Name: Comparação de Scale em um sistema de reactores fotossintético de algas Remediação de Águas Residuais (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 40 s
Description: Aprenda a comparar sistemas de reatores fotossintéticos de algas em pequena e grande escala para remediação de efluentes. Este método avalia o crescimento algal e a remoção de nitrogênio em diferentes volumes.

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Os autores gostariam de agradecer ao Aterro Sandtown em Felton, DE para compartilhar seu conhecimento e lixiviados.

Configuração 1. Sistema Nota: Um &quot;sistema emparelhado&quot; refere-se a um tanque do aquário e uma lagoa pista, executado em paralelo. <ol><li> Por um sistema emparelhado, use um tanques de 100 L Aquários (AT), com um misturador sobrecarga para o navio de pequena escala, e um 1000 L lagoa pista (RWP), com um misturador de roda de pás para o navio em grande escala. Os navios utilizados para este sistema são retratados na Figura 1. </li><li> Inocular todos os navios com a mesma cultura de algas. Usar uma elevada densidade de inoculação, resultando numa densidade final de não menos do que 0,1 g / L, uma vez diluída para o volume total no tanque ou lagoa 10. Pode levar uma quantidade considerável de tempo (semanas ou meses) para crescer algas suficiente para esta etapa. </li><li> Use lixiviado de aterro sanitário não tratado como fonte de nutrientes. Use lixiviados tirado de um aterro que aceita resíduos principalmente doméstica e tem baixos níveis de toxinas. análise da composição para o chorume deve estar disponível a partir do aterro. Tele quantidade de lixiviados utilizada em cada tanque ou lagoa pode variar dependendo da força das águas residuais, mas as concentrações finais de amoníaco deve medir 5-75 mg de N-NH3 / L. </li><li> Inicie o tanque aquário de 100 L com um volume de trabalho de 60 L, e o tanque com um canal adutor de 600 L de volume de trabalho. Este estudo foi iniciado com aproximadamente 1 L de lixiviados em 59 L de água no tanque de aquários, e 10 L de lixiviados em 590 L de água no tanque de calha. Aumentar a concentração de lixiviados utilizado ao longo deste estudo. </li></ol><img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/55256/55256fig1.jpg" /> Figura 1. Exemplos de um tanque do aquário e lago pista. Um exemplo de um tanque de aquário (A) e lagoa calha (B) são mostrados. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55256/55256fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol><li> Operar o tanque de aquários e lagoa pista como dos reactores semi-lote com tempos de retenção hidráulica de três semanas. Cada período de amostragem abrange uma semana. </li><li> Tomar uma amostra de 125 mL de cada navio. Este é o início da amostra semanas. As amostras de teste de acordo com o protocolo de análise de amostras nos pontos 3.1-3.3. </li><li> No final da semana, tomar amostras de 125 ml a partir de cada vaso para análise. Após as amostras de fim-de-semana, foram tomadas, esvaziar a totalidade do volume do tanque de aquário para o tanque de calha. <ol><li> Uma vez por semana, bombear todo o volume do tanque do aquário na lagoa pista. </li></ol></li><li> Remover um terço do volume (para um tempo de retenção hidráulica média de 3 semanas) a partir do tanque de calha. Substituir o volume removido com água e chorume não tratado. </li><li> Transferir aproximadamente 60 L a partir do tanque de calha de volta para dentro do tanque de aquário. Isto assegura que o aquário tank e o tanque de calha estão começando com as mesmas condições de nutrientes biológicos e cada semana. </li><li> Tome 125 amostras mL de todos os navios para a análise das condições de partida para a próxima semana. </li></ol> Análise 3. Amostra <ol><li> Teste todo início-da-semana e fim-de-semana amostras para amônia-N, nitrato-N, nitrito-N, e densidade de biomassa. </li><li> Medir a biomassa por sólidos suspensos totais protocolo padrão (TSS), ASTM-D5907, utilizando 0,45 filtros. <ol><li> Em primeiro lugar pesam um papel de filtro e, em seguida, filtrar 20-40 mL de amostra, utilizando um sistema de filtração com vácuo. Seca-se o papel de biomassa / filtro num forno a 105 ° C durante uma hora, ou até que o peso do papel de biomassa / filtro não mais mude. </li><li> Pesar papel biomassa / filtro, e subtrair a massa inicial do filtro de papel. Dividir esta massa pelo volume de filtrado para calcular a densidade de biomassa. Realizados em duplicado 11. </li></ol></li><li> Medir amoníaco,nitrato, nitrito e espectrofotometricamente utilizando um espectrofotómetro. <ol><li> Use 100 ml de amostra no kit método comercial para determinar a concentração de amônia. Consulte o protocolo do fabricante. </li><li> Use 1 ml de amostra no kit método comercial para determinar a concentração de nitrato. Consulte o protocolo do fabricante. </li><li> Use 10 mL da amostra no kit de método comercial para determinar a concentração de nitrito. Consulte o protocolo do fabricante. </li></ol></li><li> Monitorar as condições ambientais (temperatura do ar, radiação solar, velocidade do vento), utilizando uma estação meteorológica comercial, bem como tanque / condições lagoa (temperatura da água, pH, oxigênio dissolvido) utilizando sondas comerciais e registrador de dados. Consulte o protocolo do fabricante. </li></ol> 4. análise estatística dos resultados <ol><li> Determinar se os dados recolhidos é estatisticamente normal. Determinar a normalidade do conjunto de dados usando uma trama QQ 12 </sup&gt;. </li><li> Determinar correlações entre parâmetros usando r de Pearson ou p de Spearman para dados normais e não-normais, respectivamente 13. parâmetros de correlação deve incluir, pelo menos, os seguintes parâmetros: concentração inicial de amoníaco, a concentração de azoto total inicial, a densidade de biomassa inicial, a taxa de remoção de amoníaco, a taxa de remoção total de azoto, a taxa de crescimento da biomassa, e todas as condições ambientais. </li></ol>

<ol><li>Janssen, M., Tramper, J., Mur, L. R., Wijffels, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enclosed+outdoor+photobioreactors%3A+light+regime%2C+photosynthetic+efficiency%2C+scale-up%2C+and+future+prospects%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Enclosed outdoor photobioreactors: light regime, photosynthetic efficiency, scale-up, and future prospects.</a> Biotechnol. Bioeng. 81 (2), 193-210 (2003).</li>
<li>Takors, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scale-up+of+microbial+processes%3A+impacts%2C+tools+and+open+questions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Scale-up of microbial processes: impacts, tools and open questions.</a> J. Biotechnol. 160 (1), 3-9 (2012).</li>
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<li>Liu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pilot-scale+data+provide+enhanced+estimates+of+the+life+cycle+energy+and+emissions+profile+of+algae+biofuels+produced+via+hydrothermal+liquefaction%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresour.+Technol%22%5BJournal%5D)">Pilot-scale data provide enhanced estimates of the life cycle energy and emissions profile of algae biofuels produced via hydrothermal liquefaction.</a> Bioresour. Technol. 148, 163-171 (2013).</li>
<li>Van Den Hende, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+of+industrial+wastewaters+by+microalgal+bacterial+flocs+in+sequencing+batch+reactors%5BTitle%5D)+AND+%22Bioresour.+Technol%22%5BJournal%5D)">Treatment of industrial wastewaters by microalgal bacterial flocs in sequencing batch reactors.</a> Bioresour. Technol. 161, 245-254 (2014).</li>
<li>Rawat, I., Kumar, R. R., Mutanda, T., Bux, F. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0306261912007088">Biodiesel from microalgae: A critical evaluation from laboratory to large scale production.</a> Appl. Energy. 103, 444-467 (2013).</li>
<li>Cloern, J. E. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/article/10.1023/A:1009952125558">The relative importance of light and nutrient limitation of phytoplankton growth: a simple index of coastal ecosystem sensitivity to nutrient enrichment.</a> Aquat Ecol. 33 (1), 3-15 (1999).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

Performance do sistema: Ao longo de um estudo de 8 semanas, a produtividade dos vasos de grande escala pequena e em um sistema foram comparados. Neste estudo de azoto e as taxas de remoção de amónia e as taxas de crescimento de biomassa foram usadas como medidas de produtividade do sistema de tratamento. O sistema foi operado como um reactor de semi-descontínuo, onde cada semana foi operado sob condições discretas. Os resultados representativos representam as primeiras 8 semanas de operação do ...

Tradução de dados em escala de bancada para aplicações de maior escala é um passo fundamental na comercialização de bioprocessos. A eficiência da produção em sistemas de reactores de pequena escala, particularmente aqueles com ênfase no uso de micro-organismos, têm sido mostrados para prever de forma consistente ao longo eficiências que ocorrem em sistemas à escala comercial 1, 2, 3, 4. Desafios também existem na ampliação cultivo fotossintética das algas e cianobactérias da escala de laboratório para sistemas maiores com a finalidade de fabricação de produtos de alto valor, tais como cosméticos e produtos farmacêuticos, para a produção de biocombustíveis, e para o tratamento de águas residuais. A demanda para a produção de biomassa de algas em larga escala está crescendo com a indústria emergente de algas em biocombustíveis, medicamentos / nutracêuticos e alimentos para o gado 5. A metodologia descrita noeste manuscrito tem por objetivo avaliar a influência do aumento da escala de um sistema reactor fotossintética na taxa de crescimento de biomassa e remoção de nutrientes. O sistema aqui apresentado usa algas para remediar chorume de águas residuais, mas pode ser adaptado para uma variedade de aplicações. eficiências de produção de sistemas de grande escala são muitas vezes prevista utilizando experimentos de menor escala; No entanto, vários fatores devem ser considerados para determinar a precisão dessas previsões, como escala foi mostrado para afetar o desempenho de bioprocessos. Por exemplo, Junker (2004) apresentaram resultados de uma comparação de oito reactores de fermentação de diferentes tamanhos, variando de 30 L a 19000 G, que mostrou que a produtividade efectiva em piloto-comerciais ou escalas foi quase sempre menor que os valores previstos utilizando pequeno estudos -scale 4. As desigualdades na dimensão navio, o poder de mistura, tipo de agitação, qualidade nutricional e de transferência de gás foram previstos para ser oprincipais causas para a diminuição da produtividade 4. Do mesmo modo, demonstrou-se em reactores de crescimento de algas que o crescimento da biomassa e produtos da biomassa relacionada são quase sempre reduzidos quando a escala é aumentada 6. Fatores biológicos, físicos e químicos mudam com o tamanho de um reator, com muitos destes fatores que influenciam a atividade microbiana em pequenas escalas de forma diferente do que em escalas maiores 2, 7. Uma vez que a maioria dos sistemas de grande escala para algas, tais como lagoas de calha, existe ao ar livre, um factor biológico a ser considerado é que as espécies microbianas e bacteriófagos pode ser introduzido a partir do ambiente circundante, o qual pode alterar as espécies microbianas presentes e, assim, a função microbiana do sistema. A actividade da comunidade microbiana também será sensível a factores ambientais, como a luz e temperatura. transferências em massa de gases e movimento fluido sãoexemplos de fatores físicos que são influenciadas na escala up de processos microbianos. Alcançar mistura ideal em pequenos reatores é fácil; No entanto, com escala crescente, torna-se um desafio para a engenharia condições ideais de mistura. Em escalas maiores, os reatores são mais propensos a ter zonas mortas, mistura não ideal, e eficiências reduzidas em transferência de massa 2. Desde as algas são organismos fotossintéticos, o crescimento comercial deve levar em conta mudanças na exposição à luz devido a mudanças na profundidade da água e área de superfície quando se aumenta o volume. Alta densidade de biomassa e / ou taxas de transferência de massa baixos podem causar diminuição concentrações de CO 2 e aumento das concentrações de O 2, ambos os quais podem resultar na inibição do crescimento da biomassa 8. Factores químicos em um sistema de crescimento de algas são accionados pela dinâmica do ambiente aquático 2, que é, consequentemente, afectada por alterações nos compostos de tamponamento do pH, tais como o CO dissolvido pH <sub&gt; 2 e carbonato de espécies. Esses fatores são agravados por interações complexas entre os fatores biológicos, físicos e químicos, muitas vezes de forma imprevisível 9. Este estudo apresenta um sistema de reactor emparelhado concebido para regular e comparar as condições de crescimento em vasos de duas escalas diferentes. O protocolo experimental centra-se na quantificação de tratamento de lixiviados e crescimento de algas; No entanto, poderia ser adaptado para monitorizar outras métricas, tais como mudanças na comunidade microbiana ao longo do tempo ou o potencial de sequestro de CO 2 de algas. O protocolo aqui apresentado é concebido para avaliar o efeito de escala no crescimento de algas e a remoção de azoto, em um sistema de tratamento de lixiviados.

<table><tbody><tr><td>Tanque de aquário</td><td></td><td></td><td>Qualquer tanque de aquário de 100+ L com vidro opticamente transparente pode ser usado</td></tr><tr><td>RW 3.5</td><td>MicroBio Engineering</td><td></td><td>Raceway Pond</td></tr><tr><td>Eurostar 100 digital</td><td>IKA</td><td>4238101</td><td>Misturadores suspensos</td></tr><tr><td>Lixiviado</td><td>Sandtown Garrafas</td> de amostragem de aterro <td></td><td></td></tr> sanitário <tr><td></td><td>Nalgene</td><td></td><td>Plástico ou vidro, grau de laboratório, 125-200&nbsp; </td></tr><tr><td>Bombas de Transferência</td> mL Bomba <td></td><td></td><td>tipo jardim com mangueiras de qualidade de água potável será adequada</td></tr><tr><td>Teste de Salicilato AmVer 'N Tube Hach</td><td></td><td>2606945</td><td>Testes de Amônia de Alta Gama</td></tr><tr><td>NitraVer X Conjunto de Reagentes de Nitrogênio - Nitrato&nbsp;</td>Testes <td>de</td><td>Nitrato de Alta Gama</td> <td>2605345 Hach</td></tr><tr><td>NitriVer 2 Almofadas de Pó de Reagente de Nitrito</td><td>Hach</td><td>2107569</td><td>Testes de Nitrito de Alta Gama</td></tr><tr><td>Hach DR2400 Espectrotecímetro</td><td>Hach</td><td></td><td>O DR2400 foi descontinuado, mas qualquer espectrofotômetro da série DR Hach pode ser usado nesta aplicação.&nbsp;</td></tr><tr><td>Filtros de Membrana para Análise Microbiológica EMD</td><td>Millipore</td><td>HAWG047S6</td><td>0.45 &micro; Filtros M</td></tr></tbody></table>

comparação de scale em um sistema de reactores fotossintético de algas remediação de Águas residuais

Comparison of Scale in a Photosynthetic Reactor System for Algal Remediation of Wastewater

Uma metodologia experimental é apresentado para comparar o desempenho de dois reactores de tamanhos diferentes, concebidos para o tratamento de águas residuais. Neste estudo, a remoção de amônia, remoção de nitrogênio e crescimento de algas são comparados ao longo de um período de 8 semanas em conjuntos emparelhados de pequenas (100 L) e grandes (1.000 L) reatores projetados para remediação de algas das águas residuais aterro. Conteúdo das pequenas e grandes reactores de escala foram misturados antes do início de cada intervalo de teste semanal para manter as condições iniciais equivalentes entre as duas escalas. características do sistema, incluindo a área de superfície em relação ao volume, tempo de retenção, a densidade da biomassa, e concentrações de alimentação de águas residuais, pode ser ajustado para igualar melhor as condições que ocorrem em ambas as escalas. Durante o período de 8 semanas, tempo representativo curta, a partir de amoníaco e concentrações totais de azoto variou 3,1-14 mg NH3 -N / L, e 8,1-20,1 mg N / L, respectivamente. O desempenho do sistema de tratamento foi avaliada com base emsua capacidade de remover amônia e nitrogênio total e para a produção de biomassa de algas. A média ± desvio padrão de remoção de amoníaco, a remoção total de azoto e as taxas de crescimento de biomassa foram de 0,95 ± 0,3 mg de N-NH3 / L / dia, 0,89 ± 0,3 mg N / l / dia, e 0,02 ± 0,03 g de biomassa / L / dia, respectivamente. Todos os navios que mostrou uma relação positiva entre a taxa de remoção da concentração de amônia e amônia inicial (R 2 = 0,76). Comparação da eficiência do processo de produção e os valores medidos em reactores de escala diferente pode ser útil para determinar se os dados experimentais escala de laboratório é apropriado para a previsão de valores de produção em escala comercial.

O objetivo deste estudo é comparar o crescimento da biomassa e capacidades de remoção de nutrientes de culturas de algas cultivadas em reatores de pequeno e grande porte. Este estudo utiliza dois sistemas emparelhados, referidos como Sistema 1 e Sistema 2, para duplicar as suas conclusões. Estes resultados representativos são a partir de um período de 8 semanas, de fevereiro a abril de 2016. A primeira lagoa pista foi inoculado com algas inicialmente provenientes de uma lagoa ao ar livre...

Uma metodologia experimental é apresentado para comparar o desempenho de pequena (100 L) e grandes (1.000 L) escala reatores projetados para remediação algas das águas residuais aterro. características do sistema, incluindo a área de superfície em relação ao volume, tempo de retenção, a densidade da biomassa, e concentrações de alimentação de águas residuais, pode ser ajustada com base na aplicação.

Comparação de Scale em um sistema de reactores fotossintético de algas Remediação de Águas Residuais

An experimental methodology is presented to compare the performance of two different sized reactors designed for wastewater treatment. In this study, ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar o efeito da escala sobre o crescimento algal e a remoção de nitrogênio em um sistema de tratamento de lixiviado. Este método pode ajudar a determinar como o aumento da escala de um sistema afetará a eficiência do tratamento. A principal vantagem desta técnica é que ela pode ser adaptada para uma variedade de sistemas microbianos e de tratamento de águas residuais.Para este protocolo, um sistema pareado refere-se a um aquário de 100 litros e uma calha de 1.000 litros operando em paralelo. Inicie com um inóculo de alta densidade, o que pode levar semanas a meses para cultivar quantidade suficiente de algas. Inocule todos os recipientes com o mesmo cultivo de algas, garantindo que a densidade final não seja inferior a 0,1 gramas por litro após a diluição ao volume total no tanque ou calha.O chorume não tratado de aterro sanitário serve como fonte de nutrientes para este sistema. Utilize chorume proveniente de um aterro que receba principalmente resíduos domésticos e que tenha baixos níveis de toxinas. A quantidade de chorume utilizada em cada tanque ou lagoa pode variar dependendo da força da água residuária.Inicie o aquário com um litro de chorume em 59 litros de água, perfazendo um volume útil de 60 litros. Da mesma forma, inicie a lagoa de fluxo com 10 litros de chorume em 590 litros de água, para um volume útil de 600 litros. Semana a semana, opere o aquário e a lagoa de fluxo como reatores semicontínuos, com tempos de retenção hidráulica de três semanas.Monitore as condições ambientais, como temperatura do ar e radiação solar, utilizando uma estação meteorológica comercial. Também monitore as condições do tanque ou lagoa, como temperatura da água, pH e oxigênio dissolvido, utilizando sondas comerciais e um registrador de dados. No início de cada semana, colete uma amostra de 125 mililitros de cada recipiente para análise da densidade de biomassa, bem como de amônia-N, nitrato-N e nitrito-N.Meça a biomassa por meio de um protocolo padrão de sólidos em suspensão total utilizando filtros de 0,45 mícron. Após pesar o papel de filtro, filtre de 20 a 40 mililitros da amostra usando um sistema de filtração a vácuo. Seque a biomassa e o papel de filtro em estufa a 105 graus Celsius por uma hora.Após a secagem, calcule a densidade da biomassa. Em seguida, meça amônia, nitrato e nitrito utilizando um espectrofotômetro e kits comerciais de métodos, de acordo com o protocolo do fabricante. Após uma semana, colete amostras de 125 mililitros de cada recipiente e analise as amostras como anteriormente.Esta é a conclusão da primeira semana. Para preparar o ciclo da próxima semana, bombeie todo o volume do tanque do aquário para a lagoa em canal. Remova 1/3 do volume da lagoa em canal.Substitua o volume removido por água e lixiviado não tratado. Em seguida, transfira aproximadamente 60 litros da lagoa de fluxo contínuo de volta para o aquário. Isso garante que o aquário e a lagoa de fluxo contínuo iniciem semanalmente com as mesmas condições nutricionais e biológicas.Neste estudo, foram utilizados dois sistemas pareados, denominados sistema um e sistema dois, para duplicar os resultados. A taxa de remoção de amônia, a taxa de remoção de nitrogênio total e a taxa de crescimento da biomassa foram utilizadas como métricas para avaliar o sistema de tratamento. As taxas do sistema um e do sistema dois são apresentadas aqui para o período representativo do estudo.Os dados de todos os reatores no período representativo do estudo mostraram que a remoção de amônia aumentou positivamente com a concentração inicial crescente de amônia. Uma vez que o sistema esteja em funcionamento, parâmetros do reator, como densidade de biomassa, tempo entre as misturas, volume de trabalho, tempo de retenção e quantidade de efluente adicionada, podem ser ajustados para testar melhor um sistema personalizado. Em última análise, os resultados deste procedimento podem ser utilizados para subsidiar estudos de viabilidade de processos de tratamento em escala real.Por exemplo, o efeito da escala sobre parâmetros importantes do reator, como taxa de crescimento e remoção de nutrientes, pode ser utilizado para verificar a precisão dos dados de entrada usados para simular processos de produção em escala real, bem como avaliações de ciclo de vida e análises tecnoeconômicas. Esta é uma metodologia versátil que pode ser adaptada para estudar o tratamento de diversos tipos de águas residuais.

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De gases de combustão das usinas é um barato CO 2 fonte para o crescimento de algas. Nós construímos "gás de combustão para cultivo de algas" protótipo sistemas e descreveu como para ampliar o processo de cultivo de algas. Demonstrámos a utilização de um modelo bio-reacção de transferência de massa para simular e conceber o funcionamento óptimo do gás de combustão para o crescimento de Chlorella sp. em algas foto-biorreatores.

Otimizar Configurações de gases de combustão para promover o crescimento de microalgas em fotobiorreatores via simulações de computador

A integração do cultivo de microalgas com gás de combustão industrial acabará por introduzir metais pesados e outros compostos inorgânicos no meio de crescimento. Este estudo apresenta um procedimento utilizado para determinar o destino final e o impacto de metais pesados e contaminantes inorgânicos no crescimento de Nannochloropsis salina cultivada em fotobiorreatores.

Quantificação de Metais Pesados ​​e outros contaminantes inorgânicos sobre a produtividade de Microalgas

Um novo projeto de reator, denominado biorreator de alta densidade (HDBR), é apresentado para o cultivo e estudo de comunidades microbianas de alta densidade. Aqui, o HDBR é aplicado com sucesso em uma configuração de fotobiorreator (PBR) para o estudo do metabolismo do nitrogênio por uma comunidade mista de algas de alta densidade.

Um biorreator Novel de Cultivo de Alta Densidade de diversas comunidades microbianas

Este artigo descreve o processo de montagem e operação de um biorreator fotossintético de bench-scale que pode ser usado, em conjunto com outros métodos, para estimar os parâmetros de crescimento cinético pertinentes. Este sistema monitora continuamente o pH, a luz e a temperatura usando sensores, uma unidade de aquisição e controle de dados e software de aquisição de dados de código aberto.

Construção e configuração de um Bioreactor Fotossintético Algal com Escala de Banco com Monitoramento de Temperatura, Luz e pH para testes de crescimento cinético

Aqui, apresentamos um protocolo para construir laboratório-escala bolha coluna fotobiorreatores e usá-los para a cultura de microalgas. Ele também fornece um método para a determinação da taxa de crescimento da cultura e do conteúdo de lipídios neutros.

Cultivo de microalgas verdes em fotobiorreatores coluna de bolha e um ensaio para lípidos neutros

O cultivo axenic da bancada-escala facilita a caracterização microalgal e a optimização da produtividade antes da escala subseqüente do processo-acima. Os fotobiorreatores fornecem o controle necessário para experimentos microais confiáveis e reprodutíveis e podem ser adaptados para cultivar microalgas com segurança com os gases corrosivos (CO2,SO2,NO2)das emissões de combustão municipal ou industrial.

Cultivo de microalgas e quantificação de biomassa em um fotobiorreator em escala de banco com gases corrosivos de flue

Um protocolo é descrito para utilizar o dióxido de carbono no gás de usina de gás natural para cultivar microalgas em lagoas abertas de pista. A injeção de gás de flue é controlada com um sensor de pH, e o crescimento das microalgas é monitorado com medições em tempo real da densidade óptica.

Acoplamento da captura de carbono de uma usina com lagoas abertas semi-automatizadas para cultivo de microalgas

Esta publicação descreve o desenho de fotobioreatores laboratoriais (PBRs) com regimes de luz personalizáveis. O crescimento de cianobactérias ou microalgas, usando bicarbonato como fonte de carbono, é monitorado continuamente pela medição da produção volumétrica de oxigênio. Esses PBRs facilitam comparações rápidas e replicadas de crescimento laboratorial com pouca intervenção do usuário durante os experimentos.

Operação de Fotobioreatores laboratoriais com Medições de Crescimento Online e Regimes de Luz Personalizáveis

A poluição do ar impacta a qualidade de vida de todos os organismos. Aqui, descrevemos o uso da biotecnologia de microalgas para o tratamento de biogás (remoção simultânea de dióxido de carbono e sulfeto de hidrogênio) e a produção de biometano através de lagoas de algas semi-industriais abertas de alta taxa e subsequente análise da eficiência do tratamento, pH, oxigênio dissolvido e crescimento de microalgas.

Purificação de Biogás através do Uso de um Sistema Microalga-Bacteriano em Lagoas Semi-Industriais de Algas de Alta Taxa

O biocarvão é um material rico em carbono utilizado como correção do solo com a capacidade de sequestrar carbono de forma sustentável, melhorar a qualidade do substrato e contaminantes sorb. Este protocolo descreve os 17 métodos analíticos utilizados para a caracterização do biochar, que é exigido antes da implementação em larga escala destas alterações no ambiente.

Física, química e biológica dos Seis biochars produzido para a remediação de áreas contaminadas

Aprenda a comparar sistemas de reatores fotossintéticos de algas em pequena e grande escala para remediação de efluentes. Este método avalia o crescimento algal e a remoção de nitrogênio em diferentes volumes.

Comparação de Scale em um sistema de reactores fotossintético de algas Remediação de Águas Residuais

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