17 de abril de 2017
gotículas lipídicas são organelos importantes para a replicação de vários agentes patogénicos, incluindo o vírus da hepatite C (HCV). Descreve-se um método para isolar gotículas lipídicas para a espectrometria de massa quantitativa de proteínas associadas; ele pode ser utilizado sob uma variedade de condições, tais como infecção por vírus, stress ambiental, ou tratamento com droga.
O objetivo geral do isolamento de gotículas lipídicas para espectrometria de massa quantitativa é compreender a função desses organoides, por exemplo, na replicação de patógenos como o vírus da hepatite C. Este método pode responder perguntas fundamentais na área de doenças infecciosas, como por que os patógenos se ligam às gotículas para replicação. O isolamento de gotículas lipídicas pode ser realizado em seis a sete horas.
E durante este procedimento, é importante evitar a contaminação por queratina. Para começar, retire 50 mililitros de cada frasco de meio DMEM e adicione 50 mililitros de soro bovino fetal dialisado. Em seguida, dissolva 50 miligramas de lisina marcada com carbono 13 e 50 miligramas de arginina marcada com carbono 13 em um mililitro de meio.
Misture bem e adicione os aminoácidos ao meio DMEM mais FCS. Em seguida, adicione o PenStrep e o substituto da glutamina. Filtre esterilmente o meio utilizando um filtro de 0,45 mícron e rotule o frasco como meio SILAC pesado.
Para preparar o meio leve, repita esses passos usando 50 miligramas de arginina e 50 miligramas de lisina. Rotule o frasco como meio SILAC leve. Faça a tripsinização das células e divida-as em duas poças de uma placa de cultura de seis poças.
Um poço deve conter dois mililitros do meio SILAC pesado e o outro, dois mililitros do meio SILAC leve. Cultive as células por pelo menos seis passagens. Após seis passagens, a incorporação dos aminoácidos pesados deve ser superior a 95%. Recolha um milhão de células das populações celulares marcadas com isótopos pesados e leves para analisar a eficácia de incorporação.
Após lavar as células em PBS 1X, faça a pelagem por centrifugação durante cinco minutos a 160 × g e quatro graus Celsius. Re-suspenda os pellets celulares em 150 microlitros de tampão MS. Em seguida, incube as células em gelo durante 30 minutos.
Em seguida, lise as células por sonicação a quatro graus Celsius. Remova os detritos celulares por centrifugação durante 10 minutos a 11.000 ×g e quatro graus Celsius. Transfira o sobrenadante para um novo tubo e determine a concentração de proteína utilizando um ensaio de proteína compatível com detergentes.
Em seguida, misture 75 microgramas de proteína com seis x tampão de amostra. Após fervura a 95 graus Celsius por cinco minutos, separe as proteínas por SDS-PAGE em tampão de corrida SDS a 180 volts por aproximadamente uma hora. Após a coloração com Comassie, excise a mesma faixa proteica e analise a eficácia de incorporação por análise de MS.
Infete a população leve de células com o vírus repórter da hepatite C incubando-as com estoques fibrosos por quatro horas a 37 graus Celsius. Expanda as células leves infectadas com HCV e as células pesadas não infectadas conforme descrito no protocolo textual. Se estiver usando uma linhagem de HCV que carrega um gene de resistência à blasticidina, adicione 10 microgramas por mililitro de blasticidina S ao meio leve para selecionar células positivas para HCV.
No dia anterior ao isolamento de gotículas lipídicas, lave as células com PBS, faça a tripsinização e re-suspenda-as no respectivo meio leve ou pesado. Conte as células utilizando uma câmara de contagem de Neubauer. Em seguida, semeie sete milhões de células de cada população em uma placa de cultura celular de 150 centímetros quadrados.
Prepare pelo menos cinco placas para cada população de células leves e pesadas. Incube as células em 30 mililitros de meio por placa durante a noite. No dia seguinte, remova o meio e lave as células com PBS 1X.
Destaque as células em PBS 1X utilizando uma espátula para células. Após contar ambas as populações celulares como anteriormente, retire números iguais de células em tubos cónicos de 50 mililitros. Pelotize as células por centrifugação durante cinco minutos a 160 vezes g e quatro graus Celsius.
Remova o PBS e re-suspenda o pellet celular em um mililitro de tampão de sacarose. Transfira a suspensão celular para um homogeneizador Ounce de encaixe justo antes de lisar as células com 200 movimentos no gelo. Em seguida, transfira o lisado para um tubo microfuga de 1,5 mililitro e centrifugue os núcleos e os detritos celulares por 10 minutos a 1.000 × g e 4 °C.
Após a centrifugação, armazene uma alíquota de 25 microlitros da fração pós-nuclear, ou PNS, a menos 20 graus Celsius como controle de entrada. Coloque o restante da fração PNS no fundo do tubo de centrífuga e recubra com aproximadamente três mililitros do tampão de lavagem de gotículas lipídicas. Centrifugue durante duas horas a 100.000 ×g e 4 °C.
Após a centrifugação, colete a fração flutuante de gotículas lipídicas do topo do tubo utilizando uma cânula romba curvada. Em seguida, coloque a fração de gotículas lipídicas em um tubo de centrífuga, recubra com tampão de lavagem de gotículas lipídicas e repita a etapa de centrifugação. A coleta das gotículas lipídicas do topo do gradiente exige experiência.
E é mais fácil quanto maior for a fração. Você pode usar células adiposas para praticar. Ou pode alimentar suas células com oleato para aumentar a quantidade de gotículas lipídicas.
Mais uma vez, colete a fração de gotículas lipídicas flutuantes utilizando uma cânula romba dobrada a partir do topo do tubo. Transfira as gotículas lipídicas para um novo tubo microcenrífugo de 1,5 mililitro e adicione 500 microlitros de tampão de lavagem de gotículas lipídicas. Em seguida, centrifugue a amostra por 20 minutos a 21.000 × g e 4 graus Celsius.
Remova o tampão de lavagem subjacente utilizando uma ponta de pipeta para eletroforese e repita o passo de lavagem três vezes. Após a remoção final do tampão de lavagem, misture cinco microlitros das frações de gotículas lipídicas com 10 microlitros de tampão de lise NP-40 para determinação do teor proteico. Incube a amostra em gelo durante uma hora para inativar o vírus, caso esteja trabalhando com material infeccioso.
Neste ponto, as frações de gotículas lipídicas podem ser armazenadas a menos 20 graus Celsius. Em seguida, misture o volume correspondente a pelo menos 35 microgramas de proteína com corante de carga 4x. Incube a mistura em gelo por uma hora para inativar o vírus, caso esteja trabalhando com material infeccioso.
Ferva a amostra a 95 graus Celsius por cinco minutos. Em seguida, realize eletroforese em gel de poliacrilamida com SDS seguida de coloração com Comassie para preparar a amostra para cromatografia líquida acoplada à espectrometria de massas em tandem, conforme descrito no protocolo textual. Para analisar a pureza das gotículas lipídicas, dilua alíquotas das frações de gotículas lipídicas, de uma a duas, com tampão de lise NP 40.
Dilua as frações controle de entrada de um a dez com o mesmo tampão. Incube as amostras em gelo durante uma hora para inativar o vírus, caso esteja trabalhando com material infeccioso. Em seguida, determine o nível de proteína por meio de um ensaio de proteína compatível com detergentes.
Em seguida, misture quantidades iguais de proteína com tampão amostra 6x e incube as amostras no gelo durante uma hora para inativar o vírus, caso esteja trabalhando com material infeccioso. Por fim, prossiga com o SDS-PAGE e transfira as proteínas para uma membrana de nitrocelulose por eletrotransferência em tanque a 80 volts durante 90 minutos. É mostrada aqui uma análise representativa de western blot das frações pós-nucleares e de gotículas lipídicas.
O western blot mostra claramente um enriquecimento das proteínas marcadoras de gotículas lipídicas, perilipina dois e perilipina três, nas frações de gotículas lipídicas, bem como o esgotamento de marcadores de outros compartimentos celulares. As frações pós-nucleares e de gotículas lipídicas podem ser analisadas adicionalmente por coloração com azul de Coomassie e prata. Este mapa de calor ilustra o número de peptídeos e a porcentagem de cobertura proteica das proteínas identificadas nas frações de gotículas lipídicas das células analisadas.
O mapa térmico final mostra como a infecção pelo VHC altera as gotículas lipídicas por dia. As proteínas associadas às gotículas lipídicas enriquecidas são indicadas em vermelho, e as proteínas associadas às gotículas lipídicas empobrecidas são indicadas em azul. A principal vantagem deste método é que misturamos as células antes do isolamento e antes do isolamento das gotículas lipídicas, podendo assim minimizar erros que possam ocorrer durante a lise celular e durante as etapas de isolamento.
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Este artigo descreve um método para o isolamento de gotículas lipídicas com o objetivo de estudar seu papel na replicação de patógenos como o vírus da hepatite C (HCV). O processo de isolamento é fundamental para compreender as interações entre patógenos e gotículas lipídicas durante diversas condições.
Compreender a dinâmica do proteoma das gotículas lipídicas permite a validação de alvos na pesquisa de doenças infecciosas, identificando fatores do hospedeiro que patógenos exploram para replicação. Este método apoia a redução de riscos mecanicistas por meio de espectrometria de massa quantitativa, fornecendo confiança preditiva na seleção de alvos para estratégias antivirais. A abordagem aplica-se às fases iniciais de descoberta, nas quais a clarificação de vias e a validação biológica orientam a triagem de portfólios.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a testagem de hipóteses até a identificação de compostos líderes, fornecendo informações quantitativas sobre a remodelação do proteoma específica por organelas.