4 de janeiro de 2017
Apresentamos um protocolo para isolar a bula auditiva, a cápsula e os ossículos de camundongos pós-natais para análise histológica e de montagem inteira.
O objetivo geral do procedimento de dissecção é isolar a bolha auditiva e a cápsula, seguidas pelos ossículos auditivos individuais de camundongos pós-natais para várias análises histológicas e de montagem total. Este método pode ser usado para abordar questões-chave no campo da biologia da ferida, como mecanismos de morfogênese pobre, ossificação endocondral ou metabolismo mineral deficiente. Este método é baseado no conhecimento profundo dos detalhes anatômicos.
Geralmente, indivíduos novos no camundongo como sistema biológico podem ter dificuldades, porque seu conhecimento do ouvido médio humano pode não ser aplicável à contraparte do camundongo. Demonstrando o procedimento estará Ayako Sakamoto, técnica do meu laboratório. Comece colocando a bolha auditiva e a cápsula com o osso do crânio circundante em uma placa de amostra contendo solução salina tamponada com fosfato pH 7.4 à temperatura ambiente.
Sob um microscópio de dissecação binocular, identifique os ossos do crânio ao redor da cápsula auditiva, conforme mostrado aqui. Use um conjunto de pinças para segurar o crânio ao redor e um segundo conjunto para afastar o osso basefenóide e occipital. Em seguida, use a pinça para puxar suavemente os ossos interparietal e parietal para longe da cápsula e removê-los quando estiverem totalmente soltos.
Em seguida, puxe o esquamosal para longe da bula e da cápsula e retire suavemente o osso e os tecidos moles. Em seguida, segure a orelha externa e vire a amostra para revelar o lado medial. Em seguida, gire a amostra 180 graus, segure a cápsula e puxe os tecidos moles restantes.
A crista dorsal agora é visível. Nesse ângulo, os nervos facial e vestíbulo-coclear no canal auditivo interno, fossa subarqueada e canal semicircular anterior são claramente visíveis. Quando a crista dorsal é inclinada em direção ao fundo da placa de dissecção, a bolha auditiva é claramente vista.
Se a preparação for ligeiramente inclinada, o martelo é visível dentro da bula. Comece usando uma pinça para fraturar o canal auditivo externo acima do martelo e lateral ao sulco do tímpano. Crie uma segunda fratura anterior à primeira.
Em seguida, remova o pedaço do canal auditivo externo para que a membrana timpânica fique visível. Em seguida, remova parte da membrana timpânica e do osso timpânico próximo ao processo curto do maleal, tanto nas paredes ventral quanto posterior. O martelo, a bigorna, o estribo e o músculo tensor do tímpano devem agora ser expostos.
Levante o martelo e corte o músculo tensor do tímpano com a borda chanfrada de uma agulha de calibre 27. Observe que o manúbrio maleal se liga firmemente à membrana timpânica, como é visto em outros mamíferos. Deslocar o martelo da bigorna na articulação ossicular fraturando o processo anterior do martelo no goniale.
Isole o martelo da bolha auditiva usando uma pinça. Remova a maior parte da bolha auditiva para expor a bigorna e o estribo. Em seguida, use a borda chanfrada de uma agulha de calibre 27 para cortar o ligamento posterior da bigorna na crista curta.
Isole a bigorna usando uma pinça. Corte a artéria estapedial perto do estribo com a borda chanfrada de uma agulha de calibre 27. Gire a amostra para que a janela redonda fique posicionada na parte inferior.
Em seguida, insira uma agulha de costura no forame obturador do estribo e levante o estribo. Depois de remover o estribo, a abertura da janela oval deve ser claramente visível. Use a agulha de calibre 27 para empurrar o estribo para fora da agulha de costura.
Para iniciar a incorporação do tecido, primeiro use uma tesoura para cortar o processo estiliforme na extremidade anterior da bula. O martelo e a crista dorsal são visíveis através da porção cortada. Mergulhe a bula e a cápsula em 1-2% de paraformaldeído em PBS.
Se o ar estiver preso na bula, remova-o usando uma agulha e uma seringa. Deixe a bula e a cápsula no fixador a quatro graus Celsius durante a noite em um rotador de tubo. No dia seguinte, lave a bula e a cápsula rapidamente em PBS.
Em seguida, mergulhe imediatamente em composto líquido de inclusão criogênica a quatro graus Celsius. É comum que bolhas de ar se formem no composto de crio-incorporação ao nível do ouvido médio e externo. Remova a bolha de ar do ouvido médio por aspiração por agulha.
Use a mesma técnica para a bolha de ar no ouvido externo. Uma vez removidas todas as bolhas de ar, oriente o tecido de acordo com o tipo de cortes a serem obtidos. O tecido pode então ser incorporado em blocos congelados antes do seccionamento.
Esta imagem mostra a coloração H e E de uma seção longitudinal de parafina do martelo descalcificado, indicada pela letra M, e a bolha auditiva e a cápsula de um camundongo P14. A membrana timpânica é indicada pela letra TM. Esta imagem mostra a marcação óssea de cálcio de uma seção longitudinal de martelo não descalcificado congelado, indicada pela letra M, e a bolha auditiva de um camundongo P21. Os sinais verdes de cálcio revelam nova formação óssea no martelo, na bula e na cápsula.
Uma vez dominada a técnica, a bolha auditiva e a cápsula podem ser isoladas em dez minutos se o procedimento for realizado corretamente. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão das orientações anatômicas dos ossículos auditivos e da bolha do camundongo, que foi descrita no texto principal.
Este protocolo descreve a dissecação da bula auditiva, cápsula e ossículos de camundongos pós-natais para análise completa e histológica. Ele fornece um método detalhado para explorar questões-chave na biologia de feridas.
This dissection protocol enables precise isolation of murine auditory ossicles for histological and whole-mount analysis, supporting target validation in otic pathway research. By providing reproducible access to the malleus, incus, and stapes, the method facilitates mechanistic de-risking of genes involved in skeletal development and mineral metabolism. The approach enhances predictive confidence in preclinical models where altered bone metabolism impacts hearing function, informing portfolio decisions in auditory and craniofacial therapeutic areas.
The method fits within the discovery continuum from target validation to preclinical assessment, particularly for skeletal and otic pathway modulators.