camundongos podem ser feitas usando dispositivos elétricos17. Este método é fácil de executar e garante alta reprodutibilidade. No entanto, induz lesões em todas as camadas do vaso, que não é idêntica com lesão mecânica. As aplicações de balões têm benefícios, por exemplo, o ajuste ao diâmetro do vaso em consonância com a prática clínica e tem forte influência no desfecho patológico. Embora os balões de rato estejam disponíveis, eles são muito caros e, portanto, não são amplamente utilizados. Em vez disso, a lesão do fio é o método estabelecido, imitando estenose in-stent.
A desnudação é realizada na parede arterial normal, embora com um fundo aterosclerótico. Portanto, a formação de neointima será moderada em relação à situação clínica. O alto número de modelos pré-clínicos demonstra que nenhum dos modelos preenche todos os critérios necessários para descobrir a totalidade dos mecanismos celulares e moleculares que levam à fisiopatologia em humanos (ver Tabela 2).
Após a realização do procedimento de lesão por fio, outras análises biológicas e moleculares podem ser realizadas para identificar células, proteínas, mRNAs, microRNAs, genes ou outros biomarcadores, que podem ser usados como alvos terapêuticos para desenvolver novas estratégias de tratamento para aterosclerose, e em particular para a formação de neointima após lesão vascular. Se disponível, o crescimento da placa pode ser monitorado usando ultrassom de alta frequência ou outras técnicas de imagem de alta resolução. Além disso, dominar essa técnica daria ao operador a oportunidade de adaptar o protocolo a outros modelos invasivos de incentivo à aterosclerose, como colocação de coleira, ligadura parcial ou até mesmo implantação de stent.

A aterosclerose é a principal patologia subjacente a eventos cardiovasculares, como infarto do miocárdio ou derrame. Os principais mecanismos que desencadeiam síndromes cardiovasculares agudas são ruptura de placa, erosão superficial e formação de trombos. Existem múltiplas situações clínicas ligadas ao desenvolvimento da placa: placa aterosclerótica nativa, restenose após endarterectomia e restenose após angioplastia de balão com/sem implante de stent1. Após lesão arterial, a supressão dos processos inflamatórios2,3 e a recuperação do compartimento endotelial são essenciais para evitar novas complicações1. A pesquisa clínica limita-se a amostras de tecidos e sangue devido a considerações éticas, custos e falta de conhecimento em mecanismos básicos. Por essas razões, é necessário estudar mecanismos moleculares nos modelos animais4-6, que podem recriar as condições clínicas. Nosso modelo de formação acelerada de neointima no contexto da aterosclerose é resultado de muitos anos de experiência na implementação desses modelos em pequenos animais7-11. O modelo de camundongos é o modelo mais atrativo para a pesquisa, devido à sua facilidade de manuseio, à capacidade de ter grandes grupos animais devido aos baixos custos relacionados à compra e cuidado animal, e à disponibilidade de várias cepas transgênicas e eliminatórias.
A maior desvantagem do modelo de camundongos é o pequeno tamanho das artérias principais submetidas à doença aterosclerótica (a artéria carótida, a aorta e a artéria femoral), que requer conhecimentos cirúrgicos qualificados e habilidades para manipular os vasos e induzir invasivamente uma placa aterosclerótica. Portanto, o modelo de formação acelerada de neointima, no contexto de restenose após a endarterectomia ou implantação de stent, proposto neste artigo é apresentado com uma diretriz passo a passo e sugestões para facilitar a introdução para o pessoal interessado. Outra desvantagem é que a desnudação é feita na parede arterial normal e, portanto, a formação neo-intima será moderada em comparação com a situação clínica. O alto nível de colesterol plasmético alcançado em apolipoproteína E nocaute(Apoe-/-) camundongos alimentados com uma dieta rica em gordura cria um ambiente pró-inflamatório adequado necessário para a formação neo-intima.
A cirurgia é realizada sob um estereótipo. A artéria carótida é exposta por uma incisão mediana na área cervical ventral. Estruturas anatômicas em cima e ao redor da artéria carótida são minimamente manipuladas para reduzir a inflamação pós-cirúrgica. A bifurcação da artéria carótida está exposta. Para induzir a formação acelerada de neointima, artérias carótidas internas e externas são preparadas para a cessação do fluxo sanguíneo e posterior desnudação da artéria carótida comum. Em conclusão, o método pode ser aprendido por pessoas com experiência mínima em cirurgias animais.

<table><tbody><tr><td>Estereomicroscópio</td><td>Olympus</td><td>SZ/X9-Forceps</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>FST, Alemanha</td><td>91197-00</td><td>ponta padrão curva 0,17 mm</td></tr><tr><td>Pinça Hemostat</td><td>FST, Alemanha</td><td>13007-12</td><td>tesoura curva</td></tr><tr><td></td><td>FST, Alemanha</td><td>91460-11</td><td>Tesoura reta</td></tr><tr><td>Vannas</td><td>Aesculap, Alemanha</td><td>OC 498</td><td></td></tr> <tr><td>R-Retractors</td><td>FST, Alemanha</td><td>18200-10</td><td>2,5 mm de largura</td></tr><tr><td>Afastadores</td><td>FST, Alemanha</td><td>18200-11</td><td>5 mm de largura</td></tr><tr><td>Cetamina 10%</td><td>CEVA, Alemanha</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Xilazina 2%</td><td>Medistar, Alemanha</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Bepanthene creme para olhos e nariz</td><td>Bayer, Alemanha</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Tubo de silicone</td><td>IFK Isofluor, Alemanha</td><td>feito sob medida&nbsp; diâmetro do produto</td><td>500 &micro; m,</td></tr> <tr><td>espessura da seção 100 &micro; m,</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>cateter</td><td></td><td></td><td></td>de politetrafluoretileno</tr><tr><td>PROLENE Sutura 6/0&nbsp;</td><td>ETHICON</td><td>8707H&nbsp;</td><td>sutura de polipropileno monofilamento, não reabsorvível, agulha CC-1, 13 mm, 3/8 Círculo&nbsp;</td></tr><tr><td>7/0 Silk</td><td>Seraflex</td><td>IC 1005171Z-Michel</td><td></td></tr> <tr><td>Suture Clips</td><td>FST, Alemanha</td><td>12040-01&nbsp;</td><td>&nbsp;-&nbsp;</td></tr><tr><td>Pinça de aplicação de clipe</td><td>FST, Alemanha</td><td>12018-12&nbsp;</td><td>&nbsp;-&nbsp;</td></tr><tr><td>14" Fio para Cateter</td><td>Abbot</td><td>1000462H</td><td>Use 10 cm da parte rígida e equalize as extremidades</td></tr><tr><td>Camundongos</td><td>Charles River</td><td>Apolipoproteína E -/- camundongos com fundo C57/Bl6</td><td>&nbsp;-&nbsp;</td></tr></tbody></table>

indução de aterosclerose acelerada em camundongos: o modelo de "lesão por fio"

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The "Wire-Injury" Model

A aterosclerose é uma doença fibro-inflamatória proliferativa que se desenvolve na parede arterial, induzindo um fluxo sanguíneo deficiente ou falta de fluxo sanguíneo. Além disso, pela ruptura da parede vascular defeituosa, a aterosclerose induz a formação de trombos oclusivos, o que representa a principal causa de infarto ou derrame do miocárdio e a causa mais frequente de morte. Apesar dos avanços no campo cardiovascular, muitas perguntas permanecem sem resposta, e pesquisas básicas adicionais são essenciais para melhorar nossa compreensão dos mecanismos moleculares durante a aterosclerose e seus efeitos. Devido a estudos clínicos limitados, há necessidade de modelos animais representativos recriando condições ateroscleróticas, como a formação de neointima após implantação de stent, angioplastia de balão ou endarterectomia. Como o camundongo apresenta muitas vantagens e é o modelo mais utilizado para o estudo de processos moleculares, o presente estudo propõe um procedimento invasivo de desnudação endotelial, também conhecido como modelo de lesão de fio, que é representativo da condição humana de formação de neointima nas artérias após procedimentos de revascularização.

O procedimento de indução da placa aterosclerótica leva de 15 a 20 minutos e apresenta uma taxa mínima de mortalidade, principalmente devido ao sangramento ocorrido durante o procedimento. Após a cirurgia, os camundongos se recuperam da anestesia dentro de 20 - 25 min. Não foi observado prejuízo físico, como paralisia ou distúrbio alimentar após a cirurgia.
A lesão do fio induz uma desendotelialização, imitando lesões vasculares após desnudação do balão ou implantação de stent. Imediatamente após a lesão, a parede vascular desnudada será coberta com uma camada de trombocitos, que media e favorece a adesão dos monócitos12. Células musculares lisas ativadas da mídia se proliferarão e migrarão para os espaços intimais, formando a neointima. Outros progenitores para células musculares lisas migrarão do sangue (estimado em 40%) e contribuir para o crescimento neointima. A formação da placa terminará após a reendotelialização completa, geralmente 4 semanas após a lesão no fio.
A formação de neointima pode ser avaliada usando manchas de Movat. O tamanho da placa é calculado para cada slide usando software como mostrado na Figura 2B. O tamanho total da placa (artéria carótida esquerda) pode variar entre 70.000 - 100.000 μm², enquanto o tamanho do vaso de controle (artéria carótida direita) pode variar entre 7.000 - 8.000 μm². Esses valores dependem em grande parte do cirurgião. Por isso, recomendamos fortemente o uso do mesmo cirurgião durante os experimentos para o mesmo estudo.
A placa desenvolvida se assemelha à restenose do stent, que consiste predominantemente em células musculares suaves proliferadas e migradas da mídia. A composição celular determinada por procedimentos de coloração imunológica mostra que o teor de células musculares lisas é de aproximadamente 30 a 40%, enquanto macrófagos são encontrados em 15 - 25% da neointima do vaso ferido. A re-endotelialização pode ser medida após a coloração de um marcador endotelial, e calculada como a porcentagem de circunferência manchada sobre toda a circunferência do lúmen. Normalmente, a reendotelialização atinge 80 - 90% após 3 semanas, e deve ser quase concluída após 4 semanas(Figura 2C). Para acompanhar o crescimento da placa durante seu desenvolvimento, a mesma análise pode ser repetida para cada ponto de tempo após a lesão do fio, dependendo do interesse e do sujeito estudado (ver Tabela 1).
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54571/54571fig1.jpg"> Figura 1. Representação Esquemática do Procedimento Operacional. (A) O posicionamento da tabela de operação em direção ao operador durante o procedimento de lesão do fio (B) Visão ampliada da artéria carótida comum e seus ramos, como aparece sob o microscópio em 10X de ampliação(C) O tamanho da incisão na artéria carótida externa sob o microscópio na ampliação 10X(D) representação esquemática do procedimento de lesão por fio utilizando o fio-guia de 14 polegadas. <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54571/54571fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/54571/54571fig2.jpg"> Figura 2. Análise da Placa de Restenose. (A) Representação esquemática da análise da placa na artéria carótida comum, 4 semanas após a indução de lesão por fio(B) Formação neointima 4 semanas após a lesão do fio e representação esquemática dos principais parâmetros utilizados para análise. Intima (área verde) é a diferença entre o lúmen (vermelho) e o lamina interna (linha verde). Mídia (área amarela) é a diferença entre a lamina externa (linha amarela) e interna (linha verde). Barra de escala 100 μm(C) Imagens representativas da coloração dos principais tipos de células envolvidas na formação de neointima. Células musculares lisas (actina muscular lisa -vermelho, barra de escala 100 μm), macrófagos (Mac 2- verde, barra de escala 100 μm) e células endoteliais (CD31- vermelho, setas, barra de escala 50 μm). <a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54571/54571fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Hora</td>
			<td>Trombbus</td>
			<td>Placa (μm²)</td>
			<td>
Macrófagos (% da Placa)
</td>
			<td>
Células musculares lisas (% da Placa)
</td>
			<td>
Re-endotelialização (% circunferência do lúmen)
</td>
		</tr>
<tr>
<td>1 dia</td>
			<td>Presente</td>
			<td>0</td>
			<td>0</td>
			<td>0</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td>1 semana</td>
			<td>-</td>
			<td>&lt; 30 000</td>
			<td>&gt; 10</td>
			<td>&lt; 50</td>
			<td>&lt; 50</td>
		</tr>
<tr>
<td>2 semanas</td>
			<td>-</td>
			<td>&lt; 50 000</td>
			<td>&gt; 10</td>
			<td>&lt; 50</td>
			<td>&gt; 50</td>
		</tr>
<tr>
<td>3 semanas</td>
			<td>-</td>
			<td>&lt; 70 000</td>
			<td>15-25</td>
			<td>30-40</td>
			<td>80-90</td>
		</tr>
<tr>
<td>4 semanas</td>
			<td>-</td>
			<td>70 000 – 100 000</td>
			<td>15-25</td>
			<td>30-40</td>
			<td>Completa</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 1. Desenvolvimento da placa dependente do tempo.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Modelo</td>
			<td>Animais</td>
			<td>Vantagens</td>
			<td>Disanvantages</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Aterosclerose nativa induzida por dieta</td>
			<td>Pequeno</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita a patologia da aterosclerose</li>
				<li>facilidade de manuseio</li>
				<li>nenhuma cirurgia</li>
				<li>sem estresse para os animais</li>
				<li>baixos custos relacionados à compra e cuidados com animais</li>
				<li>disponibilidade de várias cepas transgênicas e eliminatórias</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>baixa reprodutibilidade</li>
				<li>alta variância</li>
				<li>aumento do número de animais necessários</li>
				<li>aumento do tempo de espera</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td>Grande</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita a patologia da aterosclerose</li>
				<li>facilidade de manuseio</li>
				<li>nenhuma cirurgia</li>
				<li>sem estresse para os animais</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>baixa reprodutibilidade</li>
				<li>alta variância</li>
				<li>aumento do número de animais necessários</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Dilatação de balão</td>
			<td>Pequeno</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita restenose após angioplastia de balão</li>
				<li>baixos custos relacionados à compra e cuidados com animais</li>
				<li>disponibilidade de várias cepas transgênicas e eliminatórias</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>tamanho pequeno das artérias principais</li>
				<li>requer perícia cirúrgica qualificada</li>
				<li>balões muito caro</li>
				<li>a desnudação é feita na parede arterial normal</li>
				<li>existência de equipamentos apropriados</li>
				<li>riscos de complicações como sangramento ou paralisia</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td>Grande</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita restenose após angioplastia de balão</li>
				<li>facilidade de manuseio</li>
				<li>uso de dispositivos para humanos</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>a desnudação é feita na parede arterial normal</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td>Lesão de arame</td>
			<td>Pequeno</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita restenose após angioplastia de balão</li>
				<li>facilidade de manuseio</li>
				<li>taxa mínima de mortalidade</li>
				<li>baixos custos relacionados à compra e cuidados com animais</li>
				<li>disponibilidade de várias cepas transgênicas e eliminatórias</li>
				<li>sem prejuízo físico</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>tamanho pequeno das artérias principais</li>
				<li>requer experiência cirúrgica menos qualificada</li>
				<li>a desnudação é feita na parede arterial normal</li>
				<li>existência de equipamentos apropriados</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Implantação de stent</td>
			<td>Pequeno</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita restenose e trombose após implantação de stent</li>
				<li>baixos custos relacionados à compra e cuidados com animais</li>
				<li>disponibilidade de várias cepas transgênicas e eliminatórias</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>tamanho pequeno das artérias principais</li>
				<li>requer perícia cirúrgica qualificada</li>
				<li>pequenos stents não disponíveis</li>
				<li>a desnudação é feita na parede arterial normal</li>
				<li>aumento da mortalidade</li>
				<li>existência de equipamentos apropriados</li>
				<li>riscos de complicações como sangramento ou paralisia</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
<tr>
<td>Grande</td>
			<td>
			<ul>
<li>imita restenose e trombose após implantação de stent</li>
				<li>facilidade de manuseio</li>
				<li>uso de dispositivos para humanos</li>
			</ul>
</td>
			<td>
			<ul>
<li>a desnudação é feita na parede arterial normal</li>
			</ul>
</td>
		</tr>
</tbody></table>Mesa 2. Vantagens e Desvantagens de Modelos Existentes de Lesão Arterial.

Este estudo descreve um procedimento invasivo para a indução de aterosclerose acelerada em camundongos. Em comparação com outros métodos que utilizam lesões elétricas ou induzidas por criodes, a lesão induzida por mecânica imita a condição humana da restenose após terapias de revascularização e é ideal para o estudo dos mecanismos moleculares envolvidos.

Indução de Aterosclerose Acelerada em Camundongos: O Modelo de "Lesão por Fio"

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. ...

O objetivo geral deste procedimento é imitar a condição humana da restenose após a terapia de revascularização em camundongos para estudar os mecanismos moleculares envolvidos na resposta à lesão. As principais vantagens dessas técnicas são que ela é altamente reprodutível e facilmente realizada, permitindo que o pesquisador com experiência mínima aplique o método em pequenos modelos animais. Demonstrando o procedimento será Adelina Curaj, pós-doutora do meu laboratório.Para induzir hiperlipidemia, alimente de seis a oito semanas de idade de 18 a 20 gramas Apoe knockout ratos uma dieta aterogênica uma semana antes do procedimento cirúrgico e até a análise da placa aterosclerótica. No dia da cirurgia, após confirmar a falta de resposta ao aperto do dedo do pé, raspe o rato anestesiado na região do pescoço ventral e desinfete a pele exposta com Betadine. Faça uma incisão cutânea de um centímetro na região mediana do pescoço sobre a traqueia e separe os dois corpos de gordura para obter uma visão completa da região traqueal.Usando um retrátil para manter a camada muscular aberta, exponha a artéria carótida e use fórceps curvos afiados para separar a artéria do nervo vago e da veia jugular até que a área de bifurcação da artéria carótida interna e externa seja visível. Livremente, coloque uma sutura de seda de sete centímetros de comprimento 0-5 sob a artéria carótida proximal ao arco aórtico, seguido por uma sutura de seda de 1,5 centímetros de comprimento de 1,5 centímetros de comprimento ao redor da artéria carótida externa perto do ponto de bifurcação, e uma vagamente colocada de 1,5 centímetro de comprimento 0-7 laço de sutura de seda o mais distal possível da bifurcação. Coloque outra sutura de seda aberta de 1,5 centímetros de comprimento sob a artéria carótida interna.Em seguida, posicione o animal com a cabeça na posição das seis horas. Imediatamente, feche firmemente as alças de sutura na artéria carótida interna e a sutura distal na artéria carótida externa. Use fórceps hemostat para puxar as extremidades da sutura 0-5 para parar o fluxo sanguíneo através da artéria carótida comum.Utilizando uma tesoura pequena, faça uma pequena arteriotomia de metade do diâmetro do vaso distal até a artéria carótida externa entre as duas alças e insira um fio-guia flexível polido com uma gota de cloreto de sódio de 0,9% na artéria carótida comum através da incisão. Para evitar erupções arteriais durante a incisão Y, use um fio-guia cuidadosamente polido. Obtenha a denudação endotelial passando o fio ao longo do vaso enquanto gira três vezes, em seguida, feche firmemente o laço proximal na artéria carótida externa e corte as suturas ao redor das artérias carótidas comuns e internas para restaurar o fluxo sanguíneo.Em seguida, remova os retráteis e devolva a camada muscular e os dois corpos de gordura para a posição fisiológica. Feche a pele com clipes metálicos, em seguida, deixe o mouse se recuperar no lado esquerdo sob uma luz infravermelha com monitoramento até que ele esteja totalmente reclinável. A formação de neointima pode ser avaliada usando manchas de Movat.O tamanho total da placa, que pode variar entre 70.000 e 100.000 mícrons ao quadrado, dependendo da habilidade do cirurgião, pode então ser calculado para cada amostra usando o software apropriado. A placa desenvolvida se assemelha à restenose instantânea, que consiste predominantemente em células musculares suaves proliferadas e migradas do meio. O teor de células musculares lisas representa aproximadamente 30 a 40% da placa, enquanto os macrófagos encontrados dentro da neointima do vaso ferido compõem de 15 a 25% do número total de células.A reendotelialização normalmente atinge de 80 a 90% após três semanas e deve ser quase concluída após quatro semanas. Para acompanhar o crescimento da placa durante seu desenvolvimento, a análise pode ser repetida em vários pontos de tempo após a lesão do fio, dependendo da questão experimental. Uma vez dominada, essa técnica pode ser completada em 15 minutos se for executada corretamente.Ao tentar esse procedimento, é importante lembrar que a área cirúrgica deve ser constantemente hidratada para evitar a secagem e facilitar a manipulação do fio.

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