Name: Isolamento de mitocôndrias intactas de Músculo Esquelético por centrifugação diferencial para medições Respirometria de alta resolução (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 25 s
Description: Aprenda a isolar mitocôndrias intactas de músculo esquelético por centrifugação diferencial e medir as taxas respiratórias dos complexos I, II e IV usando respirometria de alta resolução.

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Este estudo foi apoiado pela Swiss National Science Foundation (Grant 32003B_127619).

A biópsia do músculo quadriceps é retirado de um porco anestesiado, a partir do qual as mitocôndrias são isoladas por centrifugação diferencial. O porco é usado depois para uma outra experiência. O estudo é realizado de acordo com os Institutos Nacionais de Saúde diretrizes para o cuidado e uso de animais de laboratório e com a aprovação do Comitê de Cuidados Animal do cantão Berna, Suíça. 1. A homogeneização músculo esquelético e mitocondrial Isolamento <ol><li> Excise 5-10 espécime g músculo quadríceps de um porco anestesiado. No presente ensaio, utilizam porcina músculo esquelético. Este protocolo pode também ser utilizada para isolar as mitocôndrias a partir de outras espécies (por exemplo, ratazanas, ratos, humanos, etc.). NOTA: Este passo é realizado por um médico especialista com experiência em cirurgia. <ol><li> sedar porcos com cetamina intramuscular (20 mg / kg) e xilazina (2 mg / kg), antes da anestesia é induzida com intramidazolam venoso (0,5 mg / kg, mais atropina 0,02 mg / kg). Manter a anestesia com infusões contínuas intravenosas de propofol (4-8 mg / kg por hora) e fentanilo (30 ug / kg por hora) durante a cirurgia. </li></ol></li><li> Mergulhar imediatamente a amostra de tecido em um copo contendo 20 ml de tampão de isolamento arrefecido em gelo mitocondrial (Tabela 1). NOTA: Os tampões utilizados durante a homogeneização e centrifugação deve ser frio e têm um pH fisiológico relevante com uma força iónica e osmótica compatível com citosol. </li><li> Pesa-se a amostra de tecido no béquer tarado numa balança analítica. Tarar a balança com o copo contendo 20 ml de tampão de isolamento. </li><li> Colocar o copo em um balde de gelo. Observação: executar todos os próximos passos para o processo de homogeneização a uma temperatura de balde de gelo e manter todos os buffers no balde de gelo. </li><li> Picar o músculo esquelético no copo (manter em gelo) em pequenos pedaços de 1-2 mm para 3-4 min usando sciss finaRUP. </li><li> Lavar o tecido moído no copo duas vezes com tampão de isolamento arrefecido em gelo (20 mL de cada passo de lavagem). </li><li> Suspende-se o tecido em 10 volumes do tampão de isolamento por peso de tecido (g), contendo 5 mg de protease / g de tecido. </li><li> Colocar o copo num banho de gelo sobre o agitador magnético e agitou-se durante 10 min. </li><li> Dilui-se a suspensão no recipiente com mais 10 volumes do tampão de isolamento por peso de tecido (g), suplementado com 0,2% (peso / volume) de albumina de soro bovino a desengordurada (BSA). </li><li> Decantar todo o tampão de isolamento completado com 0,2% de BSA e enxaguar o tecido no copo duas vezes com tampão de isolamento arrefecido em gelo suplementado com 0,2% de BSA (20 mL de cada passo de lavagem). </li><li> Ressuspender o tecido em 10 volumes de tampão de isolamento por peso de tecido (g), suplementado com 0,2% de BSA com desengordurada. </li><li> Homogeneizar o tecido com um homogeneizador de vidro semi-automático (mantido em gelo) com um pilão folgada (10 golpes). NOTA: HomogenizÊ O tecido sempre da mesma forma (o mesmo número de acidentes vasculares cerebrais, por exemplo, 10 cursos). Um maior número de acidentes vasculares cerebrais podem danificar e desacoplar as mitocôndrias. De um modo preferido, homogeneizar o tecido utilizando um homogeneizador automatizado. Manualmente (e subjetivamente) amostras de tecido homogeneizado em homogeneizadores de vidro podem produzir diferentes qualidades de mitocôndrias isoladas. </li><li> Centrifugar o tecido homogeneizado a 4 ° C durante 10 min a 10.000 x g. NOTA: Todos os passos de centrifugação são realizados em centrífugas com rotores de ângulo fixo. </li><li> Descartar o sobrenadante utilizando uma pipeta serológica e ressuspender o sedimento em meio de isolamento arrefecido em gelo suplementado com BSA (10 ml / g de tecido). </li><li> Centrifugar a suspensão a 4 ° C durante 10 min a 350 x g. </li><li> Reservamo-nos o sobrenadante utilizando uma pipeta sorológica e descartar o pellet (restos celulares). </li><li> Filtra-se o sobrenadante para uma proveta (mantido em gelo) por meio de duas camadas de gaze (17 fios / cm 2) para remover células debré. </li><li> Centrifugar a suspensão foi filtrada a 4 ° C durante 10 min a 7000 x g. </li><li> Descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento mitocondrial em bruto no tampão de isolamento (5 mL / g de tecido) suplementado com 0,2% (peso / volume) de BSA e centrifugar a suspensão a 4 ° C durante 10 min a 7000 x g. </li><li> Descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento mitocondrial em bruto em tampão de lavagem (Tabela 1). Centrifugar novamente a suspensão a 4 ° C durante 10 min a 7000 x g. </li><li> Descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento mitocondrial em bruto em tampão de lavagem e centrifugar novamente a suspensão a 4 ° C durante 10 min a 7000 x g. </li><li> Descartar o sobrenadante e ressuspender o sedimento mitocondrial em bruto em 1,0 ml de tampão de lavagem. </li><li> Determinar a concentração de proteína da suspensão mitocondrial e manter a suspensão mitocondrial concentrado em gelo. NOTA: A concentração de proteína pode ser medido utilizando qualquer método padrão. </li><li> Somente o interiorpara Respirometria ensaios, ressuspender a suspensão mitocondrial no buffer de respiração para uma concentração final de 0,4 mg de proteína mitocondrial / mL. </li></ol> 2. High-resolution Respirometria <ol><li> Pipetar 2,1 mL de tampão de respiração (Tabela 1) 16 para dentro de uma câmara de oxygraph de alta resolução e agita-se o tampão continuamente usando uma barra de agitação magnética presente na câmara (700 rpm) a 37 ° C durante 1 h até que um sinal de fluxo de oxigénio estável de o sensor de oxigénio é obtido polarográfica. NOTA: eletrodos de oxigênio Polarográfico dentro de cada câmara oxygraph medir a concentração de oxigênio e calcular o consumo de oxigênio (fluxo) dentro de cada câmara. A concentração de oxigénio e as taxas de consumo de oxigênio (de fluxo) são exibidos em tempo real on-line em um computador utilizando o software para aquisição e análise de dados. Além disso, a fim de garantir resultados precisos e fiáveis, oxigénio instrumental correcção de fundo deve serrealizada de acordo com as instruções do fabricante. NOTA: com exactidão 2,1 ml de tampão de respiração é adicionado para dentro da câmara para a calibração de um volume de câmara de final de 2,0 ml depois de fechar as rolhas. </li><li> Executar uma calibração de ar do sensor de oxigénio polarográfico de acordo com os protocolos do fabricante 17. Nota: Durante a calibração do ar, com uma fase de gás presente, a concentração de oxigénio meios irá equilibrar na ordem de 15-20 minutos. Dependendo da temperatura, a pressão barométrica e a solubilidade da concentração dos meios -oxygen pode ser calculada. </li><li> Após a calibração de ar, aspirar o meio da respiração da câmara oxygraph e adicionar 2,1 ml de suspensão mitocondrial isolado (0,4 mg de proteína mitocondrial / mL) do passo 1,24 para uma câmara do oxygraph. NOTA: O volume de tampão respiração depende do instrumento criado e fabricante. Para respirometria de alta resolução, os 2,1 ml de bu respiraçãoffer é adicionado para dentro da câmara para a calibração de um volume de câmara de final de 2,0 ml depois de fechar as rolhas. </li><li> Fechar a câmara de oxygraph por inserção da rolha. </li><li> Agita-se a suspensão mitocondrial continuamente usando uma barra magnética de agitação presente na câmara (700 rpm) a 37 ° C e ficha respiração celular na linha de base para 3-5 min, até que um sinal de fluxo de oxigénio estável é alcançada. NOTA: A concentração de oxigênio e sinal de fluxo de oxigênio são exibidos em tempo real on-line em um computador utilizando o software para aquisição e análise de dados 17. </li><li> Em seguida, injectar substratos e inibidores para a respiração mitocondrial através dos orifícios de injecção de titânio das rolhas, utilizando os seguintes protocolos padrão. </li></ol> 3. Complexo Respiração-I dependente <ol><li> Prepara-se uma câmara de oxygraph contendo o isolado suspensão mitocondrial (0,4 mg / mL) seguindo o procedimento descrito nos passos e 2,1-2,5esperar por um sinal estável. </li><li> Injectar 12,5 mL de 0,8 M malato (5 mM de concentração final) e 10 uL de 2 M de glutamato (10 mM de concentração final) para a câmara de oxygraph contendo suspensão mitocondrial isolado (0,4 mg / mL) através da porta de injecção de titânio da rolha câmara e gravar respiração celular para 3-5 min, até que um sinal de fluxo de oxigénio estável é alcançada. NOTA: Todas as injeções nas seguintes etapas são realizadas através dos portos de injeção de titânio de rolhas usando seringas. </li><li> Injectar 10 mL de 0,05 M de ADP (0,25 mM) para a câmara de oxygraph através da porta de injecção de titânio da rolha câmara e a respiração mitocondrial gravar até que o sinal aumenta o fluxo de oxigénio, em seguida, diminui e estabiliza (3-5 min). NOTA: O planalto da respiração após a adição de ADP indica que a concentração de ADP foi elevada e saturação. Dependendo da quantidade de mitocôndrias utilizados durante a respiração, concentração de ADP deve ser tituladapara um consumo de oxigênio estado 3 estável (respiração máxima). A adição de ADP para a suspensão mitocondrial irá induzir um aumento no consumo de oxigénio e o sinal de fluxo de oxigénio irá aumentar (estado 3 da respiração). Após o ADP é consumido, o sinal de fluxo de oxigénio irá diminuir (estado 4 da respiração). </li></ol> 4. Respiração II-dependente Complexo <ol><li> Prepara-se uma câmara contendo oxygraph isolado suspensão mitocondrial (0,4 mg / mL) seguindo o procedimento descrito nas etapas 2,1-2,5 e esperar por um sinal estável. </li><li> Injectar 2 mL de rotenona 0,2 mM (0,2 uM) &#39;CUIDADO &quot;para dentro da câmara oxygraph através da porta de injecção de titânio da rolha de câmara usando uma seringa e gravar a respiração celular para 3-5 min, até que um sinal de fluxo de oxigénio estável é alcançada. NOTA: rotenona é um veneno perigosa e pode ter um impacto significativo na saúde humana. </li><li> Injectar 20 mL de 1 M de succinato (10 mM) em CH oxygraphâmbar e registro respiração mitocondrial para 3-5 min até que um sinal de fluxo de oxigênio estável seja alcançado. </li><li> Injectar 10 mL de 0,05 M de ADP (0,25 mM) para a câmara de oxygraph através da porta de injecção de titânio da rolha câmara e gravar até que a respiração celular sinal aumenta o fluxo de oxigénio, estabiliza, em seguida, diminui e estabiliza (3-5 min). NOTA: A adição de ADP para a suspensão mitocondrial irá induzir um aumento no consumo de oxigénio e o sinal de fluxo de oxigénio irá aumentar (estado 3 da respiração). Após o ADP é consumido, o sinal de fluxo de oxigénio irá diminuir (estado 4 da respiração). </li></ol> 5. Respiração Complexo-dependentes IV <ol><li> Preparar uma câmara de oxygraph contendo isolado suspensão mitocondrial (0,4 mg / mL) seguindo o procedimento descrito nos passos 2.1 a 2.5 do protocolo e esperar por um sinal estável. </li><li> Em seguida, injectam 2,5 mL de ascorbato 0,8 mM (1 mM). Imediatamente depois injectar 2,5 mL de 0,2H TMPD (0,25 mM) e 10 uL de 0,05 M de ADP (0,25 mM) para dentro da câmara e oxygraph ficha respiração celular até que os sinais de fluxo de oxigénio aumenta e estabiliza (3-5 min). </li><li> Finalmente injectar 10 mL de azida de sódio 1 M (5 mM) &quot;CUIDADO&quot; para dentro da câmara oxygraph e gravar a respiração celular até que as diminuições de sinal de fluxo de oxigénio e estabiliza. NOTA: A azida sódica é um veneno perigoso e pode ter um impacto significativo sobre a saúde humana. </li></ol> 6. citocromo C Teste <ol><li> Preparar uma câmara de oxygraph contendo isolado suspensão mitocondrial (0,4 mg / mL) seguindo o procedimento descrito nos passos 2.1 a 2.5 do protocolo e esperar por um sinal estável. </li><li> Injectar 12,5 mL de 0,8 M malato (5 mM de concentração final) e 10 uL de 2 M de glutamato (10 mM de concentração final) para a câmara de oxygraph contendo suspensão mitocondrial isolado (0,4 mg / mL) através da porta de injecção de titânio da rolha câmarae gravar a respiração celular para 3-5 min, até que um sinal de fluxo de oxigénio estável é alcançada. </li><li> Injectar 10 mL de 0,5 M de ADP (2,5 mM) para a câmara de oxygraph através da porta de injecção de titânio da rolha e câmara de registo respiração mitocondrial até sinal aumenta o fluxo de oxigénio, em seguida, diminui e estabiliza (3-5 min). </li><li> Finalmente, injectar 5 mL de 4 mM de citocromo c (10 pM) para a câmara de oxygraph e gravar a respiração celular durante 5 min, até que um sinal de fluxo de oxigénio estável é alcançada. </li></ol>

<ol><li>Hogeboom, G. H., Schneider, W. C., Pallade, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytochemical+studies+of+mammalian+tissues.+I.+Isolation+of+intact+mitochondria+from+rat+liver%3B+some+biochemical+properties+of+mitochondria+and+submicroscopic+particulate+material%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Cytochemical studies of mammalian tissues. I. Isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material.</a> J. Biol. Chem. 172, 619-635 (1948).</li>
<li>Sims, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+isolation+of+metabolically+active+mitochondria+from+rat+brain+and+subregions+using+Percoll+density+gradient+centrifugation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Rapid isolation of metabolically active mitochondria from rat brain and subregions using Percoll density gradient centrifugation.</a> J. Neurochem. 55 (2), 698-707 (1990).</li>
<li>Hartwig, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+comparison+between+two+classical+and+a+kit-based+method+for+mitochondria+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">A critical comparison between two classical and a kit-based method for mitochondria isolation.</a> Proteomics. 9 (11), 3209-3214 (2009).</li>
<li>Pallotti, F., Lenaz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+subfractionation+of+mitochondria+from+animal+cells+and+tissue+culture+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines.</a> Methods Cell Biol. 65, 1-35 (2001).</li>
<li>Pallotti, F., Lenaz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+subfractionation+of+mitochondria+from+animal+cells+and+tissue+culture+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines.</a> Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).</li>
<li>Niklas, J., Melnyk, A., Yuan, Y., Heinzle, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+permeabilization+for+the+high-throughput+measurement+of+compartmented+enzyme+activities+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Selective permeabilization for the high-throughput measurement of compartmented enzyme activities in mammalian cells.</a> Anal. Biochem. 416 (2), 218-227 (2011).</li>
<li>Kuznetsov, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+mitochondrial+function+in+situ+in+permeabilized+muscle+fibers%2C+tissues+and+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Analysis of mitochondrial function in situ in permeabilized muscle fibers, tissues and cells.</a> Nat. Protoc. 3 (6), 965-976 (2008).</li>
<li>Perry, C. G., Kane, D. A., Lanza, I. R., Neufer, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+assessing+mitochondrial+function+in+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Methods for assessing mitochondrial function in diabetes.</a> Diabetes. 62 (4), 1041-1053 (2013).</li>
<li>Gnaiger, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capacity+of+oxidative+phosphorylation+in+human+skeletal+muscle%3A+new+perspectives+of+mitochondrial+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Biochem.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Capacity of oxidative phosphorylation in human skeletal muscle: new perspectives of mitochondrial physiology.</a> Int. J. Biochem. Cell Biol. 41 (10), 1837-1845 (2009).</li>
<li>Vuda, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+catecholamines+on+hepatic+and+skeletal+muscle+mitochondrial+respiration+after+prolonged+exposure+to+faecal+peritonitis+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Innate+Immun%22%5BJournal%5D)">Effects of catecholamines on hepatic and skeletal muscle mitochondrial respiration after prolonged exposure to faecal peritonitis in pigs.</a> Innate Immun. 18 (2), 217-230 (2012).</li>
<li>Corrêa, T. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Angiotensin+II+in+septic+shock%3A+effects+on+tissue+perfusion%2C+organ+function%2C+and+mitochondrial+respiration+in+a+porcine+model+of+fecal+peritonitis%5BTitle%5D)+AND+%22Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Angiotensin II in septic shock: effects on tissue perfusion, organ function, and mitochondrial respiration in a porcine model of fecal peritonitis.</a> Crit. Care Med. 42 (8), e550-e559 (2014).</li>
<li>Jeger, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose+response+of+endotoxin+on+hepatocyte+and+muscle+mitochondrial+respiration+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Dose response of endotoxin on hepatocyte and muscle mitochondrial respiration in vitro.</a> Biomed Res Int. 2015, 353074(2015).</li>
<li>Nicholls, D. G., Ferguson, S. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNicholls%2C+DG+%22Bioenergetics%22">Bioenergetics</a>. 3, Academic Press. San Diego. (2002).</li>
<li>Chance, B., Williams, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+respiratory+chain+and+oxidative+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Enzymol.+Relat.+Subj.+Biochem%22%5BJournal%5D)">The respiratory chain and oxidative phosphorylation.</a> Adv. Enzymol. Relat. Subj. Biochem. 17, 65-134 (1956).</li>
<li>Brand, M. D., Nicholls, D. G. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3076726/">Assessing mitochondrial dysfunction in cells.</a> Biochem. J. 435 (2), 297-312 (2011).</li>
<li>Gnaiger, E., Méndez, G., Hand, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+phosphorylation+efficiency+and+depression+of+uncoupled+respiration+in+mitochondria+under+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">High phosphorylation efficiency and depression of uncoupled respiration in mitochondria under hypoxia.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 97 (20), 11080-11085 (2000).</li>
<li>Pesta, D., Gnaiger, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+respirometry%3A+OXPHOS+protocols+for+human+cells+and+permeabilized+fibers+from+small+biopsies+of+human+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">High-resolution respirometry: OXPHOS protocols for human cells and permeabilized fibers from small biopsies of human muscle.</a> Methods Mol. Biol. 810, 25-58 (2012).</li>
<li>Picard, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+structure+and+function+are+disrupted+by+standard+isolation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial structure and function are disrupted by standard isolation methods.</a> PLoS One. 6 (3), e18317(2011).</li>
<li>Picard, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+functional+impairment+with+aging+is+exaggerated+in+isolated+mitochondria+compared+to+permeabilized+myofibers%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial functional impairment with aging is exaggerated in isolated mitochondria compared to permeabilized myofibers.</a> Aging Cell. 9 (6), 1032-1046 (2010).</li>
<li>Graham, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+a+crude+mitochondrial+fraction+by+density-gradient+centrifugation%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Cell.+Biol.+Chapter+3%22%5BJournal%5D)">Purification of a crude mitochondrial fraction by density-gradient centrifugation.</a> Curr. Protoc. Cell. Biol. Chapter 3. 3, (2001).</li>
<li>Franko, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+isolation+of+pure+and+functional+mitochondria+from+mouse+tissues+using+automated+tissue+disruption+and+enrichment+with+anti-TOM22+magnetic+beads%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Efficient isolation of pure and functional mitochondria from mouse tissues using automated tissue disruption and enrichment with anti-TOM22 magnetic beads.</a> PLoS One. 8 (12), 382392(2013).</li>
<li>Pecinová, A., Drahota, Z., Nůsková, H., Pecina, P., Houštěk, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+basic+mitochondrial+functions+using+rat+tissue+homogenates%5BTitle%5D)+AND+%22Mitochondrion%22%5BJournal%5D)">Evaluation of basic mitochondrial functions using rat tissue homogenates.</a> Mitochondrion. 11 (5), 722-728 (2011).</li>
<li>Lombardi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterisation+of+oxidative+phosphorylation+in+skeletal+muscle+mitochondria+subpopulations+in+pig%3A+a+study+using+top-down+elasticity+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">Characterisation of oxidative phosphorylation in skeletal muscle mitochondria subpopulations in pig: a study using top-down elasticity analysis.</a> FEBS Lett. 475 (2), 84-88 (2000).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

No presente estudo, nós descrevemos um protocolo para isolar de alta qualidade, intactas e fortemente acoplados mitocôndrias do músculo esquelético através de centrifugação diferencial, que podem ser utilizadas para estudos funcionais tais como ventilometria de alta resolução. Para isolar mitocôndrias intactas e fortemente acoplados, há alguns pontos críticos a serem considerados no presente protocolo. Após a colheita do tecido esquelético, deve ser imediatamente imersas em tampão de isolame...

bioenergética mitocondrial e capacidades respiratórias pode ser estudado, não só em células permeabilizadas ou fibras, mas também em mitocôndrias isoladas. No presente estudo, nós descrevemos um protocolo para isolar mitocôndrias de músculo esquelético intactas utilizando centrifugação diferencial para medições de respirometria de alta resolução. Para isolar mitocôndrias intactas para ventilometria, o tecido é homogeneizado e mitocôndrias são isoladas por um método de centrifugação diferencial convencional. O método de centrifugação diferencial baseia-se centrifugações sequenciais (em uma série de aumentar a velocidade) de homogeneizados de tecido foi introduzido pela primeira vez por Pallade e colegas de trabalho há quase 70 anos 1. O tecido é primeiro picada com uma tesoura e homogeneizada mecanicamente em um homogeneizador de vidro com um pilão folgadas. Em seguida, o homogeneizado é centrifugado a baixa velocidade e o sedimento resultante que contém o tecido intacto, celulardetritos e núcleos é descartado. Em seguida, o sobrenadante é centrifugada várias vezes a alta velocidade e a fracção enriquecida mitocondrial é recolhido. As vantagens do método de centrifugação diferencial para isolar as mitocôndrias são que: i) o método é rápido e mitocôndrias pode ser isolado dentro de 1-1,5 horas (experiências respiratórias deve ser feito tão rápido quanto possível); ii) é barato; e iii) é muito eficiente e as mitocôndrias obtidos por centrifugação diferencial são suficientemente puro para ensaios de respirometria. As desvantagens do método de centrifugação diferencial para isolar mitocôndrias são de que i) mitocôndrias podem ficar danificados e desacoplados durante a homogeneização; ii) a contaminação da mitocôndria com outros componentes celulares (poderia ser resolvido por lavagem adicional com o sedimento mitocondrial passos de centrifugação adicionais); iii) a possibilidade de selecionar diferentes subpopulações mitocondriais, por exemplo, durante centrifugações diferenciais etapas, mitochondria com menor densa pode ser excluída 7; e iv) a envolvente celular está ausente e só a respiração teórica máxima mitocondrial pode ser medido. Outro método para isolar as mitocôndrias para ensaios ventilometria é a densidade do gradiente de centrifugação 2. Nesta técnica, o extracto de tecido é colocado em camadas sobre uma solução de sacarose ou de um gradiente de Percoll (com uma densidade mais elevada na parte inferior do tubo de centrifugação) e centrifugou-se a uma determinada velocidade, fazendo com que as mitocôndrias para ser isolado a partir de outros componentes celulares de acordo com os seus densidades. Este método é frequentemente usado para isolar as mitocôndrias do cérebro com muito pouca contaminação por sinaptossomas. No entanto, as mitocôndrias isoladas de fígado de rato por centrifugação de gradiente de densidade são altamente contaminado com outros organelos celulares 3. Uma das limitações deste método é que o gradiente de sacarose presente no tubo de centrifugação pode romper tãome mitocôndrias (choque osmótico). Dependendo do tipo de tecido; existem alguns fatores importantes a considerar para o isolamento de mitocôndrias intactas por centrifugação diferencial. A primeira necessidade é para homogeneizar tecidos de uma forma suave. tecidos moles, como rim, cérebro e fígado requerem forças mecânicas suaves aplicadas durante a homogeneização. Isto contrasta com os tecidos duros tais como o músculo cardíaco e esquelético que requerem forças mecânicas muito mais fortes. O tecido moído é geralmente tratada com proteinase antes da homogeneização para amaciar o tecido. Todos os tampões usados durante a homogeneização e centrifugação deve ser frio e têm um pH fisiológico relevante com uma força iónica e osmótica compatível com citosol 4, 5. Uma das vantagens de estudar isoladas bioenergética mitocondrial é que membranas plasmáticas celular não precisa ser permealized com detergentes, tais como digitonina ou saponina 4, 6, o que pode comprometer a integridade mitocondrial externa da membrana. Outra vantagem da mitocôndria isolada é a ausência de outros factores citosólicas, que podem interferir com a análise das funções mitocondriais, tais como o consumo de oxigénio. As desvantagens de usar as mitocôndrias isoladas são a possível selecção de determinadas populações mitocondriais durante os passos de centrifugação, os danos para a mitocôndria durante a homogeneização, e o requisito de grandes quantidades de amostras biológicas a fim de obter um bom rendimento de mitocôndrias isoladas 7, 8. Após o procedimento de isolamento, as taxas respiratórias de complexos mitocondriais I-, II- e IV-dependentes (estados 2, 3 e 4) são determinados utilizando-alta resolução respirometria. Para complexo impulsionado-I respiração, glutamatoe malato são adicionados seguindo-se adenosina difosfato (ADP). Para complexo respiração impulsionado-II, succinato é adicionado, seguido pela ADP. Para complexo impulsionado-IV respiração, ascorbato e tetramethylphenylendiamine (TMPD) são adicionados, seguidos pela ADP 9, 10, 11, 12. Estado 2 refere-se ao consumo de oxigénio, na presença de substratos sozinho. Estado 3 se refere ao consumo de oxigénio, na presença de substratos e ADP. Estado 4 refere-se ao consumo de oxigênio após a depleção ADP. A relação de controle respiratório (RCR) é um índice de acoplamento da produção de ATP consumo de oxigênio e é calculado como a relação entre o estado 3 e 4 estado 13, 15. Em resumo, nós descrevemos um protocolo para isolar mitocôndrias musculares esqueléticas e funcionais intactos por centrifugação diferencial e utilizá-los mitochon isoladodria para estudos funcionais e bioenergéticos como respirometria de alta resolução.

<table><tbody><tr><td>ADP</td><td>Sigma</td><td>A 4386</td><td></td></tr><tr><td>Antimicina química A</td><td>Sigma</td><td>A 8674</td><td>Química, dissolver em etanol</td></tr><tr><td>Ascorbato</td><td>Merck</td><td>1.00127</td><td>ATP químico</td></tr><tr><td></td><td>Sigma</td><td>A 7699</td><td>Química</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma</td><td>A 6003</td><td>Química</td></tr><tr><td>EGTA</td><td>fluka</td><td>3779</td><td>Química</td></tr><tr><td>Glutamato</td><td>Sigma,</td> <td>G 1626</td><td>Hepes Químico</td></tr><tr><td></td><td>Sigma</td><td>H 7523</td><td>Químico</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Merck</td><td>1.04936</td><td>Químico</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Merck</td><td>1.04873</td><td>Químico</td></tr><tr><td>K-lactobionato</td><td>Sigma</td><td>L 2398</td><td>Químico</td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma</td><td>M 9272</td><td></td></tr><tr><td>Ácido sulfônico morfolinopano químico (MOPS)</td> <td>Merck</td><td>1.06129</td><td>Chemical</td></tr><tr><td>O2k-Core: Oxygraph-2k&nbsp;</td><td>Instrumentos Oroboros</td><td>10000-02</td><td>Instrumento de respirometria de alta resolução</td></tr><tr><td>Proteinase, bacteriana</td><td>Sigma</td><td>P 8038</td><td>Azida</td></tr> de <tr><td>sódio</td> química <td>Sigma</td><td>S2002</td><td></td></tr><tr><td>Rotenona</td> química <td>Sigma</td><td>R 8875</td><td>Química, dissolver em etanol</td></tr><tr><td>Succinato</td><td>Sigma</td><td>S 2378</td><td>Químico</td></tr><tr><td>Schuett homogen-plus homogeneizador semiautomático&nbsp;</td><td>schuett-biotec GmbH</td><td>3.201 011</td><td>Homogeneizador de tecidos</td></tr><tr><td>Taurina</td><td>Sigma</td><td>T 8691</td><td>Químico</td></tr><tr><td>TMPD</td><td>Sigma</td><td>T 3134</td><td>Químico</td></tr></tbody></table>

isolamento de mitocôndrias intactas de músculo esquelético por centrifugação diferencial para medições respirometria de alta resolução

Isolation of Intact Mitochondria from Skeletal Muscle by Differential Centrifugation for High-resolution Respirometry Measurements

As mitocôndrias estão envolvidas no metabolismo energético celular e usam oxigênio para produzir energia na forma de trifosfato de adenosina (ATP). A centrifugação diferencial em baixa e alta velocidade é comumente usada para isolar mitocôndrias de tecidos e células cultivadas. Frações mitocondriais brutas obtidas por centrifugação diferencial são usadas para medidas de respirometria. A técnica de centrifugação diferencial é baseada na separação de organelas de acordo com seu tamanho e velocidade de sedimentação. O isolamento das mitocôndrias é realizado imediatamente após a coleta do tecido. O tecido é imerso em meio de homogeneização gelado, picado com tesoura e homogeneizado em homogeneizador de vidro com pilão solto. A técnica de centrifugação diferencial é eficiente, rápida e barata e as mitocôndrias obtidas por centrifugação diferencial são puras o suficiente para ensaios de respirometria. Algumas das limitações e desvantagens das mitocôndrias isoladas, baseadas na centrifugação diferencial, são que as mitocôndrias podem ser danificadas durante o procedimento de homogeneização e isolamento e que grandes quantidades de biópsia de tecido ou células cultivadas são necessárias para o isolamento mitocondrial.

Complexo I-dependente respiração Taxas isoladas complexo mitocondrial dependente da I respiratórias (estados 2, 3 e 4) são determinados utilizando respirometria de alta resolução (Figura 1, um diagrama representativo). substratos complexo I mitocondrial, glutamato e malato, são adicionados, seguidos pela adição de ADP. Estado 2 refere-se ao consumo de oxigénio, na presença de só os substratos....

Aqui, uma amostra de músculo quadríceps é retirada de um porco anestesiado e as mitocôndrias são isoladas por centrifugação diferencial. Em seguida, as frequências respiratórias dos complexos I, II e IV da cadeia respiratória mitocondrial são determinadas por meio de respirometria de alta resolução.

Isolamento de mitocôndrias intactas de Músculo Esquelético por centrifugação diferencial para medições Respirometria de alta resolução

Mitochondria are involved in cellular energy metabolism and use oxygen to produce energy in the form of adenosine triphosphate (ATP). Differential ...

O objetivo geral deste procedimento é isolar mitocôndrias do músculo esquelético por centrifugação diferencial e determinar as taxas respiratórias dos complexos I, II e IV da cadeia respiratória mitocondrial. Este método pode ajudar a responder perguntas-chave no campo da bioenergética mitocondrial, como doenças e síndromes associadas à disfunção mitocondrial, por exemplo, diversas doenças neurológicas, sepse e distúrbios relacionados à idade. A principal vantagem desta técnica é a ausência da maioria dos fatores citológicos na preparação mitocondrial isolada, os quais podem interferir na análise das funções mitocondriais. A demonstração do procedimento será realizada por Sandra Nansoz, técnica do meu laboratório.Para iniciar este procedimento, obtenha um béquer com amostras de músculo esquelético conforme descrito no protocolo textual. Coloque o béquer em um recipiente com gelo. Usando tesoura fina, pique o músculo em pedaços de um a dois milímetros de tamanho.Em seguida, lave o tecido picado duas vezes com tampão de isolamento gelado, utilizando 20 mililitros para cada lavagem. Suspenda o tecido lavado em 10 mililitros de tampão de isolamento por grama de tecido e, então, adicione cinco miligramas de protease-G tecidual. Em seguida, coloque o béquer em banho de gelo com um agitador magnético e agite por 10 minutos.Após isso, dilua a suspensão com mais 10 mililitros de tampão de isolamento suplementado com BSA desengordurada a 0,2% por grama de tecido. Em seguida, decante todo o tampão de isolamento do béquer. Lave o tecido duas vezes com tampão de isolamento gelado suplementado com BSA a 0,2%, utilizando 20 mililitros para cada lavagem.Em seguida, re-suspenda o tecido em 10 mililitros de tampão de isolamento suplementado com BSA por grama de tecido. Utilize um homogeneizador de vidro semiautomático com pistilo folgado para homogeneizar o tecido. Em seguida, transfira o homogeneizado para um tubo de centrífuga e centrifugue a 10.000 × g por 10 minutos a quatro graus Celsius.Usando uma pipeta serológica, descarte o sobrenadante. Re-suspenda o pellet com 10 mililitros de meio de isolamento suplementado com BSA frio a 4 °C por grama de tecido. Centrifugue a suspensão a 350 ×g por 10 minutos a 4 °C.Após isso, utilize uma pipeta serológica para reservar o sobrenadante, descartando o precipitado. Filtre o sobrenadante em um béquer mantido em gelo através de duas camadas de gaze. Transfira a suspensão filtrada para um tubo de centrífuga e centrifugue a 7.000 × g durante 10 minutos a quatro graus Celsius.Em seguida, descarte o sobrenatante. Re-suspenda o pellet bruto de mitocôndrias em cinco mililitros de tampão de isolamento suplementado com BSA por grama de tecido. Centrifugue esta suspensão a 7.000 × g durante 10 minutos a quatro graus Celsius.Em seguida, descarte o sobrenadante e re-suspenda o pellet em 20 mililitros de tampão de lavagem. Centrifugue a 7.000 ×g por 10 minutos a quatro graus Celsius. Repita esse processo de re-suspensão e centrifugação mais uma vez.Após isso, descarte o sobrenatante e re-suspenda o pellet em um mililitro de tampão de lavagem. Determine a concentração de proteína utilizando qualquer método padrão. Em seguida, mantenha a suspensão concentrada de mitocôndrias em gelo até o momento de realizar os ensaios de respirometria.Para começar, re-suspenda o concentrado mitocondrial no tampão de respiração até uma concentração final de 0,4 miligramas por mililitro de proteína mitocondrial. Em seguida, aspire o meio de respiração da câmara do oxigrafo calibrada ao ar. Adicione 2,1 mililitros da suspensão mitocondrial isolada.Insira uma rolha para fechar a câmara do oxígrafo. Em seguida, agite continuamente a suspensão mitocondrial a 700 rpm a 37 graus Celsius. Registre a respiração celular na linha de base por três a cinco minutos até que um sinal estável de fluxo de oxigênio seja alcançado.Para iniciar a respiração dependente do complexo I, injete 12,5 microlitros de malato 0,8 molar em uma câmara de oxigrafia preparada com a suspensão mitocondrial isolada através da porta de injeção de titânio da rolha. Em seguida, injete 10 microlitros de glutamato 2 molar. Registre a respiração celular por três a cinco minutos até que um sinal estável de fluxo de oxigênio seja alcançado.Após isso, injete 10 microlitros de ADP 0,05 molar na câmara através do portão de injeção. Registre a respiração celular até que o sinal de fluxo de oxigênio aumente, depois diminua e se estabilize. Para a respiração dependente do complexo II, injete dois microlitros de rotenona 0,2 milimolar na câmara de oxigrafia preparada com suspensão mitocondrial isolada.Registre a respiração celular até que um sinal estável de fluxo de oxigênio seja alcançado. Em seguida, injete 20 microlitros de succinato um molar. Registre a respiração celular até que um sinal estável de fluxo de oxigênio seja alcançado.Após isso, injete 10 microlitros de ADP 0,05 molar na câmara através do portão de injeção. Registre a respiração celular até que o sinal de fluxo de oxigênio aumente, depois diminua e se estabilize. Para a respiração dependente do complexo IV, injete 2,5 microlitros de ascorbato 0,8 milimolar em uma câmara de oxigrafia preparada com suspensão mitocondrial isolada.Em seguida, injete imediatamente 2,5 microlitros de TMPD 0,2 molar e 10 microlitros de ADP 0,05 molar. Registre a respiração celular até que um sinal estável de fluxo de oxigênio seja alcançado. Então, injete 10 microlitros de azida de sódio 1 molar.Registre a respiração celular até que o sinal de fluxo de oxigênio diminua e, em seguida, se estabilize. Neste estudo, mitocôndrias intactas são isoladas de músculo esquelético. As taxas respiratórias dependentes do complexo I são então medidas por meio de respirometria de alta resolução.Como pode ser observado, a taxa de respiração mitocondrial aumenta imediatamente após a adição de ADP. A taxa de respiração diminui após o esgotamento de ADP, atingindo níveis semelhantes aos observados antes da adição de ADP. Isso indica que a razão entre o estado 3 e o estado 4, conhecida como razão de controle respiratório, ou RCR, é alta e que a integridade mitocondrial é bem preservada durante o procedimento de isolamento.As taxas respiratórias dependentes do complexo II são então observadas ao inibir a respiração do complexo I com rotenona e injetar o substrato do complexo II, succinato. Em seguida, é adicionado ADP, resultando em um aumento imediato da respiração. Uma vez que o ADP é esgotado, a respiração diminui para níveis semelhantes aos observados antes da adição de ADP, indicando um alto RCR, o que demonstra que a integridade mitocondrial foi bem preservada durante o isolamento.As taxas de respiração dependentes do complexo IV são observadas pela adição de ascorbato, TMPD e ADP. Em seguida, é adicionado azida de sódio para inibir o complexo IV. A diferença no consumo de oxigênio antes e após a adição de azida de sódio é interpretada como a respiração real do complexo IV. A alta taxa de respiração dependente do complexo IV observada no estado 3 indica que a integridade mitocondrial é bem preservada durante o procedimento de isolamento.Uma vez dominada, essa técnica pode ser realizada em menos de uma hora e meia, se for executada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar-se de calibrar previamente os sensores de oxigênio antes da homogeneização. Após este procedimento, outros métodos, como medições do teor celular de ADP, potencial da membrana mitocondrial e atividade enzimática da ATP sintase como níveis de substrato, podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como se as alterações nas taxas respiratórias são devidas à falta de substrato mitocondrial, potencial de membrana ou atividade enzimática reduzida da ATP sintase.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como isolar mitocôndrias de um músculo esquelético por meio de centrifugação diferencial e como medir as taxas respiratórias dos complexos mitocondriais I, II e IV utilizando respirometria de alta resolução. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área do metabolismo energético mitocondrial explorarem a função energética das mitocôndrias em campos como doenças mitocondriais genéticas, miopatias e lesão por isquemia e reperfusão em mitocôndrias isoladas. Não se esqueça de que o trabalho com antimicina A, rotenona, azida de sódio e FCCP pode ser extremamente perigoso.E precauções, como o uso de luvas e jalecos de laboratório, devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.

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Biology

Biologia

Este protocolo descreve um procedimento para estudar a respiração das mitocôndrias isoladas dos músculos esqueléticos. Este método foi adaptado de...

Isolamento mitocondrial do músculo esquelético

Um método para o isolamento rápido de mitocôndrias a partir de biópsias de tecidos de mamíferos é descrito. Preparações de fígado de rato ou de músculo esquelético foram homogeneizados com um Dissociator tecido comercial e mitocôndrias foram isoladas por meio de filtração através de filtros de diferencial de malha de nylon. Tempo de isolamento mitocondrial é &lt;30 min, em comparação com 60 - 100 min utilizando métodos alternativos.

Rápido isolamento e purificação de mitocôndrias para o transplante pela dissociação do tecido e Filtração Diferencial

Métodos para biópsia de vasto lateral, a preparação de mitocôndrias purificada e profiling respirométrico são descritos. O uso de volume muscular pequeno torna esta técnica adequada para aplicações de pesquisa clínica.

Preparação e Avaliação respirométrico de mitocôndrias isoladas de tecido muscular esquelético Obtido por meio de agulha de biópsia percutânea

Aqui, apresentamos uma modificação de um método relatado anteriormente que permite o isolamento de mitocôndrias purificadas e de alta qualidade de quantidades menores de músculo esquelético de camundongo. Este procedimento resulta em mitocôndrias altamente acopladas que respiram com alta função durante ensaios respiratórios baseados em microplacas.

Isolamento de mitocôndrias de quantidades mínimas de Rato Músculo Esquelético para medições High Throughput Microplate respiratórias

Mitocôndrias são organelas metabólicas chave que exibem um alto nível de plasticidade fenotípica no músculo esquelético. A importação de proteínas do citosol é um caminho crítico para a biogênese organela, essencial para a expansão do ritúlume e a manutenção da função mitocondrial.  Portanto, a importação de proteínas serve como um barômetro da saúde celular.

Medição da Capacidade de Importação de Proteínas das Mitocôndrias Musculares Esqueléticas

Aqui, descrevemos um método detalhado para o isolamento das mitocôndrias do músculo esquelético do camundongo e a análise subsequente da respiração pela Taxa de Consumo de Oxigênio (OCR) usando assins respirométricos à base de microplacas. Este gasoduto pode ser aplicado para estudar os efeitos de múltiplas intervenções ambientais ou genéticas no metabolismo mitocondrial.

Isolamento das Mitocôndrias do Músculo Esquelético do Rato para Ensaios Respirométricos

Os cavalos têm uma excepcional capacidade de exercício aeróbio, tornando o músculo esquelético equino um tecido importante tanto para o estudo da fisiologia do exercício equino quanto para a fisiologia mitocondrial de mamíferos. Este artigo descreve técnicas para a avaliação abrangente da função mitocondrial no músculo esquelético equino.

Fluor-respirometria de alta resolução do músculo esquelético equino

Estudos bioenergéticos e metabolômicos sobre mitocôndrias revelaram seu papel multifacetado em muitas doenças, mas os métodos de isolamento para essas organelas variam. O método detalhado aqui é capaz de purificar mitocôndrias de alta qualidade de várias fontes de tecido. A qualidade é determinada pelas taxas de controle respiratório e outras métricas avaliadas com respirometria de alta resolução.

Isolamento mitocondrial robusto de tecido cardíaco de roedores 

O micro-dissecados técnica de explantes é um método robusto e confiável para isolar proliferativa das células do músculo esquelético juvenil, adulto ou músculos embrionárias como fonte de células-tronco do músculo esquelético. Excepcionalmente, estas células têm sido clonal para produzir derivados do músculo esquelético linhas de células-tronco usado para in vivo o transplante.

Adultas e embrionárias Cultura Microexplant Músculo Esquelético e isolamento de células-tronco musculares

Descrito aqui é um método para medir diretamente faíscas de cálcio, as unidades elementares de Ca 2 + liberação de retículo sarcoplasmático em fibras musculares esqueléticas intactas. Este método utiliza osmótica mediada por estresse disparo de Ca 2 + liberação do receptor rianodina nas fibras musculares isoladas. A dinâmica ea capacidade homeostática de Ca 2 + intracelular de sinalização pode ser empregada para avaliar a função do músculo na saúde e na doença.

Avaliação do cálcio Faíscas intactas fibras musculares esqueléticas

Aprenda a isolar mitocôndrias intactas de músculo esquelético por centrifugação diferencial e medir as taxas respiratórias dos complexos I, II e IV usando respirometria de alta resolução.

Isolamento de mitocôndrias intactas de Músculo Esquelético por centrifugação diferencial para medições Respirometria de alta resolução (Vídeo) | JoVE Journal

Isolamento de mitocôndrias intactas de Músculo Esquelético por centrifugação diferencial para medições Respirometria de alta resolução

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