Name: Avaliação do esperma de peixe utilizando Software e dispositivos de refrigeração (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-28T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: Aprenda a avaliar a qualidade do esperma de peixes usando análise computadorizada (CASA) e dispositivos de refrigeração a 4°C. Este método permite medir a motilidade espermática com precisão para fertilização artificial em aquicultura.

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Este projeto recebeu financiamento da Associação de custo (alimentação e agricultura custo ação FA1205: AQUAGAMETE e Horizonte 2020 inovação programa de investigação e da União Europeia sob o Marie Sklodowska-Curie projeto IMPRESS (GA n 642893). Gostaríamos de agradecer a equipe científica de PROiSER, especificamente para o aluno Alberto Vendrell Bernabéu, por sua participação ativa na gravação do video deste projecto.

Procedimentos envolvendo assuntos animais tem sido aprovaram (2015/VSC/ervilha/00064) pela direção geral da produção agrícola e pecuária na Universitat Politécnica de València.
1. recolher o esperma maduro enguias europeias em cativeiro
Nota: Uso enguia europeia os machos mantidos em tanques com água do mar e um sistema de recirculação a uma temperatura constante (20 ° C). Tratar com hormônios através de injeção intraperitoneal semanal (gonadotrofina coriônica humana (hCG); 1,5 UI por g de peso corporal de peixes). Aclimatar gradualmente começando com 3 dias na água doce de peixe seguido de substituição com água do mar (1/3 da água total no tanque) cada 2 dias até atingir uma salinidade de 37,0 g/mL.
<ol><li>Anestesia a enguia 24h após a injeção de hormônio para obter amostras com melhor qualidade do esperma.<ol>
<li>Preparar a anestesia de antemão: Adicionar 300 mg de benzocaína para 100 mL de etanol a 70%. Misture bem e armazenar a 4 ° C.</li>
		<li>Dilua a benzocaína num balde flexível com 5 L de água do sistema para obter uma concentração final de 60 mg/L e misture corretamente.</li>
		<li>Transfira o peixe para o balde com água do sistema e benzocaína. Aguarde alguns minutos até que o peixe se acalme.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Limpar a área genital com água e seque com papel absorvente para evitar a contaminação das amostras de esperma por fezes, urina ou água do mar.</li>
	<li>Aplique uma pressão suave na área abdominal e coletar as amostras de esperma em tubos de plástico de 15 mL usando a bomba de vácuo. Volume de esperma até 6-7 mL, dependendo do sexo masculino.</li>
	<li>Manter amostras de esperma a 4 ° C, durante pelo menos 1 h até análise de motilidade é realizado.</li>
</ol>2. leve à geladeira e diluir as amostras de esperma
<ol><li>Prepare a solução diluidor de antemão. Nota: As amostras de esperma devem ser diluídas na solução extensor específica para cada espécie.<ol>
<li>Prepare o suporte não-ativador para amostras de esperma de enguia (P1 médio). Adicione 0,42 g de bicarbonato de sódio, 1,828 g de cloreto de sódio, 0,127 g de cloreto de magnésio, 0,56 g de cloreto de potássio e 0,037 g de cloreto de cálcio para 250 mL de água destilada. Misture bem para dissolver. Loja a 4 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Defina o bloco refrigerador a 4 ° C, para manter as amostras à temperatura constante. Espere até que a temperatura se estabilize.</li>
	<li>Dilua as amostras de esperma usando a diluidor solução específica para cada espécie. Nota: A razão de diluição é espécie específico e deve ser definida para padronizar o protocolo. Primeiro, estimar a concentração de espermatozoides, com base na concentração obtida na pré-análise da motilidade usando software, conforme explicado nas etapas 3 e 4. Com esta análise, também é possível selecionar as melhores amostras de esperma com base na porcentagem de motilidade. Depois disto, o pesquisador pode começar a coletar dados para o experimento usando as melhores amostras com a concentração correta.<ol>
<li>Dilua as amostras de esperma de enguia no meio de P1, com uma proporção de 01:50. Para preparar 500 µ l de esperma de enguia diluída, adicione 50 µ l de amostra de esperma fresco e 450 µ l de P1. Misture bem.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. avaliar os parâmetros de motilidade do esperma
<ol><li>
Instalação do módulo de motilidade do Software
	<ol>
<li>Definir o cenário refrigerador a 4 ° C e esperar até que estabiliza.</li>
		<li>Abra o software e selecione o Módulo de motilidade. Crie nome de usuário e senha, se necessário.</li>
		<li>Selecione Propriedades e escolha os parâmetros desejados antes de iniciar a análise do esperma.<ol>
<li>Clique sobre as espécies de | Peixe.</li>
			<li>Selecione os Quadros por segundo e o Número de imagens, dependendo das condições técnicas melhores para cada espécie. Defina as duas opções em 120 imagens por segundo.</li>
			<li>Escolha o contraste negativo. É obrigatório para reconstrução precisa dos espermatozoides trajetórias16.</li>
			<li>Selecione o correspondente Câmara de contagem e a escala da câmara. Calibre a câmera de vídeo para a lente de ampliação utilizada no experimento. Defina SpermTrack10 como câmara de contagem e escala de X 10. Nota: em geral, uma profundidade de 10 µm em câmara de contagem e uma lente de ampliação de 10x são condições recomendadas desde que eles fornecem a melhor focagem de todos os espermatozoides e capturar o maior número de células. No entanto, é aconselhável fazer um estudo prévio das condições ideais para a análise da mobilidade de cada espécie.</li>
			<li>Ajuste a Área de partícula e conectividade para cada espécie. Definir área de partícula mínimo 2 µm2 e conectividade em 7 µm. Nota: Para o peixe, o valor mínimo de intervalos de área de partículas entre 2-5 µm e conectividade depende a velocidade de espermatozoides e a taxa de quadros.</li>
			<li>Salve a configuração.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Selecione capturar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Analisar a enguia europeia esperma com Software
	<ol>
<li>Prepare a solução de ativador (água do mar artificial) adicionando 0,946 g de sal comercial para 25 mL de água destilada com 2% de BSA.</li>
		<li>Tomar 500 mL de solução ativador (água do mar artificial) e coloque no refrigerador bloco. Nota: em geral, esperma de peixe é ativada por um evento de choque osmotic, embora para algumas espécies a concentração do íon também pode ser importante. Para espécies de água doce, o meio de ativador terem osmolalidade hipotônica, enquanto para espécies marinhas a mídia deve ser hipertônica.</li>
		<li>Coloque a câmara de contagem sob a fase de arrefecimento e espere até a temperatura estabilizar a 4 ° C.</li>
		<li>Misture o ativador e esperma diluídas para ativar os espermatozoides e começar o motilidade de gravação de vídeo entre 5-10 s após a ativação.<ol>
<li>Tome 4 µ l de solução ativador e lugar na câmara de contagem.</li>
			<li>Homogeneizar delicadamente o esperma diluído agitando a microcentrifuga 3 vezes para evitar danos nas células de espermatozoides.</li>
			<li>Tomar 0,5 µ l de esperma diluídas, misture com o ativador e coloque a tampa na câmara contando rapidamente. Nota: Este passo não deve tomar mais de 5 s para iniciar a análise logo que possível.</li>
			<li>Centrar-se sobre as células de espermatozoides e encontrar a melhor área visual, que é definida por um baixo número de espermatozoides (150 a 200 células) para evitar a intercepção entre células (Supplemental figura 1A). Selecione Capturar vídeo para obter as faixas de espermatozoides, que são separadas de acordo com a velocidade.</li>
			<li>Selecione capturar para obter campos 3 a 7, que são o intervalo ideal para obter uma baixa variabilidade nos resultados e proceder como anteriormente. Gravar vídeos até 120 s pós da ativação para evitar condensação na tampa da câmara de contagem.</li>
			<li>Selecione a saída para ter uma visão geral de todos os campos.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. obter dados de motilidade
<ol><li>Selecione os campos de | Parcial | Salve e escolher um nome de arquivo. Clique em salvar. Nota: A planilha fornece valores médios de dados parciais, gráficos e imagens de faixas de espermatozoides.</li>
	<li>Selecione dados gerais | Nome do arquivo | Salvar. Nota: Os dados fornecem valores cinéticas para espermatozoides individuais de todos os campos.</li>
</ol>

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<li>Dadras, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+common+carp+Cyprinus+carpio+sperm+motility+and+lipid+composition+using+different+in+vitro+temperatures%5BTitle%5D)+AND+%22Anim.+Reprod.+Sci%22%5BJournal%5D)">Analysis of common carp Cyprinus carpio sperm motility and lipid composition using different in vitro temperatures.</a> Anim. Reprod. Sci. 180, 37-43 (2017).</li>
<li>Soler, C., García, A., Contell, J., Segervall, J., Sancho, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinematics+and+subpopulations%27+structure+definition+of+blue+fox+%28Alopex+lagopus%29+sperm+motility+using+the+ISASV1+CASA+system%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction+in+Domestic+Animals%22%5BJournal%5D)">Kinematics and subpopulations' structure definition of blue fox (Alopex lagopus) sperm motility using the ISASV1 CASA system.</a> Reproduction in Domestic Animals. 49, 560-567 (2014).</li>
<li>Vásquez, F., Soler, C., Camps, P., Valverde, A., GarcíaMolina, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spermiogram+and+sperm+head+morphometry+assessed+by+multivariate+cluster+analysis+results+during+adolescence+%2812-18+years%29+and+the+effect+of+varicocele%5BTitle%5D)+AND+%22Asian+Journal+of+Andrology%22%5BJournal%5D)">Spermiogram and sperm head morphometry assessed by multivariate cluster analysis results during adolescence (12-18 years) and the effect of varicocele.</a> Asian Journal of Andrology. 18, 824-830 (2016).</li>
<li>Soler, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dog+sperm+head+morphometry%3A+its+diversity+and+evolution%5BTitle%5D)+AND+%22Asian+Journal+of+Andrology%22%5BJournal%5D)">Dog sperm head morphometry: its diversity and evolution.</a> Asian Journal of Andrology. 19, 149-153 (2017).</li>
<li>Valverde, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphometry+and+subpopulation+structure+of+Holstein+bull+spermatozoa%3A+variations+in+ejaculates+and+cryopreservation+straws%5BTitle%5D)+AND+%22Asian+Journal+of+Andrology%22%5BJournal%5D)">Morphometry and subpopulation structure of Holstein bull spermatozoa: variations in ejaculates and cryopreservation straws.</a> Asian Journal of Andrology. 18, 851-857 (2016).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

O software de análise de esperma utilizado neste protocolo tem sido usado por pesquisadores em todo o mundo para diferentes espécies, incluindo peixe. No entanto, os peixes têm algumas características específicas que podem afetar a avaliação do esperma. Espermatozoides de peixes mostrou alta velocidade no momento da ativação que declina rapidamente e leva a um curto período de tempo de motilidade após a ativação. Além disso, a temperatura de reprodução é dependente da espécie e, em alguns casos, pode ser em torno de 4 ° ...

A eficácia de reprodução depende da qualidade de ambos os gâmetas (óvulos e espermatozoides)1,2. Este é o principal fator que contribui para uma fecundação bem sucedida, permitindo o desenvolvimento da prole viável3,4. Conveniente avaliação da qualidade do material genético é a melhor ferramenta para definir o potencial de fertilidade de um espécime.
Mistura de esperma de vários machos é uma prática comum na produção de muitas espécies aquáticas comercial4. No entanto, a variabilidade de esperma entre machos pode levar à competição de esperma e, consequentemente, não todos os homens igualmente estão contribuindo para o pool de gene5. Neste sentido, a avaliação correta das características de ejaculação/espermatozoides individuais, tais como motilidade, é fundamental para obterem informações discriminatórias sobre potenciais individuais a fertilidade masculina. Observação directa da motilidade espermática pode produzir dados imprecisos e subjetivos como requer tempo e experiência, o que leva a uma falta de consistência e incompatibilidade dos resultados6,7. No entanto, existem muitas técnicas inovadoras, rápidas e quantitativas que podem fornecer um esperma confiável qualidade análise2,4.
Análise de esperma assistida por computador foi desenvolvido para oferecer dados precisos sobre o esperma de qualidade8. Esta tecnologia inclui o desenvolvimento de software associado com um microscópio de contraste de fase que permite a avaliação da motilidade espermática. No entanto, um fator limitante de parâmetro de motilidade é a taxa de quadros da câmara. Espermatozoides individuais trajetórias baseiam-se em espermatozoides cabeça posição de centroide em quadros consecutivos de gravações em vídeo, que está correlacionada com o movimento flagelar padrões3,9,10, 11. os principais parâmetros cinéticos medidos são a velocidade linear (VSI), velocidade curvilínea (VCL) e caminho de média velocidade (VAP). VSI é a distância entre o início e o ponto de extremidade tomadas por espermatozoides divididos pelo tempo. VCL é a velocidade real ao longo da trajetória precisa tomada por espermatozoides. VAP é a velocidade ao longo de um caminho suavizado derivada da trajetória. Estes parâmetros permitem que informações adicionais de cinéticas, incluindo linearidade (LIN), linearidade (STR), wobble (WOB) e medições de espancamento como amplitude de movimento lateral da cabeça (ALH) e frequência de batida-Cruz (BCF)4,10.
O sistema de análise de esperma foi originalmente utilizado para espécies de mamíferos, e um dos requisitos para o sistema está a funcionar a temperatura do corpo do doador (cerca de 37 ° C). Este software também pode ser utilizado para espécies de peixes; embora, seja necessário fazer algumas adaptações para reduzir o erro dos resultados de análise do esperma. Em algumas espécies de peixes, tais como os salmonídeos e enguia8,12, a fecundação ocorre em baixa temperatura (em torno de 4 ° C),2,4. Assim, dispositivos de arrefecimento deve ser desenvolvida para evitar condições de trabalho desconfortáveis. Além disso, peixes espermatozoides são fixa no fluido seminal e requerem um choque osmótica para ativar a motilidade. Para espécies de água doce, o meio de ativador terem osmolalidade hipotônica, enquanto para espécies marinhas a mídia deve ser hipertônica. No entanto, para algumas espécies, como os salmonídeos, a concentração do íon também poderia ser importante3,4,9. Após a ativação, esperma de peixe é caracterizada por uma rápida diminuição da motilidade (menos de 2 min)13,14 e alta velocidade, sendo vital para determinar a taxa de quadro ideal para obter dados fiáveis15.
Os objetivos deste estudo são projetar e aplicar sistemas de refrigeração para as amostras de esperma de peixe. Além disso, esse protocolo define como determinar as taxas de quadro ideal para o estabelecimento de protocolos padrão, dependendo da espécie. O uso deste protocolo abre novas portas no contexto da avaliação seminal de peixe, usando a enguia europeia como modelo.

<table><tbody><tr><td>Gonadotrofina Coriônica Humana</td><td></td><td>Argent Chemical Laboratories</td><td>hormônio hCG</td></tr><tr><td>Benzocaína</td><td>Merck</td><td>E1501 Sigma</td><td>Anestesia</td></tr><tr><td>bicarbonato de sódio</td><td>Merck</td><td>S5761 Sigma&nbsp;</td><td>P1 médio</td></tr><tr><td>cloreto de sódio</td><td>Merck</td><td>1.06406 EMD Millipore</td><td>P1 cloreto</td></tr><tr><td>de magnésio</td> médio <td>Merck</td><td>1374248 USP</td><td>P1 cloreto</td></tr><tr><td>de potássio</td> médio <td>Merck</td><td>P3911-500G</td><td>P1</td></tr><tr><td>cloreto de cálcio</td> médio <td>Merck</td><td>C7902-500G</td><td>P1 sal comercial médio</td></tr><tr><td></td><td>Aqua Medic&nbsp;</td><td>Solução Meersalz</td><td>Activator&nbsp;</td></tr><tr><td>Solução BSA</td><td>Merck</td><td>05470 Sigma</td><td>Activator&nbsp;</td></tr><tr><td>Tubos Falcon 15 ml</td><td>Merck</td><td>T1943-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>Tubos Falcon suportam</td><td>Merck</td><td>R5651-5EA</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorfs</td><td>Merck</td><td>T9661-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>Micropipet 20 &micro; l</td><td>Gilson</td><td>PIPETMAN&reg; </td> Micropipeta Clássica <td></td></tr><tr><td>10 &micro; l</td><td>Pontas Merck</td><td>Z683787-1EA</td><td></td></tr><tr><td>para micropipets 20 &micro; l</td><td>Pontas Merck</td><td>Z740030-1000EA</td><td></td></tr><tr><td>para micropipets 10 &micro; l</td><td>Merck</td><td>Z740028-2000EA</td><td></td></tr><tr><td>Spermtrack</td><td>PROiSER</td><td>Câmara</td><td></td>de contagem</tr><tr><td>TruMorph</td><td>PROiSER</td><td>Microscópio TruMorph</td><td></td></tr><tr><td>UB 200i Série</td><td>PROiSER</td><td>Microscópio</td><td></td></tr><tr><td>Placa de resfriamento</td><td>PROiSER</td><td></td><td>Protótipo</td></tr><tr><td>Bloco de resfriamento</td><td>PROiSER</td><td></td><td>Protótipo</td></tr><tr><td>ISAS v1</td><td>Software PROiSER</td><td>ISAS</td><td></td></tr></tbody></table>

avaliação do esperma de peixe utilizando software e dispositivos de refrigeração

Fish Sperm Assessment Using Software and Cooling Devices

Para avaliação da qualidade de gametas, existem técnicas inovadoras, rápidas e quantitativas que podem fornecer dados úteis para a aquicultura. Sistemas informatizados para a análise de esperma foram desenvolvidos para medir vários parâmetros e dentre as mais comumente medido é a mobilidade do esperma.
Inicialmente, esta tecnologia de computador foi projetada para espécies de mamíferos, embora ele também pode ser usado para análise do esperma de peixe. Os peixes têm características específicas que podem afetar o esperma avaliação tais como um tempo curto de motilidade após a ativação e, em alguns casos, adaptação às temperaturas mais. Assim, é necessário modificar os componentes de software e hardware para fazer análise da motilidade mais eficiente para análise do esperma de peixe. Para espermatozoides de mamíferos, a placa de aquecimento é usada para manter a temperatura ideal de espermatozoides. No entanto, para algumas espécies de peixes, é vantajoso usar uma temperatura mais baixa para prolongar a duração da motilidade, uma vez que os espermatozoides permanecem ativos por menos de 2 min. Portanto, dispositivos de resfriamento são necessários para refrigerar amostras a temperatura constante ao longo do tempo de análise, incluindo no microscópio óptico. Este protocolo descreve a análise da mobilidade do esperma de peixe utilizando software para análise de esperma e resfriamento novos dispositivos para otimizar os resultados.

Análise do efeito do tempo na mobilidade do esperma
No caso da enguia europeia, a percentagem de espermatozoides estáticos aumentou de 15 s para 120 s após sua ativação (de 24,4% para 40,7%) e a porcentagem de espermatozoides móveis de progressivas diminuição (de 36,9% para 20,9%) (Figura 1A e 1B). Com base na velocidade, células de espermatozoides mostraram uma dim...

O presente protocolo descreve um procedimento de avaliação do esperma de peixe usando análise de esperma assistida por computador e dispositivos de refrigeração. O software dá uma rápida, precisa e a análise quantitativa da qualidade do esperma de peixe com base na mobilidade do espermatozoide, que pode ser uma ferramenta útil na aquicultura para melhorar o sucesso da reprodução.

Avaliação do esperma de peixe utilizando Software e dispositivos de refrigeração

For gamete quality evaluation, there are innovative, rapid, and quantitative techniques that can provide useful data for aquaculture. Computerized systems ...

O principal objetivo deste procedimento é analisar a qualidade do esperma de peixes com base na motilidade dos espermatozóides, a fim de contribuir para o sucesso da fertilização artificial. Sou o Dr. Carles Soler, professor da Universidade de Valência e diretor científico da PROiSER I+D. Eu sou Carina Caldeira, bolsista do Projeto Impress.A tecnologia CASA foi desenvolvida há algumas décadas para a análise de sêmen de espécies de mamíferos usando uma análise de sêmen assistida por computador. No caso dos peixes, é necessário levar em consideração duas coisas. A primeira delas é o fato de que esses animais normalmente fertilizam em baixas temperaturas, em torno de quatro graus, e por esse motivo, não é possível analisar o sêmen em temperatura doméstica, mas é necessário desenvolver ferramentas específicas para refrigerar as amostras.O outro problema, é que a motilidade diminui muito rápido após a ativação, e é preciso analisar esse fato, para definir qual é o melhor momento para a análise da qualidade, ou da qualidade do sêmen. Então, vamos mostrar a análise de esperma de peixe, e este protocolo será uma modificação do protocolo de mamíferos, e incluirá análise de motilidade usando

fish-sperm-assessment-using-software-and-cooling-devices

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

Este é um high-throughput protocolo de criopreservação de esperma para zebrafish. Espermatozóides criopreservados utilizando este protocolo tem uma média de fertilidade de 25% na fertilização in vitro subseqüentes e é estável durante muitos anos.

Um método de alta taxa de transferência para Zebrafish criopreservação de espermatozóides e In Vitro Fertilização

Este vídeo-artigo descreve, passo a passo, como processar uma amostra de sêmen para alcançar boa qualidade de...

Fluorescência In situ Hybridization (FISH) Protocolo no esperma humano

Ovos e os revestimentos extracelular em torno de ovos com freqüência liberação de peptídeos, proteínas e pequenas moléculas que se comunicam com o esperma para guiá-los até o óvulo, promovendo assim a fecundação. Usando o esperma de rã que descrever e comparar duas classes de testes usados ​​para detectar quimiotaxia esperma - ensaios de esperma acumulação e ensaios de monitoramento de esperma.

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Passo-específico Seleção de mouse Espermátides por citometria de fluxo

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Técnica de natação horizontal em forma de U para preparar espermatozóides de alta qualidade com baixo índice de fragmentação de DNA

Aprenda a avaliar a qualidade do esperma de peixes usando análise computadorizada (CASA) e dispositivos de refrigeração a 4°C. Este método permite medir a motilidade espermática com precisão para fertilização artificial em aquicultura.

Avaliação do esperma de peixe utilizando Software e dispositivos de refrigeração

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