Name: Preparação de Vesículas de Membranas Plasmáticas de Células-Tronco Mesenquimais de Medula Óssea para Terapia Potencial de Substituição de Citoplasma (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: Aprenda a preparar vesículas de membrana plasmática de células-tronco mesenquimais de medula óssea para terapia de substituição citoplasmática. Este método permite encapsular citosol jovem e reverter fenótipos associados ao envelhecimento.

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Esta pesquisa foi apoiada pela Fundação Li Ka Shing, o Projeto de Universidade de Alto Nível de Guangdong &quot;Tecnologias Verdes para Indústrias Marinhas&quot;, a Fundação de Ciências Naturais da China (http://www.nsfc.gov.cn/ Grant No. 30971665, 81172894, 81370925), e o Departamento de Educação de Guangdong (http://www.gdhed.edu.cn/ Grant No.cxzd1123).

Foram adquiridos ratinhos BALB / c com 8 a 12 semanas de idade de Xangai Experimental Animal Center (Xangai, China) e criados numa instalação animal específica isenta de agentes patogénicos e com ar condicionado. O cuidado animal e os procedimentos experimentais estavam em conformidade com as diretrizes para o uso e cuidado de animais de laboratório estabelecidos pela Universidade de Shantou. 1. Montagem do Aparelho <ol><li> Para garantir a esterilidade, ligue a luz UV de um capuz de cultura de tecidos durante 30 min antes de usar. </li><li> Desparafuse uma unidade de filtro descartável de 25 mm e mergulhe a tampa eo fundo da unidade em uma xícara de vidro de 200 mL cheia com etanol a 75% por 30 min. A unidade é feita de polipropileno de grau médico. </li><li> Pegue a tampa ea parte inferior da unidade usando fórceps, sacuda o restante etanol à mão, e deixe as peças ao ar seco por 10 min no capô. </li><li> Molhar uma membrana de policarbonato de 19 mm em PBS e colocá-lo cuidadosamente em cima da matriz de suporte do bottoM da unidade. A película de polímero tem uma superfície lisa, plana e poros trilhados de 3 μm. </li><li> Volte a montar a unidade apertando firmemente a tampa contra o fundo. Certifique-se de que a membrana não é deslocada do centro. </li><li> Remover a agulha de uma seringa de insulina de 1 mL e extrair 1 mL de PBS. Conecte a seringa à unidade de filtro e, em seguida, empurre PBS através da unidade para molhar o conjunto e para testar se houver qualquer vazamento. </li></ol> 2. Geração de Vesículas de Membrana de Plasma (PMVs) <ol><li> Estabelecer uma cultura BMSC, conforme relatado por Nemeth et al. 15 , em meio de cultura DMEM contendo 15% de FBS e 1% de penicilina / estreptomicina. Cultivar as células numa placa de 6 poços numa incubadora humidificada contendo 5% de CO2 à temperatura de 37 ° C. </li><li> Para propagar as células, remover o meio de cultura e enxaguar o poço com 0,5 mL de PBS sem cálcio. </li><li> Adicionar 0,5 mL de tripsina-EDTA a 0,25% e incubar as células a 37 ° CDurante 3 min. Toque a placa contra a palma da mão algumas vezes para facilitar o destacamento celular. Parar a digestão por adição de 1 mL de meio de cultura. </li><li> Recolher as células em um tubo cônico de 15 mL e girar a 200 xg por 2 min em uma centrífuga de bancada. Ressuspender as células em 4 mL de meio de cultura e alíquota as células em dois poços de uma placa de 6 poços. NOTA: As células normalmente atingem a confluência em torno de 24 h. </li><li> Para gerar PMVs, recolher as células de um poço (cerca de 5 x 105 células) de uma placa de 6 poços por digestão com tripsina e monodispersar as células em 0,5 mL de meio de cultura. </li><li> Coloque as células na seringa de insulina, prenda-a à unidade de filtro e empurre o êmbolo rapidamente para espremer as células através do filtro. Descarte o meio extrudido, porque deve haver apenas alguns PMVs dentro dele. </li><li> Coloque mais 0,5 ml de meio na seringa e empurre-o rapidamente através do filtro. Recolhido o meio da segunda extrusão, que contémS PMVs de vários tamanhos. </li><li> Carregar 150 μL do meio coletado em uma placa de fundo de vidro de 35 mm e deixar as PMVs se assentarem para o fundo por cerca de 10 min. Examine os PMVs sob um microscópio de contraste de fase invertido equipado com uma câmera CCD usando a lente de objetivo 20X. </li></ol> 3. Exame do Conteúdo dentro dos PMVs Usando Microscopia Confocal <ol><li> Para realizar a transfecção nas BMSCs, diluir 2 μg de ADN plasmídico superenrolado e 6 μL de reagente de transfecção catiónica ( por exemplo, PolyJet) em 50 μL de DMEM isento de soro. Vortex para misturar bem e girar brevemente para recolher todo o líquido dos lados do tubo. </li><li> Adicionar a solução diluída (do passo 3.1) gota a gota em solução diluída de ADN, agitar vigorosamente durante 1 min, centrifugar brevemente e incubar à temperatura ambiente durante 10 min. </li><li> Substituir o meio antigo nas BMSCs, que foram semeadas a cerca de 30% de confluência durante a noite, com 2 mL de meio de cultura fresco e adicionar DNUma mistura de transfecção gota a gota. </li><li> Substituir por 2 mL de meio fresco após 12 h de transfecção. </li><li> Para rastrear proteínas citoplasmicamente localizadas, transfectar as células com o plasmídeo contendo uma cassete de expressão de EGFP (pEGFP-N1), como descrito acima. Colher as células por digestão com tripsina 48 h após a transfecção para a geração de PMV, como descrito acima. </li><li> Para rastrear as mitocôndrias, colorir as células com corante mitocondrial (1 μM, MitoTracker) em meio de cultura fresco durante 30 min a 37 ° C. </li><li> Para detectar o potencial de membrana das mitocôndrias, corar as células com o corante de cianina JC-1 (iodeto de 5,5 &#39;, 6,6&#39;-tetracloro-1,1&#39;, 3,3&#39;-tetraetilbenzimi-dazolilcarbocyanina) (10 μg / ML) em meio de cultura fresco durante 30 min a 37 ° C. <ol><li> Lavar as células com 0,5 mL de PBS três vezes e depois colher as células por digestão com tripsina para a geração de PMV, como descrito acima. </li><li> Carregar 150 μL do material coletadoIum num prato de fundo de vidro de 35 mm e permitir que os PMVs se assentem para o fundo durante cerca de 10 min. Examine os PMVs sob um microscópio confocal usando a lente objetiva de óleo 100X. </li></ol></li><li> Para detectar EGFP ou o corante mitocondrial, ligar o laser de 488 nm e recolher o sinal a 505-530 nm. Para detectar JC-1, ligar os lasers de 488 nm e 543 nm e recolher os sinais a 505-530 nm e 560-615 nm. Defina o valor do pinhole para cerca de 1,4. </li></ol> 4. Preparação de PMVs Concentrados por Centrifugação <ol><li> Colher as células por digestão com tripsina e gerar PMVs, como descrito acima, em 0,5 ml de meio de cultura. </li><li> Girar os PMVs a 1200 xg numa centrífuga de bancada durante 5 min à temperatura ambiente. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante e ressuspender o sedimento em 100 μL de meio de cultura com agitação suave. </li><li> Carregar 50 μL de PMVs num prato de fundo de vidro de 35 mm e deixá-los sedimentar à temperatura ambiente durante cerca de 10 min. Examine os PMVsSob um microscópio confocal usando a lente objetiva de óleo 40X. </li><li> Adicionar a série de solução de polietilenimina diluída (PEI) à cultura BMSC durante 1 hora e verificar sinais de citotoxicidade. NOTA: Aqui, o PEI a 2 μg / mL foi escolhido uma vez que nenhum sinal de toxicidade foi detectado em BMSCs. </li><li> Colha as células por digestão com tripsina e adicione PEI a 2 μg / mL durante 1 hora para carregar a membrana celular como um meio de prevenir a agregação. Gerar PMVs, como descrito acima, em 0,5 mL de meio de cultura. Concentrar os PMVs e examiná-los sob um microscópio confocal, como descrito acima. </li></ol> 5. Injecção de PMVs no Músculo Gastrocnêmio <ol><li> Para corar a membrana, adicione corante CM-DiI (clorometil dialquil-indocarbocianina) (10 μM) em 1 mL de meio de cultura fresco às BMSC durante 30 min. </li><li> Colher as células (cerca de 5 x IO5) por digestão com tripsina e ressuspendê-las em 0,5 mL de meio de cultura. Adicionar PEI (2 μg / mL) durante 1H. Gerar e concentrar os PMVs em 100 μL de meio de cultura, conforme descrito acima. </li><li> Anestesiar um rato BALB / c por injecção de barbital de sódio (10 mg / kg) após 12 h de jejum. </li><li> Limpe o exterior do músculo gastrocnêmio com etanol a 75%. Injete lentamente os PMVs (100 μL) no músculo gastrocnêmio usando uma seringa de insulina 30 G. </li><li> Depois de administrar a anestesia, coloque uma gaze molhada sobre os olhos para a duração da experiência e aquecer o mouse com uma luz incandescente até que ele acorda. Casa o rato sozinho em uma gaiola de ventilação individual. </li><li> Para colher o músculo gastrocnêmio 12 h após a operação, matar o rato por deslocação cervical. </li><li> Polvilhe 75% de etanol sobre o músculo gastrocnêmio, abra a pele com uma tesoura e corte todo o músculo gastrocnêmio em ambas as extremidades. </li><li> Enxaguar o músculo com PBS e examiná-lo sob um microscópio de fluorescência usando a lente de objetivo 20X. </li><li> Aparar o músculo com umLâmina de barbear afiada para remover as peças sem fluorescência. Corte as peças com forte fluorescência vermelha em cerca de 9 mm 3 cubos. </li><li> Incorporar cada cubo em meio de temperatura de corte ótimo (OCT), submergir em nitrogênio líquido por 5 min, e armazená-lo em um congelador de -20 ° C até o uso. </li><li> Cortar as secções congeladas em pedaços de 20 μ m de espessura usando um criostato e aderir cada seção para um slide de vidro. Enxágüe a seção uma vez com PBS. </li><li> Desenhe um círculo ao redor da seção com uma haste de círculo de mancha e adicione 100 μL de DAPI (1 μg / mL). Aspirar a solução DAPI após 10 min de incubação à temperatura ambiente no escuro e lavar três vezes com PBS. </li><li> Coloque o óleo sobre a amostra, cubra-o com um deslizamento de vidro e feche a lâmina com esmalte. Examine a seção sob um microscópio confocal usando a lente objetiva de óleo 100X. </li><li> Para detectar CM-DiI, ligue o laser de 543 nm e colete o sinal em 560-615 nm. Para detectar DAPI, ligue o 405Nm laser e coletar sinal em 420-480 nm. Defina o valor do pinhole para cerca de 1,4. </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

A terapia de reposição citoplasmática, conforme proposta neste manuscrito, tem vantagens únicas sobre outras abordagens relatadas, como terapia genética, molecular e celular. Os PMVs gerados a partir de BMSCs encapsulam não apenas os produtos dos genes de stemness, mas também organelas celulares intactas, que são essenciais para remediar os fenótipos de envelhecimento associados à senescência. Quando o citoplasma jovem é entregue às células senescentes, os mecanismos de mau funcionamento podem obter um breve alívio; Ao m...

<html> Uma enorme quantidade de esforço tem sido dedicada ao estabelecimento de abordagens para genes, enzimas e terapias de reposição celular. Isto resultou em grandes avanços e mesmo aplicações clínicas 1 , 2 , 3 . Recentemente, uma polêmica mitocôndria substituição terapia baseada em tecnologia de transferência de núcleo foi aplicado à fertilização in vitro para mulheres de idade avançada ou portador de uma mitocondrial letal DNA mutação [ 4] . Defeitos encontrados em doenças relacionadas à idade, incluindo aterosclerose, diabetes tipo 2, doença de Alzheimer e câncer, são geralmente multifacetados. Tem sido documentado que a acumulação de gotículas lipídicas; A deposição de proteína amilóide; A retenção de proteínas desdobradas no retículo endoplasmático; E proteassoma defeituoso, autofagosoma e mitocôndrias contribuem para o desenvolvimento ou agravamento destas doenças&quot;Xref&quot;&gt; 5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 . Actualmente, não existe nenhum mecanismo disponível destinado a remediar directamente o mau funcionamento no citosol e organelas, o que provoca a senescência e os fenótipos de envelhecimento. Nós já relatamos sobre a geração de vesículas de membrana plasmática (PMVs) através da extrusão mecânica de células de mamíferos 12 . Com exceção do núcleo, componentes em membrana ou citosol, incluindo proteínas e RNA, bem como as organelas, como mitocôndrias, foram encontrados em PMVs. Essencialmente, um PMV pode ser considerado como uma célula enucleada em miniatura. Mais importante ainda, a fusão de PMVs com células RhoO deficientes em mitocôndrias restaurou a actividade mitótica em condições de cultura normais. Este é o primeiro relatório sobreUma abordagem potencialmente eficiente para a terapia de substituição do citoplasma. As células estaminais mesenquimais da medula óssea (BMSCs) são células progenitoras multipotentes que são rotineiramente geradas a partir da medula óssea e são facilmente expandidas em cultura. Marcadores de células estaminais embrionárias Oct4, Nanog e SOX2 foram detectados em baixos níveis em MSCs 13 . A actividade de telomerase também é mensurável. Além disso, a ausência de moléculas co-estimuladoras e moléculas de antígeno leucocitário humano (HLA) de classe II, bem como a baixa expressão de HLA Classe I em MSCs, tornam-se células ideais para uso alogênico ou &quot;off-the-shelf&quot; Tanto a medicina regenerativa quanto as aplicações imunomoduladoras 14 . Aqui, descrevemos como preparar PMVs de BMSCs de ratos por extrusão através de uma membrana de policarbonato com poros de 3 μm, determinar a existência de mitocôndrias e examinar a manutenção do potencial de membrana em PMVs usando confocAl microscopia, preparar PMVs concentrados mas não agregados por centrifugação e realizar a injeção in vivo de PMVs no músculo gastrocnêmio de camundongos.

<table><tbody><tr><td>Membranas IsoporeTM</td><td>Millipore</td><td>TSTP04700</td><td>3 mm de poro</td></tr><tr><td>Unidade de filtro descartável</td><td>Xinya, Xangai, China</td><td>25 mm</td><td>Seringa de insulina de polipropileno de grau médico</td></tr><tr><td></td><td>BD</td><td>328446</td><td>1 mL</td></tr><tr><td>pN1-EGFP</td><td>Clontech</td><td>&nbsp; 6085-1</td><td></td></tr><tr><td>MitoTracker</td><td>Sondas Moleculares</td><td>M7514</td><td>Verde FM, 1 &mu; M</td></tr><tr><td>JC-1</td><td>Beyotime, Haimen, China</td><td>C2006</td><td>10 mg/mL</td></tr><tr><td>CM-DiI</td><td>Beyotime, Haimen, China</td><td>C1036</td><td>10 mM</td></tr><tr><td>PEI</td><td>Sigma</td><td>P3143</td><td>Mn = 75.000</td></tr><tr><td>Microscópio de fluorescência</td><td>Nikon</td><td>Eclipse TE 2000</td><td>com câmera CCD</td></tr><tr><td>Microscópio Confocol</td><td>Carl Zeiss</td><td>LSM 510 Meta</td><td></td></tr><tr><td>PolyJet</td><td>SigaGen</td><td>SL100688</td><td>para transfecção celular</td></tr></tbody></table>

preparação de vesículas de membranas plasmáticas de células-tronco mesenquimais de medula Óssea para terapia potencial de substituição de citoplasma

Preparation of Plasma Membrane Vesicles from Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells for Potential Cytoplasm Replacement Therapy

Nós já relatamos sobre a geração de vesículas de membrana plasmática (PMVs) através da extrusão mecânica de células de mamíferos. A fusão de PMVs com células RhoO deficientes mitocondriais restaurou a actividade mitótica em condições de cultura normais. A aterosclerose, diabetes tipo 2, doença de Alzheimer e cancro são doenças relacionadas com a idade que foram relatadas como estando associadas a múltiplos defeitos mecânicos e funcionais no citosol e organelas de uma variedade de tipos de células. As células-tronco mesenquimais da medula óssea (BMSCs) representam uma população única de células da medula óssea que possuem capacidades de auto-renovação, mantendo a sua multipotência. A suplementação de células de senescência com citoplasma jovem a partir de BMSCs autólogas através da fusão de PMVs proporciona uma abordagem promissora para melhorar ou mesmo reverter fenotipos associados à idade. Este protocolo descreve como preparar PMVs de BMSCs através de extrusão através de uma membrana de policarbonato com 3Determinam a existência de mitocôndrias e examinam a manutenção do potencial de membrana dentro de PMVs usando um microscópio confocal, concentram PMVs por centrifugação e realizam a injeção in vivo de PMVs no músculo gastrocnêmio de camundongos.

A chave para uma preparação bem-sucedida de PMVs depende muito da montagem correta da unidade de filtro ( Figura 1 ), que pode ser testada empurrando 1 mL de PBS através da membrana. Se ocorrer vazamento, volte a montar a unidade de filtro e teste novamente. No entanto, a fuga só pode ser testada de forma fiável quando as células são empurradas através da membrana. Se somente alguns PMVs forem detectados sob um microscópio regular usando o objetivo 10X, ou se o tamanho d...

As doenças relacionadas à idade estão associadas a múltiplos defeitos nos componentes do citoplasma. Aqui, apresentamos um protocolo para preparar vesículas de membranas plasmáticas de células estaminais mesenquimais de medula óssea. Esta técnica poderia potencialmente ser utilizada como um meio de terapia de substituição do citoplasma para melhorar ou mesmo reverter fenotipos associados à idade.

Preparação de Vesículas de Membranas Plasmáticas de Células-Tronco Mesenquimais de Medula Óssea para Terapia Potencial de Substituição de Citoplasma

We have previously reported on the generation of plasma membrane vesicles (PMVs) through the mechanical extrusion of mammalian cells. The fusion of PMVs ...

O objetivo geral deste procedimento é administrar uma nova terapia de substituição citoplasmática ao músculo gastrocnêmio de camundongos utilizando vesículas da membrana plasmática, ou PMVs derivadas de células-tronco mesenquimais da medula óssea de camundongos ou BMSCs. Este método pode ajudar a responder perguntas sobre se o suprimento de células com citoplasma jovem de outras BMSCs por meio da fusão com PMVs pode amenizar ou até mesmo reverter os fenótipos associados à idade. A principal vantagem desta técnica é que a encapsulação do citosol das BMSCs em PMVs pode ser imediatamente induzida por extrusão mecânica.Quando você estiver demonstrando este método, é fundamental que, ao extrudir e construir etapas, que são difíceis de aprender apenas testando, você realmente domine o processo. Para gerar as VPMs, primeiro cultive CMMOs de camundongo em meio de cultura DMEM completo em um poço de uma placa de seis poços em um incubador umidificado a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Quando as células atingirem 90% de confluência, lave o poço com 0,5 mililitros de PBS sem cálcio e desprenda as células com 0,5 mililitros de tripsina-EDTA 0,25%.Após três minutos a 37 graus Celsius, bata levemente no placo com a palma da mão algumas vezes para facilitar a dissociação celular e interrompa a digestão com um mililitro de meio de cultura. Transfira as células para um tubo cônico de cinco mililitros para centrifugação e re-suspenda o pellet em quatro mililitros de meio de cultura fresco. Em seguida, divida as células entre duas cavidades de uma nova placa de seis poços e retorne a placa ao incubador de cultura celular por 24 horas.No dia seguinte, colete as células de um poço por digestão com tripsina, conforme acabou de ser demonstrado. Re-suspenda o pellet em 0,5 mililitros de meio de cultura fresco após a coleta por centrifugação. Carregue as células em uma seringa de insulina de um mililitro e conecte a seringa a uma unidade de filtro.Pressione rapidamente o êmbolo para forçar as células através do filtro e descarte o meio extrudido. Em seguida, carregue e expulse 0,5 mililitros de meio de cultura adicional através do filtro, conforme demonstrado anteriormente, coletando o meio da segunda extrusão. Semee 150 microlitros do meio coletado em um recipiente de vidro com fundo de 35 mililitros e deixe as vesículas sedimentarem por cerca de 10 minutos.Em seguida, confirme a presença de VMPs em um microscópio invertido de contraste de fase equipado com câmera CCD, utilizando uma objetiva de 20 vezes. Para rastrear o envoltório mitocondrial e o potencial de membrana nas VMPs, marque uma cultura de CMBs com 90% de confluência com um corante mitocondrial apropriado ou com uma sonda de potencial de membrana mitocondrial, respectivamente, em meio de cultura fresco por 30 minutos a 37 graus Celsius. Em seguida, lave as células três vezes com 0,5 mililitros de PBS por lavagem e recolha as células por digestão com tripsina para a geração de VMPs, conforme demonstrado anteriormente para sua visualização por microscopia confocal.Para rastrear a localização citoplasmática das proteínas do PMV, primeiro dilua dois microgramas de DNA plasmidial superenrolado para uma cassete de expressão de EGFP e seis microlitros de reagente catiônico de transfeção em tubos individuais de 0,5 mililitro contendo 50 microlitros de DMEM sem soro. Agite os tubos em vórtex, seguido por uma breve centrifugação. Em seguida, adicione o reagente de transfeção gota a gota no tubo contendo a solução de DNA diluída.Vortexar vigorosamente a mistura de transfeção de DNA por um minuto, seguido por uma breve centrifugação e um período de incubação de 10 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, alimente uma cultura de BMSC com 30% de confluência em uma placa de seis poços com dois mililitros de meio de cultura fresco e adicione a mistura de DNA gota a gota sobre as células. 48 horas após a transfeção, recolha os BMSC por digestão com tripsina e prepare as PMVs conforme demonstrado anteriormente.As VPMs podem então ser analisadas por microscopia confocal usando uma objetiva de imersão em óleo de 100 vezes. Antes de injetar as VPMs, marque uma cultura de CMBM com um corante fluorescente rastreador de membrana em um mililitro de meio de cultura fresco a 37 graus Celsius por 30 minutos e recolha as células por digestão com tripsina. Re-suspenda as células marcadas em 0,5 mililitros de meio de cultura fresco suplementado com um micrograma de polietilenoamina e prepare as VPMs conforme demonstrado.Em seguida, concentre as VPMs por centrifugação e ressuspenda o precipitado em 100 microlitros de meio de cultura fresco com movimentos suaves de rotação. A seguir, carregue as células em uma seringa de insulina de um mililitro equipada com agulha de 30 graus e desinfete a superfície do músculo gastrocnêmio de um camundongo BALB/c anestesiado com etanol a 75%. Então, injete lentamente todo o volume das VPMs no músculo e permita que o animal se recupere sob uma lâmpada de calor.Após 12 horas, espalhe etanol a 75% sobre o músculo, abra a pele com uma tesoura e retire todo o músculo gastrocnêmio em ambas as extremidades. Lave o músculo com PBS e coloque-o sob um microscópio de fluorescência. Utilizando a objetiva de 20 vezes, remova os fragmentos de tecido muscular não fluorescentes com uma lâmina de barbear afiada e pique os fragmentos restantes, fortemente fluorescentes em vermelho, em cubos de aproximadamente nove milímetros cúbicos.Incorpore cada cubo em um meio de temperatura de corte ideal. Em seguida, submerja os cubos em nitrogênio líquido por cinco minutos. E armazene as amostras de tecido a menos 20 graus Celsius até a análise.As PMVs geradas a partir de CMM demonstraram predominantemente exibir um tamanho na faixa de cerca de três micrômetros de diâmetro, conforme analisado por microscopia de contraste de fase utilizando objetiva de 20 vezes. A transfeção de CMM com um cassete de expressão fluorescente por 48 horas ilustra o encapsulamento citoplasmático da proteína EGFP pelas PMVs. Além disso, o uso de um corante fluorescente mitocondrial revela que uma grande fração das PMVs contém mitocôndrias.A maioria das quais apresenta coloração positiva para um corante de potencial de membrana mitocondrial, indicando a funcionalidade das mitocôndrias. O tratamento com polietilenoamina antes da administração em vivo impede a agregação das VPMs durante a sua concentração por centrifugação para remoção de componentes celulares. A marcação com corante de membrana das CMMs antes da geração das VPMs facilita a obtenção de VPMs rastreáveis por fluorescência.De fato, a visualização de cortes congelados do músculo gastrocnêmio após a administração intramuscular de PMVs marcadas indica a entrega das PMVs ao citoplasma das células musculares, provavelmente por endocitose. Ao tentar o procedimento de geração de PMVs, é importante lembrar-se de carregar a seringa com o número apropriado de células e pressionar rapidamente o êmbolo ao passar as células através do filtro. Após seu desenvolvimento, esta técnica abriu caminho para pesquisadores na área da terapia com células-tronco explorarem o tratamento de doenças relacionadas à idade em camundongos.Após assistir a este vídeo, você deverá ter uma boa compreensão de como preparar PMV a partir de BMSC para a entrega de citoplasma no músculo gastrocnêmio de camundongos.

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Uma técnica experimental para o tratamento de defeitos osteocondrais na articulação do joelho do coelho é descrito. A implantação de células estaminais mesenquimais alogénicas para defeitos osteocondrais proporciona um desenvolvimento promissor no campo da engenharia de tecidos. A preparação de fibrina de...

Tratamento de defeitos osteocondrais no Joelho do Coelho por Implantação de alogênico Células-Tronco Mesenquimais em coágulos de fibrina

Este vídeo demonstra um método para gerar vesículas de membrana plasmática a partir de células-tronco da medula óssea, passando-as rapidamente por um filtro de membrana. Esses PMVs mostram potencial para terapia de reposição citoplasmática.

Geração de vesículas da membrana plasmática a partir de células-tronco da medula óssea

As células-tronco mesenquimais (CTMs) têm potencial de diferenciação em relação à linhagem osteoblástica quando estimuladas com fatores solúveis ou biomateriais específicos. Este trabalho apresenta uma nova opção para a entrega de MSCs a partir de membrana amniótica humana (AM-hMSCs) que emprega a matriz óssea bovina Nukbone (NKB) como um andaime.

Isolamento de mesenquimais humanas células-tronco e seu cultivo na matriz óssea Porous

As células-tronco mesenquimais são geralmente obtidas da medula óssea e requerem cultura de expansão. Quando as amostras coagulam antes do processamento, um protocolo usando a droga trombolítica (enzimática) uroquinase pode ser aplicado para degradar o coágulo. Assim, as células são liberadas e disponibilizadas para cultura de expansão. Este protocolo fornece uma alternativa rápida e barata à reamostragem.

Um método enzimático para a Salvação da Células-Tronco Mesenquimais de amostras Clotted Medula Óssea

Aqui descrevemos um protocolo otimizado e altamente reprodutível para isolar células progenitoras mesodérmicas (MPCs) da medula óssea humana (hBM). As MPCs foram caracterizadas por citometria de fluxo e expressão de nestina. Eles mostraram a capacidade de dar origem a culturas de células semelhantes a MSC de crescimento exponencial, mantendo seu potencial angiogênico.

Isolamento de células progenitoras Mesangiogenic (PPM) de humano Medula Óssea

A cultura de células estromais mesenquimais humanas (hMSCs) com soro autólogo, reduz os riscos de rejeição por material de xenogénico e outros efeitos negativos. Também permite a recuperação de um subconjunto de células progenitoras mesodérmica, que pode fornecer as hMSCs frescos. Incorporação hMSCs em um coágulo de fibrina autóloga permite fácil manuseio e implantação cirúrgica eficaz.

Estromais mesenquimais cultura de células e Entrega em condições autólogas: Uma abordagem inteligente para aplicações ortopédicas

O presente protocolo descreve a centrifugação diferencial para isolar e caracterizar EVs representativos (exossomos e microvesículas) de CTMs humanas cultivadas. Outras aplicações desses EVs também são explicadas neste artigo.

Isolamento, Caracterização e Aplicação Terapêutica de Vesículas Extracelulares a partir de Células-Tronco Mesenquimais Humanas Cultivadas

O presente protocolo descreve um método econômico para purificar, expandir e caracterizar células-tronco mesenquimais da medula óssea (BMSCs) altamente homogêneas de camundongos. Essa abordagem facilita a aquisição de grandes quantidades de BMSCs com alto potencial de proliferação e diferenciação, apoiando modelos de camundongos e avançando na pesquisa pré-clínica.

Purificação, expansão e fenotipagem baseada em citometria de fluxo de células-tronco mesenquimais da medula óssea derivadas de camundongos

Esse protocolo visa introduzir um método para produzir e purificar biomiméticos extracelulares derivados de células-tronco mesenquimais (MSC) para terapia gênica. A nanovesícula é confinada com bicamadas lipídicas derivadas da MSC e encapsula AAVs recombinantes que carregam o gene de interesse no lúmen. Essa nanovesícula oferece um vetor aprimorado para a entrega de genes in vivo .

Desenvolvimento de Nanovesículas Envolvidas em Membrana por Células-Tronco Mesenquimatosas para Entrega Aprimorada de Genes

Descreve-se aqui métodos para a dissecação de tecidos fetais e maternas de placenta humana, seguido por isolamento e expansão de células estaminais mesenquimais / estroma (MSC) a partir desses tecidos.

Isolamento e expansão de CTM / células estromais derivadas de placenta humana Tissue

Aprenda a preparar vesículas de membrana plasmática de células-tronco mesenquimais de medula óssea para terapia de substituição citoplasmática. Este método permite encapsular citosol jovem e reverter fenótipos associados ao envelhecimento.

Preparação de Vesículas de Membranas Plasmáticas de Células-Tronco Mesenquimais de Medula Óssea para Terapia Potencial de Substituição de Citoplasma (Vídeo) | JoVE Journal

Preparação de Vesículas de Membranas Plasmáticas de Células-Tronco Mesenquimais de Medula Óssea para Terapia Potencial de Substituição de Citoplasma

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