21 de novembro de 2016
armadilhas extracelulares dos neutrófilos (NETS) são redes de ADN, histonas e proteínas de neutrófilos. Embora um componente da resposta imunitária inata, redes estão implicados na autoimunidade e trombose. Este protocolo descreve um método simples para o isolamento dos neutrófilos canino e quantificação de redes que utilizam um ensaio de microplaca de fluorescência.
O objetivo geral deste experimento é isolar neutrófilos quiescentes e medir sua liberação de DNA em resposta a agonistas. Este método pode ajudar a responder a questões-chave em imunologia e medicina veterinária, como, qual é a resposta dos neutrófilos a vários agonistas da indução de armadilhas extracelulares de neutrófilos ou morte celular? A principal vantagem desta técnica é que ela permite a triagem rápida de vários agonistas e inibidores da formação de armadilhas extracelulares de neutrófilos.
Comece inserindo uma agulha borboleta de calibre 21 na veia cefálica de um doador canino saudável, em seguida, coloque uma seringa de três mililitros e obtenha três amostras de sangue de três mililitros, transferindo imediatamente as amostras para tubos de sangue contendo EDTA sem tampa. Tome cuidado para que a punção venosa seja atraumática e que o fluxo sanguíneo seja bom, pois uma coleta de sangue ruim resultará em um baixo rendimento de neutrófilos. Depois de encher cada tubo, inverta os tubos para garantir uma mistura adequada do sangue e do anticoagulante.
Agrupe o sangue em um tubo cônico de 50 mililitros. Misture as amostras com um volume igual de temperatura ambiente estéril 3% Dextran 500 por inversão suave e deixe o tubo na posição vertical por 18 a 20 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, transfira a camada superior cor de palha para um tubo novo até que não possa mais ser coletada sem contaminação pela camada vermelha inferior.
Centrifugue a camada superior. Descarte o sobrenadante, ressuspendendo manualmente o pellet em 10 mililitros de PBS estéril em temperatura ambiente. Em seguida, adicione 10 mililitros de uma polissacarose à temperatura ambiente em solução de separação de células de diatrizoato de sódio a um tubo cônico de 50 mililitros.
Coloque cuidadosamente as células sobre a solução de separação. Separe as células por centrifugação. Rejeitar as três camadas superiores de células mononucleares plasmáticas e plaquetas e de gradiente de densidade.
Lise qualquer um dos eritrócitos restantes com 10 mililitros de água em temperatura ambiente. Após 30 segundos, adicione 10 mililitros de cloreto de sódio estéril a 1,8% em temperatura ambiente para restaurar a tonicidade. Misture as células por inversão suave.
Agora colete as células por centrifugação. Ressuspenda suavemente o pellet branco em 10 mililitros de PBS estéril. Após a contagem, centrifugue novamente as células e ressuspenda o pellet a uma concentração de cinco vezes 10 elevado à sexta células por mililitro em PBS estéril à temperatura ambiente.
Se for caso disso, secar ao ar um pequeno volume de células numa lâmina de vidro, seguida de coloração com um kit de fixação rápida e coloração de acordo com as instruções do fabricante. Se o isolamento de neutrófilos for bem-sucedido, pelo menos 95% das células nucleadas devem ser granulócitos com contaminação eritrocitária mínima, conforme observado à microscopia de luz. Imediatamente após o isolamento dos neutrófilos, passar a suspensão celular por um filtro estéril estéril de 70 mícrons e adicionar cinco vezes 10 às quartas células aos poços de teste de uma placa de 96 poços contendo meios de cultura para uma incubação de 30 minutos a 39 graus Celsius e 4% de dióxido de carbono.
Quando as células estiverem ligadas, adicione um volume final de 100-200 microlitros do agonista de interesse em RPMI sem vermelho de fenol e suplementado com FCS inativado por calor aos poços de teste, bem como a dois poços em branco contendo apenas PBS. Em seguida, adicione um corante de ácido nucleico impermeável às células apropriado e devolva a placa à incubadora. Após o período de incubação apropriado, medir a fluorescência num leitor de microplacas.
Uma estimulação de uma hora de neutrófilos caninos com fator ativador de plaquetas resulta em um aumento médio de quatro vezes na fluorescência em comparação com células não estimuladas de controle. O PMA, no entanto, é um agonista mais lento que não demonstra um aumento da fluorescência de neutrófilos antes de duas horas de ativação, mas que, em última análise, produz um aumento semelhante ao longo do tempo. A fluorescência do corante de ácido nucleico não é específica para a formação de armadilhas extracelulares de neutrófilos, pois também ocorrerá se houver morte celular por outros mecanismos ou se os reagentes estiverem contaminados com DNA.
Por exemplo, neste experimento representativo, uma preparação comercial de LPS produziu fluorescência muito alta na ausência de neutrófilos, presumivelmente devido à contaminação com DNA bacteriano. Uma vez dominada, essa técnica pode ser concluída em aproximadamente seis horas se for executada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de manusear os neutrófilos suavemente.
Não faça vórtice nas células e pipete em vez de despejar os sobrenadantes. Após este procedimento, outros métodos, como microscopia de imunofluorescência, podem ser realizados para confirmar que o DNA liberado se correlaciona com a NETose. Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para pesquisadores no campo da hematologia explorarem a interação do DNA liberado na coagulação e o efeito de novos agonistas da TNE, incluindo o plasma do paciente.
Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como isolar neutrófilos caninos e medir sua resposta aos agonistas.
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Este protocolo descreve um método para isolar neutrófilos quiescentes do sangue canino e quantificar a formação de suas armadilhas extracelulares. As armadilhas extracelulares de neutrófilos (NETs) desempenham um papel significativo na resposta imune inata e estão associadas a várias patologias.
Este ensaio de quantificação de NETs baseado em fluorescência permite a triagem rápida de agonistas e inibidores que afetam a formação de armadilhas extracelulares de neutrófilos em modelos caninos. O método auxilia na validação de alvos na pesquisa imunológica e de doenças inflamatórias, fornecendo leituras quantitativas e reprodutíveis da liberação de DNA. Ele facilita a desmistificação mecanicista em programas pré-clínicos que investigam vias mediadas por NETs em modelos de autoimunidade, trombose e doenças infecciosas.
O ensaio insere-se no continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos líderes, apoiando a redução de riscos imunológicos do alvo antes do investimento pré-clínico.