11 de junho de 2017
A pesquisa de neurotoxicidade do desenvolvimento induzida por anestesia (AIDN) focalizou os roedores, que não são amplamente aplicáveis aos seres humanos. Os modelos de primatas não humanos são mais relevantes, mas são custo-proibitivos e difíceis de usar para a experimentação. O leitão, ao contrário, é um modelo animal clinicamente relevante, prático, ideal para o estudo da neurotoxicidade anestésica.
O objetivo geral deste procedimento experimental é avaliar os efeitos dos anestésicos no cérebro neonatal em um modelo de leitão translacional clinicamente relevante. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da neurotoxicidade induzida por anestesia, como como ocorre a toxicidade e as mudanças de desenvolvimento que acompanham essa toxicidade. A principal vantagem dessa técnica é que ela fornece um modelo animal translacionalmente relevante para o estudo da neurotoxicidade do desenvolvimento induzida por anestesia, no qual a homeostase fisiológica é mantida durante a experimentação.
Durante a indução anestésica e durante todo o procedimento, monitore: oximetria de pulso, pressão arterial não invasiva, eletrocardiografia e temperatura. A etapa mais crítica durante este procedimento é a manutenção da homeostase fisiológica. Isso inclui monitoramento, gerenciamento de temperatura, ventilação mecânica e análise química do sangue.
Para preparar o leitão para a cirurgia, primeiro coloque um cateter intravenoso periférico de calibre 24 na veia marginal da orelha. Aqueça o leitão com ar forçado aquecido. Monitore sua temperatura usando um termômetro retal e infunda continuamente dextrose contendo fluido isotônico a uma taxa de manutenção.
Em seguida, coloque o leitão na posição dorsal para uma intubação traqueal. Em seguida, borrife as cordas vocais com 0,5 mililitros de lidocaína a 2% para evitar espasmos durante a intubação e, em seguida, avance um tubo traqueal com balonete de três milímetros na traqueia. Fixe o tubo e, em seguida, verifique se há murmúrios vesiculares bilaterais usando ausculta torácica com um estetoscópio e verifique se há dióxido de carbono expirado sustentado.
Em seguida, aplique pomada oftálmica nos olhos. Pouco antes de iniciar a cirurgia, administre um antibiótico de amplo espectro através da linha intravenosa periférica para prevenir a infecção do local cirúrgico. Agora, esterilize ambas as virilhas usando pelo menos dois esfoliantes com clorexidina para garantir um campo estéril adequado.
Faça com que a equipe cirúrgica use bonés, máscaras, luvas e proteção para os olhos. Em seguida, coloque o animal. Para começar, palpe o pulso femoral na prega inguinal.
E então, usando um bisturi, faça uma incisão craniocaudal superficial de 1,5 centímetro. Em seguida, faça uma dissecção romba entre as duas cabeças do músculo grácil. Agora, localize o feixe neurovascular femoral.
É normalmente encontrado entre os dois músculos. Em seguida, com alças vasculares ou laços de seda, isole a artéria na extremidade proximal e distal. Em seguida, usando o laço na extremidade proximal, puxe a artéria até o nível da pele distalmente e coloque tração no laço proximal para interromper o fluxo sanguíneo.
Enquanto mantém a tração, use uma tesoura de tenotomia para fazer uma pequena arteriotomia. Em seguida, avance o cateter ou tubo de polietileno diretamente no vaso. O retorno do sangue deve ser observado imediatamente.
Agora, conecte e prenda imediatamente um cateter conectado a um transdutor de pressão. Em seguida, cubra a incisão concluída com gaze estéril e lave o cateter com solução salina normal. Durante toda a exposição ao anestésico, monitore os sinais vitais do leitão.
Procure perturbações que possam indicar hipotensão, arritmia, hipo ou hipertermia ou hipóxia. Pelo menos uma vez por hora durante o experimento, retire uma amostra de sangue arterial do cateter da artéria femoral. Em seguida, use um sistema de análise automatizado para coletar valores sanguíneos da amostra.
Após exposição anestésica suficiente, remova o cateter da artéria femoral e amarre cuidadosamente a sutura de seda vascular proximal para ocluir permanentemente a artéria femoral e evitar sangramento. Em seguida, irrigue a incisão com 10 a 20 mililitros de solução salina para ajudar a prevenir a infecção. Uma vez confirmada a hemostasia completa, feche a incisão com sutura de seda 3-0 em um padrão simples interrompido.
Agora, infiltre a ferida com bupivacaína e epinefrina para controle da dor. Em seguida, cubra a incisão com um adesivo cirúrgico estéril para a pele, interrompa o anestésico e deixe o leitão acordar. Foram estudados 40 leitões machos.
Entre os grupos controle e experimental, não houve diferença significativa em relação à idade ou peso. Todos foram monitorados exaustivamente durante o procedimento e todos o toleraram bem. Os valores laboratoriais médios durante a experimentação no grupo isoflurano ilustram a consistência interna e a reprodutibilidade do procedimento.
A consistência foi observada em um período de dois anos com os dados agrupados de diferentes operadores. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como usar um modelo de leitão translacional fisiologicamente apropriado para responder a quase todas as perguntas de pesquisa pediátrica pré-clínica. Não se esqueça de que trabalhar com agentes anestésicos pode ser perigoso e precauções como a eliminação apropriada de gases anestésicos devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.
Este estudo investiga os efeitos dos anestésicos no cérebro neonatal utilizando um modelo de leitão clinicamente relevante. A pesquisa tem como objetivo compreender a neurotoxicidade induzida por anestesia durante o desenvolvimento e suas implicações para a anestesia pediátrica.
O modelo de leitão fornece um sistema translacionalmente relevante para avaliar a neurotoxicidade induzida por anestésicos no desenvolvimento, abordando uma lacuna crítica na avaliação pré-clínica da segurança pediátrica. Ao manter a homeostase fisiológica durante toda a experimentação, o modelo permite uma investigação mecanicista confiável dos efeitos dos anestésicos no cérebro em desenvolvimento. Isso apoia a redução preditiva de riscos na fase inicial de descoberta, esclarecendo as vias biológicas associadas aos resultados neurodesenvolvimentais e orientando decisões de avançar ou não avançar nos pipelines de compostos ativos no sistema nervoso central.
O método integra-se aos fluxos de trabalho de descoberta inicial ao permitir testes de hipóteses de compostos anestésicos em um modelo neonatal fisiologicamente estável, apoiando diretamente a identificação de compostos líderes por meio da redução de riscos mecanicistas.