Name: Compreender orgânico dissolvido Matéria Biogeoquímica Através In Situ Nutrientes Manipulações no córrego Ecossistemas (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Aprenda a manipular matéria orgânica dissolvida em ecossistemas de riachos usando pulsos de nutrientes in situ. Este método permite estudar respostas biogeoquímicas e ciclos de carbono e nitrogênio em bacias hidrográficas.

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Os autores agradecem ao Laboratório de Análise da Qualidade da Água da Universidade de New Hampshire pela assistência na análise da amostra. Os autores também agradecem a dois revisores anônimos cujos comentários ajudaram a melhorar o manuscrito. Este trabalho é financiado pela National Science Foundation (DEB-1556603). O financiamento parcial também foi fornecido pelo Projeto EPSCoR Ecossistemas e Sociedade (NSF EPS-1101245), Estação Experimental Agrícola de New Hampshire (Contribuição Científica # 2662), Projeto do Instituto Nacional de Alimentos e Agricultura do USDA (McIntire-Stennis) (1006760), Escola de Pós-Graduação da Universidade de New Hampshire e Centro de Pesquisa de Recursos Hídricos de New Hampshire.

1. Identificar e caracterizar o Ideal Experimental Corrente Alcance <ol><li> Certifique-se que experimentais de transmissão atinge são longos o suficiente para promover a mistura completa dos solutos 11 e longas o bastante para que a absorção biológica pode ocorrer. comprimentos de alcance pode variar entre os córregos e experimentos. Em riachos de cabeceira pequenas de primeira ordem, chegar comprimento pode variar de 20-150 m (ou mais, se o sistema exigir) dependendo de descarga e outras propriedades físicas do riacho. <ol><li> Excluir grandes piscinas de alcances experimentais, como eles retardar o movimento a jusante de solutos, seções de fluxo mínimo, e afluentes que diluem a solução acrescentou. Períodos de baixa descarga pode exigir redução do período alcance enquanto maior descarga pode exigir um alcance mais longo. </li><li> Identificar um local no topo do alcance fluxo experimental acima de uma espingarda para facilitar a mistura dos solutos adicionados. Este será o local de adição. Na parte inferior do fluxo experimentalalcançar, identificar um local, onde o fluxo é constrito e representativa de cerca de 90% do fluxo total (Figura 1). Este será o local de coleta da amostra. </li></ol></li></ol><img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/54704/54704fig1.jpg" /> Figura 1:. Exemplo do local de amostragem a jusante Um local de amostragem ideal é onde a maior parte do fluxo é constrito e facilmente acessível, sem perturbação do canal de fluxo e bentos. Aqui um pedaço caído de restos de madeira criou este ponto de amostragem em um pequeno córrego de cabeceira de primeira ordem. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54704/54704fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol start="2"><li> Obter concentrações de medição de descarga e de nutrientes fundo dos solutos de interesse antes de experiências, a fim de calcular a massa de solutos necessários para o manipulations. Por favor, veja os cálculos na etapa 2.2.1. <ol><li> Obter os dados de concentração de fundo para o soluto alvo de manipulação (por exemplo, NO 3 -) e cloreto (Cl -), que é frequentemente usado como o marcador conservadora. Utilizar o traçador conservadora no contexto destas experiências, para controlar as alterações na condutividade, o que indica a chegada do impulso de nutrientes na estação de recolha de amostras e a taxa em que o impulso atravessa. Condutividade ou condutância específica, é um substituto para as mudanças in situ na concentração do traçador conservadora. </li><li> Caracterizar as propriedades físico-químicas do alcance experimental pela coleta de dados auxiliares, tais como largura de alcance e profundidade, temperatura, pH e oxigênio dissolvido. <ol><li> Efectuar as medições que não podem ser feitas com a utilização de uma sonda do ambiente (por exemplo, largura e profundidade), o dia antes ou imediatamente após a experiência, a fim de minimizar qualquer bêntico ór distúrbio químico dentro do canal de fluxo. Divida o alcance experimental em transectos eqüidistantes (por exemplo, a cada 10 m), onde largura e pelo menos 3 medições de profundidade podem ser avaliados (por exemplo, banco, thalweg, e deixou margem direita). Estes dados são valiosos para conectar as propriedades físicas de um fluxo para medições biogeoquímicos e se os pesquisadores também estão interessados no cálculo cinética de absorção de nutrientes e parâmetros 6. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Preparação para Experiment <ol><li> Determinar a massa (kg) de soluto necessária para a manipulação utilizando as equações descritas abaixo. Nota: O exemplo a seguir aplica-se a uma experiência de base de nitrato com NO 3 - na forma de nitrato de sódio (NaNO3) e assume um aumento específico do 3x acima do fundo (equações são baseados naqueles de Kilpatrick e Cobb 12). Neste exemplo, os seguintes pressupostos foram feitas com respecto às condições de fundo: A descarga = 10 L / s; [Cl] = 10 mg / L; [NO3 -] = 50 mg N / l. Devido à variação entre experiências, ajustar os dados de entrada necessários. <ol><li> Calcule o pretendido aumento (Equação 1): Targeted [NO 3 - mg N / L] aumento = fundo esperado [NO 3 - mg N / L] aumento * alvejado 150 ^ g N / L = 50 ^ g N / L * 3 </li><li> Calcular o fluxo de massa atómica total (Equação 2): Total de fluxo de massa atómica (NO 3 - g N) = 30 min 60 seg * * Q (L / s) * alvejado [NO 3 - mg N / L] aumento Onde 30 minutos é a duração assumida de pico de soluto 12 e Q é de descarga 2 700 000 ug N = 30 min 60 seg * * 10 l / s * 150 ^ g N / L </li><li> Calcular o fluxo de massa molecular total (Equação 3): Total de fluxo de massa molecular (NO 3 - g N) = fluxo de massa atómica total (NO 3 - g N) / massa atómica (14) * nós molecularight (85) Onde massa atômica refere-se a N e peso molecular refere-se a NaNO 3. 16,392,857.14 ug N = 2700000 ug N / (14 * 85) </li><li> Calcula-se a massa para adicionar (Equação 4): Massa para adicionar (g) = fluxo total massa molecular (NO3 - N ug) / 1000000 g / ug 16,39 g de NaNO3 = 16,392,857.14 ug N / 1000000 g / ug Nota: Seguir os cálculos acima para quaisquer outros solutos, incluindo o marcador conservadora (por exemplo, cloreto de sódio). Certifique-se de ajustar as massas atómicas e moleculares para o soluto de interesse. </li></ol></li><li> Prepare todos os solutos um dia antes da experimentos de campo. Pesar solutos suficientes para aumentar a concentração do ambiente, tanto o marcador biológico e o traçador conservadora três vezes (ou quantidade desejada) acima do fundo. É importante que a quantidade de solutos adicionados provoca uma alteração mensurável acima do fundo concentração que é suficiente para criar AWide gama dinâmica da concentração de nutrientes adicionados. <ol><li> Pesar solutos usando escalas de análise e, posteriormente, armazenar em frascos de polietileno limpo lavado com ácido e alta densidade com rótulos apropriados. Exemplos de marcadores biológicos incluem: NO 3 -: Nitrato de sódio (NaNO3); NH 4 +: cloreto de amónio (NH4CI); PO 4 -3: fosfato de potássio (K 2 HPO 4). No entanto, a escolha do marcador biológico será uma função da questão biogeoquímico ser perguntado. Opções para marcadores conservativas incluem cloreto de sódio (NaCl) e brometo de sódio (NaBr). </li></ol></li><li> Recolha materiais restantes: caderno de campo, fita rotulagem e caneta, fita de medição de campo, mais frio, medidor de condutividade, ~ 20 L balde e grande vareta (por exemplo cerveja pá, vergalhões, grande stick), cerca de 50 limpas e lavadas com ácido 125 ml alta frascos de polietileno -density. Rotular os frascos de 125 ml # 1-50. Nota: LESS de 50 amostras podem ser recolhidas a cada ensaio e as amostras de fundo são incluídos nas 50 frascos totais. </li><li> Opcional: Dependendo do número de pessoal de campo, executar a filtragem de amostra no local (ver secção # 5). Se esta opção for escolhida, trazer 50, 60 ml garrafas pré-marcado e lavado com ácido limpas polietileno de alta densidade para o campo. Rotular os 60 ml garrafas # 1-50 para igualar os 125 frascos de coleta ml. </li></ol> 3. Dia de Set Up <ol><li> Implantar o medidor de condutividade de campo no local de coleta. Colocar o aparelho a montante (aproximadamente 0,5-1,0 m) de amostras onde vai ser feita de modo recolha da amostra não interfere com a leituras de instrumentos. O medidor irá permanecer no local durante todo o experimento. Um medidor de campo condutividade é melhor, pois proporciona leituras de condutividade em tempo real, que são necessários para determinar a taxa de amostragem (veja o passo 5.2) e filtração e da ordem de análise (passos 5.3 e 6.1). </li><li> Recolher 125 ml sampl fundoES em triplicado no local de adição e, no local de recolha do alcance experimental antes da adição da solução. Estes dados serão utilizados para verificar-dia de concentração ambiente e para determinar a variação na concentração de soluto ao longo do alcance de fluxo. Esses dados também são valiosos para conectar química dos riachos ambiente: - para as medições biogeoquímicos de interesse (por exemplo DOC NO 3 rácios 13.). </li><li> Anote o tempo e condutividade de amostras de fundo recolhidas. </li><li> Grave a condutividade da corrente de fundo, antes da adição das soluções. </li></ol> 4. Os solutos Adicionando <ol><li> Despeje todos os reagentes (16,39 g NaNO3 e 1,483 g de NaCl) em um recipiente grande (por exemplo, 20 L de balde) e adicionar água corrente suficiente para dissolver completamente os solutos. Lavar vasos de reagentes três vezes com água fluxo adicional e despeje em um recipiente lavar solução. Mantenha o controle de quantidade de água adicionada. <ol><li>Por exemplo, usar uma garrafa de 500 ml para derramar água corrente para dentro do recipiente. Agita-se solução até que todos os reagentes tenham sido completamente dissolvido. </li></ol></li><li> Recolha de 60 ml de alíquota da solução de adição. Mantenha esta amostra altamente concentrado separado (por exemplo saco zip-lock) de todas as outras amostras para minimizar a contaminação cruzada. Tais amostras são importantes se o cálculo de nutrientes cinética de captação 6 é um objectivo adicional do projecto de investigação como estas amostras pode ser utilizado para determinar a massa exacta de solutos adicionados. </li><li> Despeje solução no local de adição. Faça isso por verter a solução em um movimento suave e rápida para minimizar o tempo de atraso de viagem e salpicos que poderia reduzir a quantidade de reagentes adicionados. Enxaguar o recipiente e a agitação da vara três vezes no fluxo imediatamente após a adição de garantir que todos os reagentes foram adicionados à corrente. <ol><li> Anote o tempo foi adicionado a solução: hr: min: seg. </li><li> Grave as massas de marcadores adicionados(Por exemplo NaNO3 e NaCl). </li><li> Depois que a solução foi adicionada, não perturbe o fluxo. Certifique-se de que todas as viagens ao longo do córrego ocorre nas margens para garantir que o bentos córrego e da própria solução não sejam perturbados. </li></ol></li></ol> Amostragem 5. Campo <ol><li> Hora garrafas de amostragem, em ordem crescente, enquanto espera para solução para chegar ao local de amostragem. O tempo de viagem será uma função de descarga e atingir o comprimento e pode ser determinada antes do tempo (um dia antes) quer com uma injecção única de NaCl ou corante rodamina (que pode ser utilizado para estabelecer o tempo de viagem 14). Nota: Se estiver trabalhando em um projeto DON-temático, evitar o uso de corante rodamina, pois é um tipo de DON e, portanto, alterar o ambiente DON piscina se os restos do alcance estudo. </li></ol><img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/54704/54704fig2.jpg" /> Figura 2:Exemplo esquemática da curva de eluição de solutos (BTC). Um BTC representa mudanças na concentração de soluto ao longo do tempo e pode ser usado para explicar o trânsito e ciclo biogeoquímico de um traçador numa corrente. Agarre amostras devem ser tomadas em todo o BTC com uma frequência que dá uma representação igual tanto para o ascendente e descendente membros do BTC. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54704/54704fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol start="2"><li> Coleta de Amostras Nota: O objectivo dominante da recolha da amostra, é de representar adequadamente alterações na concentração de soluto ao longo de ambos os aumentos e quedas membros da ruptura com curva (BTC) (Figura 2). <ol><li> Após a chegada da solução (detectado através de um aumento da condutividade), recolher amostras em frascos de 125 ml ao longo do BTC, segurando um frasco de 125 ml para o fluxo principal de água no ponto de amostragem. Rápidoly lavar a garrafa com água corrente e descartar lavar a jusante e em seguida, tomar amostra. amostra Cap e coloque em cooler. </li><li> Registar o tempo (horas: min: seg) e a condutividade de cada amostra tirada ao longo da BTC num livro de campo (Tabela 1). </li><li> Coletar amostras baseadas no tempo (por exemplo, intervalos de 1 min) ou com base na taxa em que as mudanças de condutividade. Por exemplo, se a condutividade está mudando rapidamente, provar a cada 30-60 segundos até que as mudanças na condutividade lento, no qual amostras de tempo podem ser tomadas a cada 5-10 min. Para intervalos com base na condutividade, recolher amostras a cada 15-30 unidades dependendo da taxa à qual a condutividade está mudando. </li><li> Amostra até condutividade retorna para o fundo ou dentro de 5 microsiemens / cm de condições de fundo. Intervalos de coleta de amostra pode ser ajustada durante o experimento, enquanto o BTC está bem representada nas amostras de agarrar. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> garrafa # </td><td> Condutância específica </td><td> Tempo </td><td> notas </td></tr><tr><td> 1 </td><td></td><td> hr: min: seg </td><td> por exemplo fundo (downstream) </td></tr><tr><td> 2 </td><td></td><td></td><td> por exemplo fundo (downstream) </td></tr><tr><td> 3 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 4 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 5 </td><td></td><td></td><td> por exemplo, amostra a condutância de pico </td></tr><tr><td> . </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> . </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> . </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Maior Bottle # </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table> tabela 1PFieldlivro: Exemplo da página do Lab Livro e Informação Necessária <ol start="3"><li> Filtragem de amostra Nota: A filtragem das amostras pode ocorrer tanto no campo ou ao retornar para o laboratório. <ol><li> amostras de filtração do membro subindo em ordem crescente de condutividade específica até o pico de condutividade específica. Aguarde até que o experimento para acabar e amostras de filtro do membro caindo em ordem crescente de condutividade específica (ou seja, começar com a última amostra e trabalhar para trás em direção a condutividade específica de pico). Nota: Esta ordem de amostras minimiza a contaminação cruzada entre as amostras e permite que o mesmo filtro, a seringa, e suporte de filtro a ser utilizado, desde que o filtro, a seringa e suporte de filtro são enxaguados apropriadamente entre cada amostra (ver passos 5.3.2- 5.3.4). </li><li> Remova o êmbolo de uma seringa de 60 ml e depois fechar a válvula de segurança. Pour ~ 10 ml da amostra para a seringa e retornar ao êmbolo da seringa. Agitar seringa de modo que a amostralavagens paredes internas da seringa. seringa ligada ao porta-filtro e stop-cock aberto. Empurre amostra através de porta-filtro e descartar enxaguar. </li><li> Remover êmbolo e fechar a válvula de segurança. Despeje ~ 30 ml de amostra para a seringa e voltar êmbolo para seringa. Abrir estoque-pau e expulsar ~ 10 ml por meio de porta-filtro e em 60 ml garrafa de amostragem. Tampe o frasco, agitar com filtrado e descarte. Repita este passo para um total de 3 lavagens. Isto irá assegurar que todas as impurezas foram removidas a partir do frasco de amostra de 60 ml e que as paredes são revestidas com a amostra. </li><li> Remover êmbolo e fechar a válvula de segurança. Despeje ~ 60 ml de amostra para a seringa e voltar êmbolo para seringa. Empurre a amostra através de suporte do filtro e no frasco da amostra de 60 ml. Encher garrafas até o ombro para evitar rachaduras de garrafas quando congelado. garrafa de tampa e coloque em cooler. </li><li> Repita os passos 5.3.2-5.3.4 para todas as amostras restantes. Trocar o filtro entre ascendente e descendente amostras de membros para minimizar a contaminação. </li&gt; <li> amostras transporte de volta para o laboratório no mesmo dia e no gelo. </li></ol></li></ol> 6. Preparação para análise laboratorial <ol><li> Se a filtragem das amostras deve ocorrer no laboratório, seguir o protocolo, conforme descrito no ponto 5.3.1. Filtrar amostras de ambos os membros ascendentes e descendentes do BTC, a fim de aumentar a condutividade. Mudar o filtro entre o aumento dos membros e queda amostras dos membros. </li><li> Congele as amostras filtradas a -20 ° C até à análise. </li><li> Garantir que as instalações analíticas estão equipados para lidar com amostras altamente concentradas. Nota: Alguns laboratórios não estão equipados para executar amostras altamente concentradas e, portanto, deve ser tomado cuidado. Incorporar padrões preparados que capturam que a maior final de concentrações de soluto esperados. padrões elevados de concentração irá ajudar a garantir uma curva padrão que capta o intervalo esperado de concentrações de soluto manipulados. </li><li> analisar amostrasde baixa para alta condutividade em todos os instrumentos analíticos. Pedido de amostras de baixa a alta condutividade específica impede a contaminação de amostras de baixa sal / nutrientes por amostras elevadas de sal / nutrientes. Isto significa que a partir de amostras de subida e de descida membros serão misturados no que diz respeito à sequência. <ol><li> Analisar amostras de carbono total orgânico dissolvido, nitrogênio total dissolvido, nitrato e amônio, embora a exata combinação de análise de soluto será uma função da questão de pesquisa (veja Wymore et al. 10, por exemplo). </li></ol></li></ol> Análise 7. Os dados <ol><li> Analisar os dados usando regressão linear simples. A variável independente é as concentrações do nutriente adicionado e a variável dependente é a concentração de MOD tanto como DOC ou DON. Cada ponto na figura representa uma amostra aleatória a partir da curva de ruptura e de nutrientes que de amostra e DOC concentração / DON. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O objetivo do método de pulso de nutrientes, como apresentado aqui, é caracterizar e quantificar a resposta da piscina altamente diversificada de ambiente DOM água do córrego em toda uma gama dinâmica de um nutriente inorgânico acrescentou. Se o soluto adicionado suficientemente aumenta a concentração do soluto reactivo, um grande espaço inferencial pode ser criado para compreender como o ciclo biogeoquímico de DOM é ligado a concentrações de nutrientes. Esta abordagem pulso nutriente é ideal, pois envolve nenhuma das m...

matéria orgânica dissolvida (MOD) fornece uma importante fonte de energia e nutrientes para os ecossistemas de água doce e é definida como a matéria orgânica que passa através de um filtro de 0,7 um. Dentro de ecossistemas aquáticos, DOM também pode influenciar a atenuação da luz e complexação de metais. DOM é uma mistura altamente diversificada e heterogéneo de compostos orgânicos com vários grupos funcionais, bem como nutrientes essenciais, tais como o azoto (N) e fósforo (P). Embora o termo &quot;DOM&quot; descreve toda a piscina, incluindo a sua relação C, componentes de N e P, a sua concentração é medida como carbono orgânico dissolvido (COD). A complexidade molecular inerente da piscina DOM no entanto, cria desafios para o seu estudo. Por exemplo, não há nenhuma maneira directa para medir a fracção do conjunto total de DOM composto de nutrientes orgânicos, tais como o azoto orgânico dissolvido (DON) e fósforo orgânico dissolvido (DOP). Em vez disso, a concentração de nutrientes orgânicos deve ser determinada por diferença ( <em&gt; eg [DON] = [nitrogênio total dissolvido] - [dissolvido nitrogênio inorgânico]). Adicionando uma alteração DOM realista para um fluxo é difícil devido à diversidade da piscina DOM ambiente. Estudos anteriores acrescentou fontes de carbono simples (por exemplo, glicose, uréia 1) ou de uma fonte específica, como a maca da folha de lixiviados 2 para manipular as concentrações no campo. No entanto, estas fontes não são particularmente representativo da piscina DOM ambiente. Tentando refinar ou se concentrar DOM ambiente para experimentação posterior também é feito com dificuldades, incluindo a perda de certas frações (por exemplo, componentes altamente instáveis) durante o processamento. Como resultado, é difícil de entender os controles da piscina DOM ambiente como nós atualmente não possuem qualquer método para manipular diretamente a piscina DOM ambiente. No entanto, desde a biogeoquímica de DOM está ligada aos nutrientes comumente encontrados no ambiente (por exemplo, nittaxa de [NO 3 -] 3), podemos acrescentar outros solutos para transmitir os ecossistemas e medir a resposta da piscina DOM para essas manipulações. Examinando como a piscina DOM responde a uma ampla gama de concentrações de nutrientes experimentalmente impostas esperamos obter uma melhor visão sobre como DOM responde a variações nas condições ambientais. Um método vulgarmente utilizado em fluxo biogeochemistry é o método da adição de nutrientes. Experimentos de adição de nutrientes têm sido tradicionalmente usado para entender cinética do consumo ou o destino do 4,5,6,7 soluto acrescentou. Adições de nutrientes podem ser de curto prazo na hr 6 a escala dia 4 ou manipulações de longo prazo ao longo de vários anos 8. Adições de nutrientes também podem incluir isotopicamente nutrientes (por exemplo, 15 N-NO 3 -) para traçar nutrientes adicionados através de reações biogeoquímicas. No entanto, estudos baseados em isótopos são frequentemente expensive e exigem análises difíceis (por exemplo, digestões) dos vários compartimentos bentônicos onde os nutrientes isotopicamente marcados podem ser retidos. Experimentação recente revelou a utilidade de impulsos de curto prazo de nutrientes para elucidar os controles não solutos adicionados e ambientais, tais como DOM 9,10, revelando uma nova forma pela qual a analisar em tempo real em reacções bioquímicos in situ. Aqui nós descrevemos e demonstrar os passos metodológicos fundamentais para a realização de pulsos de nutrientes de curto prazo com o objetivo de compreender a biogeoquímica acoplado de C e N e, especificamente, os controles na piscina DOM altamente diversificada. Este método envolve a adição facilmente reprodutível um pulso de nutrientes a um alcance fluxo experimental e medição de alterações na concentração de soluto, tanto o manipulada e variável de resposta de interesse (por exemplo, DOC, DON, DOP). Ao manipular diretamente as concentrações de nutrientes in situ que são capazes de alterar indiretamente o DOMpiscina e examinar como DOM concentração alterações em uma gama dinâmica de concentrações de nutrientes 10.

<table><tbody><tr><td>Nitrato de sódio</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td></tr><tr><td>cloreto de sódio</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td>O sal de mesa comprado na loja também pode ser usado, no entanto, contém vestígios de impurezas</td></tr><tr><td>Filtros de fibra de vidro Whatman GFF</td><td>Qualquer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seringa de filtragem BD</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td>Suportes</tr> de <tr><td>filtro EMD Millipore Swinnex</td><td>Qualquer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Torneira de parada de seringa</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td></tr><tr><td>sonda multiparâmetro YSI</td><td>Yellow Springs International</td><td>556-01</td><td></td></tr><tr><td>Garrafas de HDPE de 125 ml de boca larga</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer Garrafas</td><td></td></tr><tr><td>de HDPE de 60 ml</td><td>Qualquer</td><td>Balde</td><td></td></tr><tr><td>de 20 L</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td></tr><tr><td>Fita métrica de campo</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer</td><td></td></tr><tr><td>Fita de rotulagem de laboratório</td><td>Qualquer</td><td>Any</td><td></td></tr><tr><td>Stir stick</td><td>Qualquer</td><td>Cooler</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Qualquer</td><td>Caneta</td><td></td></tr><tr><td>Sharpie</td><td>Qualquer</td><td>Caderno</td><td></td></tr> de <tr><td>campo</td><td>Qualquer</td><td>Pinça</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Qualquer</td><td>Sacos</td><td></td></tr><tr><td>Zip-lock</td><td>Qualquer</td><td>Qualquer Qualquer</td><td></td></tr></tbody></table>

compreender orgânico dissolvido matéria biogeoquímica através<em&gt; in situ</em&gt; nutrientes manipulações no córrego ecossistemas

Understanding Dissolved Organic Matter Biogeochemistry Through In Situ Nutrient Manipulations in Stream Ecosystems

A matéria orgânica dissolvida (DOM) é uma mistura altamente diversificada de moléculas que fornece uma das maiores fontes de energia e nutrientes para os ecossistemas de fluxo. No entanto, o estudo in situ do DOM é difícil, pois a complexidade molecular do pool do DOM não pode ser facilmente reproduzida para fins experimentais. As adições de nutrientes aos riachos, no entanto, demonstraram alterar repetidamente o pool DOM in situ e ambiente. Aqui, demonstramos um método baseado em campo facilmente replicável para manipular o pool de ambientes do DOM na escala do ecossistema. Durante os experimentos de pulso de nutrientes, as mudanças na concentração de carbono orgânico dissolvido e nitrogênio orgânico dissolvido podem ser examinadas em uma ampla gama de concentrações de nutrientes. Este método permite que os pesquisadores examinem os controles no pool DOM e façam inferências sobre o papel e a função que certas frações do pool DOM desempenham dentro dos ecossistemas. Defendemos o uso deste método como uma técnica para ajudar a desenvolver uma compreensão mais profunda da biogeoquímica do DOM e como ela interage com os nutrientes. Com mais desenvolvimento, este método pode ajudar a elucidar a dinâmica da MOD em outros ecossistemas.

<img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54704/54704fig3.jpg" /> Figura 3: Exemplo. Os resultados de nitrato (NO3 -) Adições com Dissolvido nitrogênio orgânico (DON) como variável de resposta As análises são regressões lineares. Asteriscos representam significância estatística em α = 0,05. Note-se a gama dinâmica em NO3 - concentração que foi conseguida com o método de pulso de nutriente...

matéria orgânica dissolvida constitui uma importante fonte de energia e nutrientes para transmitir ecossistemas. Aqui demonstramos um método à base de campo para manipular a piscina ambiente de matéria orgânica dissolvida in situ por meio de impulsos de nutrientes facilmente reproduzíveis.

Compreender orgânico dissolvido Matéria Biogeoquímica Através<em&gt; In Situ</em&gt; Nutrientes Manipulações no córrego Ecossistemas

Dissolved organic matter (DOM) is a highly diverse mixture of molecules providing one of the largest sources of energy and nutrients to stream ecosystems. ...

O objetivo geral deste método de pulso nutricional é manipular indiretamente o reservatório ambiente de matéria orgânica dissolvida para compreender como esse reservatório de matéria orgânica responde a alterações na concentração de nutrientes. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área de biogeoquímica de cursos d'água, como de que forma os ciclos da matéria orgânica e dos nutrientes estão interligados. A principal vantagem deste método é que ele representa uma manipulação de todo o ecossistema e pode ser facilmente replicado.As implicações desta técnica estendem-se à exportação de carbono e nitrogênio em bacias hidrográficas, uma vez que a interação desses elementos determina como são retidos dentro do curso d'água. Tivemos pela primeira vez a ideia desta técnica ao percebermos que a abordagem do pulso nutricional gerava uma faixa dinâmica de concentrações de nutrientes e que as concentrações de matéria orgânica dissolvida eram sensíveis a essas variações. Para começar, implante o medidor de condutividade de campo, escolhendo um local aproximadamente entre 0,5 e 1,0 metro à montante do ponto de coleta da amostra.O medidor permanecerá no local durante todo

understanding-dissolved-organic-matter-biogeochemistry-through-situ

Research

JoVE Journal

Environment

Ambiente

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Aprenda a manipular matéria orgânica dissolvida em ecossistemas de riachos usando pulsos de nutrientes in situ. Este método permite estudar respostas biogeoquímicas e ciclos de carbono e nitrogênio em bacias hidrográficas.

Compreender orgânico dissolvido Matéria Biogeoquímica Através

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