28 de janeiro de 2018
Este método permite coloração seletiva e quantificação de DNA em géis embebendo o gel em um SYBR Green eu / Nitro azul tetrazólio solução e então exposto à luz solar ou uma fonte de luz azul. Isto produz um precipitado visível e não requer quase nenhum equipamento, tornando-a ideal para uso em campo.
O protocolo de coloração de DNA tem três etapas gerais. A primeira é colocar o gel em uma solução de SYBR Green I e nitro blue tetrazólio, também conhecido como NBT. O gel é então agitado por 25 minutos se for um gel de poliacrilamida e uma hora se for um gel de agarose.
A última etapa é expor o gel a uma fonte de luz azul, como LEDs azuis ou luz solar. Durante esta etapa, algumas bandas precipitadas aparecem. Essas bandas têm uma correlação direta com a concentração de DNA e o gel pode ser digitalizado em um scanner de escritório para quantificar o DNA.
Para o gel de poliacrilamida, é preparado um gel de poliacrilamida não desnaturante. O gel é então carregado com as amostras e o processo de eletroforese é iniciado. SYBR Green I sendo diluído para 1,2X e as soluções milimolares NBT 20 estão agora preparadas.
O gel é colocado em um recipiente de plástico e 16,75 mils do SYBR Green I diluído e 325 mils do NBT a 20 milimolares são adicionados. Em seguida, o recipiente é coberto com Parafilm e papel alumínio e agitado a 60 rpm por 25 minutos. Finalmente, a folha de alumínio e um Parafilm são removidos e o gel é exposto à luz solar ou a uma fonte de luz azul.
Para quantificação de banda e curvas de calibração, o gel é colocado em um scanner de escritório e, em seguida, a imagem é analisada usando um software de análise de imagem. Finalmente, é feito um enxerto de sinal normalizado versus concentração. Um gel de agarose é feito.
Os poços são carregados com um plasmídeo que tem resistência à ampicilina e o gel é cortado em dois pedaços, cada um dos quais é corado com uma coloração diferente. Em seguida, a banda plasmidial é extraída e transformada por transformação química em células competentes com meios que contêm ampicilina. Um gel de agarose a 1% é preparado em tampão TAE 1X e carregado com quatro microlitros de plasmídeo a cerca de 100 nanogramas por microlitro.
O gel na câmara de eletroforese é então executado a 100 volts por uma hora. Metade do gel é corada com o método SYBR Green I e NBT e a outra metade com o método SYBR Green I UV. Para gel de agarose, o método SYBR Green I NBT é realizado usando SBYR Green I em uma concentração de 1,2X e NBT em 2 milimolares.
O gel é colocado em um recipiente de plástico e o volume da solução é dimensionado para cobrir o gel e o tempo de agitação é estendido para uma hora. Para géis de agarose, o método SYBR Green I comumente usado é realizado cobrindo o gel com a solução 1X SYBR Green I e mexendo por uma hora. Em seguida, o gel é exposto a um transiluminador UV para visualização da banda por dois minutos.
Uma vez que o gel é corado, a banda de plasmídeo é cortada com um bisturi e o plasmídeo extraído com um kit de extração comercial. O DNA é normalizado para 9,1 nanogramas por microlitro para transformar bactérias Escherichia coli XL 10 competentes em produtos químicos. Finalmente, as colônias são contadas.
As unidades formadoras de colônias são calculadas. O resultado é enxertado e os resultados obtidos do SYBR Green I NBT e do SYBR Green I UV são comparados. Um precipitado de formazan roxo aparece onde o DNA está localizado.
No experimento, uma escada de DNA foi carregada para fazer uma curva de calibração com um limite de detecção de 192 picogramas a 1.500 pares de bases. O uso de géis de agarose permite a recuperação da amostra utilizando kit disponível comercialmente e não interfere na extração. Alguma recuperação usando este método com LED azul resulta em melhor qualidade em comparação com o SYBR Green I usando transiluminador.
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Este método permite a coloração seletiva e a quantificação de DNA em géis utilizando uma solução de SYBR Green I/Nitro Blue Tetrazólio. O processo requer equipamento mínimo, tornando-o adequado para aplicações de campo.
Este método de coloração de DNA permite a visualização direta e a quantificação de ácidos nucleicos sem equipamento especializado, apoiando a validação rápida de alvos em ambientes com recursos limitados. Ao eliminar a dependência de transiluminadores de UV, reduz os riscos de segurança e a complexidade operacional em fluxos de trabalho de descoberta inicial. A abordagem aumenta a confiança preditiva por meio da correlação reprodutível do sinal baseado em corante com a concentração de DNA, facilitando decisões de avanço ou interrupção em processos de identificação de compostos líderes.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a extração de ácidos nucleicos até a validação de ensaios funcionais, especialmente em situações onde o acesso a equipamentos é limitado ou é necessária uma iteração rápida.