Name: Coleta de sêmen aviária por esfregaços massagem e isolamento do DNA de esperma (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-02-05T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 40 s
Description: Aprenda a coletar sêmen de aves por massagem cloacal e isolar DNA de alta qualidade usando kit comercial modificado. Este método não invasivo é ideal para estudos de ecologia evolutiva e epigenética em campo ou laboratório.

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Agradecemos Jose Noguera assistência precoce com massagem cloacal, e Jeffrey Kittilson para laboratório de apoio. Este trabalho foi apoiado por um prêmio de ND EPSCoR FAR0022429 a BJH. Custos de publicação foram generosamente apoiados pelo departamento de ciências biológicas da NDSU.

Este protocolo envolve assuntos animais vertebrados e foi aprovado pelo Comitê de uso (IACUC) da North Dakota State University e institucional Cuidado Animal.
1. coleta de sêmen de uma ave passeriforme da família usando esfregaços massagem
Nota: Esfregaços massagem é uma técnica de coleção de sêmen eficaz sobre aves reprodutivamente ativas somente, mas pode ser realizada com sucesso fora da época de reprodução em situações apropriadas em cativeiro. Atividade reprodutiva deve ser determinada para a espécie-alvo antes de utilizar a massagem esfregaços. Esta técnica pode ser usada em aves selvagens após captura ou em pássaros mantidos em cativeiro.
<ol><li>Começando com um pássaro masculino, (em condição de reprodução) aderência do bander na mão não dominante, transferir o pássaro para a mão dominante com seu lado ventral, tocando a palma (Figura 1).<ol>
<li>Certifique-se de que a cabeça da ave é o mais próximo a borda lateral da palma da mão. Seguro levemente a cabeça e o corpo usando o mindinho, anel e os dedos do meio. Isso deixa do pássaro respiradouro e cauda exposta.</li>
		<li>Deixe as pernas do pássaro solto ou levemente comedido, usando a palma da mão.</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55324/55324fig1.jpg"> Figura 1 : Aperto para massagem esfregaços. O pássaro está seguro levemente na mão dominante, com seu lado ventral, tocando a palma e cabeça garantidas pelo dedo mindinho. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55324/55324fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<ol start="2"><li>Coloque o dominante o dedo indicador e o polegar de cada lado da extremidade superior da cloaca e levemente belisca os dedos juntos, aplicando uma pressão muito leve em direção a cauda ( Figura 2). A cloaca será evert, expondo a mucosa cloacal (interior cor de rosa). Nota: Se o pássaro não está atualmente produzindo sêmen, a protuberância cloacal pode ser pequena e a cloaca é difícil de evert. Com a experiência, é fácil diferenciar entre as cloacas de machos reprodutivamente ativas e inativas5,11.</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55324/55324fig2.jpg"> Figura 2 : Dedo posição e protuberância cloacal. Evert cloaca aplicando pressão ligeira à extremidade superior (A). Em um ativo reprodutivamente masculino ave passeriforme da família, a protuberância cloacal é óbvia e empresa (B). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55324/55324fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<ol start="3"><li>Com a mão não dominante, coloque a almofada do dedo no lado dorsal da base da cauda para estabilizar a mão e em seguida, coloque a ponta do polegar logo abaixo da cloaca de sempre. Nota: Uma miniatura curta e Lisa é vantajosa para a realização de massagem cloacal e protege o pássaro de lesão acidental.</li>
	<li>Mova o polegar não-dominante cranialmente e profunda em um movimento repetitivo com média pressão, ficando abaixo da cloaca. Continue até o pássaro ejacula. Dependendo do indivíduo, isto normalmente leva entre 1 e várias dezenas de cursos.</li>
	<li>Assim que o pássaro ejacula, colete o sêmen em um tubo de Microhematócrito. Repita a massagem esfregaços para obter múltiplos ejacula. Nota: Passeriformes sémen é castanho claro e normalmente tem uma consistência um pouco grossa. Substâncias brancas ou escuras, expelidas da cloaca não estão sémen e podem contaminar a amostra de sêmen. A aparência de uma pequena quantidade de sangue na cloaca ou misturado com o sêmen é geralmente causado por muita pressão durante a massagem.</li>
	<li>Para a extração de DNA, coloca o sêmen em um tubo de microcentrifugadora com 20 µ l de 1X PBS (pH 7,4). Nota: Sêmen armazenado em PBS 1x não é apropriado para a inseminação artificial, mas pode ser usado para a extração de DNA em uma data posterior quando armazenado a-80 ° C. O PBS pode ser temperatura ambiente ou refrigerados, mas deve estar no estado líquido, quando a amostra de sêmen é depositada.<ol>
<li>Confirme a presença de espermatozoides na amostra exibindo uma pequena quantidade da amostra diluída sob um microscópio composto (Figura 3).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Armazene o sêmen diluído a-80 ° C até a extração.</li>
</ol>2. extração de DNA do sêmen do pássaro
Nota: Este protocolo foi testado com vários jogos comerciais de extração de DNA, mas só faz sucesso quando usado com um DNA kit12. Etapas que são modificadas desde o protocolo do kit são indicadas por *.
<ol><li>Preparar uma solução 1m de ditiotreitol (DTT) em água e misture usando um vortex.*<ol>
<li>Alíquota da solução de TDT e armazená-lo a-20 ° C até imediatamente antes da utilização. Cada amostra a ser extraído requer 10 µ l de solução de TDT * 1m</li>
	</ol>
</li>
	<li>Preparar um buffer contendo 20 mM Tris-Cl, pH 8.0; 20 mM EDTA; 200 mM NaCL; e 4% SDS. Cada amostra a ser extraído exige 90 µ l desta buffer.*<ol>
<li>Armazene o buffer em temperatura ambiente. Se ele se precipitou, aquecê-lo a 56 ° C, para dissolve.*</li>
	</ol>
</li>
	<li>Pré-aqueça uma incubadora contendo um balancim ou agitador a 65 ° c</li>
	<li>Imediatamente antes de iniciar a extração, misture a solução de TDT 10 µ l com 90 µ l de buffer preparado no passo 2.2 para cada amostra a ser extraído, por exemplo, 900 buffer de µ l além de 100 µ l TDT solução se extraindo 10 amostras. Esta mistura será chamada TDT-buffer.*</li>
	<li>Adicionar 70 µ l 1X PBS para a amostra de sêmen diluído inteiro e misture bem, usando um vortex.*</li>
	<li>Adicione 100 µ l tampão-DTT e solução de proteinase K 10 µ l de amostra. Vórtex por 20 segundos, então incubar na incubadora pré-aquecido por 1 hora em um balancim ou shaker.*</li>
	<li>Adicionar 200 µ l de buffer AL e 200 µ l EtOH fresco (100%) e vórtice para encerrar 20</li>
	<li>Transferir a amostra inteira para uma coluna de rotação e centrifugar 1 minuto em 6.000 x. g. descarte o tubo de coleta.</li>
	<li>Coloque a coluna em um tubo novo e juntar 500 µ l preparado tampão AW1. Centrifugar 1 minuto em 6.000 x. g. descarte o tubo de coleta.</li>
	<li>Coloque a coluna em um tubo novo e juntar 500 µ l preparado tampão AW2. Centrífuga para 1 minuto em 6.000 g. x descartar o escoamento e coloque a coluna de volta no tubo.</li>
	<li>Centrifugar a 3 minutos a 20.000 x g. descarte o tubo de coleta e colocar a coluna em um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL.</li>
	<li>Pipeta 35 µ l de AE buffer directamente sobre a membrana da coluna e incubar a temperatura ambiente por 5 minutes.*</li>
	<li>Centrifugar 1 minuto a 14.000 x. g. descartar a coluna de rotação e armazenar amostras extraídas a-80 ° C.</li>
</ol>

<ol><li>Briskie, J. V., Montgomerie, R. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1349186">Sperm size and sperm competition in birds.</a> Proc. R. Soc. B. 247, 89-95 (1992).</li>
<li>Monaghan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telomeres+and+life+histories%3A+the+long+and+the+short+of+it%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+N.Y.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Telomeres and life histories: the long and the short of it.</a> Ann. N.Y. Acad. Sci. 1206, 130-142 (2010).</li>
<li>Carrell, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epigenetics+of+the+male+gamete%5BTitle%5D)+AND+%22Fertility+and+Sterility%22%5BJournal%5D)">Epigenetics of the male gamete.</a> Fertility and Sterility. 97 (2), 267-274 (2012).</li>
<li>Burrows, W. H., Quinn, J. P. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/ps/article-abstract/16/1/19/1564432?redirectedFrom=fulltext">The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey.</a> Poultry Science. 16 (1), 19-24 (1937).</li>
<li>Wolfson, A. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/4510381?seq=1#page_scan_tab_contents">The cloacal protuberance: a means for determining breeding condition in live male birds.</a> Bird-Banding. 23 (4), 159-165 (1952).</li>
<li>Kast, T. L., Ketterson, E. D., Nolan, V. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/4089416?seq=1#page_scan_tab_contents">Variation in ejaculate quality in dark-eyed juncos according to season, stage of reproduction, and testosterone treatment.</a> The Auk. 115 (3), 684-693 (1998).</li>
<li>Helfenstein, F., Podevin, M., Richner, H. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s00265-009-0871-x">Sperm morphology, swimming velocity, and longevity in the house sparrow Passer domesticus.</a> Behav. Ecol. Sociobiol. 64, 557-565 (2010).</li>
<li>Purchase, C. F., Earle, P. T. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/jai.12070/abstract">Modifications to the IMAGEJ computer assisted sperm analysis plugin greatly improve efficiency and fundamentally alter the scope of attainable data.</a> J. Appl. Icthyol. 28, 1013-1016 (2012).</li>
<li>Gill, P., Jeffreys, A. J., Werrett, D. J. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/articles/318577a0">Forensic application of DNA 'fingerprints'.</a> Nature. 318 (12), 577-579 (1985).</li>
<li>Criscuolo, F., et al. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1600-048X.2008.04623.x/abstract">Real-time quantitative PCR assay for measurement of avian telomeres.</a> J. Avian Biol. 40, 342-347 (2009).</li>
<li>Lovette, I. J., Fitzpatrick, J. W. <a target="_blank" href="http://www.birds.cornell.edu/homestudy/handbook-of-bird-biology">Cornell Lab of Ornithology Handbook of Bird Biology, 3rd Edition</a>. , Wiley-Blackwell, Princeton University Press. ISBN 9781118291047 (2016).</li>
<li><a target="_blank" href="https://www.scribd.com/document/54238221/QIAamp-DNA-Micro-Handbook">QIAamp DNA Micro Handbook</a>. , Third edition (2014).</li>
<li>Carter, K. L., Robertson, B. C., Kempenaers, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+differential+DNA+extraction+method+for+sperm+on+the+perivitelline+membrane+of+avian+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ecol%22%5BJournal%5D)">A differential DNA extraction method for sperm on the perivitelline membrane of avian eggs.</a> Mol. Ecol. 9, 2149-2154 (2000).</li>
<li>Birkhead, T. R., Buchanan, K. L., Devoogd, T. J., Pellatt, E. J., Catchpole, C. K. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0003347296904236">Song, sperm quality and testes asymmetry in the sedge warbler.</a> Anim. Behav. 53, 965-971 (1997).</li>
<li>Lüpold, S., Calhim, S., Immler, S., Birkhead, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sperm+morphology+and+sperm+velocity+in+passerine+birds%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+R.+Soc.+B%22%5BJournal%5D)">Sperm morphology and sperm velocity in passerine birds.</a> Proc. R. Soc. B. 276, 1175-1181 (2009).</li>
<li>Samour, J. H., Smith, C. A., Moore, H. D., Markham, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Semen+collection+and+spermatozoa+characteristics+in+budgerigars+%28Melopsittacus+undulates%29%5BTitle%5D)+AND+%22Vet.+Rec%22%5BJournal%5D)">Semen collection and spermatozoa characteristics in budgerigars (Melopsittacus undulates).</a> Vet. Rec. 118, 397-399 (1986).</li>
<li>Stelzer, G., Crosta, L., Bürkle, M., Krautwalt-Junghanns, M. E. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/232663050_Attempted_Semen_Collection_Using_the_Massage_Technique_and_Semen_Analysis_in_Various_Psittacine_Species">Attempted semen collection using the massage technique and semen analysis in various psittacine species.</a> J. Avian Med. Surg. 19 (1), 7-13 (2005).</li>
</ol>

Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

Nós descrevemos um método simples e confiável para coleta de sêmen de aves pequenas e médias em condição reprodutivamente ativa e extrair DNA de esperma aviária.
O protocolo de extração de DNA de sémen descrito é modificado a partir de um kit para manter a simplicidade, mas foi refinado para uso em sêmen aviária. Espermatozoides são resistentes à Lise por extração padrão produtos químicos9,13, e amostras de sêmen coletadas de passerifo...

Pássaros são temas ideais para estudos que envolvem a qualidade do esperma e competição1, esperma telômero dinâmica2, epigenetics3e tópicos semelhantes, como são amplamente utilizados em pesquisas biológicas e esperma pode ser degustadas facilmente usando esfregaços massagem. Esfregaços massagem é uma técnica manual suave, não-invasivo para a coleta de sêmen de aves4,5,6. Amostras repetidas podem ser obtidas facilmente e sem ferramentas especiais são necessárias, tornando simples para executar no campo ou no laboratório. Apesar de esfregaços massagem tem sido usado por décadas, é difícil de aprender com os escritos descrições disponíveis. Esta publicação destina-se a reduzir o tempo e incerteza envolvidos em aprender massagem esfregaços.
Sêmen coletado de aves usando esfregaços massagem pode ser usado imediatamente para avaliação de motilidade4,7 ou inseminação artificial8, ou congelado para outros usos, tais como de imagem avançada e extração de DNA. Amostras de sêmen de aves da ordem Passeriformes são pequenas mas contenham esperma densamente. DNA é extraído usando um kit de extração comercial para manter a simplicidade, com modificações para superar as funções de protecção especializadas de esperma9. Após a extração, telômeros de esperma podem ser medidos usando qPCR10.

<table><tbody><tr><td>Tubos capilares de microhematócrito</td><td>Fisherbrand</td><td>22-362566</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado. Tubos menores podem ser mais eficazes para a coleta de pequenas amostras de sêmen, como de aves passeriformes muito pequenas, como o pardal.</td></tr><tr><td>Tubos de microcentrífuga</td><td>Qualquer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Qualquer</td><td></td><td>Usado para armazenar amostras de sêmen antes da extração de DNA.</td></tr><tr><td>DL-Dithiothreitol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0632</td><td></td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10708976001</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado.</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1233508</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado.</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>793566</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado.</td></tr><tr><td>SDS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1614363</td><td>Qualquer fornecedor pode ser usado.</td></tr><tr><td>QIAamp DNA micro kit</td><td>Qiagen</td><td>56304</td><td>Qiagen QIAamp DNA micro kit é recomendado especificamente. Este protocolo de extração de DNA foi tentado com outros kits comerciais, mas com pouco sucesso. As razões para isso são desconhecidas para nós.</td></tr></tbody></table>

coleta de sêmen aviária por esfregaços massagem e isolamento do dna de esperma

Avian Semen Collection by Cloacal Massage and Isolation of DNA from Sperm

Colheita de sémen pode ser útil para uma vasta gama de aplicações, incluindo estudos que envolvem a qualidade do esperma, esperma telômero dinâmica e epigenética. Pássaros são assuntos amplamente utilizados na investigação biológica e são ideais para estudos que envolvam amostras repetidas de esperma. No entanto, alguns recursos estão atualmente disponíveis para aqueles que desejam aprender a coletar e extrair DNA de esperma aviária. Aqui descrevemos esfregaços massagem, uma técnica manual suave, não-invasivo para a coleta de esperma aviária. Embora esta técnica é estabelecida na literatura, pode ser difícil de aprender com as descrições disponíveis. Nós também fornecemos informações para extrair DNA de sémen aviária usando um kit de extração comercial com modificações. Esfregaços massagem pode ser usada facilmente em qualquer pequeno para médio porte masculino ave condição reprodutiva. Após a coleta, o sêmen pode ser usado imediatamente para ensaios de motilidade ou congelado para extração de DNA, seguindo o protocolo descrito neste documento. Este protocolo de extração foi refinado por esperma aviária e tem sido utilizado com sucesso em amostras coletadas de diversas espécies de passeriformes (Passer domesticus, Spizella passerina, Haemorhous mexicanuse Turdus migratorius ) e um columbid (Columba livia).

Massagem de esfregaços e DNA extração usando que o protocolo descrito foi realizado em várias espécies de passeriformes e um columbid (tabela 1). A presença de espermatozoides em amostras de sêmen recolhidas pela massagem esfregaços foi confirmada pela visualização de uma pequena quantidade das amostras diluídas sob um microscópio composto em ampliação de 400 X (Figura 3). Depois de extrair o DNA de amostras de sêmen coletados de pardais de c...

Este protocolo descreve esfregaços massagem, uma técnica não-invasiva manual para coleta de sêmen de aves e extração de DNA de esperma aviária usando um kit de extração comercial com modificações.

Coleta de sêmen aviária por esfregaços massagem e isolamento do DNA de esperma

Collection of semen may be useful for a wide range of applications including studies involving sperm quality, sperm telomere dynamics, and epigenetics. ...

O objetivo geral deste procedimento é coletar sêmen de aves machos e isolar DNA das amostras de sêmen. Este método pode ser usado para responder perguntas fundamentais em ecologia comportamental e evolutiva relacionadas à competição espermática e à herança epigenética. A principal vantagem desta técnica é sua facilidade de uso.A massagem cloacal pode ser realizada rapidamente em campo ou no laboratório, e o método de extração de DNA utiliza um kit comercialmente disponível com modificações. Esta técnica pode ser usada em aves silvestres ou cativas durante a estação reprodutiva, e em certas situações de cativeiro pode ser eficaz durante todo o ano. Segure o macho reprodutivamente ativo com o aperto de anilhador na mão não dominante.Em seguida, transfira-o para a mão dominante com o lado ventral em contato com a palma da mão e com a cabeça na borda lateral da palma. Agora, segure levemente a cabeça e o corpo usando o dedo mínimo, o anelar e o médio. A cloaca e a cauda do pássaro estão agora expostas.As pernas podem ser mantidas soltas ou levemente imobilizadas usando a palma da mão. Em seguida, everte-se a cloaca colocando o indicador e o polegar da mão dominante em ambos os lados de sua extremidade superior e fazendo uma leve pressão enquanto se aplica uma pressão suave em direção à cauda. A mucosa cloacal rosa deve aparecer claramente, a menos que a ave não esteja produzindo sêmen.Com experiência, é fácil diferenciar entre as cloacas de machos reprodutivamente ativos e inativos. Para coletar o sêmen, posicione a polpa do dedo indicador da mão não dominante no lado dorsal da base da cauda para garantir estabilidade, e em seguida coloque a ponta do polegar logo abaixo da cloaca evertida. Recomenda-se fortemente uma unha curta e lisa.Agora, mova o polegar profundamente e cranialmente com movimento repetitivo e pressão moderada, permanecendo abaixo da cloaca até que a ave ejacule. Isso pode levar de um único movimento a várias dezenas de movimentos. Assim que a ave ejacular, colete o sêmen viscoso de cor marrom claro em um tubo de micro-hematócrito.Substâncias brancas ou escuras são contaminantes, enquanto qualquer quantidade de sangue indica que foi aplicada pressão excessiva. Se necessário, repita a massagem para obter múltiplos ejaculados. Para extração de DNA, transfira a amostra para um tubo de microcentrífuga com 20 microlitros de PBS.Para confirmar a presença de espermatozoides na amostra, examine uma pequena quantidade da amostra diluída em um microscópio composto com aumento de 400X. Em seguida, armazene as amostras de espermatozoides a -80 graus Celsius até o momento do uso. Este protocolo é uma modificação de um kit comercial.Prepare alíquotas de 10 microlitros de DTT um molar em água, armazenadas a menos 20 graus Celsius. Imediatamente antes de iniciar a extração de DNA, misture uma alíquota de DTT com uma alíquota de cloreto de tris para cada amostra. Em seguida, adicione 70 microlitros de PBS a cada amostra e vortexe as misturas.Em seguida, adicione uma mistura de tampão de DTT e 10 microlitros de solução de proteinase K a cada amostra. Para homogeneizar as amostras, agite-as em vórtex por 20 segundos. Agora, coloque as amostras em um incubador a 65 graus Celsius com agitação, e incube as amostras por uma hora com agitação suave.Após a incubação, adicione 200 microlitros do tampão AL e 200 microlitros de etanol fresco a 100%, e vortexe as amostras por 20 segundos. Em seguida, transfira cada amostra para uma coluna de centrifugação e centrifugue as amostras por um minuto a 6.000 × g. Descarte o tubo de coleta e coloque as colunas em novos tubos.Adicione 500 microlitros do tampão AW1 à coluna e gire as colunas novamente. Descarte novamente o tubo de coleta e posicione as colunas em novos tubos. Agora, adicione 500 microlitros do tampão AW2 e repita o ciclo de centrifugação.Em seguida, descarte o fluxo passante e retorne a coluna de centrifugação para a centrífuga por três minutos de centrifugação, agora a 20.000G. Então, descarte o tubo de coleta e coloque a coluna sobre um tubo de microcentrífuga. Agora, diretamente sobre a membrana da coluna, adicione 35 microlitros do tampão AE e deixe a solução eluir o DNA por cinco minutos à temperatura ambiente.Em seguida, transfira o tampão de eluição com o DNA para o tubo de microcentrífuga utilizando uma centrifugação de 60 segundos. Agora, descarte as colunas e armazene o DNA a menos 80 graus Celsius. Os métodos descritos de massagem cloacal e extração de DNA foram utilizados com sucesso em várias espécies de passeriformes e em uma espécie de columbídeo.Quando um eletroforese em gel do DNA extraído apresenta bandas distintas sem borramento, isso indica um isolamento bem-sucedido de DNA de alta qualidade. Este exemplo é de DNA proveniente de sêmen de pardal-doméstico. Após assistir a este vídeo, você deverá compreender bem como coletar cuidadosamente amostras de sêmen de aves machos reprodutivas utilizando massagem cloacal, e como extrair DNA dessas amostras de sêmen usando um kit de extração.Uma vez dominada, a massagem cloacal pode ser realizada em apenas segundos, se feita corretamente.

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Aqui apresentamos um método simples e eficiente para isolar células germinativas vivas e pós-meiotic de testículos de camundongos adultos. Usando uma baixa citotoxicidade, corante de DNA com proteção violeta e classificação celular ativada por fluorescência, pode-se isolar populações de células espermatogênicas altamente enriquecidas para muitas aplicações a jusante.

Isolamento de células spermatogênicas murinas usando um corante de ligação de DNA permeável celular-permeável violeta

Este protocolo descreve como realizar registros elétricos de espermatozóides de mamíferos em uma configuração de célula inteira, com o objetivo de registrar diretamente a atividade do canal iônico. O método tem sido fundamental na descrição dos perfis eletrofisiológicos de vários canais iônicos do esperma e ajudou a revelar sua identidade e regulação molecular.

Registro de correntes elétricas através da membrana plasmática de espermatozóides de mamíferos

Este protocolo descreve um método para triagem de espermatozoides de alta qualidade com baixo índice de fragmentação de DNA, utilizando características de motilidade espermática e tigmotaxia. O método emprega uma raia de natação horizontal em forma de U, permitindo que espermatozoides de alta qualidade alcancem o lado oposto por meio de gotículas tampão, enquanto espermatozoides mortos, detritos celulares e impurezas são excluídos.

Técnica de natação horizontal em forma de U para preparar espermatozóides de alta qualidade com baixo índice de fragmentação de DNA

Este procedimento visa identificar metabólitos transferidos do espermatozoide para os oócitos durante a fertilização por meio da marcação isotópica estável com glicose 2H2O ou U13C seguida de análise metabolômica. Os touros marcados com deutério são acasalados com mães não marcadas. Os embriões pré-implantação coletados são analisados por espectrometria de massa para separar os metabólitos paternos (deuterados) dos maternos (não deuterados).

Marcação in vivo de isótopos estáveis para identificação por espectrometria de massa de metabólitos paternos transferidos do espermatozoide para o oócito durante a fertilização

Este protocolo apresenta uma técnica simples de microaspiração para isolar células somáticas (SCs) viáveis a partir do sêmen criopreservado de equinos. Diferentemente das abordagens tradicionais, essa técnica evita cultivos in vitro prolongados e supera a contaminação por espermatozoides, permitindo o uso imediato na clonagem de células somáticas.

Uma Técnica Simples de Microaspiração para Isolar Células Somáticas de Sêmen Equino Criopreservado como Doadores Nucleares para Clonagem

Aprenda a coletar sêmen de aves por massagem cloacal e isolar DNA de alta qualidade usando kit comercial modificado. Este método não invasivo é ideal para estudos de ecologia evolutiva e epigenética em campo ou laboratório.

Coleta de sêmen aviária por esfregaços massagem e isolamento do DNA de esperma

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