1 de março de 2017
Este artigo descreve um método para quantificar o comportamento dinâmico de secagem e propriedades mecânicas do estrato córneo através da medição espacialmente resolvida no plano deslocamentos de secagem de amostras circulares de tecido aderidas a um substrato de elastómero. Esta técnica pode ser utilizada para medir a forma como os diferentes tratamentos químicos Após a secagem dos tecidos e propriedades mecânicas.
O objetivo geral deste método é quantificar a rigidez mecânica dinâmica e o acúmulo de tensões durante a secagem em amostras ex vivo do estrato córneo humano, após diferentes tratamentos químicos. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais nas áreas de biomecânica e ciência cosmética, como a forma pela qual a composição do estrato córneo ou o tratamento do tecido cutâneo com produtos de cuidados pessoais pode influenciar suas propriedades mecânicas e comportamento dinâmico de secagem. A principal vantagem desta técnica é que ela oferece uma alternativa mais rápida em comparação com outros métodos de avaliação mecânica, exige significativamente menos tecido cutâneo e proporciona uma secagem fisiologicamente mais relevante, impedindo a evaporação pela face inferior da amostra.
Para preparar lamínulas revestidas com elastômero, primeiro prepare o agente de cura Sylgard 184 com os sólidos da base numa proporção de base para agente de cura de 55 para um, até que fique homogêneo. São necessários seis gramas no total. Em seguida, desgaseifique a solução.
Em seguida, utilize a solução para revestir as lamínulas em um espalhador por centrifugação. Usando uma pipeta de grande orifício, adicione um mililitro da mistura centralmente sobre uma lamínula. Em seguida, realize o revestimento por centrifugação da lamínula a 2.000 rpm por 60 segundos.
Prepare cinco ou seis lamínulas revestidas dessa maneira. Para curar as lamínulas, mantenha-as em uma estufa a 60 graus Celsius por 12 horas. No dia seguinte, meça as espessuras dos filmes de elastômero.
Use uma lâmina de barbear para levantar uma borda da película de elastômero do lamínula. Em seguida, use uma caneta indelével para marcar o lado superior da película de elastômero e para marcar o lamínula tratado abaixo. Agora, utilizando um microscópio invertido, meça a altura Z entre os planos focais das marcas para determinar as espessuras da película.
Siga procedimentos padrão para preparar o tecido da camada córnea (SC). Para preparar as amostras, retire punções de seis milímetros de diâmetro da SC. Nas amostras, faça uma marca no centro da face mais externa utilizando uma caneta indelével. Em seguida, deposite microesferas marcadoras fluorescentes sobre a superfície da camada córnea flutuando as amostras em 15 mililitros de água, contendo cerca de 90 microlitros do concentrado de microesferas.
Utilize agitação suave por 30 minutos e ajuste a concentração de microesferas conforme necessário. Após o tratamento, mergulhe cada amostra em água para montá-la sobre o elastômero. Posicione uma lamínula revestida em um ângulo raso, de 15 a 30 graus, sob a amostra de cristalino (SC), com o elastômero voltado para o lado inferior do SC. Em seguida, levante a lamínula da água com o SC aderido acima, laminando suavemente a amostra de SC sem rugas ou bolhas de ar aprisionadas.
Em seguida, seque as amostras montadas em condições ambientes por cerca de uma hora. Após a secagem, transfira as amostras para uma câmara hermeticamente selada contendo um recipiente com água. Deixe as amostras em equilíbrio com a umidade por 24 horas.
No dia seguinte, monte uma amostra em uma câmara de perfusão para uma sessão prolongada de imageamento. Coloque a câmara de perfusão sobre o substrato e selar as bordas da câmara de perfusão ao elastômero utilizando graxa de vácuo. Em seguida, registre imagens fluorescentes e de luz transmitida com um campo de visão amplo o suficiente para capturar toda a amostra de SC.
Nas próximas 16 horas, capture uma imagem a cada 10 minutos. Em uma capela de exaustão química, carregue uma pequena tampa plástica com um mililitro de silano. Transfira a tampa para um recipiente fechado contendo um coverslip revestido com elastômero, sem contato direto.
Deixe-os incubarem à temperatura ambiente por cinco horas. Enquanto espera, prepare 20 mililitros da solução de microesferas de acordo com o protocolo descrito no texto e, em seguida, despeje-a em uma placa de 10 centímetros. Após cinco horas, posicione lentamente os substratos silanizados com a face do elastômero voltada para baixo na solução de microesferas.
Coloque dois substratos em cada placa e deixe os substratos reagirem com as microesferas por 45 minutos. Posteriormente, utilizando pinças, remova os substratos e enxágue-os em água destilada para remover as microesferas não ligadas. Em seguida, seque-os sob um fluxo suave de ar comprimido e armazene-os em uma caixa selada e opaca.
Utilizando a técnica descrita anteriormente, transfira as amostras de CS para um substrato tratado em um banho-maria. Imediatamente após montar o CS, aplique uma gota de cinco microlitros de solução concentrada de microesferas marcadoras fluorescentes sobre ele. Em seguida, deixe o CS secar por 60 minutos.
Agora, meça a espessura da SC usando o microscópio com uma lente objetiva de 40x em uma câmara de perfusão. Meça a espessura da SC ao longo do tempo, utilizando um acessório de foco remoto para registrar a diferença na altura Z entre as duas camadas de microesferas. Uma camada está na interface com o substrato da SC e a outra está na parte superior da SC. Usando as técnicas descritas, uma amostra de SC foi preparada e revestida com microesferas fluorescentes.
Após 16 horas de secagem, a 25% de umidade relativa, foram medidas as deformações. Devido à simetria circular das amostras, essas deformações foram médias azimutalmente. Durante toda a secagem, as deformações azimutais permanecem pequenas.
Os perfis de deslocamento radial, no entanto, aumentaram monotonicamente do centro para a borda e cresceram em magnitude até que um equilíbrio fosse atingido. Os perfis registrados em intervalos de 30 minutos mostram a evolução temporal dos deslocamentos no plano. A espessura média da camada córnea diminuiu durante a secagem, principalmente nas primeiras duas horas.
A dinâmica da secagem foi então analisada ajustando os perfis de deslocamento a um modelo de contratilidade linear e elástico, utilizando uma abordagem de mínimos quadrados. A partir do modelo, foram extraídos a tensão contrátil de secagem e o módulo elástico. Ambos os parâmetros aumentaram rapidamente nas primeiras duas horas de secagem.
Ao realizar este procedimento, é importante lembrar-se de aderir completamente as amostras ao substrato. Após este procedimento, outros métodos, como a coloração de lipídios, podem ser realizados para responder perguntas adicionais, como a forma pela qual tratamentos cosméticos específicos alteram a composição lipídica do tecido.
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Este artigo descreve um método para quantificar a rigidez mecânica dinâmica e o comportamento de secagem do estrato córneo humano. Ao medir os deslocamentos de secagem no plano de amostras de tecido sobre um substrato de elastômero, a técnica avalia como tratamentos químicos afetam as propriedades do tecido.
Este método permite uma avaliação rápida e fisiologicamente relevante das propriedades mecânicas do estrato córneo em condições de secagem, apoiando a avaliação inicial de formulações cosméticas e de cuidados pessoais. Ao quantificar as alterações dinâmicas na tensão de secagem e no módulo elástico, fornece informações preditivas sobre a função de barreira e a resiliência do tecido, orientando decisões de prosseguimento ou interrupção nos processos de desenvolvimento de produtos. A abordagem de alto rendimento e baixa exigência de tecido aumenta a eficiência do triagem e reduz a dependência de ensaios mecânicos tradicionais.
O método se insere em fluxos de trabalho de descoberta inicial, nos quais o impacto da formulação sobre a biomecânica da pele é avaliado antes da otimização do composto líder, oferecendo uma ponte entre triagem molecular e avaliação funcional do tecido.