Name: A abordagem de amostragem de 4 embarcações para estudos integrativos de fisiologia placentária humana In Vivo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-02T12:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 17 s
Description: Aprenda a amostragem de quatro vasos para estudar a fisiologia placentária humana in vivo durante cesariana. Este método integra coleta de sangue materno e fetal com ultrassonografia para investigar transferência de nutrientes e metabolismo placentário.

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Em primeiro lugar, agradecemos sinceramente as mães que participaram deste projeto. Em seguida, reconhecemos todo o pessoal que auxiliou e facilitou o procedimento de amostragem, o Anestesista, o enfermeiro anestesista e os enfermeiros cirúrgicos. O projeto não teria sido possível sem o financiamento da Autoridade Regional de Saúde do Sudeste da Noruega e da Unidade Norueguesa de Assessoria em Saúde da Mulher, Universidade de Oslo e financiamento local fornecido pelo Hospital Universitário de Oslo.

O estudo foi aprovado pelos funcionários de proteção de dados do Hospital Universitário de Oslo e do Comitê Regional de Ética em Pesquisa Médica e de Saúde, no sul da Noruega 2419/2011. Todos os participantes assinaram um consentimento informado e esclarecido na inclusão. 1. Preparações NOTA: Uma linha de tempo para os procedimentos está descrita na Figura 1 . <img alt="figura 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55847/55847fig1.jpg" /> Figura 1 : Diagrama de fluxo descrevendo o tempo e o pessoal envolvido no procedimento de amostragem de 4 embarcações. Uma cor representa uma pessoa. A descrição detalhada do método é dada no protocolo. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55847/55847fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <ol><li> Funcionários <ol><lI&gt; Certifique-se de que todos os funcionários necessários estão disponíveis: um especialista em medicina fetal altamente qualificado que realiza as medidas de ultra-som, dois obstetras que realizam a cirurgia, um dos obstetras e duas enfermeiras que coletam as amostras, um assistente que administra as análises de gases sangüíneos e um assistente que administra a Outras amostras de forma consecutiva e imediatamente após a coleta. NOTA: Nos casos de coleção mais avançada de tecido placentário, é necessária uma pessoa adicional. </li></ol></li><li> Equipamento <ol><li> Prepare o equipamento, 50 mL de solução salina tamponada com fosfato 1 M (PBS), 25 mL de solução estabilizadora de ARN frio e 5 x 0,5 mL de composto de temperatura de corte ideal (OCT). Rotule os aspiradores e tubos. Consulte a lista provisória de equipamentos. </li></ol></li></ol> 2. Características maternas <ol><li> Registre as características clínicas e não clínicas maternas na inclusão e repita as questões relevantes e euAsurações, incluindo peso, no momento da entrega. Registre a duração do período de jejum antes da cesariana e quaisquer episódios hipotensivos que ocorram durante a cirurgia. Nota: Inclua o conjunto de dados clínicos materno mínimo relatado em uma publicação recente do Laboratório Global de Gravidez (COLAB). Este artigo também inclui alguns aspectos muito importantes na escolha das populações estudadas e deve ser abordado ao planejar o estudo 18 . </li><li> Considere registrar características paternas, incluindo etnia, idade e índice de massa corporal (IMC). </li></ol> 3. Ultrassom <ol><li> Execute o exame de ultra-som Doppler no dia da entrega, com as mulheres em estado de jejum. Realizar o exame durante um período de quiescência fetal, com a mulher em posição semi-supina, inclinada ligeiramente lateralmente oposta à região de interesse, a fim de evitar a compressão da aorta e veia cava. Monitorar a saída emTensão pelos índices mecânico e térmico na tela. </li><li> Veia umbilical <ol><li> Visualize a veia umbilical em uma transição sagital ou oblíqua do abdômen fetal. Meça o diâmetro interno do vaso na porção reta da veia umbilical intra-abdominal, antes de qualquer ramo visível. Use o modo B regular e visualize o vaso em um ângulo de insônia perpendicular para medições de diâmetro e mantenha vários quadros ótimos para medições posteriores para minimizar o efeito de mudanças de diâmetro pulsátil. <ol><li> Repita as medidas de cinco a dez vezes 19 . </li></ol></li><li> No mesmo local, use o ultra-som Doppler e ajuste a sonda para obter um ângulo de insonção tão baixo quanto possível (sempre &lt;30 °) para medir a velocidade máxima calculada no tempo (TAMX). Obtenha a velocidade durante um período de 3 a 5 s (fluxo não pulsante). </li></ol></li><li> Artéria uterina <ol><li> Use DopplerUltra-som para visualizar a artéria uterina à medida que atravessa a artéria ilíaca externa, imediatamente depois dele se ramifica da artéria ilíaca interna. Ajuste a sonda neste site para obter um ângulo de insonação baixo (sempre &lt;30 °) e medir TAMX. Obtenha a velocidade como a velocidade média de três ciclos de coração. </li><li> Como é improvável que tenha um ângulo perpendicular no mesmo local que o TAMX é medido, siga o vaso distalmente para obter um ângulo correto para medições de diâmetro tão próximas dos locais de medidas de diâmetro quanto possível. Exclua as medidas do diâmetro se qualquer vaso visível se afastar antes deste site, conforme avaliado pelo ultra-som Doppler colorido. <ol><li> Use o modo B regular e visualize o vaso em um ângulo de insônia perpendicular para medições de diâmetro e mantenha vários quadros ótimos para medições posteriores para minimizar o efeito de mudanças de diâmetro pulsátil. </li><li> Repita as medidas de cinco a dez vezes 19 . </li></ol></<html> Li&gt; </ol></li><li> Observe a posição da placenta. </li></ol> 4. Amostragem de sangue de 4 vasos NOTA: A linha de tempo para os procedimentos está descrita na Figura 1 e uma visão geral das amostras é ilustrada na Figura 2 . <img alt="Figura 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55847/55847fig2.jpg" /> Figura 2 : Ilustração esquemática da Vasculatura Placentária e dos Sites de Amostragem. No método de amostragem de 4 embarcações amostras de sangue são extraídas da veia uterina, a artéria radial (como um proxy para a artéria uterina) e as artérias e veias umbilicais. O fluxo sanguíneo na artéria uterina e a veia umbilical são medidos por ultra-som. As amostras de tecido da placenta são coletadas. Ilustração: Øystein H. Horgmo, Universidade de Oslo.5847fig2large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <ol><li> Procedimentos de segurança <ol><li> Forneça todo o pessoal na operação teatro com luvas, roupas cirúrgicas, máscaras e maquiagem. </li><li> Fornecer aos cirurgiões e ao pessoal de pesquisa em contato com o campo de operação com trajes, máscaras, chapelaria, vestidos e luvas duplas cirúrgicas. Os óculos são opcionais. </li><li> Forneça pessoal que manipule as amostras de sangue com luvas. </li><li> Forneça pessoal que manipule as amostras de placenta com luvas e máscara cirúrgica. A homogeneização requer o uso de capuzes. </li></ol></li><li> Preparação no teatro de operações <ol><li> Dê um briefing e entregue o equipamento a todo o pessoal que ajudará a amostragem antes do início da cirurgia. </li><li> Dirija-se ao enfermeiro de anestesiologista e anestesiologista que irá auxiliar no acesso arterial e venoso periférico necessário e assegurará queNenhum líquido é administrado por via intravenosa antes da amostragem. </li><li> Dê três seringas (10 mL) sem agulhas para a pessoa que assiste com a amostra de veia antecubital e duas seringas (uma 20 mL e uma 10 mL) e uma seringa de sangue (com heparina) para a pessoa que auxilia na artéria radial. </li><li> Prepare duas seringas estéreis (20 mL), cinco seringas estéreis (10 mL), três &quot;agulhas de borboleta&quot; e duas seringas de gás de sangue para o campo de operação. </li></ol></li><li> Acesso a vasos sanguíneos. <ol><li> Siga o procedimento padrão antes da cesariana para assegurar o acesso periférico intravenoso (iv). NOTA: A veia antecubital é preferível porque é mais fácil extrair amostras deste site. </li><li> Localize a artéria radial no pulso por ultra-som ou por palpação. Após 0,5 mL de analgesia subcutânea de lidocaína, coloque uma linha arterial na artéria radial. Abandone a amostragem deste site em caso de três inserções com falha, ouSe a mulher experimentar dor durante a inserção. NOTA: Realize o procedimento cirúrgico da cesariana de acordo com o procedimento padrão. Somente os ajustes necessários para o processo de amostragem são sublinhados abaixo. </li></ol></li><li> Amostras de sangue materno NOTA: Obtenha as três amostras de sangue materno (veia uterina, artéria radial e veia antecubital) simultaneamente antes da incisão uterina. <ol><li> Para a veia uterina, depois de abrir a cavidade abdominal, use um retractor para levantar a parede abdominal e exponha os ramos principais das veias uterinas nos lados ântero-laterais do útero. Obtenha sangue dos ramos da veia uterina no mesmo lado da placenta sempre que possível ou use o plexo da veia mais proeminente se a placenta estiver localizada na linha média uterina. <ol><li> Insira uma agulha de borboleta em uma seringa de gás no sangue na veia uterina com um ângulo de aproximadamente 30 graus e coleça o sangue através de uma aspiração suave para evitarHemólise. Ao assegurar cuidadosamente a posição iv da agulha de borboleta, substitua a seringa de gás cheia de sangue por uma seringa de 20 mL e 10 mL consecutivamente. NOTA: O melhor acesso é melhor assegurado quando se posiciona no lado contralateral da veia uterina escolhida. </li></ol></li><li> Para a artéria radial, aspirar da linha intra-arterial. Descarte os primeiros 5 mL e, em seguida, aspirar 3 mL em seringa de heparina para análises de gases no sangue, seguido de 3 mL em duas seringas (20 + 10 mL). </li><li> Para a veia antecubital, aspirar gentilmente do cateter intravenoso. Descarte os primeiros 5 mL, e depois aspirar 30 mL em três seringas (10 mL). </li><li> Realize uma inspeção final do local de amostragem na veia uterina antes de começar a fechar o abdômen. </li></ol></li><li> Amostras de sangue fetal <ol><li> Quando a criança nasce, imediatamente aspirar sangue da artéria umbilical, sem apertar o cordão umbilical ou entregar a placenta. Comece o conhecimentoH, a seringa para análises de gases sanguíneos, e siga com três seringas de 10 mL, se possível. </li><li> Quando as amostras arteriais estiverem seguras, prenda o cordão e entregue a criança à parteira antes da amostragem da veia umbilical (gás de sangue e 20 + 10 mL de seringas). NOTA: Obtenha todas as amostras umbilicais dentro de segundos do parto e com a placenta in situ, a menos que tenha desprendido espontaneamente. </li><li> Siga as recomendações norueguesas sobre o aperto do cordão tardio. Em caso de criança com dificuldades, abrace e corte o cordão imediatamente e entregue a criança à parteira e ao neonatologista. </li></ol></li><li> Manuseio de amostras de sangue <ol><li> Coloque as seringas de sangue no gelo enquanto prepara o resto das amostras de sangue e analise-as em um analisador de gases no sangue dentro de 5 min. </li><li> Transfira as amostras de sangue imediatamente para vacutainers e coloque os tubos de plasma em um balancim por 1 a 2 minutos antes de colocá-los no gelo. Deixe os tubos de soro no trabalhoBanco de torres para se instalar por 30 minutos. NOTA: Este é um passo crítico no procedimento que precisa de atenção extra porque amostras de todos os cinco sites devem ser preparadas simultaneamente para garantir boa qualidade. </li><li> Centrifugar as amostras de plasma o mais rápido possível e dentro de 30 min, a 6 ° C, 2.500 xg por 20 min. </li><li> Após 30 min, centrifugar as amostras de soro à temperatura ambiente durante 10 min a 2.500 x g. </li><li> Alíquota os sobrenadantes cuidadosamente para 2 mL de tubos de cryo, deixando 0,5 mL do sobrenadante acima do grânulo para garantir plasma livre de plaquetas. </li><li> Armazene as amostras a -80 ° C. </li></ol></li></ol> 5. Coleção de tecido placentário <ol><li> Coloque a placenta plana na bandeja de dissecação gelada o mais rápido possível após a entrega. Fotografar e medir o diâmetro mais longo e o diâmetro a 90 graus. </li><li> Pesar a placenta. </li><li> Registre o peso, os dois diâmetros, qualquer gPatologia ross, número de vasos no cordão e o intervalo de tempo desde a entrega até quando a placenta foi colocada no gelo. NOTA: envie a placenta para o exame patológico se for clinicamente indicado. </li><li> Coloque a placenta com a superfície materna voltada para cima e identifique 4 a 5 locais de amostragem localizados aleatoriamente em cada quadrante da placenta, evitando áreas de patologia franca. Remova a decidua usando uma tesoura para cortar 3 a 5 mm da superfície materna. Colecione um tecido vilão de 1 a 2 cm 3 de cada local. </li><li> Lave o tecido recolhido suavemente em 50 mL de PBS 1M frio. Divida em várias peças de cada local de amostragem e uma alíquota. Nota: O tamanho das peças da placenta dependerá das análises planejadas. </li><li> Adicione alíquotas de amostras de tecido de 0,1 - 0,5 cm 3 a 5 tubos de cryo e congelamento instantâneo em nitrogênio líquido. </li><li> Adicione pequenos pedaços de 0,1 - 0,2 cm 3 ao tubo com 25 mL de solução de estabilização de ARN. Loja às 46; C por 24 h, descarte a solução de estabilização de ARN e substitua-a. Congelar. </li><li> Adicione pedaços de 0,5 cm 3 aos 5 tubos cryo com 0,5 mL de OCT, adicione-os com OCT, misture e congelem. </li><li> Armazene as amostras a -80 ° C até a análise. NOTA: Burton et al. Fornece uma excelente visão geral dos aspectos práticos da amostragem da placenta de acordo com as análises planejadas. 20 Considere preparar o tecido remanescente para o isolamento das membranas microvilas e basais e coletar o tecido decidual por técnica de sucção de vácuo. 21 , 22 </li></ol> 6. Características neonatais <ol><li> Registre as características neonatais, incluindo Apgar-score (1, 5 e 10 min), sexo, peso, comprimento, idade gestacional e admissão na Unidade de Terapia Intensiva do Recém-Nascido (comprimento e resultado da estadia). </li><li> Considere medir a composição do corpo neonatal por medidas antropométricas, deslocar o arPletismografia ou dupla absorciometria de raios-X. 23 , 24 </li></ol> 7. Cálculos <ol><li> Assuma composição sanguínea semelhante na artéria radial e uterina e calcula a diferença de concentração arteriovenosa uteroplacentária. Diferença de concentração arteriovenosa uteroplacentária = C A - C V Diferença de concentração venosa-arterial umbilical - arterial = C v -C a Onde C é concentração com subscritos: A, a artéria radial; V, a veia uterina; V a veia umbilical e a, a artéria umbilical. </li><li> Calcule o fluxo sanguíneo do volume, mL / min (Q): <img alt="Equação 1" src="/files/ftp_upload/55847/55847eq1.jpg" /> Onde D é o diâmetro do vaso (cm), TAMX é a velocidade máxima calculada no tempo e h é o coeficiente para o perfil espacial da velocidade do sangue. Use 0.5 como o coeficiente para a veia umbilical e0,6 para a artéria uterina 25 , 26 . </li><li> Calcule a aceitação e liberação da placenta de acordo com o princípio de Fick: Captação uteroplacental = ( C A - C V ) x Qm Captação fetal = ( C v - C a ) X Q f Subscritos: m, materno e f, fetal. </li></ol>

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<li>Wu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamate-glutamine+cycle+and+exchange+in+the+placenta-fetus+unit+during+late+pregnancy%5BTitle%5D)+AND+%22Amino+Acids%22%5BJournal%5D)">Glutamate-glutamine cycle and exchange in the placenta-fetus unit during late pregnancy.</a> Amino Acids. 47 (1), 45-53 (2015).</li>
<li>Tuckey, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progesterone+synthesis+by+the+human+placenta%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Progesterone synthesis by the human placenta.</a> Placenta. 26 (4), 273-281 (2005).</li>
<li>Simmons, M. A., Meschia, G., Makowski, E. L., Battaglia, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+metabolic+response+to+maternal+starvation%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Res%22%5BJournal%5D)">Fetal metabolic response to maternal starvation.</a> Pediatr Res. 8 (10), 830-836 (1974).</li>
<li>Simmons, M. A., Jones, M. D., Battaglia, F. C., Meschia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insulin+effect+on+fetal+glucose+utilization%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatr+Res%22%5BJournal%5D)">Insulin effect on fetal glucose utilization.</a> Pediatr Res. 12 (2), 90-92 (1978).</li>
<li>Bujold, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+supporting+that+the+excess+of+the+sVEGFR-1+concentration+in+maternal+plasma+in+preeclampsia+has+a+uterine+origin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Matern+Fetal+Neonatal+Med%22%5BJournal%5D)">Evidence supporting that the excess of the sVEGFR-1 concentration in maternal plasma in preeclampsia has a uterine origin.</a> J Matern Fetal Neonatal Med. 18 (1), 9-16 (2005).</li>
<li>Jansson, T., Aye, I. L., Goberdhan, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+emerging+role+of+mTORC1+signaling+in+placental+nutrient-sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">The emerging role of mTORC1 signaling in placental nutrient-sensing.</a> Placenta. 33, Suppl 2 23-29 (2012).</li>
<li>Cetin, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+transport+of+amino+acids+in+normal+and+growth-restricted+pregnancies%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Obstet+Gynecol+Reprod+Biol%22%5BJournal%5D)">Placental transport of amino acids in normal and growth-restricted pregnancies.</a> Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 110, Suppl 1 50-54 (2003).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

<html> O método de amostragem de 4 vasos da placenta é relevante para três propósitos principais. Primeiro, pode ser usado para estudar como substâncias específicas são absorvidas pela placenta do lado materno e, possivelmente, transferidas para a circulação umbilical e para o feto, conforme demonstrado pelos estudos de glicose e aminoácidos. Em segundo lugar, o método é altamente relevante para estudar substâncias produzidas pela placenta e liberadas para a circulação materna ou fetal, conforme demonstrado pelos resulta...

De acordo com o National Institutes of Health, EUA, a placenta é o órgão menos entendido no corpo humano 1 , 2 , 3 . É difícil acessar e estudar a placenta humana in vivo sem impor riscos éticos na gravidez em curso. Os estudos da função placentária no ser humano são, portanto, amplamente baseados em modelos in vitro e ex vivo . A maioria dos estudos anteriores in vivo de transporte placentário e metabolismo foram realizados em animais 4 , 5 , 6 . No entanto, como a estrutura e as funções da placenta variam consideravelmente entre as espécies, a extrapolação dos resultados dos animais aos humanos deve ser feita com cautela. Apenas alguns estudos humanos menores in vivo investigaram a absorção placentária e fetal e o transporte sob condições fisiológicas normais.Todas as condições, e nenhuma explorou a transferência integrada de vários compostos 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 . Esses estudos fundamentais ilustram que os estudos in vivo da placenta humana são viáveis ​​e que podem servir para vários propósitos. Em primeiro lugar, os conceitos atuais de funções placentárias derivadas principalmente de estudos in vitro , ex vivo e em animais podem ser testados em um ambiente humano e, portanto, fornecem uma visão nova e mais específica da placenta humana. Em segundo lugar, as propriedades da placenta disfuncional associada ao crescimento fetal aberrante, pré-eclâmpsia, diabetes materna, síndrome metabólica e outros distúrbios metabólicos maternos podem ser melhor caracterizados. Em terceiro lugar, os estudos humanos in vivo proporcionam uma oportunidade para desenvolver o diagnósticoFerramentas tic e preditivas de função placentária. Neste contexto, buscamos estabelecer uma coleção abrangente de dados fisiológicos para investigar a função placentária humana in vivo. Durante uma cesariana planejada, exploramos o acesso intraabdominal à veia uterina para coletar amostras de sangue dos vasos entrantes e salientes nos lados materno e fetal da placenta (o método de amostragem de 4 vasos). Essas amostras são usadas para calcular as diferenças de concentração arteriovenosa pareadas de nutrientes e outras substâncias 14 . Além disso, medimos o fluxo sangüíneo de volume em ambos os lados da placenta por ultra-som. Conseqüentemente, a captação placentária e fetal de qualquer composto pode ser quantificada. Além disso, é possível determinar as substâncias liberadas pela placenta para as circulações materna e fetal 15 , 16 , 17 . Quando combinarD com parâmetros clínicos de mãe e filho e análises de tecidos placentários e outros tecidos relevantes, este método tem o potencial emocionante para integrar muitos aspectos das funções placentárias in vivo nos mesmos pares mãe-feto.

<table><tbody><tr><td><forte>Composição corporal materna</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Escala de impedância</td><td>Tanita</td><td></td><td>ou similar</td></tr><tr><td><forte>Medições de ultrassom&nbsp; Máquina de ultrassom </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sequoia 512</td><td>Acuson</td><td></td><td>equipada com um transdutor curvo com Doppler colorido e de onda de pulso (largura de banda de frequência 2 - 6 MHz)</td></tr><tr><td><forte>amostras de sangue</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>cânula arerial</td><td>BD Medical</td><td>682245</td><td>ou similar</td></tr><tr><td>Seringa de ponta Luer excêntrica de 20 cc sem agulha</td><td>Termo</td><td>SS-20ES</td><td>ou similar. 3 necessários.</td></tr><tr><td>Seringa de ponta Luer excêntrica de 10 cc sem agulha</td><td>Termo</td><td>SS-10ES</td><td>ou similar. 9 necessários.</td></tr><tr><td>Seringa Luer 5 cc 6% sem Agulha</td><td>Termo</td><td>SS-05S1</td><td>ou similar. 2 necessários.</td></tr><tr><td>Seringa de gases sanguíneos arteriais&nbsp;</td><td>Radiometer Medical</td><td></td><td>ou similar. 4 necessários.</td></tr><tr><td>Agulha alada estéril conectada a tubo flexível,</td><td>450081 Greiner Bio-One</td><td></td> de calibre 21 <td>(destinado a uso único).3 necessário.</td></tr><tr><td>Tubo de aspiração 6 mL EDTA&nbsp;</td><td>Greiner Bio-One</td><td>456043</td><td>ou similar. Etiqueta com local de amostra. 10 necessários.</td></tr><tr><td>Tubo de vácuo 5 mL LH Separador de heparina de lítio</td><td>Greiner Bio-One</td><td>456305</td><td>ou similar. Etiqueta com local de amostra. 5 necessários.</td></tr><tr><td>Tubo de vácuo 6 mL Ativador de Coágulo de Soro</td><td>Greiner Bio-One</td><td>456089</td><td>ou similar. Etiqueta com local de amostra. 5 necessários.</td></tr><tr><td>Tubo de aspirador 3 mL&nbsp; 9NC Coagulação citrato de sódio 3.2%</td><td>Greiner Bio-One</td><td>454334</td><td>ou similar. Etiqueta com local de amostra. 5 necessários.</td></tr><tr><td>Frascos criogênicos, 2,0 mL</td><td>de 430488 Corning</td><td></td><td>ou similar. Rótulo com local de amostra, soro/tipo de plasma e ID. 90 necessário.</td></tr><tr><td>Bandejas marcadas para transportar as seringas</td><td></td><td></td><td>para transportar as amostras de sangue na sala de operações</td></tr><tr><td>Balancim</td><td></td><td></td><td>para mistura suave das amostras</td></tr><tr><td>Gelo</td><td></td><td></td><td>em caixa de isopor</td></tr><tr><td>Nitrogênio</td><td></td><td></td> líquido <td>em recipiente apropriado</td></tr><tr><td><amostras de placenta>forte</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metal bandeja</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gelo</td><td></td><td></td><td>em caixa de isopor</td></tr><tr>Balança <td></td><td></td><td></td><td>calibrada</td></tr><tr><td>Régua</td><td></td><td></td><td></td>de metal</tr><tr><td>1 M Fosfato tamponado solução salina</td><td>Sigma</td><td>D1408</td><td>ou similar. Diluir 10 M para&nbsp; 1 M antes de usar</td></tr><tr><td>solução de estabilização de RNA</td><td>Sigma</td><td>R0901-500ML&nbsp;</td><td>ou similar</td></tr><tr><td>Temperatura de corte ideal (OCT) composto</td><td>vwr</td><td>361603E</td><td>ou</td></tr><tr><td>frascos criogênicos semelhantes, 2,0 mL</td><td>Corning</td><td>430488</td><td>ou similar. Etiqueta com local de amostra. conteúdo e ID. 10 necessário.</td></tr><tr><td>Tubos de centrífuga, fundo cônico 50 mL</td><td>Greiner Bio-One</td><td>227.285</td><td>ou similar. Rótulo com "RNA posterior", local de amostra e ID. 2 necessário.</td></tr><tr><td>Nitrogênio</td><td></td><td></td> líquido <td>em recipiente apropriado</td></tr><tr><td><forte>composição corporal fetal</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr>Balança <td></td><td></td><td></td><td>calibrada</td></tr><tr><td>Fita</td><td></td><td></td><td></td> métrica</tr></tbody></table>

a abordagem de amostragem de 4 embarcações para estudos integrativos de fisiologia placentária humana<em&gt; in vivo</em

The 4-vessel Sampling Approach to Integrative Studies of Human Placental Physiology In Vivo

A placenta humana é altamente inacessível à pesquisa enquanto ainda está no útero . A compreensão atual da fisiologia placentária humana in vivo é, portanto, baseada em grande parte em estudos com animais, apesar da alta diversidade entre espécies em anatomia placentária, hemodinâmica e duração da gravidez. A grande maioria dos estudos de placenta humana são estudos de perfusão ex vivo ou estudos de trofoblasto in vitro . Embora os estudos in vitro e os modelos animais sejam essenciais, a extrapolação dos resultados desses estudos para a placenta humana in vivo é incerta. Pretendemos estudar a fisiologia da placenta humana in vivo a termo e apresentar um protocolo detalhado do método. Explorando o acesso intraabdominal à veia uterina imediatamente antes da incisão uterina durante a cesariana planejada, recolhemos amostras de sangue dos vasos entrantes e de saída nos lados materno e fetal da placenta. Ao combinar conMedições de centragem a partir de amostras de sangue com medidas de fluxo sanguíneo volumétrico, podemos quantificar a absorção placentária e fetal e a liberação de qualquer composto. Além disso, amostras de tecido placentário dos mesmos pares mãe-feto podem fornecer medições da densidade e atividade do transportador e outros aspectos das funções placentárias in vivo . Através deste uso integrativo do método de amostragem de 4 embarcações, somos capazes de testar alguns dos conceitos atuais de transferência de nutrientes da placenta e metabolismo in vivo , tanto em gravidezes normais quanto patológicas. Além disso, este método permite a identificação de substâncias segregadas pela placenta para a circulação materna, o que pode ser um importante contributo para a busca de biomarcadores da disfunção placentária.

O método de amostragem de 4 vasos é aplicável na prática clínica e obtivemos amostras de sangue com sucesso de 209 pares de mãe / bebê. Em 128 destes, também conseguimos medir o fluxo sanguíneo do volume. A amostragem completa de 4 vasos e as medidas de fluxo de boa qualidade de vasos maternos e fetais foram obtidas em 70 pares mãe-feto ( Figura 3 ). Além disso, até agora, colhemos amostras de sangue e placenta de 30 pacientes pré-eclâmicos. Nós já publicamo...

Apresentamos um método detalhado para estudar a fisiologia placentária humana in vivo a termo. O método combina a amostragem de sangue dos vasos entrantes e de saída nos lados materno e fetal da placenta com medidas de ultra-som do fluxo sangüíneo do volume e amostragem do tecido placentário.

A abordagem de amostragem de 4 embarcações para estudos integrativos de fisiologia placentária humana<em&gt; In Vivo</em

The human placenta is highly inaccessible for research while still in utero. The current understanding of human placental physiology in vivo is therefore ...

O objetivo geral deste procedimento é estudar a função placentária humana in vivo utilizando diversos métodos, que juntos garantem a coleta de dados abrangentes e integrados da fisiologia placentária fetal humana. Este método pode ajudar a responder questões fundamentais sobre a fisiologia placentária humana, como o papel da placenta na interação materno-fetal. A principal vantagem desta técnica é que ela permite testar conceitos atuais sobre transferência, captação e secreção placentárias em humanos in vivo.A extrapolação de estudos experimentais para seres humanos é dificultada pelas grandes diferenças entre animais e humanos na anatomia placentária, duração da gravidez e complicações gestacionais. Embora este método possa fornecer informações sobre o metabolismo placentário e a transferência de nutrientes, ele também pode ser aplicado para estudar a liberação placentária de compostos tanto em gestações saudáveis quanto em gestações complicadas, como a pré-eclâmpsia. Este método exige uma cooperação altamente coordenada entre diversos especialistas médicos, enfermeiros e pesquisadores.A chave para o sucesso é o planejamento rigoroso, mantendo em foco, o tempo todo, a mãe e seu bebê. Este gráfico ilustra a linha do tempo e o pessoal necessário para obter as amostras. Cada indivíduo que auxilia na coleta é representado por uma cor diferente.Este protocolo consiste na utilização combinada de três métodos para estudar a fisiologia placentária humana. Primeiramente, o fluxo sanguíneo em volume na artéria uterina e na veia umbilical é avaliado por ultrassonografia. Em segundo lugar, amostras de sangue são coletadas dos vasos de entrada e saída nos lados materno e fetal da placenta humana durante cesariana.Coletam-se amostras de tecido placentário em terceiro lugar para análise. Para começar, auxilie a mulher a assumir uma posição semissupina, inclinada ligeiramente de forma lateral oposta à região de interesse, a fim de evitar a compressão da aorta e da veia cava. Durante um período de quiescência fetal, visualize a veia umbilical em uma seção sagital ou oblíqua do abdômen fetal e meça o diâmetro interno do vaso em uma porção reta da veia umbilical intra-abdominal, antes de quaisquer ramos visíveis.Utilize o modo B padrão e visualize o vaso em um ângulo de insonação perpendicular para as medições do diâmetro, mantendo várias imagens ideais para medições posteriores, a fim de minimizar o efeito das alterações pulsáteis do diâmetro. Repita as medições de cinco a dez vezes. No mesmo local, ajuste a sonda e utilize ultrassonografia com Doppler para obter um ângulo de insonação tão baixo quanto possível, a fim de medir a velocidade máxima média no tempo, ou TAMX.Obtenha a velocidade ao longo de um período de três a cinco segundos. Em seguida, utilize ultrassom Doppler para visualizar a artéria uterina enquanto ela cruza a artéria ilíaca externa logo após se ramificar da artéria ilíaca interna. Ajuste a sonda neste local para obter um ângulo de insonação baixo e meça o TAMX.Obtenha a velocidade como a velocidade média de três ciclos cardíacos. Siga o vaso distalmente para obter um ângulo correto para as medidas do diâmetro o mais próximo possível dos locais onde as medidas de TAMX são realizadas. É difícil medir o fluxo sanguíneo volumétrico na artéria uterina porque é improvável obter um ângulo perpendicular no mesmo local onde a TAMX é medida.Vasos que se ramificam entre os dois locais de medição podem resultar na exclusão das medidas de diâmetro. Para realizar a coleta de sangue em quatro vasos antes do início da cirurgia, prepare as soluções, tubos e equipamentos. Em seguida, forneça uma orientação e entregue o equipamento a todo o pessoal que irá auxiliar na coleta.Coloque uma linha arterial na artéria radial além do acesso intravenoso periférico padrão. A veia antecubital é preferível porque é mais fácil coletar amostras deste local. Em seguida, após abrir a cavidade abdominal, use um retrator para levantar a parede abdominal e expor os ramos principais das veias uterinas nos lados anterolaterais do útero.Identifique um ramo da veia uterina do mesmo lado da placenta sempre que possível, ou o plexo venoso mais proeminente da placenta localizado na linha média uterina. Após identificar uma veia uterina adequada, instrua a equipe auxiliar a coletar amostras de sangue da artéria radial e da veia antecubital. Simultaneamente, insira uma agulha tipo borboleta acoplada a uma seringa para gasometria na veia uterina em um ângulo de 30 graus e colete o sangue mediante aspiração suave.Enquanto fixa cuidadosamente a posição intravenosa da agulha tipo borboleta, peça a um assistente que substitua a seringa cheia para gasometria sanguínea por uma seringa de 20 mililitros. Em seguida, imediatamente, utilize uma seringa de 10 mililitros. A partir da artéria radial ou da veia antecubital, descarte os primeiros cinco mililitros e, então, aspire três mililitros para uma seringa com heparina para análises de gasometria sanguínea.Em seguida, aspire 30 mililitros de cada local. Quando a criança nascer, inicie com uma seringa para análise de gasometria sanguínea e aspire imediatamente sangue da artéria umbilical sem pinçar o cordão umbilical ou expelir a placenta. Prossiga com três seringas de 10 mililitros, se possível.Quando as amostras arteriais forem coletadas, prenda com grampos e corte o cordão antes de realizar a coleta na veia umbilical, obtendo todas as amostras umbilicais com a placenta ainda in situ. O método de quatro vasos exige uma coleta coordenada de sangue, além de um manuseio rápido das amostras provenientes de cinco locais diferentes simultaneamente. Preste atenção à artéria umbilical, que é suscetível à contração, hemólise e coagulação.Realize uma inspeção final do local de coleta na veia uterina antes de iniciar o fechamento do abdômen. Coloque todas as seringas para gasometria sanguínea sobre gelo e utilize um analisador de gases sanguíneos para analisar as amostras dentro de cinco minutos. Transfira imediatamente as amostras de sangue para tubos a vácuo e agite suavemente os tubos de plasma por um a dois minutos antes de colocá-los sobre gelo.Centrifugue as amostras de plasma o mais rapidamente possível e dentro de 30 minutos a 2.500 ×g e seis graus Celsius por 20 minutos. Em seguida, alíquote cuidadosamente os sobrenadantes em criotubos de dois mililitros. Analise as amostras de sangue para as substâncias desejadas e realize os cálculos da transferência placentária de acordo com o protocolo descrito no texto.Coloque a placenta imediatamente sobre uma bandeja de dissecação resfriada com gelo assim que for expelida. Registre o peso do tecido, bem como o diâmetro mais longo e o diâmetro em 90 graus em relação à primeira medição. Em seguida, registre qualquer patologia macroscópica e o número de vasos no cordão.Coloque a placenta com a superfície materna voltada para cima e identifique quatro a cinco sítios de amostragem localizados aleatoriamente em cada quadrante da placenta. Use tesoura para remover a decidua, cortando de três a cinco milímetros da superfície materna. Em seguida, colete um fragmento de tecido viloso de um a dois centímetros cúbicos de cada sítio.Com 50 mililitros de PBS a uma molar e frio, lave suavemente o tecido coletado. Em seguida, divida o tecido em várias partes a partir de cada local de amostragem e alíquota-o. Adicione alíquotas de amostras de tecido de 0,1 a 0,5 centímetros cúbicos a cinco criotubos e congele rapidamente as amostras em nitrogênio líquido.Adicione pequenos pedaços, com tamanho entre 0,1 e 0,2 centímetros cúbicos, a tubos previamente preparados contendo 25 mililitros de solução de estabilização de RNA. Para estudos histológicos, adicione pedaços de 0,5 centímetros cúbicos a cinco criotubos com 0,5 mililitros de OCT, complete com OCT e, em seguida, misture o conteúdo dos tubos. Congele as amostras a menos 80 graus Celsius até a análise posterior.Amostras de sangue de 209 pares mãe-bebê foram obtidas com sucesso utilizando o método de coleta de quatro vasos. O fluxo sanguíneo volumétrico foi medido em 128 das amostras. A coleta completa de quatro vasos e medidas de fluxo de boa qualidade em ambos os vasos maternos e fetais foram obtidas em 70 pares mãe-feto.A abordagem de quatro vasos tem sido utilizada para estudar a transferência placentária, exemplificada aqui pela glicose. Foram encontradas diferenças arteriovenosas significativas de glicose em ambos os lados da placenta, demonstrando uma captação uteroplacentária in vivo de 0,29 milimol por litro e uma captação fetal de 0,54 milimol por litro. Um fluxo venoso umbilical mediano de 196,2 mililitros por minuto foi medido.Empregando o Princípio de Fick, calculou-se uma captação mediana de glicose fetal da circulação umbilical de 0,10 milimol por minuto. Utilizando o método de quatro vasos, estudou-se a captação placentária de ácido glutâmico, que é importante como fonte energética em vias metabólicas e para a interconversão fetal-placentária de aminoácidos. Observou-se a captação placentária de ácido glutâmico tanto da circulação umbilical quanto da circulação materna.A liberação in vivo de progesterona pela placenta no termo também foi medida, e constatou-se uma liberação significativa de progesterona na circulação materna, demonstrando como o método de amostragem placentária com quatro vasos pode ser utilizado para detectar substâncias liberadas pela placenta. Ao realizar este procedimento, é importante enfatizar que as medidas do fluxo sanguíneo volumétrico devem ser realizadas por um especialista em medicina fetal com experiência neste tipo de ultrassonografia, a fim de obter medições precisas. Após este procedimento, as amostras de sangue podem ser analisadas para estudar a transferência placentária e a captação ou liberação da substância de interesse, seja ela nutrientes, metabólitos, moléculas sinalizadoras, exossomos, compostos residuais, fármacos ou toxinas.Além disso, a análise de amostras placentárias pode responder questões adicionais sobre a regulação da transferência e o metabolismo placentário. No conjunto, este protocolo demonstra como coletas coordenadas de medidas de fluxo sanguíneo volumétrico, amostras de sangue e tecidos podem ser realizadas para obter um modelo in vivo íntegro para o estudo da fisiologia placentária humana. Após assistir a este vídeo, um obstetra deverá ter uma boa compreensão de como coletar com segurança amostras de sangue arteriovenoso em ambos os lados da placenta humana durante uma cesariana.

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Research

JoVE Journal

Medicine

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