December 14th, 2016
Este protocolo descreve a visualização do desenvolvimento do biofilme após a exposição a fatores do hospedeiro usando um modelo de câmara de lâminas. Este modelo permite a visualização direta do desenvolvimento do biofilme, bem como a análise dos parâmetros do biofilme usando programas de software de computador.
O objetivo geral deste procedimento é visualizar e quantificar as alterações nos biofilmes em resposta ao escarro e antibióticos. Este método pode ser usado por pesquisadores para entender questões-chave, como como a eficácia de vários antibióticos contra biofilmes bacterianos pode ser afetada pela presença de escarro. A principal vantagem dessa metodologia é que ela permite que os indivíduos vejam as mudanças que ocorrem nos biofilmes em resposta a diferentes fatores.
Para iniciar o experimento, registre o volume da amostra de escarro obtida anteriormente. Adicione solução salina tamponada com fosfato, ou PBS, adicione duas vezes o volume da amostra. Em seguida, use uma pipeta de transferência para misturar bem a amostra.
Vortex a amostra na configuração mais alta por um minuto para misturá-la completamente. Alíquota de um mililitro da mistura em tubos de microcentrífuga de 1,5 mililitro. Em seguida, gire os tubos.
Após centrifugação, guardar o sobrenadante e rejeitar o sedimento. Filtre esterilize o sobrenadante através de um filtro de 0,22 mícron e colete-o em um tubo de microcentrífuga limpo. Armazene o sobrenadante do escarro a 80 graus Celsius para uso futuro.
Coloque 40 microlitros de cultura previamente preparada em quatro mililitros de caldo Luria fresco, ou meio LB, e cultive as bactérias para obter uma cultura com densidade óptica de 0,55 a 600 nanômetros. Em seguida, dilua 100 microlitros de cultura 0,5 OD em 400 microlitros de filtrados de escarro a 10% preparados em LB. Use 200 microlitros da diluição para semear os poços das câmaras de lâminas. Deixe a bactéria se fixar por quatro horas a 37 graus Celsius sem tremer.
Após quatro horas, remova o meio e lave suavemente o biofilme com 1X LB fresco. Substitua o meio restante por 200 microlitros de LB fresco. Deixe os biofilmes crescerem a 37 graus Celsius sem tremer. Substitua o meio a cada 12 horas sem lavar até que o biofilme esteja pronto para microscopia. É muito importante lavar suavemente as lâminas para não interromper nenhuma bactéria presa.
Após o crescimento, remova a mídia dos poços da câmara e lave suavemente cada câmara duas vezes com 300 microlitros de PBS estéril. Em seguida, para preparar a mistura de coloração de biofilme, adicione um microlitro de cada corante fornecido no kit de viabilidade a cada mililitro de solução necessária e misture a solução. A quantidade ideal de corante e tempo de coloração é determinada empiricamente para cada organismo.
Adicione 200 microlitros da mistura de coloração a cada poço da lamínula com câmara. Incube a lamínula. Após a incubação, remova a mistura de coloração das câmaras e lave cada poço com 300 microlitros de PBS estéril.
Substitua o PBS por mídia nova. Por fim, prossiga com a visualização via microscopia confocal. Imagens representativas do complexo Burkholderia cepacia, ou isolados clínicos de CBC, após 48 horas de crescimento em lamínula com câmara isolada ou na presença de filtrados de escarro a 10%, demonstram que sua presença pode alterar a arquitetura do biofilme.
As imagens foram analisadas com o software Comstat para obter os principais parâmetros do biofilme, incluindo a espessura média do biofilme, que foi aumentada quando tratada com 10% de escarro. A fim de avaliar os efeitos dos diferentes fatores no crescimento do biofilme, os isolados clínicos foram cultivados apenas em meio ou com escarro e foram tratados com ou sem antibiótico. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como formar e tratar biofilmes em vidro de cobertura com câmara e prepará-los para coloração e análise confocal.
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Este protocolo descreve a visualização e quantificação do desenvolvimento de biofilmes em resposta ao escarro e antibióticos usando um modelo de câmara deslizante. Este modelo facilita a observação direta das mudanças no biofilme e permite uma análise detalhada usando software de computador.
Quantitative visualization of biofilm development in the presence of host-derived sputum and antibiotics addresses a critical challenge in anti-infective discovery and translational model fidelity. This approach enables mechanistic de-risking by revealing how host factors modulate antibiotic efficacy and biofilm architecture, informing early-stage target validation and screening strategies. The method supports predictive confidence for portfolio decisions in infectious disease R&D.
This chambered coverglass model integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven testing of antibiotic efficacy in host-mimetic biofilm systems.