Name: Avaliação In Vivo das Propriedades Mecanicas e Viscoelásticas da Língua do Rato (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: Aprenda a avaliar propriedades viscoelásticas e força da língua em ratos anestesiados usando estimulação do nervo hipoglosso e curvas de força Lissajous. Este método fornece dados quantitativos sobre mecânica muscular.

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Esta investigação foi apoiada por dois Institutos Nacionais de Subsídios de Saúde: HL089447 (&quot;Obesidade e OSA: Compreender a Importância da Língua Fat &amp; Metabolic Function&quot;) e HL094307 (&quot;Compreensão da Relação entre Obesidade e Língua Fat&quot;)

Todos os procedimentos, incluindo assuntos de animais, foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) da Universidade da Pensilvânia (Protocolo número 805822). O procedimento descrito é terminal e não requer a utilização de condições assépticas ou produtos de grau farmacêutico. 1. Procedimentos cirúrgicos <img alt="figura 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig1.jpg" /> Figura 1: Procedimentos cirúrgicos. (A) Demarcação do plano cirúrgico. A linha tracejada vermelha indica a área da incisão. Duas linhas pretas indicam a posição do maxilar, enquanto a linha inferior preta marca a posição do tórax. A linha azul indica o osso hióide. (B) Exposição da barriga posterior do músculo digástrico (setas) após a dissecação sem corte do tecido adiposo, a sublingual e submaxill<html> Glândulas ary. (C) Resecção da barriga posterior do músculo digástrico (linha verde tracejada) para expor o nervo hipoglosso (flecha branca). (D) O nervo hipoglosso (seta branca) é removido da fáscia circundante. (E) A traquéia é exposta puxando suavemente o músculo liso ao redor dele (as setas verdes indicam a direção da força aplicada) e levantaram (F) para se preparar para a intubação. A estrela indica a inserção da língua no osso hióide. A linha tracejada verde marca o ponto de incisão para a intubação. A flecha branca indica o nó solto preparado para proteger a cânula no lugar, uma vez inserido. (G) Incisão da traquéia para a canulação. (H) A cânula traqueal é inserida e segura no lugar com um nó quadrado. (I) Aplicação da sutura à língua.Target = &quot;_ blank&quot;&gt; Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <ol><li> Anestesia e preparação para cirurgia <ol><li> Coloque o rato na câmara de indução com 4% de anestesia com isoflurano. </li><li> Coloque o animal em decúbito dorsal sobre uma fonte de calor e mantenha a anestesia com 1 a 3% de isoflurano a partir de uma nosecone, garantindo uma taxa respiratória de pelo menos 70 respirações por minuto. </li><li> Raspe a área do pescoço com um creme de depilação e depilação. Ao usar o creme de depilação, espalhe o creme com um aplicador com ponta de algodão até que a pele seja removida. A exposição prolongada ao creme de depilação pode causar irritação da pele. </li><li> Limpe o campo cirúrgico com 70% de álcool ( Figura 1A ). </li><li> Verifique o padrão respiratório e os reflexos do animal (falta de reflexo de pinça) antes de continuar com a incisão inicial. O monitoramento contínuo e avaliação da profundidade da anestesia é essencial (reTaxa respiratória do cordão e falta de reflexos a cada 10 min); O animal precisa estar debaixo de um plano cirúrgico profundo da anestesia durante todo o procedimento. </li></ol></li><li> Identificação de Nervos Hipoglosos <ol><li> Abra o campo cirúrgico com um par de tesouras operando ressecando e removendo a pele como indicado pela linha pontilhada vermelha na Figura 1A . </li><li> Dissecção brusca através de qualquer tecido adiposo, glândulas sublinguais e submaxilares e a camada muscular que envolve a traqueia. NOTA: Seja conservador durante a dissecção. Use a dissecação sem corte sempre que possível e tenha cuidado para não danificar os vasos sanguíneos do pescoço. </li><li> Identificar a barriga posterior do músculo digástrico (PD) lateral à traquéia ( Figura 1B - setas brancas). O nervo hipoglosso corre sob este músculo ( Figura 1C - seta branca). Com o electrocauterismo, reseca o PD proxImediatamente no osso hióide ( Figura 1C - linha tracejada). NOTA: Não deixe o nervo ou o tecido em torno dele se tornarem secos. Adicione uma gota de óleo mineral no nervo para protegê-lo. Para evitar a contração muscular devido à propagação de campo do estímulo dos eletrodos, cauterize cuidadosamente o tecido muscular nos possíveis locais de contato ao redor do nervo. </li><li> Usando um par de pinças finas, dissecar o nervo hipoglosso da fáscia circundante. Com a ajuda de um gancho, certifique-se de que pelo menos 3 mm do nervo estejam disponíveis para a conexão do eletrodo bipolar ( Figura 1D ). </li><li> Usando pinças micro-hemostáticas, esmagam o nervo hipoglosso como distalmente do osso hióide ( Figura 1D - seta branca) quanto possível para evitar a propagação retrógrada do estímulo. Esmague o nervo aplicando pressão sobre ele com a pinça micro-hemostática por 5 s. Quando o hemostático agarra o nervo, um breve tA bruxa na base da língua deve ser visível. </li><li> Repita o procedimento para o outro lado. </li></ol></li><li> Intubação traqueal <ol><li> Exponha a traquéia separando suavemente os músculos lisos circundantes por dissecação sem corte ( Figura 1E - como indicado pelas setas verdes). NOTA: Seja conservador e use dissecção preferencialmente contundente. Compare o diâmetro da cânula com o da traquéia. A cânula deve caber corretamente na traquéia e deve permanecer inserida de forma estável depois de ser suturada como descrito nos passos 1.3.2 a 1.3.5. </li><li> Levante levemente a traquéia usando um par de fórceps de amarração de sutura e passe uma sutura 4-0 debaixo dela, perto do tórax. Amarre um nó solto inicial entre o 6º eo 7º anel da laringe ( Figura 1F - seta branca). Este nó será fechado uma vez que a cânula seja inserida para mantê-la no lugar. </li><li> Deslize o tronco de umTransfira a pipeta (lubrifique a pipeta com óleo mineral para facilitar a inserção) sob a traquéia para levantar e facilitar a inserção da cânula (IV 14 gx 3,25 &quot;cânula). </li><li> Corte uma pequena incisão entre os 4º e 5º anéis da laringe ( Figura 1G - seta branca). Após a primeira incisão, a abertura tenderá a se espalhar, portanto, seja conservadora ao fazer o corte inicial para evitar a ressecção completa da traquéia. NOTA: Antes de realizar a incisão da traquéia, verifique se a cânula está pronta e a entrega da anestesia está ativada. </li><li> Comece a administração da anestesia através da cânula e insira-a suavemente na incisão, avançando suavemente dentro da traquéia com o comprimento de aproximadamente 5 anéis. Fixe a cânula no lugar com a sutura, para criar uma vedação hermética ( Figura 1 ). NOTA: Certifique-se de que nenhum fluido entra na traquéia cortada para evitar o sufixoOcação. Uma vez que a traquéia é incisada, o animal estará respirando o ar da sala. Portanto, é importante inserir rapidamente a cânula para que a entrega da anestesia seja mantida. Quando / se mover o animal, monitore a posição correta da cânula na traquéia. </li><li> Remova gentilmente o animal da nosecone. NOTA: O uso de anestésicos injectáveis ​​em vez de isoflurano pode simplificar o procedimento, eliminando a necessidade de intubação traqueal e eliminando o espaço de trabalho experimental do excesso de tubulação. </li></ol></li><li> Sutura de língua <ol><li> Empurre um pedaço de sémen 5/0 de 20 cm de comprimento (sugerimos Seda, trançado preto) em PBS. </li><li> Enquanto mantém aberta a boca do rato, segure suavemente a ponta da língua com a pinça que liga a sutura. </li><li> Passe a sutura medialmente através da ponta da língua ( Figura 1I - seta branca) com atenção para manter a língua úmida com solução salina para evitar possíveis tecidosdanificar. </li><li> Amarre um laço com aproximadamente 4 cm de largura (o diâmetro pode mudar com base na distância entre o animal e o transdutor de força). NOTA: Certifique-se de que a sutura e a língua estejam molhadas para facilitar a inserção e evitar lesões desnecessárias do tecido. </li></ol></li></ol> 2. Configuração Experimental <img alt="Figura 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig2.jpg" /> Figura 2: posicionando e protegendo o animal. (A) O mouse está posicionado na plataforma experimental. A mandíbula está segura e a boca mantida aberta pela aplicação de tensão vertical (seta verde). O loop de sutura é conectado ao transdutor de força (seta branca). (B) Os eletrodos estão conectados. (C) Cada eletrodo, montado em um micromanipulador, está conectado de forma estável ao nervo. A incrustação mostra o término de tEle ganha eletrodo. (D) O comprimento ideal da língua é medido com uma pinça Vernier, desde a inserção ao nível do osso hióide até a ponta da língua. Nesta imagem, os eletrodos foram removidos por clareza. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/56006/56006fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior dessa figura.</a> Nota: Posicione o animal em decúbito dorsal na bandeja aquecida do aparelho, usando as seguintes medidas de segurança para evitar o movimento durante o experimento. <ol><li> Fixe o nariz do rato à bandeja com uma torção metálica revestida de plástico diretamente conectada à plataforma aquecida ( Figura 2A , 2B ). </li><li> Mantenha a boca do rato aberta aplicando tensão vertical (use uma linha de monofilamento de teste de 3 viragens com fita adesiva de 9 kg e segure no lugar com um stick de câmera) ( Figura 2A - seta verde). NOTA: Uma abordagem alternativa para estabilizar o rato é usar uma mordaça de boca de roedor ou uma modificação personalizada dele. É essencial que a boca seja mantida aberta e estável para evitar movimentos do pescoço que possam afetar a qualidade das medidas. </li><li> Conecte o loop de sutura ao transdutor de força ( Figura 2A - seta branca). </li><li> Usando fita cirúrgica, imobilizam os membros e o abdômen do rato para limitar os movimentos durante os estímulos. </li><li> Aplique os dois eléctrodos bipolares de gancho estimulante aos nervos hipoglosos dissecados, proximalmente ao local de esmagamento ( Figura 2C ). <ol><li> Use eletrodos bipolares estimulantes feitos a partir de um par de eletrodos de agulha de calibre 29 de aço de grau cirúrgico, mantidos juntos a uma distância de 2 mm uns dos outros usando um suporte de plástico (aqui, utilizamos duas pipetas sorológicas de 1 mL gravadas). </li><li> Dobre as pontas dos eletrodos da agulha até uma forma de ganchoPequeno o suficiente para formar um contato estável com o nervo (~ 1 mm de diâmetro) ( Figura 2C - inlay). </li><li> Conecte os dois fios de cada eletrodo a um empate empilhável de ligação dupla com conector banana jack x BNC e, em seguida, conecte-se ao módulo estimulador de um sistema de teste de músculo in situ (Tabela 3) usando um divisor BNC. NOTA: Certifique-se de que o animal é estável e que o pescoço e a língua estão alinhados com a alavanca do transdutor de força. Continue monitorando a freqüência respiratória e assegure-se de que as restrições não interferem com a respiração. </li></ol></li></ol> 3. Comprimento ótimo (L 0 ) e determinação de força isométrica máxima <ol><li> Ajuste o comprimento da língua gradualmente e aplique estímulos de contração isométrica até obter uma força máxima. <ol><li> Defina L 0 como o comprimento em que a força de contração isométrica ( Tabela 1 ) é máxima e registre para a posterior normalização deAs medidas de força, como muda para cada animal. Usando uma pinça Vernier, mida o comprimento da língua da inserção ao nível do osso hióide ( Figura 2D ) até a ponta da língua. NOTA: O posicionamento correto dos eletrodos é essencial para garantir um contato ótimo com os nervos. O posicionamento ótimo deve exercer forças similares e aditivas ao estimular um dos dois nervos ou ambos, respectivamente. </li></ol></li><li> Antes de iniciar o experimento, conecte ambos os eletrodos ao estimulador e administre um teste de estimulação tetânica ( Tabela 1 ). Durante esta contração, monitore o animal para garantir que a posição seja estável e verifique se há contrações visíveis indesejadas dos músculos do pescoço. </li><li> Medir a força isométrica aplicando uma contração seguida de 20 s por uma estimulação tetânica. Repita as estimulações 3 vezes, permitindo uma recuperação de 4 min entre os ciclos de estimulação (um ciclo inclui uma contração e umaE estimulação tetânica), e registrar as forças máximas de contração e tetânica. </li><li> Manter a língua molhada em todos os momentos, aplicando algumas gotas de PBS entre as contracções. NOTA: Se os músculos do pescoço se contraírem, altere cuidadosamente o posicionamento dos eletrodos para que eles não toquem nenhum tecido muscular circundante e, se necessário, cauterize o tecido em contato com os eletrodos. </li></ol> 4. Determinação das propriedades viscoelásticas (Curvas Lissajous) <ol><li> Deixe a língua descansar por 3 a 5 minutos após a determinação da força isométrica. Execute as curvas Lissajous começando em L 0 , portanto, a posição do animal e do transdutor de força nunca deve ser alterada. </li><li> Sem estimular os nervos hipoglosos, aplique ciclos de estiramentos passivos ( Tabela 2 ) com aumento do deslocamento (d) ou seja , 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40, 50% de L 0 (amplitudes maiores podem exigir um duplo Controlador de modo com higheR valores de excursão do que o 305C-LR). Por exemplo, uma amplitude de 40% L 0 causará a deformação da língua de + 20% L 0 a -20% L 0 . <ol><li> Use uma freqüência senoidal fixa de 2 Hz com 10 repetições em cada ciclo, para uma duração total de 5 s em cada ciclo. Alterações da freqüência do seno têm sido usadas no passado com tecidos como o diafragma 24 e podem ser adotadas para modificar o protocolo experimental. </li><li> Aguarde 30 s entre cada ciclo e assegure que a língua esteja molhada durante todo o procedimento. NOTA: Mantenha a língua molhada durante o procedimento, adicionando algumas gotas de PBS. Certifique-se de que o restrição que contém a mandíbula permaneça estável durante os trechos, particularmente quando o deslocamento atinge 40% ou mais. </li></ol></li><li> Imediatamente após a conclusão do experimento, enquanto o animal ainda está sob um plano cirúrgico profundo da anestesia, eutanasia o animal de acordo com o protótipo animal IACUC aprovadoOcol. Disseca a língua para processamento posterior (por exemplo, seccionamento ou armazenamento congelado para análises bioquímicas). </li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

Alterações no metabolismo e / ou composição da língua, por exemplo , infiltração de gordura na língua como conseqüência da obesidade, prevêem alterações quantificáveis ​​dos parâmetros avaliados pelo nosso protocolo. A quantificação da força da língua é de grande interesse uma vez que um desequilíbrio entre a atividade protrusiva e retrusiva ou enfraquecimento geral da língua pode resultar na oclusão da via aérea superior 15 . As técnicas de exercício com o objetivo de aumentar a força d...

<html> A língua fornece suporte essencial para mastigação, deglutição, sensação ao gosto e fala. A presença de musculatura extrínseca e intrínseca, com inervação e anatomia / função distintas, explica a singularidade desse hydrostat muscular. Os avanços recentes em técnicas de imagem forneceram uma visão mais detalhada de sua anatomia complexa 1 . A diminuição da funcionalidade da língua, a atrofia da língua, disfagia e impedimentos de fala também são manifestações comuns de doenças miopáticas como Parkinson 2 , esclerose lateral amiotrófica (ALS) 3 , distrofia miotônica (MD) 4 e outras miopatias. Alterações na composição muscular associadas a estados de doença comuns afetam as propriedades mecânicas e viscoelásticas da língua. Por exemplo, a análise funcional da força da língua revelou mudanças nas propriedades contráteis associadas ao envelhecimentoSs = &quot;xref&quot;&gt; 5 , 6 , hipoxia 7 , 8 e obesidade 9 , 10 . No caso da distrofia muscular, o aumento da fibrose leva à maior rigidez muscular, o que se traduz em uma menor adesão à deformação quando se aplica um protocolo de deformação Lissajous 11 . Por outro lado, as mudanças no teor de gordura muscular, como as documentadas em pacientes obesos, alteram as propriedades metabólicas 12 e mecânicas do músculo esquelético 13 , 14 e prevêem aumentar a adesão muscular à deformação. O aumento da gordura da língua também se correlaciona com o desenvolvimento da apneia obstrutiva do sono (OSA) em seres humanos 17 aumentando o volume da língua para o ponto de oclusão parcial das vias aéreas superiores (apneia) 15 , 16 . SimPor sua vez, a infiltração de gordura na língua foi documentada em ratos obesos Zucker 10 , sugerindo que este modelo é uma ferramenta valiosa para estudar os efeitos da infiltração de gordura na fisiologia da língua. A força da língua de medição requer técnicas cirúrgicas delicadas para isolar e estimular bilateralmente os nervos hipoglosos 17 , 18 . Tais técnicas foram descritas anteriormente em ratos 5 , 17 , 19 , 20 , coelhos 21 e humanos 22 , 23 , ainda com auxílios visuais limitados para o investigador. Devido à sua natureza altamente técnica, a disponibilidade de um protocolo detalhado melhoraria significativamente a acessibilidade e a reprodutibilidade dessa técnica. O objetivo do nosso paradigma experimental é o doenteEstabelecer uma técnica válida e confiável para medir a força e as propriedades viscoelásticas da língua em um modelo de rato. Para realizar isso, o rato é anestesiado, os nervos hipoglosos são expostos e a traquéia é canulada para garantir o acesso gratuito à língua do animal. Um loop de sutura então conecta a ponta da língua a um transdutor de força, capaz de controlar força e comprimento, enquanto dois eletrodos de gancho bipolar estimulam os nervos hipoglosos a induzir a contração da língua. Após a conclusão da medida da força, as capacidades de controle de comprimento do transdutor de força são usadas para alterar rapidamente o comprimento da língua, de acordo com um protocolo de onda senoidal com amplitude fixa (curvas Lissajous), duração e freqüência, permitindo derivar Suas propriedades viscoelásticas 11 , 24 . O protocolo orientará o investigador através das etapas de dissecção, o posicionamento do animal no platfo experimentalRm, colocação de eletrodos e, finalmente, para a aquisição e análise dos dados de força e viscoelasticidade.

<table><tbody><tr><td>SurgiSuite (bandeja cirúrgica aquecida)</td> <td>Kent Scientific</td><td>SurgiSuite-LG</td><td>Inclui plataforma aquecida</td></tr><tr><td>Kit de iluminação e ampliação LED</td><td>Kent Scientific</td><td>SURGI- 5003</td><td></td></tr><tr><td>RC2 Controlador de Circuito de Roedores</td><td>VetEquip</td><td>922100</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Butler Schein Animal Health Supply</td><td>29405</td><td></td></tr><tr><td>Álcool Aplicadores com</td> ponta de algodão <td>Prep Webcol</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td></td><td>MediChoice</td><td>WOD1002</td><td></td></tr><tr><td>Máquina de cortar cabelo</td><td>Conair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Loção removedora de cabelo</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fita médica</td><td>Transpore</td><td>3M</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS</td><td>Corning</td><td>21-030-CM</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de operação</td><td>World Precision Instrumentos</td><td>503717-12</td><td></td></tr><tr><td>Fórceps Hemostático</td><td>Merit</td><td>97-458</td><td>Qualquer fórceps de tecido pode ser usado em vez de</td></tr><tr><td>Microdissecação Fórceps, Angular, Serrilhada, 10.2 cm, SS</td><td>World Precision Instruments</td><td>504479</td><td></td></tr><tr><td>Sutura Tying Forceps</td><td>Ferramentas de Ciência Fina</td><td>18025-10</td><td></td></tr><tr><td>Micro Gancho Blunt</td> Ferramentas <td>de Ciência Fina</td><td>10062-12</td><td></td></tr><tr><td>Microhemostat</td><td>Fine Science Tools</td><td>12075-14</td><td></td></tr><tr><td>Cautério térmico</td><td>WPI</td><td>501292</td><td>Cautérios descartáveis estão disponíveis a um custo mais baixo</td></tr><tr><td>IV Cânula de 14g x 3,25"</td><td>BD</td><td>B-D382268H</td><td>Para canulação traqueal</td></tr><tr><td>Sutura não absorvível de seda trançada tamanho 4-0</td><td>Harvard Apparatus</td><td>SP104</td><td>Para estabilização da cânula</td></tr> <tr><td>traquealSutura trançada de seda não absorvível 5/0</td><td>Surgik LC, EUA</td><td>ESILRC15387550</td><td>Para suturar a língua</td></tr><tr><td>Amarração de metal revestida de plástico (ou fio elétrico)</td><td></td><td></td><td>Para prender o nariz do rato à plataforma</td></tr><tr><td>Bastão</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>da câmera 3 vias giratória e Trilene 9 Kg linha de monofilamento de teste</td><td>Berkley</td><td></td><td>Para prender a mandíbula e manter a boca aberta</td></tr><tr><td>Stick de câmera com ângulo</td><td></td><td></td> ajustável <td>Para apoiar o giro de 3 vias e manter a boca aberta.</td></tr><tr><td>in situ Sistema de Teste Muscular</td><td>Aurora Scientific</td><td>809C</td><td>Este sistema foi projetado para camundongos e foi modificado estendendo a plataforma. Alternativamente, o sistema 806D específico para ratos pode ser usado.</td></tr><tr><td>Alavanca muscular de modo duplo (transdutor de força)</td><td>Aurora Scientific</td><td>305C-LR</td><td>309C oferece recursos de excursão mais altos do que o 305C-LR. Link para mais informações e especificações: http://aurorascientific.com/products/muscle-physiology/dual-mode-muscle-levers/</td></tr> <tr><td>Eletrodos de agulha (aço cirúrgico, calibre 29)</td> <td>AD Instruments</td><td>MLA1204</td><td>300C é recomendado para uso em camundongos.</td></tr><tr><td>Suportes magnéticos</td><td>World Precision Instruments</td><td>M10</td><td>Usado para fazer os eletrodos de gancho estimulante bipolar</td></tr><tr><td>Kite Manual Micromanipulador</td><td>World Precision Instruments</td><td>KITE-R e KITE-L</td><td>Requerem uma placa de aço</td></tr><tr><td>Poste de ligação dupla empilhável com Banana Jack x BNC Jack</td><td>McMaster Carr</td><td>6704K13</td><td></td></tr><tr><td>Paquímetro digital de compósitos de fibra de carbono</td><td>VWR</td><td>36934-152</td><td></td></tr></tbody></table>

avaliação in vivo das propriedades mecanicas e viscoelásticas da língua do rato

In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue

A língua é um hidróstato muscular altamente inervado e vascularizado no chão da boca da maioria dos vertebrados. Suas principais funções incluem o apoio à mastigação e deglutição, bem como sensação ao gosto e fonética. Conseqüentemente, a força e o volume da língua podem afetar a habilidade dos vertebrados para realizar atividades básicas, como alimentação, comunicação e respiração. Pacientes humanos com apneia do sono têm linguas alargadas, caracterizadas por redução do tônus ​​muscular e aumento da gordura intramuscular que pode ser visualizada e quantificada por ressonância magnética (MRI). As habilidades para medir a geração da força e as propriedades viscoelásticas da língua constituem ferramentas importantes para a obtenção de informação funcional para correlacionar os dados de imagem. Aqui, apresentamos técnicas para medir a produção da força da língua em ratos Zucker anestesiados através da estimulação elétrica dos nervos hipoglosos e para a determinação das propriedades viscoelásticas oF na língua aplicando curvas de força / deformação Lissajous passivas.

<img alt="Figura 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig3.jpg" /> Figura 3: Resultados representativos. (A) Exemplos de traços de força de tontão e tontânica bem sucedidos. A estimulação correspondente é representada pelo traço vermelho. (B) Exemplo de contracções tetanicas de língua mal sucedidas devido a contração submáxima (traço azul) e estimulação indireta dos músculos do pescoço. Ambas as condições pode...

Descrevemos um procedimento cirúrgico em um modelo de rato anestesiado para determinar o tônus ​​muscular e as propriedades viscoelásticas da língua. O procedimento envolve estimulação específica dos nervos hipoglosos e aplicação de curvas de força / deformação Lissajous passivas ao músculo.

Avaliação In Vivo das Propriedades Mecanicas e Viscoelásticas da Língua do Rato

The tongue is a highly innervated and vascularized muscle hydrostat on the floor of the mouth of most vertebrates. Its primary functions include ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar a força e as propriedades viscoelásticas da língua em ratos anestesiados. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo dos distúrbios respiratórios do sono, sobre a apneia obstrutiva do sono. As principais vantagens desta técnica são os dados quantitativos de campo sobre o desempenho muscular e com treinamento adequado, ela pode ser facilmente realizada usando a caneta de meio-fio que é comumente encontrada na maioria dos laboratórios de mecânica muscular.Esses métodos podem fornecer informações sobre a fisiologia e a mecânica da língua do rato. Também pode ser aplicado a outros sistemas, incluindo modelos de mouse. Tivemos a ideia dessa metodologia pela primeira vez quando estávamos avaliando como o acúmulo de gordura na base da língua pode alterar as propriedades mecânicas desse músculo.Depois de confirmar o nível apropriado de sedação por falta de resposta ao beliscão do dedo do pé, use uma tesoura cirúrgica para ressecar uma área oval da pele sobre o pescoço do rato e remover a pele. Dissecar sem corte através de qualquer tecido adiposo, as glândulas sublinguais e submaxilares e a camada muscular ao redor da traquei

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

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Aprenda a avaliar propriedades viscoelásticas e força da língua em ratos anestesiados usando estimulação do nervo hipoglosso e curvas de força Lissajous. Este método fornece dados quantitativos sobre mecânica muscular.

Avaliação In Vivo das Propriedades Mecanicas e Viscoelásticas da Língua do Rato

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