24 de março de 2017
Aqui, os autores apresentam um protocolo simples e eficiente para definir um epítopo antigênico linear usando um anticorpo monoclonal purificado e varredura peptídica por meio de hibridização dot-blot. O epítopo identificado pode então ser usado em aplicações terapêuticas e diagnósticas.
O objetivo geral deste protocolo é identificar um epítopo linear de células B reconhecido por anticorpos monoclonais utilizando proteínas recombinantes com truncamentos seriados e varredura por peptídeos mediante hibridização em dot blot. Este método pode ajudar a responder questões fundamentais sobre a interação molecular entre o antígeno e o anticorpo. As principais vantagens desta técnica são sua simplicidade e eficiência.
O epítopo identificador pode então ser utilizado em investigações mais completas, como em aplicações terapêuticas e diagnósticas. O procedimento será demonstrado por Chien-Wen Chen, um pós-doutorando do meu laboratório. Para começar, cultive células híbridas monoclonais de camundongo RGM56 em um meio livre de soro híbrido.
Mantenha culturas celulares em frascos T175 a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Após cinco dias de incubação, colete o meio de cultura quando este ficar amarelo e centrifugue o sobrenadante a 4.500 × g durante 30 minutos a quatro graus Celsius. Em seguida, descarte o pellet de detritos celulares para obter o anticorpo em solução.
Em seguida, adicione dois mililitros de suspensão de agarose com proteína G a 50% a uma coluna de cinco mililitros e equilibre a resina com 10 mililitros de PBS gelado, correspondendo a 10 volumes da resina pré-carregada. Aplique 200 mililitros da solução de anticorpo previamente preparada na coluna equilibrada e descarte a fração que passa pela coluna. Lave a coluna duas vezes usando 10 mililitros de PBS gelado.
Por fim, para eluir o anticorpo da resina, adicione 10 mililitros de solução de glicerina milimolar com pH 2,7 à coluna. Colete frações de 900 microlitros em tubos de microcentrifugação previamente preenchidos com 100 microlitros de tampão de neutralização 10X. Armazene o anticorpo purificado em solução de glicerol 50% suplementada com azida de sódio a menos 20 graus Celsius.
Prepare os plasmídeos e transforme células de E. coli BL21 conforme descrito no protocolo textual. Em seguida, transfira uma única colônia para um tubo de 15 mililitros contendo três mililitros de caldo LB suplementado com 100 microgramas por mililitro de ampicilina e tampe o tubo parcialmente. Incube o cultivo a 37 graus Celsius com agitação de 150 RPM.
Monitore a densidade óptica do cultivo a 600 nanômetros. Quando atingir cerca de 0,6, resfrie o cultivo para 25 graus Celsius. Em seguida, adicione IPTG em uma concentração final de 0,4 milimolar para induzir a expressão da proteína recombinante.
Incube a cultura por mais quatro horas a 25 graus Celsius com agitação a 200 RPM. Após a incubação, transfira um mililitro da cultura bacteriana para um tubo de microcentrífuga. Centrifugue as células a 12.000 × g por um minuto e descarte o sobrenadante.
Pipetando para cima e para baixo com uma micropipeta, reconstitua o pellet celular em 100 microlitros de tampão de desnaturação. Em seguida, homogeneíze a suspensão resultante por vortexagem vigorosa para obter uma amostra pronta para uso de proteína recombinante. Para prosseguir com a hibridização em dot-blot, dissolva cada peptídeo sintético em DMSO para obter soluções de 10 miligramas por mililitro.
Em seguida, ative a membrana de PVDF em metanol por dois minutos e equilibre-a com o tampão de Towbin modificado por mais dois minutos. Enxágue um pedaço de papel de cromatografia com o tampão de Towbin modificado e coloque a membrana de PVDF equilibrada sobre ele. Deixe a membrana repousar até que o tampão desapareça de sua superfície.
Usando uma ponteira de 10 microlitros, adicione dois microlitros de cada amostra de peptídeo ou proteína recombinante sobre a membrana e deixe secar ao ar por 10 minutos. A aplicação de um símbolo na membrana é a etapa mais crítica deste protocolo. O carregamento de uma quantidade precisa de amostra em uma pequena área da membrana de PVDF exige atenção cuidadosa.
Em seguida, bloquee a membrana em tampão TBST suplementado com 5% de leite desnatado durante 30 minutos à temperatura ambiente com agitação suave. Dilua o anticorpo monoclonal RGM56 em tampão TBST suplementado com 5% de leite desnatado. E adicione a solução de anticorpo à membrana.
Incube a membrana a 37 graus Celsius por uma hora com agitação suave. Após a incubação, remova a solução de anticorpo e lave a membrana duas vezes em tampão TBST por cinco minutos com agitação suave.
Em seguida, adicione à membrana a solução do anticorpo secundário diluído em tampão TBST com 5% de leite desnatado. Incube a membrana por uma hora a 37 graus Celsius com agitação suave. Após a incubação, descarte a solução de anticorpo e lave a membrana duas vezes em tampão TBST por cinco minutos com agitação suave.
Em seguida, desenvolva a membrana com a solução de substrato por 15 minutos à temperatura ambiente e no escuro. Quando o sinal aparecer, interrompa a reação lavando a membrana com água bidestilada. Após secar a membrana ao ar, capture a imagem do dot blot utilizando um sistema de imagem.
Por fim, utilizando um software de análise de imagem, meça a intensidade de cada ponto do dot blot. Apresenta-se aqui a proteína codificadora completa do vírus da necrose nervosa, compreendendo os aminoácidos de um a 338, juntamente com suas variantes truncadas em série. Para confirmar a expressão das proteínas nas células bacterianas transformadas, foi realizada uma análise por dot blot com anticorpo anti-6XHis, demonstrando a presença de todas as proteínas em estudo.
Em seguida, as proteínas recombinantes foram analisadas por hibridização em dot blot, na qual foi utilizada a anticorpo monoclonal RG-M56. A análise revelou que o epítopo proteico reconhecido pelo anticorpo está presente no peptídeo de 195 a 338. Por fim, um epítopo constituído por 20 ou oito resíduos de aminoácidos foi identificado por meio de varredura com peptídeos.
A varredura com alanina mostrou que substituições dos resíduos de valina nas posições 197 e 199, bem como de uma cistina na posição 201, aboliram a capacidade de ligação do epítopo e a hibridização em dot-blot. Da mesma forma, a afinidade reduzida de ligação foi observada na análise da intensidade de ligação, confirmando que os resíduos identificados são essenciais para a ligação do epítopo ao anticorpo monoclonal RGM56. Essa técnica de identificação de peptídeos pode ser utilizada para desenvolver medicamentos peptídicos terapêuticos ou drogas peptídicas.
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Este artigo apresenta um protocolo para identificar um epítopo linear de células B reconhecido por um anticorpo monoclonal por meio de varredura com peptídeos e hibridização em dot blot. O método destaca-se pela sua simplicidade e eficiência, tornando-o adequado para aplicações terapêuticas e diagnósticas.
A identificação de epítopos lineares de células B é essencial para reduzir riscos no desenvolvimento de anticorpos terapêuticos e orientar o design de vacinas. Essa abordagem de varredura com peptídeos permite o mapeamento rápido de epítopos com investimento mínimo de recursos, apoiando a validação precoce de alvos e a otimização de compostos líderes. O método aumenta a confiança preditiva nas interações antígeno-anticorpo, facilitando decisões de avanço ou interrupção em pipelines de descoberta.
O método se integra aos fluxos de trabalho de descoberta inicial, conectando a validação do alvo à identificação de compostos ativos ao fornecer resolução em nível de epítopo para as interações anticorpo-antígeno.