Name: Usando Laser Doppler Imaging e acompanhamento para analisar a microcirculação na medula espinhal em ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: Aprenda a medir fluxo sanguíneo e saturação de oxigênio na medula espinhal de ratos usando imagem e monitoramento por laser Doppler. Este método padronizado auxilia no estudo da microcirculação após trauma.

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Os autores têm sem agradecimentos.

Animais protocolos envolvendo animais experimentais seguiram as diretrizes estabelecidas pelo National Institutes of Health (NIH) e foram aprovados pelo Comitê de uso de Capital médica Universidade e cuidado Animal.
Os procedimentos de introdução de SCI e medição BF da medula espinhal, usando laser Doppler equipamentos descritos abaixo foram usados em um estudo publicado1.
1. preparação para a cirurgia
<ol><li>Preparar o pentobarbital de sódio solução 3% (p/v) em solução salina e administrar a dose de 35 mg/kg. Cuidado: pentobarbital de sódio é uma substância controlada. Devem ser mantidos registros detalhados e soluções armazenados em um local seguro, trancado.</li>
	<li>Esterilizar equipamentos e preparar a área de cirurgia.<ol>
<li>Para limpar o aparelho de cirurgia com as etapas a seguir: 75% etanol de limpeza, em seguida, autoclave a 121 ° C por 30 min, depois seque em um forno de 60 ° C durante a noite. Esterilize a área de cirurgia com 75% de álcool.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparação do rato para cirurgia
<ol><li>Anestesia o rato com uma injeção intraperitoneal de sódio pentobarbital (35 mg/kg). Todo o procedimento deve levar de 30 a 40 min, incluindo cirurgia, medições de BF e suturas.</li>
	<li>Raspe a região dorsal do rato da parte inferior das costas para o pescoço. Os cabelos devem ser cortados mais curto possível. Coloque o rato sobre a 40 ° C Aquecimento pad para manter a temperatura corporal constante.</li>
</ol>3. a laminectomia e o traumatismo da medula espinhal
Nota: Para executar laminectomia somente para o grupo farsa, siga os passos 3.1 a 3.6.
<ol><li>Posicione o lado dorsal animal acima. Esterilize a parte raspada com iodo, seguido de álcool 75% usando bolas de algodão estéril. Fazer uma incisão na pele (4 cm) com o bisturi no local de laminectomia cobrindo torácicas vértebras T7 a T11.</li>
	<li>Corte os músculos anexados em ambos os lados de T8 T10 para expor os processos espinhosos, as lâminas e as articulações.</li>
	<li>Use o bisturi para fazer incisões que desconectar a junção entre T10 e T11. Ainda mais expor a junção por cuidadosamente, dissecando a camada muscular fora para expor o osso.</li>
	<li>Use a tesoura para limpar mais músculo longe da lâmina e próximo do pedículo com pequenos recortes. Isto irá abrir um pequeno espaço entre as vértebras em T10 e T11 (figura 1A). Lentamente e delicadamente inserir esta lacuna com uma pinça hemostática e quebrar o pedículo (figura 1B). Certifique-se que a curvatura da pinça está sempre posicionada lateralmente, longe da medula. Repita do outro lado.</li>
	<li>Expor a medula espinhal (Figura 1) e levante com cuidado e quebrar a lâmina. Não se esqueça de deixar quaisquer fragmentos de osso livre ou irregulares.</li>
	<li>Repita o processo para remover mais lâminas T9 e T8.</li>
	<li>Mover o animal para a tabela de equipamento do pêndulo e usar o par de pinça Adson anexada à tabela para estabilizar a coluna vertebral do animal, fixando-se sobre o processo espinhoso de T7 e T11 e, em seguida, ajustar a pinça para endireitar a coluna vertebral (Figura 1).</li>
	<li>Colocar o animal sob o pêndulo, Mire a vara de greve para o centro da medula espinhal exposta e abaixar a haste para dentro de 3 a 5 mm da superfície da medula espinhal.</li>
	<li>Definir os parâmetros de impacto, tais como a força de impacto (160 KD) e tempo de interrupção (1 s)<ol>
<li>Induzir o SCI clicando no botão "Iniciar o experimento" sobre a interface do software e, em seguida, clique em "Sim" na interface do seguinte para iniciar o impacto automaticamente. Após o impacto, o software irá exibir os dados reais do impacto junto os parâmetros definidos, verifique os dados para certificar-se que era perto do ponto de ajuste (Figura 1E). Nota: Um sinal típico para o sucesso do experimento foi um curto período de movimento de balanço e membro de cauda involuntária após o impacto. Estímulos para a cauda para verificar se há reflexão membro também poderiam ser feitos. No entanto, avaliação motora como o Basso, Beattie e Bresnahan (BBB) escala locomotora22,23 é necessária para determinar a eficácia da lesão induzida.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. laser Doppler digitalização
<ol><li>Consulte a Tabela de materiais para os detalhes do scanner a laser Doppler utilizado neste estudo. Para digitalizar a medula exposta, coloque o lado dorsal do rato sobre um fundo preto, não-reflexiva.</li>
	<li>
Configurar os parâmetros de digitalização: Abra o software de digitalização, clique em "Medida" para entrar na interface de usuário gráfica de medição e clique no botão "Configurar Scanner" para abrir a interface de instalação do scanner. Para digitalizar áreas pequenas como esta experiência, selecione "Alta resolução" sob o "Scan tamanho e opções de exibição" para um bom modo de digitalização com maior resolução (256 × 256 pontos cobrindo 4 × 10 cm2) (Figura 2A). Clique na opção "Varredura de imagem" para verificar os perímetros de varredura (Figura 2B).</li>
	<li>Clique na opção "Vídeo e distância" para verificar a imagem de vídeo ao vivo. Posicione o scanner 10-13 cm acima da janela cirúrgica e mover o fundo com o animal para o centro da medula espinhal exposta na janela de digitalização (Figura 2).</li>
	<li>Use a função "auto distante" bem ajustar a altura de digitalização, observe que a altura da digitalização deve ser mantida consistente em todas as medições no experimento Figura 2.</li>
	<li>Use uma tampa nonreflective com uma janela para expor apenas a área cirúrgica para mais minimizar o plano de fundo e marcar a direção do animal.</li>
	<li>Clique sobre o "Repita Scan", defina o número de exames (usamos 8 exames repetir neste caso) e clique em "Okey" para abrir a interface de verificação de repetição. Clique no botão Iniciar para iniciar a digitalização, e todo o processo levará aproximadamente 3-4 min (Figura 2D).</li>
</ol>5. laser Doppler monitoramento
<ol><li>Nós usamos um monitor de scanner com Blunt VP3 sonda de entrega final de agulha para monitor BF e SO2 ao longo do tempo. Anexe a sonda Laser Doppler perpendicular a um instrumento estereotáxica para configurar o equipamento de monitoração.</li>
	<li>Colocar o rato no lado dorsal aparelhos estereotáxica, underlay o animal com um pequeno pedaço de isopor quando necessário nivelar a medula exposta.</li>
	<li>Abaixe a sonda da medula espinhal para monitor BF. Nota: Passo 5.3 é crucial para a reprodutibilidade da medição como as leituras de dados são sensíveis à pressão aplicada à sonda, portanto, cuidado extra é necessário para não over - ou under - position a sonda.<ol>
<li>Examinar a incisão e remover qualquer líquido excessivo ou sangue usando uma almofada de algodão estéril.</li>
		<li>Use o eixo de X e Y do aparelho para localizar a sonda a 2 mm rostral ao ponto central da medula espinhal exposta ou lesão aponte e evitar a veia central.</li>
		<li>Use o eixo Z para abaixar lentamente a sonda ao nível apenas tocando a superfície da medula espinhal. A sonda deve apenas tocar a superfície da medula espinhal, mas não tão solto para permitir que qualquer luz brilhante escapar do lado do ponto de contacto.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Gravação de dados
	<ol>
<li>Abra o software de aquisição de dados, clique no botão "nova experiência" para abrir a interface de configuração. Sob a opção "General", verifique a configuração do sistema e clique em "Next" (Figura 3A), na configuração do Display, selecione o canal BF e SO2 e clique em "Next" (Figura 3B).</li>
		<li>Informações do arquivo de entrada e clique em "Next" (Figura 3) para entrar na interface de gravação de dados, clique no botão triângulo verde para iniciar a gravação de dados da sonda (Figura 3D).</li>
		<li>Uma vez que o sinal está estáveis, registros de dados durante 8 min consecutivos. Então levante a sonda e retire o animal do aparelho estereotáxica para suturar a incisão e colocar o animal em cuidados pós-operatórios.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. suturas e cuidados pós-operação
<ol><li>Suturar a incisão: inserir uma agulha de sutura do músculo em ambos os lados da incisão. Puxe o fio através de, puxando os tecidos juntos, cobrindo assim a medula espinhal exposta no local de lâminas removidos. Usando o suporte da agulha, puxe a linha inteira, através do formulário três nós de quadrado e corte a linha como perto de nós quanto possível.</li>
	<li>Sutura da pele com 3-4 Praça nós da mesma forma como suturar a incisão e, em seguida, aparar a segmentos de aproximadamente 1 cm dos maçaricos.</li>
	<li>Coloque o rato em seu lado em sua jaula, evitando o contato entre a cirurgia e o fundo da gaiola. As gaiolas devem ser colocadas em almofadas de aquecimento.</li>
	<li>Monitore o animal até ele acorda da anestesia para não garantir que nenhum sangramento pós-operatório e que as suturas permanecem fechadas.</li>
	<li>Injecte por via subcutânea benzil penicilina de sódio em ratos durante 3 dias após a cirurgia, 120 mg/kg por dia. Intraperitonealmente injete buprenorfina (0,05 mg/kg) imediatamente após a cirurgia e todos os pós-cirurgia de 6 horas por 1 dia.</li>
	<li>Para certificar-se de que os animais têm acesso à comida e água suficientes, caber garrafas de água com bicos estendidas e coloque a comida perto do animal na gaiola. Nota: Realizamos escala de classificação BBB para avaliar a função locomotora de membro posterior da pós-lesão animal 24h para excluir os animais com uma pontuação de BBB acima de 0, portanto, assegurar que o animal estava paralisado pela lesão induzida.</li>
	<li>Pós-operatório, fornecer manual vazio da bexiga urinária, suavemente, aplicando pressão sobre o abdômen duas vezes por dia, se necessário.</li>
</ol>

<ol><li>Jing, Y. L., Bai, F., Chen, H., Dong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meliorating+microcirculatory+with+melatonin+in+rat+model+of+spinal+cord+injury+using+laser+Doppler+flowmetry%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Meliorating microcirculatory with melatonin in rat model of spinal cord injury using laser Doppler flowmetry.</a> Neuroreport. 27 (17), 1248-1255 (2016).</li>
<li>Jing, Y. L., Bai, F., Chen, H., Dong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melatonin+prevents+blood+vessel+loss+and+neurological+impairment+induced+by+spinal+cord+injury+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Spinal+Cord+Med%22%5BJournal%5D)">Melatonin prevents blood vessel loss and neurological impairment induced by spinal cord injury in rats.</a> J Spinal Cord Med. , 1-8 (2016).</li>
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</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Alguns detalhes devem ser notados ao realizar este protocolo. Em primeiro lugar, o processo de anestesia e cirurgia deve ser realizado tão rapidamente e elegantemente quanto possível para minimizar o stress introduzido ao animal. Para reduzir os resultados de perturbações, manter o animal em um Estado relativamente Pacífico e estável. Em segundo lugar, deveria prestar mais atenção ao sangramento durante a medição usando laser Doppler equipamentos, desde que o sangue poderia potencialmente interferir com a leitura. Finalm...

O tecido da medula espinhal é altamente vascularizado e extremamente sensível à hipóxia induzida pela lesão da medula espinhal (SCI). Nossos estudos anteriores mostraram que o fluxo de sangue da medula espinhal foi diminuiu significativamente após a concussão lesão1,2, que pode estar relacionado com o défice de função motora. Estudos recentes têm mostrado que a integridade dos vasos sanguíneos, seguindo SCI é bem correlacionada com a melhoria da função motora sensorial3. Tem sido relatado que a vascularização melhorada pode resgatar matéria branca, indiretamente, levando à melhoria da função4. Portanto, a manutenção da perfusão pós-lesão medular parecia ser de primordial importância para a preservação da viabilidade e funcionalidade.
Os efeitos de diferentes tratamentos na perfusão após SCI foram examinados por numerosos investigadores usando uma variedade de técnicas em modelos experimentais de SCI5,6,7. Laser Doppler, como uma técnica bem estabelecida, foi sem dúvida um método útil para quantificar a perfusão em vários estudos animais e humanos8,9,10,11. A técnica baseia-se em medir o efeito Doppler12 induzida movendo glóbulos vermelhos para a luz esclarecedora. Desde a comercialização da técnica no início de 1980, grandes progressos em tecnologia laser, fibra ótica e processamento de sinais para perfusão de medição por laser Doppler instrumentos13, que tornou LDF uma tecnologia confiável.
No estudo atual, os dois métodos de medição Doppler a laser foram aplicados para avaliar o fluxo sanguíneo (BF) nos espinais de ratos concussiva. Devido à natureza não invasiva da tecnologia e sua configuração simples, o nosso protocolo fornece um método sensível, rápido e confiável para medições de BF da medula espinhal. Mais importante, esse método permite o estudo longitudinal de BF post concussiva SCI sem sacrifício de animais em cada ponto de tempo.
Devido a capacidade de avaliar o BF do tecido e rápidas mudanças de perfusão durante a estimulação, é possível aplicar este protocolo para avaliar cerebral BF14,15 , bem como medir outros tecidos como fígado16, 17,18,de pele19e intestino20. Em um modelo do rato de transitória oclusão da artéria cerebral média, as leituras de laser Doppler foram utilizadas para garantir a adequada redução da taxa para níveis que são esperados na penumbra isquêmica14BF. Em ratos que foram submetidos a indução de isquemia (CLI) membro crítico, varredura a laser Doppler foi aplicada para observar membros traseiros BF antes e após o procedimento CLI e durante diferentes períodos após tratamento21. Além disso, a biodisponibilidade e metabólico apuramento de algumas drogas dependiam BF hepática, que foi detectada por LDF16. Portanto, LDF pode ser amplamente utilizado na avaliação de modelo experimental, farmacodinâmicos e farmacocinéticos.

<table><tbody><tr><td>Scanner de linha Doppler a laser</td><td>Moor Instruments</td><td>moorLDLS2</td><td></td></tr><tr><td>Monitor Doppler a laser</td><td>Moor Instruments</td><td>moorVMS-LDF</td><td></td></tr><tr><td>Sonda para monitor</td><td>Moor Instruments</td><td>VP3</td><td>Sonda de entrega de ponta de agulha romba</td></tr><tr><td>Sistemas</td><td>e instrumentação de precisão</td><td>Impactor IH-0400</td><td></td></tr><tr><td>Fenobarbital sódico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3761</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B-908</td><td></td></tr><tr><td>Seringa</td><td>Becton Dickinson Medica (s) Pte.Ltd</td><td>300841</td><td></td></tr><tr><td>Agulhas de sutura cirúrgica com rosca</td><td>Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd</td><td></td><td>18T0329 (número do lote) / 4-0</td></tr><tr><td>Fábrica de instrumentos de operação de bisturi da Shanghai Medical Instrument Co., Ltd.</td><td></td><td>J11030 4 #</td><td></td></tr> <tr><td>Scalpel blade</td><td>Operation instrument factory of Shanghai Medical Instrument Co., Ltd.</td><td>J12130 20 #</td><td></td></tr> <tr><td>fórceps oftálmico</td><td>Operação instrumento fábrica de Xangai Medical Instrument Co., Ltd.</td><td>JD1040</td><td></td></tr><tr>Fábrica de instrumentos<td>de operação de fórceps hemostático</td><td>da Shanghai Medical Instrument Co., Ltd.</td><td>J31050</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina benzílica sódica</td><td>North China Pharmaceutical Co., Ltd</td><td></td><td>F6072116 (número do lote)</td></tr><tr><td>75% álcool</td><td>Dezhou Anjie Gaoke produtos de desinfecção Co., Ltd</td><td></td><td>150421R (número do lote)</td></tr><tr><td>Iodo</td><td>Shandong Lierkang Medical Technology Co., Ltd</td><td></td><td>20170102 (número do lote)</td></tr><tr><td></td><td>Rat Laboratory Animal Center, The Academy of Millitery Medical Ciências</td><td></td><td>Sprague-Dawly (linhagem de ratos)</td></tr></tbody></table>

usando laser doppler imaging e acompanhamento para analisar a microcirculação na medula espinhal em ratos

Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat

Laser Doppler flowmetry (LDF) é um método não invasivo para a medição de vazão (BF) de sangue, que o torna preferível para medir microcirculatory alterações da medula espinhal. Neste artigo, nosso objetivo era usar imagem Laser Doppler e monitoramento para analisar a mudança de BF após lesão medular. Tanto o scanner de imagem Doppler laser e o sonda/monitor foram sendo empregadas para obter cada leitura. Os dados de LDPI fornecido uma distribuição local de BF, que deu uma visão geral de perfusão em torno do local da lesão e acessível para a análise comparativa de BF entre diferentes locais. Medindo-se intensamente a área de sondagem durante um período de tempo, uma sonda combinada foi usada para medir simultaneamente a saturação BF e oxigênio da medula espinhal, mostrando a perfusão global da medula espinhal e o suprimento de oxigênio. LDF em si tem algumas limitações, tais como fluxo relativo, sensibilidade ao movimento e zero biológico do sinal. No entanto, a tecnologia foi aplicada no estudo clínico e experimental, devido à sua configuração simples e rápida medição de BF.

LDPI foi usado para medir o BF na medula espinhal, que foi quantificada no eixo rostral-caudal da medula espinhal, extraindo perfis lineares (Figura 4). Figura 5A e Figura 5B representam a imagem de fluxo da medula espinhal do grupo farsa e grupo SCI, respectivamente. Figura 5 e Figura 5 representam o BF alterando ao longo do eixo rostral-ca...

Aqui apresentamos uma combinação de perfusão de Doppler laser de imagem (LDPI) e do laser Doppler perfusão monitoramento (LDPM) para medir spinal cord fluxos de sangue local e saturação de oxigênio (SO2), bem como um procedimento padronizado para a introdução da medula espinhal trauma no rato.

Usando Laser Doppler Imaging e acompanhamento para analisar a microcirculação na medula espinhal em ratos

Laser Doppler flowmetry (LDF) is a noninvasive method for blood flow (BF) measurement, which makes it preferable for measuring microcirculatory ...

O objetivo geral deste procedimento é apresentar uma combinação de imagem por laser doppler e monitoramento para medir os fluxos sanguíneos locais e a saturação de oxigênio na medula espinhal, bem como um procedimento padronizado para induzir trauma medular em um rato. Este método pode ajudar a responder perguntas fundamentais na área da microcirculação, como a redistribuição do fluxo sanguíneo ao longo do tempo e seu impacto na região circundante após lesão medular. A principal vantagem desta técnica é que, ao utilizar simultaneamente a imagem por laser doppler e um dispositivo de monitoramento, podemos obter rapidamente dados sobre a distribuição local do fluxo sanguíneo e suas variações ao longo de um período, o que permite uma análise mais sofisticada do fluxo sanguíneo na área afetada.Inicie verificando se o rato anestesiado está em plano cirúrgico de anestesia pela ausência de reação ao aperto nos dedos dos pés. Retire os pelos da região dorsal do rato, da parte inferior das costas até o pescoço. Em seguida, posicione o rato com a face dorsal voltada para cima sobre uma placa aquecida a 40-degrees Celsius para manter uma temperatura corporal constante.Esterilize a área depila

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JoVE Journal

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Comportamento

Este vídeo demonstra a colocação de uma sonda de agulha Doppler a laser na medula espinhal de um modelo suíno. Isso ajuda na quantificação contínua do suprimento de sangue para a medula espinhal, uma avaliação importante na lesão da medula espinhal.

Inserção de sonda de agulha Doppler a laser: uma técnica para quantificação em tempo real do fluxo sanguíneo na medula espinhal em um modelo suíno

Monitorização da perfusão cerebral foi demonstrada para melhorar a precisão em modelos de isquemia AVC. Dificuldades técnicas, muitas vezes limitam o uso desta ferramenta essencial para a pesquisa vascular cerebral. Neste vídeo, um sistema optimizado é mostrado para obter um controlo único ou multi-local hemodinâmicas durante a oclusão da artéria cerebral média intraluminal em ratos.

Sistema otimizado para Monitorização de perfusão cerebral no modelo do rato do curso de oclusão da artéria cerebral média intraluminal

A imagem de ultrassom com contraste aprimorado é uma ferramenta in vivo confiável para quantificar o fluxo sanguíneo da medula espinhal em um modelo experimental de lesão da medula espinhal de rato. Este artigo contém um protocolo abrangente para aplicação desta técnica em associação com um modelo de contusão de lesão medular torácica.

Contraste melhorado Ecografia de Avaliação da Medula Espinhal fluxo de sangue em Experimental lesão medular

Este manuscrito descreve em vitro protocolos de vídeo microscopia para avaliar a função vascular nas artérias de resistência cerebral de rato. O manuscrito também descreve técnicas para avaliar a densidade de microvessel com perfusão de lectina e tecido fluorescente etiquetada usando Laser Doppler Flowmetry.

Avaliação dos mecanismos de controlo Vascular utilizando a microscopia das artérias de resistência isolada de ratos

Este artigo demonstra o uso de fluimetria laser Doppler para avaliar a capacidade da circulação cerebral para autoregular seu fluxo sanguíneo durante reduções na pressão arterial.

Avaliação da autoregulação do fluxo sanguíneo cerebral no rato usando fluimetria de laser

A microcirculação da medula espinhal desempenha um papel fundamental na lesão medular. A maioria dos métodos não permite a avaliação em tempo real da microcirculação da medula espinhal, essencial para o desenvolvimento de terapias voltadas à microcirculação. Aqui, propomos um protocolo usando sondas Laser-Doppler-Flow Needle em um grande modelo animal de isquemia/reperfusão.

Avaliação em tempo real da microperfusão da medula espinhal em um modelo suíno de isquemia/reperfusão

A ruptura da barreira hemato-medular (BSCB) pode ser alcançada com sucesso com a administração intravenosa de microbolhas e a aplicação de ultrassom focalizado de baixa intensidade (LIFU). Este protocolo detalha a abertura do BSCB usando LIFU em um modelo de roedor, incluindo a configuração do equipamento, injeção de microbolhas, localização do alvo e visualização da interrupção do BSCB.

Ruptura da Barreira Hemato-Medular Usando Ultrassom Focalizado de Baixa Intensidade em Modelo de Rato

Para estudar a regulação do fluxo sanguíneo cerebral in vivo, os métodos farmacológicos tradicionais são invasivos, muitas vezes danificando o crânio, a dura-máter e as leptomeninges. Neste trabalho, desenvolvemos uma técnica minimamente invasiva que combina injeção de magna intracisternal (ICM) guiada por nanoinjetor com imagens de contraste de manchas a laser, preservando a integridade do crânio e das leptomeninges.

Nanoinjeção de Cisterna Magna Emparelhada e Ensaio de Imagem de Contraste de Manchas a Laser para Estudar a Regulação do Fluxo Sanguíneo Cerebral In Vivo

Um sistema de imagem de contraste a laser foi utilizado para monitorar as mudanças no fluxo sanguíneo microvascular renal durante a isquemia-reperfusão unilateral renal após a resseção do rim direito em camundongos.

Perfusão Microvascular Monitorada por Imagem de Contraste Speckle-Laser durante Lesão por Isquemia-Reperfusão Renal em Camundongos

Este artigo descreve como para gravar a atividade da amígdala com magnetoencefalografia (MEG). Além disso, este artigo irá descrever como conduzir traço medo condicionado sem consciência, uma tarefa que ativa a amígdala. Ele cobrirá três tópicos: 1) Projetar um paradigma traço condicionado usando para trás mascarando para manipular a consciência. 2) a atividade cerebral de gravação durante a tarefa usando magnetoencephalography. 3) Utilizando imagens de origem para recuperar o sinal a partir de...

Como detectar Amygdala Atividade com Magnetoencefalografia usando fonte de imagem

Aprenda a medir fluxo sanguíneo e saturação de oxigênio na medula espinhal de ratos usando imagem e monitoramento por laser Doppler. Este método padronizado auxilia no estudo da microcirculação após trauma.

Usando Laser Doppler Imaging e acompanhamento para analisar a microcirculação na medula espinhal em ratos

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