Protocolo para avaliar os efeitos relativos do ambiente e da genética na galhada e no crescimento corporal de um cervídeo de vida longa

O objetivo geral deste projeto experimental é ajudar se a genética em nível populacional restringe o veado de cauda branca, o chifre de odocoileus virginianus e o tamanho do corpo, controlando outras variáveis que também influenciam o chifre e o tamanho do corpo, como idade e nutrição. Essa metodologia pode realmente nos ajudar a entender a verdadeira causa da variação morfológica em espécies selvagens em toda a sua distribuição. E isso é importante porque a morfologia é a base para a designação histórica de subespécies e com a Lei de Espécies Ameaçadas codificando essas diferenças de subespécies, é importante entender se essas diferenças são realmente devidas a diferenças genéticas que são significativas e precisam ser preservadas ou são apenas diferenças nutricionais de qualidade de habitat associadas ao habitat onde essas subespécies ocorrem?

A principal vantagem desta técnica é que ela nos permite, em um ambiente controlado, focar em uma característica específica do ambiente em que os animais foram criados naturalmente e, neste caso, estamos removendo os animais de seu habitat natural e controlando a nutrição para ver se a nutrição é a causa das diferenças morfológicas. Essa técnica pode realmente melhorar a implementação da Lei de Espécies Ameaçadas porque permitirá que agências estaduais de recursos com recursos limitados identifiquem variações genéticas significativas. Demonstrando a técnica hoje estará Dan Morina.

Um estudante de pós-graduação aqui no MSU Deer Lab. Comece garantindo que a cerca lateral tenha um pano de sombra para atuar como uma barreira visual e física entre os currais. Instale cortinas de caixa elevadas em uma extremidade de cada caneta para facilitar os eventos de dardo durante a coleta de dados.

Mantenha dois comedouros estilo cocho em extremidades separadas de cada curral para reduzir a competição por comida entre os cervos. Finalmente, forneça aos cervos uma dieta de alta qualidade adicione Lupitum. Comece caminhando com o técnico que estará correndo até o final do curral onde as persianas elevadas estão localizadas.

Coloque um único técnico em uma cortina. Em seguida, peça ao indivíduo que acompanhou o técnico até o cego que volte para a extremidade oposta do curral. Depois de confirmar a sedação do cervo, verificando os reflexos oculares, aplique pomada oftálmica nos olhos.

E venda os olhos dos cervos para reduzir o estresse. Carregue o cervo em uma maca de estilo militar. Em seguida, use um termômetro retal para avaliar a temperatura corporal após a recuperação.

Aqueça os cervos com cobertores aquecidos se a temperatura dos animais estiver abaixo de 37,7 graus Celsius. Ou resfrie o cervo com compressas de gelo se a temperatura do animal estiver acima de 40 graus Celsius. E transportá-lo via veículo utilitário para uma área de coleta de dados predeterminada.

Uma vez transportado, meça a massa corporal até o centésimo de quilograma mais próximo com uma balança digital suspensa. Bem como o comprimento do retropé e o comprimento total do corpo até o milímetro mais próximo. Em seguida, administre quantidades adequadas de antibiótico ivermectina, uma vacina de custódia e uma vacina contra leptospirose.

Em seguida, enquanto o animal está sedado, faça três medições de chifres de machos adultos usando uma fita métrica de chifres. Meça a propagação interna, a circunferência basal e o comprimento do feixe principal dos chifres antes da remoção do chifre. Em seguida, remova os chifres cerca de três centímetros acima da rebarba usando uma serra alternativa.

Depois que os dados forem coletados, coloque o cervo no curral apropriado. E administre 125 miligramas por quilograma de cloridrato de ioimbina ou 4,0 miligramas por quilograma de cloridrato de tilosina para reverter os efeitos do cloridrato de xilazina. Por fim, monitore os cervos para garantir que permaneçam em posição esternal até que saiam da sedação e estejam totalmente alertas.

Depois de adquirir as amostras de chifre, meça cada dente individual que se projeta da viga principal e pontos anormais adicionais com o auxílio do fio. Enrole o fio ao redor de onde o dente cruza a viga principal e marque esse ponto para referência. Em seguida, meça deste ponto de referência até a ponta do dente e repita para cada dente.

Em seguida, colete as medidas de circunferência restantes, identificando o menor ponto entre os dentes G1 e G2, os dentes G2 e G3 e os dentes G3 e G4, se houver. Se o dente G4 não estiver presente, meça a distância entre o ponto médio do dente G3 na extremidade da viga principal. E meça a circunferência H4 no meio do caminho.

Finalmente, pesar os chifres com precisão de um décimo de grama usando uma balança digital científica. E projete uma massa mínima e crítica de chifres de um grama para animais do primeiro ano com chifres menores que três centímetros. Os resultados deste estudo indicaram que a nutrição melhorada teve um efeito positivo em todas as medidas morfométricas em um cervo macho de cauda branca de 3,5 anos de idade de cada região de origem.

massa e o tamanho do chifre não variaram entre as três regiões de origem após duas gerações de nutrição melhorada. O que sugere que o tamanho do chifre não é restrito pela genética em nível populacional. Além disso, a massa corporal aumentou muito da primeira para a segunda geração.

Sugerindo que há uma limitação nutricional na natureza para todas as populações. No entanto, ainda houve variação regional entre os machos de segunda geração. Uma vez dominada, essa técnica leva apenas cerca de uma hora por animal.

Mas o tamanho da amostra é muito importante, então você deseja ter o maior número possível de animais em seu estudo, para que possa acabar gastando vários dias, se necessário, para processar todos os seus animais. Ao tentar este procedimento, é muito importante que tudo dentro dos currais esteja configurado para o sucesso. A persiana precisa ser colocada corretamente na distância correta da cerca.

As pistas de tiro precisam ser cortadas se houver galhos no caminho. E tudo o que você pode controlar precisa ser controlado com antecedência, porque a única coisa que você não pode controlar é como o animal se comportará sob a situação estressante específica em que você o está colocando. Usando este procedimento, você também pode modificar os componentes nutricionais do experimento.

E veja como a ingestão de proteínas ou energia pode alterar esse potencial genético e a expressão morfológica do animal. Essa mesma metodologia pode ser usada por outros pesquisadores para variar o tipo de tratamento fornecido aos animais e olhar para outras coisas além do desenvolvimento morfológico. Você pode observar como a ingestão nutricional afeta as características da história de vida, como características reprodutivas e a recuperação da demanda de gestação e lactação.

Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa ideia de como controlar a nutrição e a idade para ver como a genética e a nutrição interagem no desenvolvimento morfológico de um animal dentro de uma instalação em cativeiro. Não se esqueça de que sempre que você seda um animal selvagem, mesmo em uma instalação em cativeiro, há uma chance de ferimentos no animal, por isso temos que cuidar e monitorá-lo de perto.