19 de março de 2018
Este protocolo descreve o processo de avaliação de cura os tendões em ratos que foram injetados com plasma rico de alogênico plaquetas (PRP) ou solução salina após a remoção de parte do tendão de Aquiles. O progresso da cicatrização do tendão é avaliado em vários pontos de tempo usando diferentes tipos de análises.
O objetivo geral deste procedimento é observar os efeitos de uma única injeção de plasma rico em plaquetas, ou PRP, na resistência e no processo de cicatrização de tendões de Aquiles de ratos seccionados cirurgicamente em vários momentos. Este método pode ajudar a responder a perguntas rápidas sobre o campo musculoesquelético sobre lesões tendíneas. A principal vantagem dessa técnica é que os procedimentos cirúrgicos, biomecânicos e de progressão do PRP são bem padronizados.
As implicações dessas técnicas se estendem ao uso de PRP em humanos, pois esses tipos de lesão e o processo de cicatrização do tendão são semelhantes entre ratos e humanos. Embora esse método possa fornecer informações sobre a preparação do PRP para lesões musculoesqueléticas, essa técnica de injeção também pode ser aplicada a outros sistemas, como doenças cardíacas ou de pele. A demonstração visual do método é muito importante, pois as etapas cirúrgicas e biomecânicas requerem reprodutibilidade consistente para obter os melhores resultados.
Comece pesando e marcando o rato. Depois de confirmar o nível adequado de sedação por pinça do dedo do pé, aplique gotas de água nas córneas do animal e remova os pelos do membro posterior esquerdo. Desinfete a pele exposta com uma diluição de um a 10 de solução de iso-betadina e coloque o animal em uma almofada de aquecimento de 20 graus Celsius sob um microscópio de dissecação em decúbito lateral, com o membro posterior esquerdo na posição superior.
Segure a pata do membro posterior esquerdo com uma pinça e faça uma incisão lateral na pele de 20 a 25 milímetros ao redor do tendão de Aquiles. Usando uma tesoura fina, disseque a fáscia para expor o complexo do tendão de Aquiles e remover o tendão plantar. Corte o tendão de Aquiles transversalmente, cinco milímetros proximal à sua inserção no calcâneo, e remova uma porção de cinco milímetros de comprimento.
Em seguida, use fio reabsorvível e continue com suturas para fechar a fáscia e a pele, e coloque o rato sob uma fonte de calor com monitoramento até a recuperação total. Enquanto os animais receptores estão se recuperando, colete 20 mililitros de sangue total de um coração de rato doador por animal experimental em tubos individuais contendo citrato de sódio tamponado a 3,2%. Para obter o plasma rico em plaquetas, centrifugue o sangue e use uma pipeta de transferência de plástico para colher cuidadosamente a fase superior contendo PRP em um segundo tubo de plástico.
Determine o volume de PRP coletado e meça a contagem de plaquetas em um analisador hematológico. Centrifugue novamente o PRP e transfira cuidadosamente o sobrenadante para um novo tubo de plástico. O volume restante no tubo PRP deve ser em torno de 2/3 do volume necessário para atingir 2,5 vezes 10 elevado à sexta plaqueta por microlitro.
Em seguida, ressuspenda suavemente o pellet de plaquetas com pipetagem. Meça a contagem de plaquetas deste plasma rico em plaquetas concentrado, adicionando de volta o volume apropriado de plasma autólogo pobre em plaquetas para atingir a concentração alvo, conforme necessário. Ative as plaquetas com 50 microlitros de cloreto de cálcio por mililitro de PRP por cerca de uma hora em temperatura ambiente.
Em seguida, coloque as plaquetas em uma seringa de um mililitro equipada com uma agulha de calibre 21 e injete 50 microlitros de plaquetas diretamente no local da sutura de cada animal. No ponto final experimental apropriado, raspe o membro posterior esquerdo do animal experimental anestesiado e posicione o rato sob um microscópio de dissecação, conforme demonstrado. Segurando a pata com os dedos, faça uma incisão de 10 milímetros no local da cirurgia para expor o tríceps sural.
Para remover o tendão de Aquiles, corte o osso calcâneo transversalmente, cinco a 10 milímetros distal à sua fixação e disseque um pedaço do tríceps sural grande o suficiente para caber na mandíbula criogênica. Use uma pinça para colocar a amostra imediatamente na mandíbula superior da mandíbula criogênica e feche o instrumento. Coloque a mandíbula criogênica verticalmente em uma máquina de teste universal e fixe o osso calcâneo entre os grampos inferiores.
Para calcular a área da seção transversal, coloque as câmeras perpendiculares entre si. Adicione nitrogênio líquido em ambas as bacias da mandíbula superior para congelar o músculo a uma ordem de magnitude mais rígida que o tendão, para que ele não se deforme durante o teste de tração. Quando a zona de congelamento atingir a borda da braçadeira de metal, defina a taxa de deslocamento da máquina a uma velocidade constante de um milímetro por segundo até a ruptura e inicie o teste de tração, usando um computador para registrar a resistência à tração final em Newtons.
Para levar em conta as diferenças nas áreas da seção transversal dos tendões em cicatrização, normalize a resistência à tração final para uma área unitária que represente o estresse mecânico experimentado pelo tecido. Então, quando o tendão se romper, congele as amostras de tendão rompidas em nitrogênio líquido e armazene-as a 80 graus Celsius negativos até a extração de RNA e análise de RTPCR. Neste experimento representativo, uma força maior foi necessária para induzir a ruptura do tendão no grupo injetado com PRP do que no grupo controle tratado com solução salina em todos os momentos testados, sugerindo um processo de cicatrização mais robusto ou melhores propriedades mecânicas nos animais tratados com PRP.
Embora o grupo PRP tenha demonstrado uma dispersão intragrupo maior do que o grupo salino, a área de secção transversa dos tendões foi determinada como maior no grupo injetado com PRP nos dias 15 e 30 após a indução da lesão. Além disso, a coloração tricrômica de Masson revelou uma maior presença de colágeno fibrilar, um componente chave na morfologia e força do tendão, em animais tratados com PRP nos dias cinco e 15, com uma intensidade de coloração semelhante observada em ambos os grupos no dia 30 após a injeção. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como induzir lesões padrão em ratos e amostrar o tendão para avaliar seu processo de cicatrização após uma injeção de PRP.
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Este protocolo descreve a avaliação da cicatrização tendínea em ratos injetados com plasma rico em plaquetas (PRP) ou solução salina após cirurgia do tendão de Aquiles. O processo de cicatrização é avaliado em diferentes momentos utilizando análises padronizadas.
Este protocolo fornece um método padronizado para avaliar a cicatrização tendínea em um modelo pré-clínico com roedores, permitindo a redução de riscos mecanicistas das terapias com plasma rico em plaquetas (PRP) para indicações musculoesqueléticas. Ao quantificar a resistência biomecânica, o depósito de colágeno e as alterações transcriptômicas em múltiplos pontos temporais, a abordagem apoia a validação de alvos e a confiança preditiva no estágio inicial de descoberta. O modelo cirúrgico reprodutível de lesão e o fluxo de trabalho de preparação do PRP facilitam o alinhamento entre equipes de biologia de descoberta e pesquisa translacional.
O método se insere no continuum de descoberta a pré-clínico, apoiando a verificação de hipóteses na fase inicial de descoberta, a padronização de ensaios na triagem e a validação de eficácia na pesquisa translacional.