Name: Um dispositivo para executar a migração celular / cicatrização de feridas em uma placa de 96 poços (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 46 s
Description: Aprenda a executar ensaios de migração celular em placa de 96 poços usando um feridor mecânico de oito canais. Este método permite quantificar rapidamente os efeitos de tratamentos na cicatrização de feridas de forma econômica.

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Os autores gostariam de agradecer ao Sr. Tam Po Leung, o Sr. Wong Chi Kin e do pessoal técnico da Faculdade Science Workshop, Hong Kong Baptist University, por suas habilidades técnicas e conselhos para tornar o protótipo desta wounder.

1. Introdução às Partes do wounder (Figura 1) <ol><li> Prepare o suporte do pino, fixando os pinos ferindo pelo distâncias iguais. Segure as pontas de pipeta e ajustar a altura da ponta, movendo os pinos ferindo ajustáveis ​​para cima e para baixo. </li><li> Montar o guiamento-barra ajustável em diferentes tipos de placas de cultura de 96 poços e garantir que a área da ferida está numa posição fixa. </li><li> Fixe o pino de ferimento ajustável apertando o parafuso de hex. Fixar a barra-guia na posição apertando as tampas sextavados em ambas as extremidades. </li></ol> 2. Definir a largura da caixa Pin (Figura 2) <ol><li> Solte as tampas sextavados com a chave sextavada M5. </li><li> Inserir um número adequado de ajuste anéis de ambos os lados do suporte de pino de modo a que as barras de orientação encaixar perfeitamente com a largura da placa de cultura de 96 poços. NOTA: Corning e placas de Iwaki requer um par de anéis grandes e 1 par de anéis pequenos. Falcon e Nunc plates precisa de 1 par de anéis grandes. </li><li> Aperte o de cabeça hexagonal tampões para fixar a barra de guia. </li></ol> 3. Ajustar as Guias de (Figura 3) <ol><li> Encaixe os pinos ferindo com estéreis de 10 ul pontas de pipeta de plástico. </li><li> Solte as tampas sextavados com a chave sextavada M5. </li><li> Segurar o wounder e mergulhar os pinos ferindo em uma coluna de uma placa de cultura de 96 poços. </li><li> Ajustar a altura das barras de orientação até que todas as pontas quase tocar no fundo dos poços. </li><li> Aperte as tampas sextavados. Certifique-se de que o wounder agora se encaixa perfeitamente sobre a placa de cultura e que os pinos estão bem posicionados no meio dos poços. </li></ol> 4. A calibração dos pinos <ol><li> Segure o wounder perpendicular a uma superfície plana estéril (ou seja, uma placa de Petri) e solte todos os parafusos sextavados com a chave sextavada M3. </li><li> Toque no wounder até que todas as dicas uniformemente toque na superfície estéril plana. &lt;/ Li&gt; <li> Apertar os parafusos sextavados novamente para bloquear os pinos na posição. </li><li> Verifique a regularidade de cada ponta tocando no wounder suavemente na superfície estéril plana. </li></ol> 5. Coçar celular monocamada (Figura 4) <ol><li> Semear as células endoteliais vasculares umbilicais humanas em uma placa de 96 poços de cultura de células revestidas com gelatina a 0,1%. células de cultura em meio 199 suplementado com 20% de soro inactivado por calor fetal de bovino, 1% de penicilina / estreptomicina e 0,09 g / L de heparina. Manter as células numa incubadora humidificada com dióxido de carbono a 5% a 37 ºC durante a noite antes de ser utilizada. As células devem chegar a 100% de confluência antes ferindo. </li><li> Coloque as pontas ferir-se no mais à esquerda (ou o mais à direita) do lado de cada cavidade dentro de uma mesma coluna da placa de cultura. Deslize a wounder para o outro lado do poço; garantir que as pontas são ferindo tocar no fundo do poço. </li><li> Repita a coçar (Passo 5.2) para todas as colunas. </li><li> Depois de ferir, descarte tele meio em cada poço e substituir com compostos de teste de meio fresco contendo. </li></ol> 6. Aquisição de Dados e Análise de Imagem <ol><li> Imagem inteira, o poço com a ferida mecânica sobre a monocamada de células utilizando um microscópio de baixa potência com a câmara digital (por exemplo objectiva 10X) imediatamente após o ferimento (t = 0 h). </li><li> Adicionar os compostos de teste, se desejado e incubar durante o período de tempo desejado. Toda a imagem bem com a área da ferida novamente após o tempo de incubação desejado (t = ÔH). </li><li> Usando imagem software de análise tais como ImageJ ( <a href="https://imagej.nih.gov/ij/">https://imagej.nih.gov/ij/</a> ), medir a área ferido na imagem usando a ferramenta à mão livre. </li><li> Calcula-se a percentagem de fecho de feridas: <img alt="Equação" src="/files/ftp_upload/55411/55411eq1.jpg" /></li></ol>

<ol><li>Friedl, P., Wolf, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumour-cell+invasion+and+migration%3A+diversity+and+escape+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms.</a> Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).</li>
<li>Friedl, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prespecification+and+plasticity%3A+shifting+mechanisms+of+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Prespecification and plasticity: shifting mechanisms of cell migration.</a> Curr Opin Cell Biol. 16 (1), 14-23 (2004).</li>
<li>Lampugnani, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+migration+into+a+wounded+area+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell migration into a wounded area in vitro.</a> Methods Mol Biol. 96, 177-182 (1999).</li>
<li>Sholley, M. M., Gimbrone, M. A. Jr, Cotran, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+migration+and+replication+in+endothelial+regeneration%3A+a+study+using+irradiated+endothelial+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">Cellular migration and replication in endothelial regeneration: a study using irradiated endothelial cultures.</a> Lab Invest. 36 (1), 18-25 (1977).</li>
<li>Gotlieb, A. I., Spector, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Migration+into+an+in+vitro+experimental+wound%3A+a+comparison+of+porcine+aortic+endothelial+and+smooth+muscle+cells+and+the+effect+of+culture+irradiation%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Migration into an in vitro experimental wound: a comparison of porcine aortic endothelial and smooth muscle cells and the effect of culture irradiation.</a> Am J Pathol. 103 (2), 271-282 (1981).</li>
<li>Chen, Y. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+migration+chip+for+chemotaxis-based+microfluidic+selection+of+heterogeneous+cell+populations%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Single-cell migration chip for chemotaxis-based microfluidic selection of heterogeneous cell populations.</a> Sci Rep. 18 (5), 9980(2015).</li>
<li>Yarrow, J. C., Periman, Z. E., Westwood, N. J., Mitchison, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+cell+migration+assay+using+scratch+wound+healing%2C+a+comparsion+of+image-based+readout+methods%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A high-throughput cell migration assay using scratch wound healing, a comparsion of image-based readout methods.</a> BMC Biotechnol. 4, 21(2004).</li>
<li>Lauder, H., Frost, E. E., Hiley, C. R., Fan, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+repair+process+involved+in+the+repair+of+a+cell+monolayer+using+an+in+vitro+model+of+mechanical+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Angiogenesis%22%5BJournal%5D)">Quantification of the repair process involved in the repair of a cell monolayer using an in vitro model of mechanical injury.</a> Angiogenesis. 2 (1), 67-80 (1998).</li>
<li>Yue, P. Y. K., Leung, E. P. Y., Mak, N. K., Wong, R. N. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+method+for+quantifying+cell+migration%2F+wound+healing+in+96-well+plates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol+Screen%22%5BJournal%5D)">A simplified method for quantifying cell migration/ wound healing in 96-well plates.</a> J. Biomol Screen. 15 (4), 427-433 (2010).</li>
<li>Yue, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Elucidation+of+the+mechanisms+underlying+the+angiogenic+effects+of+ginsenoside+Rg%281%29+in+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Angiogenesis%22%5BJournal%5D)">Elucidation of the mechanisms underlying the angiogenic effects of ginsenoside Rg(1) in vivo and in vitro.</a> Angiogenesis. 8 (3), 205-216 (2005).</li>
<li>Kwok, H. H., Chan, L. S., Poon, P. Y., Yue, P. Y., Wong, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ginsenoside-Rg1+induces+angiogenesis+by+the+inverse+regulation+of+MET+tyrosine+kinase+receptor+expression+through+miR-23a%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+Appl+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Ginsenoside-Rg1 induces angiogenesis by the inverse regulation of MET tyrosine kinase receptor expression through miR-23a.</a> Toxicol Appl Pharmacol. 287 (3), 276-283 (2015).</li>
</ol>

Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.

Nossa wounder célula tem várias características únicas em resolver os problemas dos ensaios de migração celular tradicionais. A célula wounder mecânica 8-canal é feita de aço inoxidável de alto grau (Aço 304) com uma longa vida útil que pode ser esterilizado em autoclave. Quase todas as marcas comerciais de placas de 96 poços de cultura disponíveis no mercado podem ser usadas com esta wounder célula mecânica por causa da barra de orientação ajustável. O desenho da barra de orientação ajustável também assegura que a área...

A migração celular desempenha um papel importante nos processos celulares, tais como a embriogénese, neurogénese, a angiogénese, a cura de feridas, a reparação da mucosa,-epiteliais mesenquimais-transições em desenvolvimento normal e uma situação de doença. É um processo complicado que envolve a coordenação de numerosos eventos inter e intra-celulares, incluindo as interacções molécula de sinalização, célula de polarização, a reorganização do citoesqueleto, remodelação da matriz, protrusão membrana e célula-célula dinâmica de modulação da adesão 2. Ao estudar a migração celular, pode ser determinada a descoberta e validação de produtos químicos ou biomoléculas que conduzem a movimentação das células e dos seus percursos bioquímicos relacionados. Este processo fundamental pode ser usado beneficamente como um proxy para diversas aplicações, tais como o tratamento de doença e drogas segmentação. O ensaio ferindo é um dos ensaios de migração de células 3. Aqui, umamostra individual de células irá ser parcialmente removido por meios mecânicos para produzir uma área desnudada onde as células vão migrar para cobrir a área. A percentagem de recuperação em um ponto de tempo em particular irá ser monitorizada. Ao manusear grande número de amostras, questões como o custo experimental e contaminação cruzada dentro de amostras pode ser problemático. Apesar de muitas ferramentas comerciais e ensaios estão disponíveis para estudar a migração de células 4, 5, 6, muitos deles necessários equipamentos caros e sofisticados e melhorias ainda são necessários. Por estas razões, uma célula wounder mecânica de 8 canais (Figura 1) é desenvolvido. O nosso wounder célula mecânica de 8 canais incorporou várias características únicas em resolver os problemas acima mencionados. Ele proporciona a flexibilidade para efectuar a migração de células / ferindo ensaios em formato de placa de cultura de 96 poços. A gu ajustávelbar design Iding assegura que a área de zero é colocada na posição central de cada poço. Além disso, a altura das barras de orientação pode ser ajustada de modo que o wounder é aplicável para vários tipos de placas de cultura. Finalmente, o desenho ferimento pin ajustável permite que um mesmo contato das pontas de pipeta com a superfície da placa de cultura para alcançar simultânea e reprodutível ferimento 7, 8.

<table><tbody><tr><td>Placa de cultura de células de 96 poços</td><td>Nunc</td><td>167008</td><td>Outras marcas de placas de cultura de células de 96 poços também podem ser usadas</td></tr><tr><td>Pontas de pipeta P10</td><td>Axygen</td><td>301-03-051</td><td>A ponta de pipeta P10 curta é mais fácil de criar uma ferida clara</td></tr><tr><td>Wounder</td><td>R& P Technology Limited</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medium 199</td><td>Sigma</td><td>M2520-1L</td><td>Para cultura de células endoteliais da veia umbilical humana. Use meio de cultura apropriado e condicione para outros tipos de células.</td></tr><tr><td>Soro fetal bovino</td><td>Gibco</td><td>26140079</td><td>Para cultura celular de células endoteliais da veia umbilical humana. Utilizar meio de cultura adequado e condicionar para outro tipo de células.</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td>Para cultura celular de células endoteliais da veia umbilical humana. Use meio de cultura apropriado e condicione para outros tipos de células.</td></tr><tr><td>Sal de heparina sódica da mucosa intestinal suína</td><td>Sigma</td><td>H3393</td><td>Para cultura celular de células endoteliais da veia umbilical humana. Use meio de cultura apropriado e condicione para outro tipo de células.</td></tr><tr><td>Gelatina de pele bovina</td><td>Sigma</td><td>G9391</td><td>Para cultura celular de células endoteliais da veia umbilical humana. Utilizar meio de cultura adequado e condicionar para outro tipo de células.</td></tr></tbody></table>

um dispositivo para executar a migração celular / cicatrização de feridas em uma placa de 96 poços

A Device for Performing Cell Migration/Wound Healing in a 96-Well Plate

A migração de células / ferindo ensaio é um método vulgarmente utilizado para estudar a migração celular e outros processos biológicos, tais como angiogénese e metástase do tumor. Neste ensaio, as células são cultivadas para formar uma monocamada confluente e um ferimento mecânico é criado por raspagem com um dispositivo. Em seguida, a taxa de migração das células em relação à área desnudada pode ser monitorizada por meio de imagens. O nosso wounder mecânica de 8 canais foi concebida para resolver a maior parte dos problemas associados com o ensaio de migração celular. Em primeiro lugar, o nosso wounder pode ser facilmente esterilizados por autoclave ou com desinfectantes comuns. Em segundo lugar, os pinos individuais ajustáveis ​​permitem mesmo contacte com a placa de cultura celular de modo a que as feridas afiadas e reprodutíveis pode ser criado. Em terceiro lugar, as barras de orientadores em ambos os lados da posição de ferimento wounder assegurar consistente em cada poço. O uso de descartáveis ​​de plástico dicas de pipeta para ferindo pode fornecer mais melhor manuseio do wounder, bem como para minimizar cross-de contaminantesíon. Em conclusão, a wounder célula pode proporcionar aos investigadores um dispositivo reprodutível e amigável do utilizador para realizar o ensaio de migração de células usando a placa de cultura de 96-poços padrão.

Este wounder mecânica 8-canal é construído para arranhar uma monocamada de células, a fim de realizar o ensaio de migração celular. É um dispositivo fácil de usar que pode realizar ensaios coçando de células em placas de 96 poços em menos de um minuto, sem treinamento especial. Este wounder pode introduzir áreas feridas em monocamadas de células com uma largura uniforme de cerca de 600 mm e com bordas afiadas (Figuras 5 e 6). A largura das feridas depend...

Aqui, nós apresentamos um protocolo para realizar um ensaio de migração de células semi-elevado rendimento sobre uma placa de cultura celular de 96 poços. Este protocolo é um método rápido, simples e econômica para criar feridas scratch consistentes sobre a monocamada de células.

Um dispositivo para executar a migração celular / cicatrização de feridas em uma placa de 96 poços

The cell migration/wounding assay is a commonly used method to study cell migration and other biological processes, such as angiogenesis and tumor ...

O objetivo geral deste enroldador mecânico de oito canais é quantificar o efeito de um tratamento sobre a migração celular utilizando o ensaio de cicatrização de ferida de forma rápida e semialto rendimento, sem o uso de equipamentos caros e complicados. A migração celular é um processo celular importante em diversas condições fisiológicas e patológicas. Ensaios de cicatrização de ferida in vitro são utilizados em diversos estudos, incluindo pesquisas sobre câncer, vascular e dermatológicas.A principal vantagem deste método é que o efeito sobre a migração celular pode ser monitorado em uma placa de 96 canais, permitindo que diferentes condições de tratamento sejam observadas simultaneamente. O procedimento será demonstrado por Ka Chun Ng, um estudante de pós-graduação do nosso laboratório. Para iniciar o experimento, prepare o suporte de pinos fixando os pinos de ferimento a distâncias iguais.Segure as pontas da pipeta e mova os pinos ajustáveis de ferimento para cima e para baixo para ajustar a altura da ponta. Em seguida, posicione a barra guia ajustável em diferentes marcas de placas de cultura de 96 poços e certifique-se de que a área de ferimento esteja em uma posição fixa. Fixe o pino ajustável de ferimento apertando o parafuso sextavado.Fixe a barra guia na posição apertando os parafusos cabeça sextavada em ambas as extremidades. Use uma chave sextavada M5 para soltar os parafusos cabeça sextavada. Insira um número adequado de anéis de ajuste em ambos os lados do porta-pinos, de modo que as barras guia se encaixem perfeitamente na largura da placa de cultura de 96 poços.Em seguida, aperte os parafusos cabeça sextavada para fixar a barra guia. Comece a ajustar as barras guia encaixando os pinos de lesão com ponteiras plásticas estéreis de 10 microlitros. Em seguida, solte os parafusos cabeça sextavada com a chave Allen M5.Segure o feridor e mergulhe os pinos de ferimento em uma coluna de uma placa de cultura de 96 poços. Em seguida, ajuste a altura das barras guia até que todas as pontas toquem levemente o fundo dos poços. Aperte os parafusos cabeça sextavada.Certifique-se de que o aplicador agora se encaixa perfeitamente na placa de cultura e de que os pinos estão bem posicionados no centro dos poços. Segure o aplicador perpendicularmente a uma superfície plana e estéril, como uma placa de Petri, e solte todos os parafusos sextavados com a chave Allen M3. Bata levemente no aplicador até que todas as pontas toquem uniformemente a superfície.Depois que as pontas tocarem uniformemente a superfície, aperte novamente os parafusos sextavados para fixar os pinos em posição. Em seguida, verifique a uniformidade de cada ponta batendo suavemente o enrolador em uma superfície plana e estéril. Semeie células endoteliais vasculares humanas do cordão umbilical em uma placa de cultura celular de 96 poços revestida com gelatina 0,1%.Cultive as células em meio 199 suplementado com 20% de soro bovino fetal inativado pelo calor, 1% de penicilina-estreptomicina e 0,09 gramas por litro de heparina. Mantenha as células em incubadora umidificada com 5% de dióxido de carbono a 37 graus Celsius durante a noite antes de utilizá-las. Quando as células atingirem 100% de confluência, posicione as pontas para indução de ferimento no lado mais à esquerda de cada poço dentro da mesma coluna da placa de cultura.Deslize o dispositivo de ferimento para o outro lado do poço. Certifique-se de que as pontas de ferimento estejam tocando o fundo do poço. Para garantir que o ferimento em cada poço da placa de cultivo celular seja centralizado e tenha a mesma forma, balanceie o dispositivo de ferimento, atravessando-o até a outra extremidade do poço.Repita a arranhadura para todas as colunas. Após a lesão, descarte o meio de cada poço e substitua por meio fresco contendo os compostos em teste. Em seguida, prossiga para a aquisição de dados e análise de imagens.Imagens representativas de uma linha e uma coluna de poços imediatamente após a arranhadura permitem a análise quantitativa da largura de cada ferida. As imagens da ferida foram obtidas a partir de células endoteliais da veia umbilical humana e fibroblastos dérmicos humanos. A linha pontilhada indica a área da ferida e a linha contínua indica a área de migração celular.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como usar este dispositivo para realizar um ensaio de cicatrização de feridas em uma placa de 96 poços de maneira semialto rendimento e garantir que todos os poços sejam arranhados pelo dispositivo de arranhão.

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Comumente usado, são descritos métodos altamente acessíveis para analisar a migração celular e invasão in vitro. O primeiro método é o ensaio de encerramento de feridas de células que mede a mobilidade celular. O segundo método é o ensaio de migração e invasão transwell que avalia o quimiotáctica e capacidade invasiva de células.

Na migração celular in vitro e invasão Ensaios

MRP4 regula vários eventos de sinalização dependentes de nucleótidos cíclicos, incluindo um papel recentemente elucidados na migração de células. Nós descrevemos uma abordagem direta, mas multifacetada para desvendar os alvos moleculares jusante de MRP4 resultando em identificação de um interactome MRP4 única que desempenha um papel-chave na regulação afinado da migração de fibroblastos.

Métodos para estudar MRP4 contendo Complexos Macromoleculares no regulamento de Fibroblasto Migração

O objetivo do presente protocolo é avaliar o efeito dos factores pro e anti migratory na migração de células dentro de uma matriz tridimensional de fibrina.

Caracterizando a migração celular no tridimensional em Vitro ferida ambientes

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Avaliação do processo de migração e invasão celular: uma comparação da risque baseado no microscópio a ferida do ensaio e o ensaio de câmara Boyden

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Microscopia com base em métodos de avaliação da migração de células epiteliais durante a cicatrização em Vitro

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Ensaio de migração de riscos e câmara de dobras cutâneas dorsal para análise in vitro e in vivo da cicatrização de feridas

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