Name: Gravação de Intracavernosal pressão para avaliar a função erétil em roedores (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-06T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Aprenda a gravar pressão intracavernosa em ratos para avaliar função erétil, cateterizando o corpo cavernoso e estimulando nervos cavernosos. Este método permite avaliar terapias para disfunção erétil com precisão.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabalho foi financiado pelos fundos de pesquisa Fundamental para as universidades Central (020814380018, 020814380077), The China Scholarship Council (CSC, n. º 201606195024), Fundação ciência Natural da província de Jiangsu (BK20160138) e chave projeto suportado pela ciência e pela Fundação de desenvolvimento da tecnologia, universidade médica de Nanjing (2014NJMUZD053).

Três meses e 18 meses de idade ratos Sprague-Dawley foram utilizados no presente estudo. Todos os animais foram tratados em conformidade com as diretrizes do NIH para o cuidado e o uso de animais de laboratório. Procedimentos envolvendo assuntos animais foram aprovados pelo Comitê de ética e local institucional Animal conta com um esforço para minimizar o sofrimento dos animais. Os protocolos foram aprovados pelo Comitê de uso (IACUC) na Universidade de tecnologia de Nanquim (Nanjing, China) e institucional Cuidado Animal.
Os ratos foram divididos em dois grupos de acordo com sua idade e desempenho preliminar no teste de função erétil induzida por APO antes da gravação do ICP: o jovem normal (grupo YN) e disfunção erétil envelhecido grupo (grupo AE)10.
1. preparação antes da cirurgia
<ol><li>Fazer manualmente um par de eletrodos bipolares para a gravação do ICP (Figura 1). Ligeiramente dobrar as extremidades dos eletrodos e ajustar a distância entre dois eletrodos para 1-2 mm de largura, como mostrado na figura 1A.</li>
	<li>Conecte os eletrodos do estimulador usando duas pinças crocodilo (figura 1AB).</li>
	<li>
Montar o sistema de cateter: Primeiro, conecte uma agulha hipodérmica de 23G para uma torneira de 3 vias com tubulação e, em seguida, ligue a torneira para o transdutor de pressão. Em seguida, anexe uma seringa de 10 mL para o terceiro participante da torneira para fornecer solução salina de heparina.</li>
	<li>Verifique cuidadosamente para detecção de fugas depois de todo o sistema de enchimento com heparina soro fisiológico (200 U/mL). Em seguida, vire a torneira de 3 vias para fechar o canal de seringa ou o canal de transdutor de pressão (Figura 1).</li>
	<li>Levante a agulha 20 cm acima do nível do forro de madeira. Então calibrar a pressão gravação sistema a 20 cm H2O. Depois disso, mova a altura da agulha para verificar a precisão do sistema de gravação. Repita a calibração até que a precisão foi confirmada.</li>
	<li>Transferir os ratos da instalação de animais para a sala de cirurgia e permitir que eles se acostumaram à sala de cirurgia para pelo menos 30 min.</li>
	<li>Os instrumentos esterilizados são pulverizados com etanol a 70% antes da cirurgia</li>
</ol>2. procedimento de cirurgia
<ol><li>Anestesiar o rato com uma injeção intraperitoneal de pentobarbital de sódio na dose de 45 mg/kg de peso corporal e esperar 5-10 min. beliscar os dedos para confirmar uma anesthetization adequada.</li>
	<li>Raspar a pele do abdômen e pescoço com um barbeador elétrico e coloque o rato sobre as costas de uma almofada de aquecimento.</li>
	<li>Limpe a área de cirurgia com bolas de algodão embebida de solução iodo-povidona 10% seguidas de bolas de algodão embebido de etanol a 70%. Além disso, aplica a pomada oftálmica para impedir que os olhos sequem.</li>
	<li>Cateterismo da artéria carótida esquerda.<ol>
<li>Segure a pele do pescoço com a pinça e fazer uma incisão horizontal no meio do pescoço. Entalha os músculos, cuidadosamente expor a artéria carótida esquerda e isolar uma seção de 5 mm do navio.</li>
		<li>Cuidadosamente separar a artéria carótida do nervo vago usando fórceps, desenhar uma sutura seda sob a artéria carótida e colocar uma gravata solta na extremidade caudal da embarcação, então faça outro nó apertado na extremidade cranial do navio.</li>
		<li>Caudalmente prenda o navio com uma pinça de buldogue acima da sutura para parar o fluxo de sangue.</li>
		<li>Cuidadosamente com tesoura microcirúrgica, fazer uma incisão no navio e inserir o cateter arterial para o coração, com o auxílio do gancho e pinça microdissecando.</li>
		<li>Apertem a ligadura caudal solta em volta do cateter para fixá-la. Remova a braçadeira de buldogue para recuperar o fluxo de sangue.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Isolar o CN e coloque o eléctrodo
	<ol>
<li>Levante a pele e o músculo do abdômen com um par de pinças. Com a tesoura de dissecação, corte o abdômen inferior ao pénis tornar-se uma incisão mediana.</li>
		<li>Empurre suavemente o intestino com cotonete na parte superior da cavidade abdominal.</li>
		<li>Segure a bexiga com um par de pinças e puxe a bexiga da cavidade abdominal. Expor os lóbulos ventrais da próstata, que está localizado na porção ventral da uretra.</li>
		<li>Retire os lóbulos ventrais da próstata, vesículas seminais e deferente para expor o lobo dorsal da próstata. Encontre o ponto de aderência dos canais deferentes e próstata.</li>
		<li>Separe o espaço entre a próstata e o canal deferente. Expor cuidadosamente a cápsula fibrosa, que situa-se posterior ao ponto de junção da próstata e ducto deferente. Em seguida, encontre o gânglio pélvico principal (Figura 2). Nota: O gânglio pélvico principal e nervos cavernosos podem ser vistos na superfície da próstata.</li>
		<li>Área CN cuidadosamente seca com um cotonete estéril. Cuidadosamente, isolar e gancho do nervo cavernoso bem com os eletrodos bipolares.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Cateterismo da Crura esquerdo
	<ol>
<li>Corte uma pequena incisão na pele do pênis com uma tesoura dissecação e então cuidadosamente DDE a pele do eixo do pênis.</li>
		<li>Disse a musculatura estriada do pênis. Encontre o ramo superior do osso púbis.</li>
		<li>Expor o músculo bulbospongiosus, que cobre a lâmpada spongious.</li>
		<li>Divida o músculo bulbospongiosus do músculo isquiocavernoso usando pinça curvada.</li>
		<li>Cuidadosamente, isolar o músculo isquiocavernoso com pinça curvada e em seguida, corte o músculo isquiocavernoso para expor a branca túnica albugínea do corpo cavernoso crus.</li>
		<li>Seguindo a direção anatômica do corpo cavernoso crus, cuidadosamente Insira a agulha no corpo cavernoso crus através da branca túnica albugínea. Nota: Este é um passo crucial para o sucesso cateterismo. Pode ser injectada uma pequena quantidade de soro fisiológico heparinizado, e uma ligeira tumescência peniana deve ser observada, se a agulha foi inserida corretamente.</li>
		<li>Com cuidado, solte a agulha e evitar qualquer deslizamento da agulha ou ruptura do tubo de ligação. Verifique se há algum vazamento.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. estimular o CN
<ol><li>Abra o programa de software para a gravação do sinal de pressão e iniciar a gravação do sinal de pressão.</li>
	<li>Definir os parâmetros da estimulação: 15 Hertz, largura de pulso de 5 milissegundos, 5 volts e uma duração de 60 s. Estimule a CN em uma frequência de 15 Hz com uma largura de pulso de 5 ms. Nota: Um aumento acentuado do ICP pode ser observado durante a aplicação da estimulação elétrica.</li>
	<li>Permita um intervalo de descanso de 30 minutos entre estímulos. O máximo de estimulação consecutivo em cada animal é três vezes.</li>
</ol>4. pôr fim ao regime
<ol><li>Depois da gravação, administre eutanásia injetando uma overdose de pentobarbital de sódio na dose de 150 mg/kg de peso corporal. Confirme a morte de ratos, verificando a sua pressão arterial. Remover os ratos e limpar as ferramentas de cirurgia.</li>
</ol>5. análise de dados
<ol><li>Salvar e exportar os dados a partir do software. A resposta é comumente expressa como a relação do ICP para sistêmica pressão arterial média (mapa). A relação do pico ICP/mapa foi calculada para avaliar a função erétil.</li>
	<li>Dados da piscina de pelo menos cinco ratos e analisar com software estatístico. As diferenças são consideradas estatisticamente significativas quando p < 0.05, usando o teste t de Student.</li>
</ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Consensus+Conference.+Impotence.+NIH+Consensus+Development+Panel+on+Impotence%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence.</a> JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).</li>
<li>Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigative+models+in+erectile+dysfunction%3A+a+state-of-the-art+review+of+current+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models.</a> J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).</li>
<li>Lue, T. F., Takamura, T., Schmidt, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamics+of+erection+in+the+monkey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Hemodynamics of erection in the monkey.</a> J Urol. 130 (6), 1237-1241 (1983).</li>
<li>Carati, C. J., Creed, K. E., Keogh, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomic+control+of+penile+erection+in+the+dog%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Autonomic control of penile erection in the dog.</a> J Physiol. 384, 525-538 (1987).</li>
<li>Steers, W. D., Mallory, B., de Groat, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+study+of+neural+activity+in+penile+nerve+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological study of neural activity in penile nerve of the rat.</a> Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), R989-R1000 (1988).</li>
<li>Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Animal models of erectile dysfunction.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).</li>
<li>Burnett, A. L., Lowenstein, C. J., Bredt, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide%3A+A+physiologic+mediator+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide: A physiologic mediator of penile erection.</a> Science. 257 (5068), 401-403 (1992).</li>
<li>Oh, T. Y., Kang, K. K., Ahn, B. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Erectogenic+effect+of+the+selective+phosphodiesterase+type+5+inhibitor%2C+DA-8159%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Pharm+Res%22%5BJournal%5D)">Erectogenic effect of the selective phosphodiesterase type 5 inhibitor, DA-8159.</a> Arch Pharm Res. 23 (5), 471-476 (2000).</li>
<li>Ouyang, B., Sun, X., Han, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+urine-derived+stem+cells+alone+or+genetically-modified+with+FGF2+Improve+type+2+diabetic+erectile+dysfunction+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Human urine-derived stem cells alone or genetically-modified with FGF2 Improve type 2 diabetic erectile dysfunction in a rat model.</a> PLoS One. 9 (3), e92825(2014).</li>
<li>Pan, F., Xu, J., Zhang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+the+MicroRNA+profile+in+aging+rats+with+erectile+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of the MicroRNA profile in aging rats with erectile dysfunction.</a> J Sex Med. 11 (7), 1646-1656 (2014).</li>
<li>Cho, M. C., Park, K., Kim, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+erectile+function+by+suppression+of+corporal+apoptosis%2C+fibrosis+and+corporal+veno-occlusive+dysfunction+with+rho-kinase+inhibitors+in+a+rat+model+of+cavernous+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Restoration of erectile function by suppression of corporal apoptosis, fibrosis and corporal veno-occlusive dysfunction with rho-kinase inhibitors in a rat model of cavernous nerve injury.</a> J Urol. 193 (5), 1716-1723 (2015).</li>
<li>Hannan, J. L., Matsui, H., Sopko, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caspase-3+dependent+nitrergic+neuronal+apoptosis+following+cavernous+nerve+injury+is+mediated+via+RhoA+and+ROCK+activation+in+major+pelvic+ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Caspase-3 dependent nitrergic neuronal apoptosis following cavernous nerve injury is mediated via RhoA and ROCK activation in major pelvic ganglion.</a> Sci Rep. 6, 29416(2016).</li>
<li>Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+characterization+of+a+bio-assay+of+erectile+function+in+a+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model.</a> J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).</li>
<li>Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+as+an+animal+model+for+male+erectile+function+evaluation+in+sexual+medicine+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Sex+Med%22%5BJournal%5D)">Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research.</a> J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).</li>
<li>Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+rat+as+a+model+for+the+study+of+penile+erection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">The rat as a model for the study of penile erection.</a> J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).</li>
<li>Albersen, M., Orabi, H., Lue, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+and+treatment+of+erectile+dysfunction+in+the+aging+male%3A+A+mini-review%5BTitle%5D)+AND+%22Gerontology%22%5BJournal%5D)">Evaluation and treatment of erectile dysfunction in the aging male: A mini-review.</a> Gerontology. 58 (1), 3-14 (2012).</li>
<li>Hedlund, P., Matsumoto, K., Andersson, K. -E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+Models+of+Erectile+Dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Prot+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Animal Models of Erectile Dysfunction.</a> Curr Prot Pharmacol. 29, 5.41.1-5.41.22 (2005).</li>
<li>Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telemetric+monitoring+of+intracavernous+pressure+in+freely+moving+rats+during+copulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation.</a> J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+changes+during+reflexive+penile+erections+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat.</a> Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+during+erection+in+rats%3A+an+integrative+approach+based+on+telemetric+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording.</a> Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).</li>
<li>Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+erectile+response+by+continuous+measurement+of+penile+diameter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar

Como uma medida direta da função erétil, o ICP é um método confiável de14. Isso permite a aquisição de dados na ICP basal, pico ICP, planalto ICP, tempo de ereção e detumescence tempo, duração da resposta, etc. Além destes direcionar parâmetros medidos, existem alguns outros parâmetros de índice: (1) "T80", o tempo para chegar a 80% do pico ICP; (2) "D20", a hora de diminuir para 20% do pico ICP; (3) "ΔT80", a taxa de aumento da pressão (por segundo) em T80; e (4) "ΔD20", a taxa de diminu...

ED é definido como a incapacidade de alcançar ou manter uma erecção do pénis e tornou-se um distúrbio sexual masculino comum1. Animais experimentais são utilizados e fornecem modelos reprodutíveis para investigar a função erétil2. Por um longo tempo, vários modelos animais maiores têm sido empregados para investigar a função erétil3,4,5. Embora os roedores são relativamente pequenos em comparação com outros animais, eles também são usados para o estudo da disfunção erétil masculina devido exibindo várias vantagens6. Primeiro, as características sexuais morfológicas e funcionais dos seres humanos são recapituladas em roedores. Em segundo lugar, em comparação com animais maiores, utilizados nos estudos de ED, roedores são mais econômicos comprar, casa e manter. Modelos de roedores geneticamente modificados, terceiros fornecem vantagens em estudos comportamentais, bem como neurofisiológicos reprodutíveis e subsequentes. Portanto, roedores tornaram-se rapidamente os principais animais utilizados no estudo da disfunção erétil masculina.
Beneficiando de uma base genética pura e as condições de cultura consistente, modelos de roedores forneceram dados consistentemente reprodutível5,6,7,8. Entre os numerosos estudos disponíveis relacionados a muitos aspectos das funções erétil, a apomorfina (APO)-teste de resposta erétil induzida e o teste de resposta do ICP induzido por estimulação elétrica são os métodos mais utilizados que reflectem fielmente erétil função9,10,11,12. O teste de função erétil induzida por APO, desenvolvido por Heaton et al 13, é um bioensaio que utiliza o fenômeno que a administração da apomorfina para ratos provoca ereções e bocejos. Como um fácil, não invasivo e estável bioensaio para avaliar a função erétil, o teste de função erétil induzida por APO é amplamente utilizado em muitos estudos. No entanto, este ensaio não reflete adequadamente a qualidade das ereções ou as mudanças dinâmicas no fluxo sanguíneo associado com uma resposta erétil14. Medições de ICP foram inicialmente desenvolvidas pela Quinlan et al 15. neste método, um cateter é colocado na artéria carótida para medir a pressão arterial sistêmica, e outro cateter é inserido no corpo cavernoso crus para gravar o ICP. Antes ou durante o ICP de gravação, um agente vasoativas e/ou estimulação elétrica de campo do gânglio pélvica principal (MPG) ou NC muitas vezes foram dadas a ratos14. Este ensaio tem sido uma ferramenta confiável para avaliar as terapias e medicamentos para ED e provavelmente irá ser usado como um método de avaliação vital no futuro6.
Comparado com o teste realizado facilmente induzida por APO a função erétil, gravações de ICP sucesso requerem atenção aos detalhes, prática e aderência ao método de operação. Portanto, aqui, nós fornecemos uma descrição detalhada de como realizar a gravação do ICP.

<table><tbody><tr><td>Animal</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ratos</td><td></td><td></td><td>Linhagem: Sprague-Dawley Idade: 2-3 meses</td></tr><tr><td>Ratos</td><td></td><td></td><td>Tensão: Sprague-Dawley Idade: 15-18 meses</td></tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número de Catálogo</td><td>Comentários</td></tr><tr><td><forte>Reagentes</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Salino</td><td>Sigma-Aldrich, S7653</td><td></td><td>dissolver 8,5 gramas de cloreto de sódio em água destilada</td></tr><tr><td>Solução de pentobarbital sódico</td><td>Sigma-Aldrich, P3761</td><td></td><td>dissolver 1 grama em 100 ml de solução salina</td></tr><tr><td>Povidona-iodo</td><td>BTP Pharmaceutical Co. Limited</td><td></td><td>10% (V/V)</td></tr> <tr><td>Etanol</td><td>China National Pharmaceutical Group Corporation (SINOPHARM)</td><td></td><td>70% (V/V)</td></tr><tr><td>Heparina</td><td>Sigma-Aldrich, H3149</td><td></td><td>dissolve a heparina 20000U em 100 ml de solução salina</td></tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número de catálogo</td><td>Comentários</td></tr><tr><td>Materiais</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agulha hipodérmica</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>Seringa 23G</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd</td><td>10 ml</td><td></td></tr><tr><td>Torneira de três vias Fábrica de</td> instrumentos de <td>Chengdu</td><td>TSK 01</td><td></td></tr><tr><td>Eletrodo Fábrica de</td><td>instrumentos de Chengdu</td><td>JST-1</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de cateter</td><td>Fábrica de instrumentos de Chengdu</td><td>PE-10, PE-50</td><td></td></tr><tr><td>Tesoura de operação Equipamento de</td><td>operação de Xangai fábrica</td><td>J22010, J22020</td><td></td></tr><tr><td>tesoura de operação oftálmica</td><td>Shanghai fábrica de equipamentos de operação</td><td>Y00010, Y00020</td><td></td></tr><tr><td>pinça oftálmica</td><td>fábrica de equipamentos de operação de Xangai</td><td>JD1010, JD1020</td><td></td></tr><tr><td>MicroScissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>WAA260</td><td></td></tr><tr><td>sutura de seda</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>5-0</td><td></td></tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número de catálogo</td><td>Comentários</td></tr><tr><td>Equipamento</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Estimulador</td><td>Nanjing medease science and technology co. ltd (modelo 4C501H)</td><td></td><td>15 Hz, pulso de 5 ms, 5 V, duração de 60 s e intervalo de 5 minutos</td></tr><tr><td>Sistema de processamento de coleta de sinal multicanal</td><td>Nanjing medease science and technology co., ltd (modelo 4C501H)</td><td></td><td>Modelo de pressão</td></tr><tr><td>arterial Transdutor de pressão</td><td>Beijing Xin Hang Xing Ye Technology Trading Company Limited (modelo YP100)</td><td></td><td>40KPa</td></tr></tbody></table>

gravação de intracavernosal pressão para avaliar a função erétil em roedores

Intracavernosal Pressure Recording to Evaluate Erectile Function in Rodents

Disfunção erétil (ED) é definida como a incapacidade de alcançar ou manter uma ereção do pênis, e isso se tornou um distúrbio sexual masculino predominante. Roedores são empregados por muitos estudos de investigação a fisiologia/patologia da função erétil. A função erétil em roedores pode ser avaliada medindo-se a pressão de intracavernosal (ICP). Na prática, o ICP pode ser monitorado após a estimulação elétrica do nervo cavernoso (CNs). A pressão arterial da artéria carótida (a pressão arterial média) é usada como referência para ICP. Usando ICP protocolos de gravação, muitos parâmetros-chave de função erétil podem ser medidos a partir da curva de resposta do ICP. A medição de ICP fornece mais informações do que o teste de ereção peniana induzida por apomorfina e é mais barata que o monitoramento Telemétrico do pênis corpus spongiosum, tornando este método esse mais popular para avaliar a função erétil. No entanto, em comparação com o teste realizado facilmente induzida por APO a função erétil, gravações bem sucedidas do ICP requerem atenção aos detalhes, prática e aderência ao método de operação. Neste trabalho, uma introdução à gravação de ICP em ratos é fornecida para complementar o procedimento de forma eficiente.

Numerosos estudos têm demonstrado que a disfunção erétil em idade machos está se tornando um problema comum. No entanto, tratamento médico é limitado na gestão de relacionadas ao envelhecimento ED16. Em modelos de roedores de ED relacionadas ao envelhecimento, muitas terapias são testadas na função erétil de ratos envelhecidos. Conforme apresentamos acima, o teste de gravação do ICP pode ser usado para distinguir os animais ED da população total de animais experime...

Gravação de pressão Intracavernosal (ICP) é um método importante para avaliar a função erétil de animais experimentais. Aqui, um protocolo detalhado é demonstrado para o procedimento de gravação do ICP catheterizing o pênis crura e então eletricamente estimulando os nervos cavernosos em ratos.

Gravação de Intracavernosal pressão para avaliar a função erétil em roedores

Erectile dysfunction (ED) is defined as the inability to attain or keep an erection of the penis, and this has become a prevalent male sexual disorder. ...

O objetivo geral deste procedimento é testar a função erétil de ratos cateterizando a cruz do corpo cavernoso e registrando a pressão intracavernosa após a estimulação dos nervos cavernosos. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da disfunção erétil masculina, como, por exemplo, para avaliar as terapias e medicamentos para a disfunção erétil. Portanto, uma vantagem dessa técnica é que ela fornece uma avaliação mais precisa da função de ereção e dos reflexos, a mudança dinâmica no fluxo sanguíneo associada à resposta erétil.A demonstração visual desse método é crítica, pois o cateterismo é difícil de aprender porque a pequena área da túnica albugínea branca da crus corpus cavernosum dificulta a inserção da agulha na crura do pênis. Para se preparar para a cirurgia, faça um par de eletrodos bipolares para registros de pressão intracavernosa. Dobre levemente as extremidades dos eletrodos e ajuste a distância entre eles para um a dois milímetros.Em seguida, conecte os eletrodos ao estimulador usando dois grampos de crocodilo. Em seguida, monte o sistema de cateter. Primeiro, use um tubo para conectar uma agulha hipodérmica de calibre 23 a uma torneira de três via

intracavernosal-pressure-recording-to-evaluate-erectile-function

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

O CODA 8 canais de alta taxa de transferência não-invasiva da pressão arterial do sistema mede a pressão arterial em até 8 camundongos ou ratos simultaneamente. Este sistema utiliza-tail cuff Recording Volume de pressão (VPR) para medir a pressão arterial através da determinação do volume de sangue da cauda.

Medição da pressão arterial em ratos usando Recording Volume de pressão, um método de cauda-manguito

Uma nova técnica para gravar as pressões dentro do crânio é descrito. O método minimamente invasiva utiliza um sistema de pressão de fibra óptica de detecção para medir com precisão a pressão intracraniana (ICP) em ratos anestesiados, sem causar trauma cerebral significativa. A técnica pode ser utilizada em uma ampla variedade de modelos experimentais.

Medida da Pressão Intracraniana peridural em ratos, utilizando um transdutor de pressão de fibra óptica

Este vídeo demonstra uma técnica de estudo da atividade dos nervos simpáticos renais (RSNs) em resposta a mudanças na pressão arterial em ratos. Ao conectar um cateter sensor de pressão à artéria femoral, os nervos simpáticos renais são expostos. Os nervos são então levantados para um eletrodo de registro e sua atividade elétrica é registrada. Em seguida, uma droga vasoconstritora é injetada para elevar a pressão arterial e as alterações correspondentes na atividade do RSN são monitoradas.

Registro de alterações na atividade nervosa simpática renal em resposta à pressão arterial em ratos

Este vídeo demonstra o isolamento e a estimulação do nervo cavernoso em um rato anestesiado para estudar as mudanças da pressão arterial no corpo cavernoso.

Realização de estimulação do nervo cavernoso em ratos para medir a pressão intracavernosa

Este manuscrito fornece um protocolo para implantar telémetros no camundongo com o objetivo de medir as pressões intrauterinas durante a gravidez.

Telemetria Intrauterine medir Rato contrátil Pressão<em&gt; In Vivo</em

Ratos anestesiados exibem não-fisiológicos pressão arterial sistêmica, que impede a avaliação significativa do tônus autonômico, dada a íntima relação entre a pressão arterial e o sistema nervoso autônomo. Assim, um método novo para a atividade do nervo simpático renal simultaneamente recorde e a pressão arterial com infusão intravenosa em ratos conscientes é descrito.

Nova abordagem para gravação simultânea da atividade do nervo simpático Renal e pressão arterial com infusão intravenosa em consciente, ratos desenfreados.

Este protocolo descreve primeiramente o procedimento cirúrgico da implantação permanente de um cateter de bexiga urinária combinado com eletrodos de esfíncter uretral externo e segundo, a medição da função da bexiga urinária e externo uretral sphincter em animais acordados implantados.

Medições de esfíncter uretral Cystometric e externo em ratos acordados com cateter implantado e eletrodos permitindo medições repetidas

Este estudo descreve um procedimento cirúrgico simplificado e técnica para a realização de estimulação do nervo cavernoso com o isolamento do nervo-eletrodo complexas usando cola de silicone e medição de pressão intracavernous.

Estimulação do nervo cavernoso e gravação de pressão Intracavernous em um rato

Aqui, descrevemos uma configuração para gravação simultânea do eletrocardiograma e pressão intra-arterial (BP) em ratos experimentais, que podem ser feitos com equipamento padrão em instalações de animais e podem ser aplicados a fisiológicos ou farmacológicos estudos para investigar os mecanismos de patogenicidade ou terapêuticos em medicina cardiovascular.

Gravação simultânea de eletrocardiografia e sangue invasiva pressão medida em ratos

Este protocolo descreve o procedimento para medir as concentrações de ATP no lúmen da bexiga em um roedor anestesiado.

In vivo Medição Luminal da Liberação de ATP Urotelial Evocado por Distensão em Roedores

Aprenda a gravar pressão intracavernosa em ratos para avaliar função erétil, cateterizando o corpo cavernoso e estimulando nervos cavernosos. Este método permite avaliar terapias para disfunção erétil com precisão.

Gravação de Intracavernosal pressão para avaliar a função erétil em roedores

Explorar mais vídeos