Name: Um romance em Vitro ferida cura ensaio para avaliar a migração celular (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 55 s
Description: Aprenda a avaliar a migração de células epiteliais brônquicas usando um ensaio de cicatrização in vitro com inserções de silicone. Este método fornece dados quantitativos rápidos e reprodutíveis sobre o fechamento de feridas.

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Este trabalho foi financiado por fundos da Universidade Sapienza de Roma e da Fundação de pesquisa de fibrose cística italiano (projeto FFC #11/2014 adoptada pelo FFC delegações de Pavia, Sondrio Valchiavenna, Cerea Il Sorriso di Jenny e Siena). Parte deste trabalho também foi apoiado por FILAS Grant Prot. FILAS-RU-2014-1020.
Nós estamos gratos ao Dr. Loretta Ferrera (U.O.C. Genetica Medica, Istituto Giannina Gaslini, Genova, Itália) para fornecer as células epiteliais brônquicas.

1. preparação da pilha
<ol><li>Sementes 2.5x106 células em 10 mL de mínimo essencial médio (MEM) suplementada com glutamina 2mm (MEMg), e mais 10% de soro fetal bovino (FBS), antibióticos (0,1 mg/mL de penicilina e estreptomicina) e puromicina (0,5 µ g/mL para a seleção e manutenção da linha de células) em um balão de T75. Incube o frasco a 37 ° C e 5% de CO2 por 2 dias. Antes de iniciar o experimento, verificar a confluência das células sob um microscópio invertido. Nota: As células utilizadas para o experimento são imortalizadas brônquicas epiteliais células humanas transfectadas com um vetor de Lentivirus confere resistência à puromicina. Eles expressam estàvel CFTR funcional14,15.</li>
	<li>Uma vez que alcançou a confluência das células 90-100%, Aspire o meio do recipiente e descartá-lo em um frasco de resíduos sob uma classe do gabinete de segurança biológica II. Lavam-se as células com 6 mL de tampão fosfato salina sem cálcio e magnésio (CMF-PBS). Suavemente agitar o frasco manualmente e descartar CMF-PBS. Nota: Tenha cuidado para não tocar a monocamada de células com a pipeta.</li>
	<li>Adicionar 10 mL de PBS-CMF e incubar o frasco a 37 ° C e 5% CO2 por 10 min.</li>
	<li>Aspire CMF-PBS e descartá-lo. Em seguida, adicione 2 mL de tripsina/EDTA para o balão.</li>
	<li>Suavemente agitar o frasco, permitindo que a solução completamente revestir as células, e incubar o frasco a 37 ° C e 5% CO2 por 10 min até que as células são visivelmente destacadas sob um microscópio. Nota: No final do tempo de incubação, as células devem aparecer arredondados e não anexado à superfície plástica. Se as células não são bem destacadas, agitação manual pode ser necessária.</li>
	<li>Adicionar 10 mL de MEMg acrescido de 10% FBS para inactivar a tripsina e coletar as células lavando o fundo do frasco. Transferi o volume para um tubo cónico de 50 mL.</li>
	<li>Centrifugar o tubo por 5 min a 80 x g.</li>
	<li>Aspirar o sobrenadante e ressuspender as células em 6 mL de MEMg acrescido de 10% FBS. Pipeta repetidamente para quebrar qualquer touceiras.</li>
	<li>Pegue 10 µ l de suspensão de células com uma micropipeta e injetar o volume sob o vidro de cobertura anteriormente colocar uma câmara Burker ou Neubauer.</li>
	<li>Conte o número de celular.</li>
</ol>2. célula semeando a cultura insere
<ol><li>Em cada poço de uma placa de 12, transferi a inserção de cultura com pinça estéril (Figura 1). Use uma pinça para pressionar ao longo das bordas de inserções para corrigi-los para a superfície da placa. Nota: As inserções tem um pegajoso inferior que permite a adesão.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56825/56825fig1.jpg"> Figura 1 : Representação esquemática das pastilhas cultura do silicone, colocar corretamente em poços de uma placa de 12. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56825/56825fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<ol start="2"><li>Corretamente, diluir a suspensão de eritrócitos em MEMg acrescido de 10% FBS. Encha cada compartimento da inserção com 70 µ l de suspensão de células (sobre 3.5x104 células/câmara). Nota: A densidade de células aplicado em cada compartimento depende do tipo de células. Recomenda-se usar uma densidade de células que leva à completa confluência dentro de 24 h.</li>
	<li>Sob o microscópio, verificar que as células não estão vazando dos compartimentos de inserção e incubam a placa de 12 para 24 h a 37 ° C e 5% de CO2.</li>
</ol>3. pseudo-ferido cura ensaio
<ol><li>Após a incubação, visualize as células ao microscópio invertido para verificar que monocamadas confluente célula tem sido formadas.</li>
	<li>Re-suspenda os compostos de teste (por exemplo, ampères) em 1 mL de MEMg. Nota: Preparar diluições de amplificadores frescas a partir da solução estoque armazenada a-20 ° C.</li>
	<li>Retire com cuidado as inserções por uma pinça estéril. Tenha cuidado para não quebrar as monocamadas de células. Transferi as inserções em papel absorvente. Nota: Para re-usar as mesmas inserções, esterilizá-los em etanol a 70% pelo menos 3 h. Recomenda-se jogá-los fora depois.</li>
	<li>Para remover as células não-aderentes, adicione 1 mL de MEMg por bem utilizando uma micropipeta. Feche a placa e balance-a cuidadosamente. Nota: Não adicione médio diretamente em cima de monocamadas de células para evitar a sua ruptura.</li>
	<li>Aspire o meio e substituí-lo com 1 mL de MEMg por bem. Feche a placa e visualizar as lacunas sem célula (criadas pelas inserções) sob o microscópio invertido na ampliação de 4x, equipado com uma câmera de vídeo. Adquirir imagens no tempo zero (T0) e salvá-los em um formato. jpg.</li>
	<li>Remover o meio de poços, lave-os com 1 mL de PBS e descartá-lo.</li>
	<li>Adicione os compostos de teste (preparados no ponto 3.2) nos poços. Para amostras de controle não tratados, adicione 1 mL de MEMg. Incube a placa a 37 ° C e 5% de CO2.</li>
	<li>Depois de 15, 20 e 24 h de tratamento, observar a migração de células sob o microscópio com ampliação de 4x e adquirir imagens. Nota: Durante esta etapa, tente capturar imagens nas mesmas áreas quanto a T0. A escolha dos intervalos de tempo em que as imagens são capturadas depende da velocidade de migração celular.</li>
	<li>Para estudar o efeito de alguns inibidores seletivos, ou seja, AG1478, na migração celular, Aspire o meio de cada compartimento de inserção antes de remover as pastilhas.<ol>
<li>Lavar cada compartimento com MEMg fresco e preenchê-lo com 70 µ l de MEMg suplementado com AG1478.</li>
		<li>Após 30 min. de incubação a 37 ° C e 5% de CO2, proceda como descrito do ponto 3.3. Nota: Durante a etapa de lavagem e tratamento prévio de monocamadas de células com os inibidores específicos, tenha cuidado para não remover as inserções.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. análise de imagens
<ol><li>Após a conclusão do experimento, selecionar imagens das amostras mais representativas dos diversos grupos experimentais e criar um arquivo zip contendo imagens isoladas a h T0, T15, T20 e T24. Nota: Imagens isoladas são tomadas a intervalos de tempo selecionado para todas as amostras. Execute triplica para cada experimento, o que é repetido pelo menos três vezes. No final, para grupos todos experimentais, um mínimo de 3 imagens ("a", "b", "c", etc, derivando de cada experimento independente) em cada ponto de tempo são analisados.</li>
	<li>Fazer o upload do arquivo zip para o software de análise de imagem que fornece automaticamente, por e-mail, um arquivo de planilha Resumo contendo os dados experimentais das áreas cobertas de célula e zero (em percentagem) nos pontos de tempo selecionado. Nota: O reconhecimento da borda principal e a área de abertura é amplamente baseado no método de deteção de borda (visto identificar pontos em que o brilho da imagem muda bruscamente).</li>
	<li>Salvar os dados e coletá-los. Normalize todos os dados em relação ao valor médio no tempo zero. Calcule o valor médio dos dados normalizados de todas as repetições em cada ponto do tempo e o desvio-padrão relativo (SEM). Por meio de duas vias de análise de variância (ANOVA), realiza análise estatística com um software de estatística adequada. Diferenças entre grupos tratados com peptídeo e grupos de controle em intervalos de tempo diferentes são consideradas estatisticamente signiﬁcativa para um p&lt; 0,05.</li>
	<li>Plotar os dados obtidos em um gráfico como um histograma, que mostra a porcentagem de área coberta por célula de toda amostra grupos contra os intervalos de tempo selecionado.</li>
</ol>

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<li>Di Grazia, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((D-Amino+acids+incorporation+in+the+frog+skin-derived+peptide+esculentin-1a%281-21%29NH2+is+beneficial+for+its+multiple+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Amino+Acids%22%5BJournal%5D)">D-Amino acids incorporation in the frog skin-derived peptide esculentin-1a(1-21)NH2 is beneficial for its multiple functions.</a> Amino Acids. 47, 2505-2519 (2015).</li>
<li>Cappiello, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Esculentin-1a-derived+peptides+promote+clearance+of+Pseudomonas+aeruginosa+internalized+in+bronchial+cells+of+cystic+fibrosis+patients+and+lung+cell+migration%3A+biochemical+properties+and+a+plausible+mode+of+action%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Esculentin-1a-derived peptides promote clearance of Pseudomonas aeruginosa internalized in bronchial cells of cystic fibrosis patients and lung cell migration: biochemical properties and a plausible mode of action.</a> Antimicrob Agents Chemother. 60, 7252-7262 (2016).</li>
<li>Bebok, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Failure+of+cAMP+agonists+to+activate+rescued+deltaF508+CFTR+in+CFBE41o-+airway+epithelial+monolayers%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Failure of cAMP agonists to activate rescued deltaF508 CFTR in CFBE41o- airway epithelial monolayers.</a> J Physiol. 569, 601-615 (2005).</li>
<li>Trinh, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+defective+cystic+fibrosis+airway+epithelial+wound+repair+after+CFTR+rescue%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Respir+J%22%5BJournal%5D)">Improvement of defective cystic fibrosis airway epithelial wound repair after CFTR rescue.</a> Eur Respir J. 40, 1390-1400 (2012).</li>
<li>Gan, H. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+epidermal+growth+factor+receptor+%28EGFR%29+tyrosine+kinase+inhibitor+AG1478+increases+the+formation+of+inactive+untethered+EGFR+dimers.+Implications+for+combination+therapy+with+monoclonal+antibody+806%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">The epidermal growth factor receptor (EGFR) tyrosine kinase inhibitor AG1478 increases the formation of inactive untethered EGFR dimers. Implications for combination therapy with monoclonal antibody 806.</a> J Biol Chem. 282, 2840-2850 (2007).</li>
<li>Tokumaru, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+keratinocyte+migration+via+transactivation+of+the+epidermal+growth+factor+receptor+by+the+antimicrobial+peptide+LL-37%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Induction of keratinocyte migration via transactivation of the epidermal growth factor receptor by the antimicrobial peptide LL-37.</a> J Immunol. 175, 4662-4668 (2005).</li>
<li>Tjabringa, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+antimicrobial+peptide+LL-37+activates+innate+immunity+at+the+airway+epithelial+surface+by+transactivation+of+the+epidermal+growth+factor+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The antimicrobial peptide LL-37 activates innate immunity at the airway epithelial surface by transactivation of the epidermal growth factor receptor.</a> J Immunol. 171, 6690-6696 (2003).</li>
<li>Di Grazia, A., Luca, V., Segev-Zarko, L. A., Shai, Y., Mangoni, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporins+A+and+B+stimulate+migration+of+HaCaT+keratinocytes+and+kill+intracellular+Staphylococcus+aureus%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Temporins A and B stimulate migration of HaCaT keratinocytes and kill intracellular Staphylococcus aureus.</a> Antimicrob Agents Chemother. 58, 2520-2527 (2014).</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar

Migração celular é um processo essencial em muitos eventos fisiológicos e patológicos, incluindo a cicatrização de feridas, desenvolvimento embrionário e metástases. O procedimento básico para estudar célula migração em vitro envolve: (i) a criação de uma monocamada de células, (ii) a produção de uma pseudo ferida na camada confluente das células, (iii) a captura de imagens em intervalos de tempo diferentes até ferida encerramento é alcançado. e (iv) a análise da sequência de imagem de forma a quantificar a velo...

Isso é amplamente conhecido que a cicatrização de feridas em animais é um processo fundamental para restabelecer a integridade e a função normal das camadas de tecido após lesão1. Apesar de superfícies epithelial expostas ao ambiente externo (por exemplo, a pele, respiratória e trato gastrointestinal) formam uma barreira protetora de insultos físicos e químicos, a formação de feridas pode ocorrer facilmente, especialmente depois cirurgia ou infecções microbianas2. Como exemplo, a colonização do tecido pulmonar pelo patógeno oportunista bacteriano Pseudomonas aeruginosa, especialmente em pessoas com fibrose cística (CF), leva a dano do epitélio de vias aéreas, com consequente insuficiência respiratória3, 4. Cicatrização de feridas é um mecanismo de reparação do complexo hospedeiro para restaurar a arquitetura normal de um tecido lesado5. É caracterizada por inflamação inicial, seguida de um período de regeneração, englobando epitelização, angiogênese e remodela o tecido com a produção de colágeno e células diferenciação6,7,8 . Para garantir a integridade epitelial e para controlar a proliferação microbiana, todos os organismos vivos produzem moléculas de defesa, incluindo peptídeos antimicrobianos (AMPs)9,10. A processo de cicatrização de feridas é muito difícil simular em vitro devido à falta de restos celulares e interações complexas entre diferentes tipos de células. No entanto, a em vitro capacidade de um peptídeo para acelerar o encerramento de uma pseudo ferida, estimulando a migração de células epiteliais é indicativa de sua capacidade de curar um epitélio comprometido. Com efeito, migração celular é um evento limitante na cicatrização de feridas, e estudar os fatores que podem afetar a migração celular ajudará a terapias de alvo para melhor cicatrização.
Aqui, um ensaio experimental altamente reprodutível é fornecido com base em inserções de cultura do silicone especiais para avaliar a migração de células in vitro. É baseado na criação de um 500 μm gap (pseudo ferida) em uma monocamada confluente célula. As células na borda do campo "ferido" artificial começará migrando para a área livre de células, formando novos contatos do celular. A inserção da cultura representa uma nova ferramenta para rápida ferida experiências de cura. São fornecidos dois reservatórios separados por uma parede de 500 μm, e podem ser devidamente colocados em um prato prato 3 cm ou no bem de uma placa de 12. Cada compartimento da inserção de enchimento com uma suspensão de células permite que as células a crescer em cada área designada até confluência, enquanto a remoção da inserção criará uma abertura limpa livre de célula de aproximadamente 500 μm (a mesma largura que o muro de separação). Um meio de cultura celular adequada complementado com um composto de teste pode ser adicionado no prato prato/bem. Depois, o fechamento de espaço pode ser visualizado em intervalos de tempo diferentes sob um microscópio invertido, de preferência um equipado com uma câmera de vídeo para aquisição de imagens. Finalmente, medição de mudanças na área celular coberto pelo programa de análise de imagem automatizado baseado na web irá permitir a quantificação da velocidade da migração de encerramento e célula de ferida. Em geral, esse método é um passo em frente no que diz respeito o ensaio clássico, onde um arranhão é feito manualmente por incisão duas monocamadas de células confluente com uma agulha estéril ou uma pipeta dica11. Com efeito, o último procedimento pode destruir o fundo plástico do prato prato/poço e o revestimento de superfície, criando rugas. Além disso, a área de "ferida" não tem uma largura bem definida ao longo de todo o comprimento do gap, como altamente depende da pressão aplicada por pesquisadores a ponta da agulha. Além disso, as células soltas podem formar aglomerados de células vivas e mortas nas bordas da risque; Além disso, a disseminação de células vivas para a área de "ferida" pode interferir com a velocidade de migração celular, gerando resultados não reproduzíveis12.
Além disso, graças a uma plataforma de análise de risco de imagem, os usuários podem rapidamente receber (em minutos) dados quantitativos sobre o comportamento migratório das células selecionadas sem a necessidade de aquisição de software adicional. Esta plataforma é capaz de analisar imagens de microscopia de contraste de fase de baixa (~ 5. X), médio (~ 10 X) e ampliação de alta (~ 20 X). Após o upload de um arquivo zip de imagens (em *. jpg, *. jpeg, *.jp2, *. png, *. gif, formato *.tiff) a análise é automaticamente realizada para gerar um arquivo de resumo que mostra a porcentagem de áreas cobertas de célula e de áreas de risco, bem como a velocidade da célula migração, em intervalos de tempo distintos.
Neste trabalho, por meio de um AMP-derivado de pele de sapo, ou seja, Esc(1-21) e seu Diastereoisômero Esc(1-21) - 1 c13e uma linhagem de células brônquicas expressando o funcional CF condutância transmembrana regulador (CFTR)14,15, é fornecido um exemplo de migração celular induzida por peptídeo em comparação com amostras não tratadas (controle). Observe que o epitélio das vias respiratórias e CFTR desempenham um papel crucial na manutenção da função pulmonar e ferida reparo16. Além disso, por meio de inibidores seletivos (por exemplo, AG1478)17 do receptor do fator de crescimento epidérmico (EGFR), provas de que a migração de células brônquicas induzidas pelos peptídeos acima mencionados envolve ativação do EGFR12, 18 é relatado.
Em resumo, o objetivo deste procedimento é mostrar como o uso de tais inserções de cultura do silicone representa um ensaio rápido e facilmente acessível para determinar com precisão a migração de células aderentes (por exemplo, células epiteliais brônquicas) e o molecular mecanismos de controle de tais eventos.

<table><tbody><tr><td>Meio essencial mínimo (MEM)&nbsp;</td><td>Euroclone</td><td>ECB2071L</td><td>Quente em 37 &deg; C banho-maria antes de usar</td></tr><tr><td>Glutamina</td><td>Euroclone</td><td>ECB3000D</td><td></td></tr><tr><td>Soro Fetal Bovino Inativado por Calor (FBS)</td><td>Euroclone</td><td>ECS0180DH&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina e estreptomicina</td><td>Euroclone</td><td>ECB3001D</td><td></td></tr><tr><td>Puromicina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P8833</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA 1X em PBS</td><td>Euroclone</td><td>ECB3052D</td><td>Aquecer à temperatura ambiente antes</td></tr><tr><td>de usar DPBS sem cálcio e magnésio (CMF-PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>DPBS com cálcio e magnésio (PBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8662</td><td></td></tr><tr><td>Ibidi Cultura-Inserção 2 poços</td><td>Ibidi&nbsp;</td><td>80209</td><td></td></tr><tr><td>Wimasis Análise de Imagem</td><td>Ibidi&nbsp;</td><td>30002</td><td></td></tr><tr><td>Software PRISM&nbsp;</td><td>GraphPad</td><td>versão 6.0</td><td></td></tr></tbody></table>

um romance em vitro ferida cura ensaio para avaliar a migração celular

A Novel In Vitro Wound Healing Assay to Evaluate Cell Migration

O objetivo deste trabalho é apresentar um novo método para avaliar a capacidade de algumas moléculas de imunomoduladores, como peptídeos antimicrobianos (AMPs), para estimular a migração celular. Importante, migração celular é um evento limitante durante o processo de cicatrização de feridas para re-estabelecer a integridade e a função normal das camadas de tecido após a lesão. A vantagem deste método sobre o ensaio clássico, que é baseado em um arranhão feito manualmente em uma monocamada de células, é que o uso da cultura de silicone especial insere fornecendo dois compartimentos para criar um campo de pseudo ferido sem célula com uma largura bem definida (500 μm ). Além disso, devido a uma plataforma de análise automatizada de imagem, é possível obter rapidamente dados quantitativos sobre a velocidade da migração de encerramento e célula de ferida. Mais precisamente, será mostrado o efeito de duas ampolas de pele de sapo sobre a migração de células epiteliais brônquicas. Além disso, tratamento prévio destas células com inibidores específicos irá fornecer informações sobre os mecanismos moleculares subjacentes a tais eventos.

Este protocolo foi utilizado para determinar a efeito de Esc(1-21) e Esc(1-21) - 1 c em termos de actividade de migração celular induzida em células epiteliais brônquicas expressando a CFTR funcional de cicatrização de feridas. Neste ensaio, inserções de cultura foram colocadas em poços de uma placa de 12, e cada compartimento foi inoculado com 35.000 células em MEMg suplementado com 10% FBS. As células atingiu completa confluência dentro de 24 h. depois, uma lacuna de 500 μm foi gerada, ...

Aqui, apresentamos um protocolo para avaliar o efeito dos peptídeos na migração das células epiteliais brônquicas. Este método permite a obtenção rápida e altamente reprodutível de dados quantitativos sobre a velocidade de fechamento de migração e ferida de célula.

Um romance em Vitro ferida cura ensaio para avaliar a migração celular

The aim of this work is to show a novel method to evaluate the ability of some immunomodulatory molecules, such as antimicrobial peptides (AMPs), to ...

O objetivo deste procedimento é mostrar como avaliar a capacidade de algumas moléculas imunomoduladoras, como os antimicropeptídeos, de estimular a migração celular, que é um evento limitante da taxa durante o processo de cicatrização de feridas. De um modo geral, o procedimento básico para estudar a migração celular in vitro envolve a criação de monocamada celular, a produção de pseudo-ferida, a captura de imagens em diferentes intervalos de tempo até que o fechamento da ferida seja alcançado e a análise da sequência de imagens para quantificar a migração celular. Agora, a vantagem desse método sobre o ensaio clássico, que se baseia em um arranhão feito manualmente, se deve ao uso de inserções especiais de cultura de silicone para criar o campo de pseudo-enrolamento, que é completamente livre de células e com uma largura muito bem definida, 500 micrômetros.Além disso, graças a um programa de análise de imagem automatizado baseado na web, é possível receber rapidamente em minutos dados quantitativos sobre a velocidade de fechamento da ferida e migração celular. Portanto, no geral, esta é uma técnica experimental confiável que pode ser aplicada a qualquer tipo de célula aderente com reprodutibilidade de dados muito alta. Aqui, é fornecido, como exemplo, o efeito de um antimicropeptídeo de pele de rã na migração de células epiteliais brônquicas e como o pré-tratamento dessas células com inibidores específicos pode fornecer informações sobre o mecanismo molecular subjacente a tais eventos.Mais precisamente, será mostrado como a migração celular induzida por peptídeos envolve a ativação do receptor do fator de crescimento epidérmico. Para iniciar o experimento, remova o frasco contendo células da incubadora de cultura de células e verifique a circunferência em um microscópio invertido equipado com um sistema automático de aquisição de imagens. Se 90% da confluência completa for atingida, vá para uma capela de biossegurança e aspire cuidadosamente o meio de cultura usando uma pipeta de plástico de 10 mililitros em condições estéreis e descarte suavemente o meio no frasco de resíduos.Lave as células com seis mililitros de PBS sem cálcio e magnésio, ou seja, CMF. Agite suavemente o balão manualmente e descarte o CMF. Em seguida, adicione outros 10 mililitros de CMF para remover ainda mais os detritos celulares e as células não ligadas.Neste ponto, feche o frasco e coloque-o de volta na incubadora de cultura de células por 10 minutos. Retire o frasco, descarte o CMF e adicione suavemente dois mililitros de tripsina-EDTA para separar as células da superfície de plástico. Agite suavemente o frasco manualmente, deixando a solução cobrir completamente as células, e incube o frasco por mais 10 minutos.Em seguida, retire o frasco da incubadora e verifique se o processo de adição de tripsina está concluído. Se for esse o caso, as células estarão em suspensão e parecerão arredondadas ao microscópio. Para inactivar a tripsina, adicionar 10 mililitros de meios de cultura suplementados com soro bovino inactivado pelo calor a 10% e lavar cuidadosamente o balão.Colete a suspensão celular, transfira esse volume para um tubo cônico de 50 mililitros e centrifugue a amostra. Após centrifugação, verifique a formação do pellet, aspire o sobrenadante e ressuspenda o pellet celular em meio de cultura de seis mililitros suplementado com soro. Pipete a suspensão celular para cima e para baixo várias vezes para quebrar qualquer formação de grumos.Esse processo pode levar alguns minutos. Em seguida, retire 10 microlitros com uma ponta de micropipeta e injete o volume sob a lamínula de uma câmara de Burker ou Neubauer e conte o número da célula. Em cada poço de uma placa de 12 poços, coloque o inserto de cultura com a ajuda de uma pinça estéril.Cada inserção é fornecida por dois compartimentos separados por uma parede de 500 micrômetros e há uma parte inferior adesiva para permitir a adesão. No entanto, por meio de uma pinça, aplique alguma pressão ao longo das bordas do inserto para fixá-las na superfície da placa. Encha cada compartimento da inserção com 70 microlitros de suspensão celular contendo cerca de 3,5 por 10 a quatro células por câmara.É importante ressaltar que a concentração de células aplicadas em cada compartimento depende do tipo de células. Recomenda-se o uso de uma densidade celular que leve à confluência completa em 24 horas. Sob o microscópio com ampliação de quatro vezes, verifique se as células não estão vazando dos compartimentos de inserção e, em seguida, incube a placa por 24 horas.Após a incubação, remova suavemente as inserções com uma pinça estéril sem quebrar as monocamadas das células e transfira a inserção para papel absorvente. Lave as células adicionando um mililitro de meio por poço. Tenha cuidado para não adicionar o meio diretamente sobre as monocamadas celulares, para evitar sua ruptura.Feche a placa e balance-a suavemente manualmente. Aspire o meio e substitua-o por um mililitro de meio fresco por poço. Visualize as lacunas livres de células sob o microscópio e adquira imagens no tempo zero.Retire o meio dos poços e adicione PBS suplementado com cálcio e magnésio. Agite a placa, remova o PBS e, finalmente, adicione os compostos de teste aos poços. Para amostras de controle não tratadas, um meio milimétrico é usado.Incube a placa. Para cada amostra, observe a migração celular ao microscópio com ampliação de quatro vezes e adquira imagens após 15, 20 e 24 horas de incubação. Durante esta etapa, tente capturar imagens nas mesmas áreas do tempo zero.A escolha dos intervalos de tempo em que as imagens são capturadas depende da velocidade de migração das células selecionadas. Quando o experimento for concluído, selecione imagens para cada amostra nos diferentes intervalos de tempo e crie um arquivo zip. É importante ter pelo menos três réplicas para cada amostra em cada intervalo de tempo.Abra o programa Wimasis de análise de imagem automatizado e carregue o arquivo zip usando a menor ampliação. O programa fornecerá automaticamente por e-mail um arquivo de resumo contendo os dados experimentais da área coberta pela célula e áreas de risco como porcentagens de cada amostra única, por exemplo, amostras 1a e 2a, nos pontos de tempo selecionados. Calcule um valor médio de todas as amostras no tempo zero.Normalize todos os dados em relação ao valor médio no tempo zero. Calcule um valor médio de todas as amostras em cada ponto de tempo e o erro padrão relativo. Usando o teste ANOVA de duas vias, realize a análise estatística.Os dados obtidos podem ser plotados em um gráfico como um histograma mostrando a porcentagem de área coberta por células em diferentes pontos de tempo para diferentes grupos de amostras. Esses histogramas mostram o fechamento da ferida obtido após 15, 20 e 24 horas de tratamento de células brônquicas com diferentes concentrações do antimicropeptídeo esculentina 1-21-1c ou esculentina 1-21 em comparação com o controle. Conforme apontado pelos histogramas e algumas micrografias representativas, a esculenta 1-21-1c é mais eficiente em promover a reepitelização da pseudoferida em células brônquicas induzida no fechamento quase completo do campo da ferida em aproximadamente 20 horas em um micromolar, enquanto uma concentração mais alta é necessária para a esculenta 1-21, ou seja, 10 micromolar.Para estudar o papel de alguns receptores, como o receptor do fator de crescimento epidérmico, na migração celular, pré-trate as monocamadas celulares com um inibidor específico, por exemplo, o composto AG1478. Para isso, antes de remover o inserto, aspire o meio em cada compartimento, lave-o uma vez e adicione 70 microlitros de meio suplementado com cinco micromolares AG1478. Incube a placa por 30 minutos.Em seguida, remova a inserção com uma pinça e proceda conforme descrito anteriormente. Estes são os dados finais que mostram que a migração celular induzida por peptídeos envolve a ativação do receptor do fator de crescimento epidérmico. De fato, após o pré-tratamento com o inibidor AG1478, a porcentagem de área coberta por células é significativamente reduzida em todos os intervalos de tempo em comparação com os resultados encontrados quando as células não são pré-incubadas com AG1478 antes de adicionar o peptídeo.Em conclusão, o método descrito tem um alto potencial para melhorar significativamente a compreensão sobre a característica migratória de diferentes tipos de células, bem como sobre a seleção dos promotores e/ou inibidores de cicatrização de feridas mais promissores, em um curto espaço de tempo e com alta precisão.

a-novel-in-vitro-wound-healing-assay-to-evaluate-cell-migration

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Este vídeo descreve um ensaio de cicatrização de feridas em co-cultura sem contato para avaliar a capacidade migratória de mioblastos murinos. Isso ajuda a entender os componentes de envio e recepção de sinal das interações parácrinas de sinalização Wnt não canônicas in vitro.

Ensaio de ferida para avaliar a capacidade migratória de mioblastos murinos em co-cultura

Comumente usado, são descritos métodos altamente acessíveis para analisar a migração celular e invasão in vitro. O primeiro método é o ensaio de encerramento de feridas de células que mede a mobilidade celular. O segundo método é o ensaio de migração e invasão transwell que avalia o quimiotáctica e capacidade invasiva de células.

Na migração celular in vitro e invasão Ensaios

A migração celular é um fenómeno biológico que está envolvido numa variedade de parâmetros fisiológicos, tais como a cicatrização de feridas e de respostas imunes, e processos patofisiológicos, como o cancro. O ensaio de migração matriz 3D-colagénio é um instrumento versátil para analisar as propriedades migratórias de diferentes tipos de células dentro de um ambiente fisiológico semelhante a 3D.

Análise da migração celular dentro de uma matriz de colagénio tridimensional

Aqui, nós apresentamos um protocolo para realizar um ensaio de migração de células semi-elevado rendimento sobre uma placa de cultura celular de 96 poços. Este protocolo é um método rápido, simples e econômica para criar feridas scratch consistentes sobre a monocamada de células.

Um dispositivo para executar a migração celular / cicatrização de feridas em uma placa de 96 poços

O objetivo do presente protocolo é avaliar o efeito dos factores pro e anti migratory na migração de células dentro de uma matriz tridimensional de fibrina.

Caracterizando a migração celular no tridimensional em Vitro ferida ambientes

Este estudo relata dois métodos diferentes para a análise de migração e invasão celular: o ensaio de câmara Boyden e em vitro vídeo baseado em microscópio cicatrização ensaio. São descritos os protocolos para estes dois experimentos, e suas vantagens e desvantagens são comparadas.

Avaliação do processo de migração e invasão celular: uma comparação da risque baseado no microscópio a ferida do ensaio e o ensaio de câmara Boyden

Este manuscrito descreve como incisão lesões-feitas em monocamadas de células epiteliais culta convenientemente modelo ferida cura em vitro, que permita a para a imagem latente confocal ou microscopia de varredura a laser, e que pode proporcionar alta qualidade dados quantitativos e qualitativos para estudar tanto o comportamento da célula e os mecanismos envolvidos na migração.

Microscopia com base em métodos de avaliação da migração de células epiteliais durante a cicatrização em Vitro

Aqui descrevemos um procedimento para testar a célula migração em vitro com um microscópio de câmara óptica automatizada. O ensaio de risco tem sido amplamente utilizado, onde o encerramento da Risque é seguido por um período. O microscópio óptico permite detecção confiável e barata de migração celular.

Otimizado zero ensaio para In Vitro testes de migração celular com uma câmera óptica automatizada

Este estudo centra-se em um modelo em vitro de ferida cura (zero ensaio) como um mecanismo para determinar contaminantes como ambientais tais como migração celular de influência de arsênico. Os resultados demonstram que este ensaio in vitro fornece indicações rápidas e precoce de alterações à migração celular antes da experimentação na vivo .

In Vitro Arranhar o ensaio para demonstrar os efeitos de arsênico na migração de células de pele

Aqui, nós apresentamos um protocolo para um ensaio in vitro do risco usando fibroblastos preliminares e para um ensaio in vivo da cicatrização da ferida da pele nos ratos. Ambos os ensaios são métodos diretos para avaliar in vitro e in vivo a cicatrização de feridas.

Ensaio de migração de riscos e câmara de dobras cutâneas dorsal para análise in vitro e in vivo da cicatrização de feridas

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Aprenda a avaliar a migração de células epiteliais brônquicas usando um ensaio de cicatrização in vitro com inserções de silicone. Este método fornece dados quantitativos rápidos e reprodutíveis sobre o fechamento de feridas.

Um romance em Vitro ferida cura ensaio para avaliar a migração celular

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