Name: Fabricação de superfícies de vidro de qualidade óptica para estudar a fusão do macrófago (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-14T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 50 s
Description: Aprenda a fabricar superfícies de vidro de qualidade óptica para estudar a fusão do macrófago usando microscopia de imagem ao vivo e super-resolução. Este método permite investigar os mecanismos moleculares da fusão celular.

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Gostaríamos de agradecer os membros do laboratório de Ugarova e investigadores no centro para Biologia Vascular e metabólica para discussão útil deste trabalho. James Faust deseja expressar sua gratidão aos instrutores no curso de laboratório de Biologia Molecular Europeu Super resolução microscopia em 2015. Desejamos agradecer Satya Khuon no Janelia ajuda com preparação da amostra para LLSM. Durante a revisão e a filmagens porções deste trabalho James Faust foi apoiado por uma bolsa T32 (5T32DK007569-28). O componente de folha de luz da estrutura deste trabalho foi apoiado pelo HHMI e Betty e Gordon Moore Foundation. T.U. é financiado pelo NIH conceder HL63199.

Procedimentos que utilizam animais foram aprovados pelas comissões de utilização na clínica Mayo, Campus de pesquisa Janelia e Arizona State University e cuidado Animal.
1. preparar o ácido-limpa vidro de tampa
Nota: tampa vidro comprado de muitos fabricantes podem não ser tão limpo como esperado. Considere-se rotineiramente limpeza lotes de vidro de tampa, antes de qualquer procedimento onde microscopia está envolvida.
<ol><li>Comprar vidro de tampa de elevado rigor. Tome especial cuidado para escolher a espessura correta (0,15 ou 0.17 mm). Nota: A escolha da espessura do vidro de cobertura depende do objectivo do microscópio e está listada diretamente no tambor da objetivo.</li>
	<li>Incube o vidro de tampa em 12 M ácido clorídrico em uma coifa química bem ventilado para 1 h com sonication (42 kHz, 70 W). Repita esta etapa para dois horários adicionais com frescos de 12 M de HCl.</li>
	<li>Encha um copo separado com água ultrapura e adicione o cobertura de vidro. Proceda à sonicação o vidro de tampa por 5-10 min numa vizinhança de química bem ventilada. Repita dez vezes.</li>
	<li>Incube o vidro de tampa em acetona pura em uma capa de química ventilada por 30 min com sonication. Repita esta etapa para mais duas vezes.</li>
	<li>Encha um copo separado com água ultrapura estéril e adicionar o tampa de vidro. Proceda à sonicação o vidro de tampa por 5-10 min numa vizinhança de química bem ventilada. Repita dez vezes.</li>
	<li>Incube o vidro de cobertura em 100% de álcool etílico em um capuz químico por 30 min com sonication. Repita mais duas vezes. Nota: A pureza do álcool etílico é importante. Contaminantes na forma de sólidos dissolvidos vão secar no vidro e podem promover a fusão do macrófago.</li>
	<li>Para armazenamento a longo prazo, coloca o vidro de tampa limpa de ácido em um recipiente com álcool etílico puro. Alternativamente, seque o vidro de cobertura com nitrogênio e loja num exsicador de vácuo.</li>
</ol>2. preparação de superfícies ópticas Fusogenic qualidade
<ol><li>Dissolver livre de DMSO fundição alta a ponto de cera de parafina em tolueno ultrapura. Nota: Concentrações de estoque são feitas em 10 mg/mL e estão diluído 1:9 em tolueno ultrapura tornar um 1 mg/mL solução de trabalho. Cuidado: Tolueno deve ser manuseado com cuidado, como um teratógeno. Descarte de tolueno, de acordo com o plano de higiene química institucional.</li>
	<li>Aplica a parafina trabalhando a solução para um vidro de tampa de ácido-limpo seco em um volume que cobre uniformemente a superfície do vidro. Decantar a solução em excesso e seque o vidro de cobertura com nitrogênio ou ar. Para a preparação da massa, use uma jarra de Coplin projetada para acomodar o tampa de vidro.</li>
	<li>Polir o vidro de tampa por 3 pancadas no eixo x e em seguida por 3 pancadas no eixo y com uma limpeza de fiapos (veja a Tabela de materiais).</li>
	<li>Imediatamente antes que o experimento é conduzido, lave o tampa de vidro com água ultrapura esterilizada e posteriormente esterilizar por 15-30 min com luz ultravioleta em uma capa de segurança biológica. Alternativamente, esterilize o vidro de cobertura por irradiação de óxido ou gama de etileno.</li>
</ol>3. Micropatterning hidrocarbonetos contendo compostos de confinar a fusão para predeterminado de regiões
<ol><li>Seque o vidro tampa ácido-limpos e imobilizar o vidro sobre uma superfície plana.</li>
	<li>Com cuidado usando fórceps, mergulhe uma grade de localizador de microscopia eletrônica de transmissão ouro em uma solução de trabalho de compound(s) o hidrocarboneto. Escolher um hidrocarboneto composto que atenda o objetivo final do experimento (ver tabela 1). Pavio fora excesso solução tocando suavemente a grade no papel de filtro e imediatamente coloque a grelha no centro da tampa de vidro. Permitir que o tolueno secar por 2 min antes de prosseguir para a próxima etapa.</li>
	<li>Certifique-se que a grade é ligada ao vidro por inversão suavemente o vidro. Se a grade desanexa repita a etapa 3.2 usando um vidro de tampa novo. Nota: Se não houver um plasma líquido de limpeza, omita passo 3.4.</li>
	<li>Plasma limpar o vidro de cobertura pelo tratamento com plasma de gás vácuo. Nota: A grade de localizador funciona como uma máscara para proteger a superfície subjacente adsorvida com hidrocarbonetos de cadeia longa do plasma. As regiões que estão desprotegidas pela rede são processadas não-fusogenic pela exposição de plasma. A quantidade de tempo que o vidro de cobertura é expor para o plasma deve ser determinada empiricamente.</li>
	<li>Usando pinças de ponta fina, Retire cuidadosamente a grade de superfície de vidro para expor a micropattern.</li>
</ol>4. fabricação de pratos de vidro inferior
<ol><li>Faça um furo circular de 6-10 mm na parte inferior de um plástico de 35mm prato de Petri, usando uma broca de passo. Nota: É fundamental usar uma broca de etapa para criar bordas lisas. Se as bordas são muito fortes, o vidro de cobertura não ligarão plana para o fundo do prato. Superfícies planas imperfeitamente dificultam a microscopia.</li>
	<li>Com cuidado Misture e desgaseificar elastômero de silicone de acordo com as instruções do fabricante (ou seja, polidimetilsiloxano; PDMS).</li>
	<li>Aplique uma camada fina de elastômero apenas próximos à borda do (i.e., circunscrever) o buraco. Nota: O elastômero deve aparecer como uma faixa contínua, embora fina em torno do buraco.</li>
	<li>Aplica suavemente o vidro de tampa de fusogenic (descrito na secção 2), ou o vidro de tampa ácido-limpo seco (descrito na secção 1) para o prato para cobrir o buraco rodeado de elastômero. Certifique-se que a tampa de vidro aparece nivelado com o fundo do prato e se estende além do diâmetro do furo para que uma parte substancial do vidro está em contato com o plástico. Cure o elastômero cozendo a 50 ° C, durante 2-3h.</li>
	<li>Se fusogenic de vidro é o preferido, UV esterilizar as células prato e cultura de acordo com protocolos padrão. No entanto, se um micropattern é o preferido, prossiga para a etapa 3.2 para preparação de micropattern (o plasma de gás utilizado durante micropatterning Esteriliza o prato e fortemente casais PDMS para vidro).</li>
</ol>5. recolha de macrófagos tioglicolato-suscitou
<ol><li>Injete camundongos C57BL/6 de 8 semanas com 0,5 mL de uma solução estéril de tioglicolato 4% Brewer como descrito anteriormente,3,4,6.</li>
	<li>Eutanásia em setenta e duas horas depois, o animal de acordo com o aprovado cuidado animal use diretrizes e coletar os macrófagos pela lavagem peritoneal com gelada fosfato salino suplementado com 5 mM etilenodiaminotetracético.</li>
	<li>Centrifugue os macrófagos a 300 x g por 3 min e Resuspenda em 1 mL de DMEM:F12 suplementado com 15 mM HEPES, 10% FBS e 1% de antibióticos (meio de cultura). Nota: As células são posteriormente contadas com um hemocytometer de Neubauer. Os macrófagos são diluídos na concentração adequada e aplicados sobre as superfícies. O número de células para aplicar a uma dada superfície deverão ser cuidadosamente considerado pelo investigador para efeitos a questão experimental. Consulte padrões conhecidos na literatura primária.</li>
	<li>Após 30 min lave as superfícies com HBSS suplementado com 0,1% de BSA para remover as células não-aderentes e substituir com meio de cultura fresco. Retorno as culturas para a incubadora (5% CO2 no ar a 37 ° C).</li>
	<li>2h depois, Aspire o meio e substituir com meio de cultura suplementado com 10 ng/mL de IL-4. As células conforme descrito em outra parte4da imagem.</li>
</ol>

<ol><li>McNally, A. K., Anderson, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-4+induces+foreign+body+giant+cells+from+human+monocytes%2Fmacrophages.+Differential+lymphokine+regulation+of+macrophage+fusion+leads+to+morphological+variants+of+multinucleated+giant+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Interleukin-4 induces foreign body giant cells from human monocytes/macrophages. Differential lymphokine regulation of macrophage fusion leads to morphological variants of multinucleated giant cells.</a> Am J Pathol. 147 (5), 1487(1995).</li>
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<li>Fölling, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+nanoscopy+by+ground-state+depletion+and+single-molecule+return%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Fluorescence nanoscopy by ground-state depletion and single-molecule return.</a> Nat Methods. 5 (11), 943-945 (2008).</li>
<li>Heilemann, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subdiffraction-resolution+fluorescence+imaging+with+conventional+fluorescent+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Ange+Chem+Int+Edit%22%5BJournal%5D)">Subdiffraction-resolution fluorescence imaging with conventional fluorescent probes.</a> Ange Chem Int Edit. 47 (33), 6172-6176 (2008).</li>
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<li>Betzig, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+intracellular+fluorescent+proteins+at+nanometer+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging intracellular fluorescent proteins at nanometer resolution.</a> Science. 313 (5793), 1642-1645 (2006).</li>
<li>Shtengel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interferometric+fluorescent+super-resolution+microscopy+resolves+3D+cellular+ultrastructure%5BTitle%5D)+AND+%22P+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Interferometric fluorescent super-resolution microscopy resolves 3D cellular ultrastructure.</a> P Natl Acad Sci U S A. 106 (9), 3125-3130 (2009).</li>
<li>Shtengel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+cellular+ultrastructure+by+PALM%2C+iPALM%2C+and+correlative+iPALM-EM%5BTitle%5D)+AND+%22Method+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging cellular ultrastructure by PALM, iPALM, and correlative iPALM-EM.</a> Method Cell Biol. 123, 273-294 (2013).</li>
<li>Chen, B. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lattice+light-sheet+microscopy%3A+Imaging+molecules+to+embryos+at+high+spatiotemporal+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Lattice light-sheet microscopy: Imaging molecules to embryos at high spatiotemporal resolution.</a> Science. 346 (6208), 1257998(2014).</li>
<li>Planchon, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+three-dimensional+isotropic+imaging+of+living+cells+using+Bessel+beam+plane+illumination%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Rapid three-dimensional isotropic imaging of living cells using Bessel beam plane illumination.</a> Nat Methods. 8 (5), 417-423 (2011).</li>
</ol>

Os autores declaram que eles têm não tem interesses financeiro concorrente.

A necessidade de identificar e desenvolver posteriormente as superfícies de vidro ótico-qualidade que promovem a fusão do macrófago resultou do fato de que até recentemente não publicado estudo diretamente visualizado fusão macrófago no contexto de vida espécimes3, 4. Isto é devido ao fato de que fusogenic as superfícies plásticas que são comumente usadas exigem objectivos LWD e são em grande parte limitadas a óptica de contraste de fase. Estas barreiras foram s...

A formação de MGCs acompanha uma série de estados patológicos, no corpo humano distinto de inflamação crônica1. Apesar do acordo que mononucleadas macrófagos fundem-se para formar MGCs2, surpreendentemente poucos estudos têm mostrado a fusão em contexto com vivos espécimes3,4. Isso ocorre porque as superfícies de vidro limpo que são necessárias para a maioria das técnicas de imagem não promover fusão macrófago quando induzida por citocinas inflamatórias5. Com efeito, se limpa vidro é usado como substrato para a fusão do macrófago, então baixa a objectivos intermédios ampliação (ou seja, 10-20 X) e mais de 15 h de contínua imagens são geralmente necessário para observar um evento único de fusão.
Na outra mão, fusogenic superfícies plásticas (por exemplo, permanox) ou plástico grade bacteriológica promova fusão2. No entanto, imagens através do plástico é problemática, porque o substrato é espesso e dispersa a luz. Isso complica a imagem latente, pois há muito trabalho objectivos de distância (LWD) são necessários. No entanto, objectivos LWD geralmente têm baixa capacidade em comparação com suas contrapartes da lamela-corrigido de captura de luz. Além disso, técnicas que exploram as mudanças na polaridade da luz que passa através da amostra como contraste de interferência diferencial são impossíveis, já que o plástico é birrefringentes. As barreiras associadas ao uso do plástico são ressaltou ainda mais pelo fato de que é impossível prever onde a formação de fusão/MGC macrófago ocorrerá na superfície. Juntos, essas limitações restringem a visualização da fusão do macrófago a óptica de contraste de fase, estendido durações de imagem totais (> 15 horas contínuas) e baixa resolução.
Recentemente, nós identificamos uma superfície de vidro altamente fusogenic durante a realização de microscopia de resolução super single-molécula com macrófagos fixos/MGCs4. Esta observação foi surpreendente porque limpa vidro superfícies promovem fusão à baixíssima taxa de ~ 5% após 24 h na presença de interleucina-4 (IL-4), conforme determinado pela fusão do índice4. Descobrimos que a capacidade de promover fusão era devido à contaminação de oleamide. Adsorção de oleamide ou outros compostos que da mesma forma continham hidrocarbonetos de cadeia longa feita a fusogenic de vidro. A maioria dos compostos fusogenic (parafina) foi micropatterned, e é transmitido a um alto grau de controle spatiotemporal sobre fusão de macrófagos e um aumento de 2 vezes no número de eventos de fusão observado dentro a mesma quantidade de tempo em comparação com permanox. Estas superfícies ópticas-qualidade desde o primeiro vislumbre nas características morfológicas e cinética que regem a formação de MGCs em espécimes vivos.
Neste protocolo, descrevemos a fabricação de uma variedade de superfícies de vidro que pode ser usado para monitorar a formação de MGCs de espécimes vivos. Além disso, mostramos que essas superfícies são receptivos às técnicas de super-resolução consideravelmente-campo. Fabricação de superfície é dependente sobre o objetivo do experimento, e cada superfície é descrito com exemplos relacionados no texto processo.

<table><tbody><tr><td>Limpador de plasma</td><td>Harrick Plasma</td><td>PCD-32G</td><td></td></tr><tr><td>Grade de busca</td> Ciências <td>de microscopia eletrônica</td><td>G400F1-Au</td><td>qualquer grade TEM de ouro funcionará</td></tr><tr><td>Vidro de cobertura (22x22 mm)</td> <td>Thor Labs</td><td>CG15CH</td><td>use apenas vidro de cobertura de alta rigidez</td></tr><tr><td>Cera de parafina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>17310</td><td></td></tr><tr><td>Petrolato</td><td>Sigma Aldrich</td><td>16415</td><td>deve ser isento de &alfa;-tocoferol se substituído</td></tr><tr><td>Oleamida</td><td>Sigma Aldrich</td><td>O2136</td><td>preparar fresco</td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>278475</td><td></td></tr><tr><td>Tolueno</td><td>Sigma Aldrich</td><td>244511</td><td></td></tr><tr><td>Acetona</td><td>VWR International</td><td>BDH1101</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Microscopia eletrônica ciências</td><td>15050</td><td>uso baixo dissolvido sólidos etanol</td></tr><tr><td>Ácido clorídrico</td><td>Fischer Scientific</td><td>A144C-212</td><td>use para lavar com ácido o vidro de cobertura</td></tr><tr><td>Slyguard 184</td><td>VWR International</td><td>102092-312</td><td>misture na proporção de 1:10 e cure a 50 &graus; C para placa</td></tr><tr><td>de Petri de 4 h 35 mm</td><td>Santa Cruz Biotech</td><td>sc-351864</td><td></td></tr><tr><td>Dumont no. 5 fórceps</td><td>Ciências de microscopia eletrônica</td><td>72705</td><td>ideal para remover a grade TEM na seção 3.5</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Atlanta Biological</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>DMEM:F12</td><td>Corning</td><td>10-092</td><td>contém 15 mM HEPES</td></tr><tr><td>Pen/Strept</td><td>Corning</td><td>30-002-Cl</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Corning</td><td>21-023</td><td></td></tr><tr><td>BSA solução</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9576</td><td>uso a 0,1% em HBSS para lavar macrófagos não aderentes</td></tr><tr><td>IL-4</td><td>Genscript</td><td>Z02996</td><td>alíquota a 10 &mu; g/mL e armazene a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>C57BL/6J</td><td>Jackson Laboratory</td><td>000664</td><td>uso para amostras fixas ou técnicas que não requerem agentes de contraste</td></tr><tr><td>eGFP-LifeAct camundongos</td><td>n/</td><td>a n/a</td><td>uso para imagens de fluorescência ao vivo</td></tr><tr><td>Kimwipe</td><td>Kimberly Clark&nbsp;</td><td>34155</td><td>Utilização para polir superfícies adsorvidas de hidrocarbonetos</td></tr></tbody></table>

fabricação de superfícies de vidro de qualidade óptica para estudar a fusão do macrófago

Fabricating Optical-quality Glass Surfaces to Study Macrophage Fusion

Visualizando a formação de células gigantes multinucleadas (MGCs) de espécimes vivos tem sido um desafio devido ao fato de que mais técnicas de imagem ao vivo requerem a propagação da luz através do vidro, mas no vidro fusão macrófago é um evento raro. Este protocolo apresenta a preparação de várias superfícies de vidro de qualidade óptica onde a adsorção de compostos contendo hidrocarbonetos de cadeia longa transforma o vidro em uma superfície de fusogenic. Em primeiro lugar, a preparação de superfícies de vidro limpo como material para a modificação da superfície de partida é descrita. Em segundo lugar, um método é fornecido para a adsorção de compostos contendo hidrocarbonetos de cadeia longa para converter não-fusogenic vidro em um substrato de fusogenic. Em terceiro lugar, este protocolo descreve a fabricação de superfície micropatterns que promovem um elevado grau de controle spatiotemporal sobre formação de MGC. Finalmente, fabricar pratos de vidro inferior é descrito. Exemplos de utilização deste sistema de célula em vitro como um modelo para estudar a fusão do macrófago e MGC formação são mostrados.

Parâmetros físico-químicos de materiais tem efeitos dramáticos sobre a extensão do macrófago fusão7,8,9,10. Além disso, contaminantes superficiais são conhecidos por promover o macrófago fusão11. Portanto, é importante começar com limpo vidro de tampa como um controle negativo para fusão de macrófagos. Quando limpo conforme descrito no pr...

Este protocolo descreve a fabricação de superfícies de vidro ótico-qualidade adsorvido com compostos contendo hidrocarbonetos de cadeia longa que podem ser usados para monitorar fusão macrófago de espécimes vivos e permite a microscopia de super-resolução de espécimes fixos .

Fabricação de superfícies de vidro de qualidade óptica para estudar a fusão do macrófago

Visualizing the formation of multinucleated giant cells (MGCs) from living specimens has been challenging due to the fact that most live imaging ...

O objetivo geral deste protocolo é transformar a lamínula não fusogênica em uma superfície fusogênica que pode ser usada para estudar a fusão de macrófagos usando qualquer forma de microscopia óptica. Este método pode ajudar a responder às questões fundamentais relacionadas ao mecanismo molecular da fusão de macrófagos. A principal vantagem desse procedimento é que qualquer técnica de microscópio, principalmente imagens ao vivo, pode ser usada para estudar a fusão de macrófagos.Demonstrando o procedimento estarão James Faust, terceiro bolsista, e Arnat Balabiyev, um estudante de pós-graduação do meu laboratório. Para começar, em uma capela de exaustão química bem ventilada, incube a lamínula de alta rigidez em ácido clorídrico de 12 molares com sonicação por uma hora. Repita a etapa mais duas vezes com HCL de 12 molares fresco.Encha um copo separado com água ultrapura e adicione o vidro de cobertura. Em seguida, sonice a lamínula durante cinco a 10 minutos. Em seguida, incube a lamínula em acetona pura por 30 minutos com sonicação.Repita a etapa mais duas vezes. Em seguida, encha um copo separado com água ultrapura estéril e adicione o vidro de cobertura. Sonicar a lamínula durante cinco a 10 minutos.Incube a lamínula em álcool etílico 100% por 30 minutos com sonicação. Repita esta etapa mais duas vezes. Para armazenamento de longo prazo, coloque a tampa de vidro limpa com ácido em um recipiente com álcool etílico puro.Em alternativa, secar a lamínula com gás azoto e conservá-la num exsicador a vácuo. Dissolva a cera de parafina de alto ponto de fusão sem DMSO em tolueno ultrapuro. Usando uma pipeta de vidro, aplique uma solução de trabalho de parafina suficiente em uma lamínula seca e limpa com ácido para revestir uniformemente a superfície do vidro.Transvase o excesso de solução e, com gás nitrogênio ou ar, seque a lamínula. Com um pano sem fiapos, polir o vidro de cobertura usando três movimentos ao longo do eixo X e, em seguida, três movimentos ao longo do eixo Y. Imediatamente antes da realização do experimento, use água ultrapura estéril para lavar a lamínula e, posteriormente, esterilize-a com luz ultravioleta em uma capa de segurança biológica por 15 a 30 minutos.Seque a lamínula limpa com ácido e imobilize o vidro sobre uma superfície plana. Usando uma pinça, mergulhe cuidadosamente uma grade localizadora de microscopia eletrônica de transmissão de ouro em uma solução de trabalho de um composto de hidrocarboneto. Remova o excesso de solução batendo suavemente a grade no papel de filtro e, em seguida, coloque imediatamente a grade no centro da lamínula.Deixe o tolueno secar por dois minutos. Certifique-se de que a grade esteja colada ao vidro invertendo suavemente o vidro. Se a grade se soltar, repita a colagem usando uma nova lamínula lavada com ácido.Depois de remover a grade MET, examine a continuidade do micro padrão com baixa ampliação. O micro padrão deve parecer contínuo, mas o material não deve se estender além das margens do padrão. Em seguida, use um limpador de plasma com plasma a vácuo para limpar a lamínula de acordo com o protocolo de texto.Em seguida, usando uma pinça de ponta fina, remova cuidadosamente a grade da superfície do vidro para expor o micro padrão. Com uma broca escalonada, faça um furo circular de seis a 10 milímetros com bordas lisas no fundo de uma placa de Petri de plástico de 35 milímetros. Misture e desgaseifique cuidadosamente o elastômero de silício de acordo com as instruções do fabricante.Aplique uma fina camada de elastômero próximo à borda do orifício na placa de Petri. O elastômero deve aparecer como uma faixa fina contínua ao redor do orifício. Aplique suavemente um vidro de cobertura fusogênico ou seco e limpo com ácido no prato para cobrir o orifício cercado por elastômero.Certifique-se de que a lamínula apareça nivelada com o fundo do prato e se estenda além do diâmetro do orifício, de modo que uma parte substancial do vidro fique em contato com o plástico. Cure o elastômero assando-o a 50 graus Celsius por duas a três horas. Injete camundongos C57 black-6 de oito semanas com 0,5 mililitros de uma solução estéril de tioglicolato de Brewer a 4%, conforme descrito no protocolo de texto.72 horas depois, após a eutanásia do animal de acordo com as diretrizes aprovadas de cuidados e uso de animais, colete macrófagos por lavagem interperitoneal usando PBS gelado suplementado com EDTA de cinco milimolares. Centrifugue os macrófagos a 300 vezes G por três minutos e ressuspenda o pellet celular em um mililitro de DMEM / F-12 suplementado com 15 pilhas milimolares de 10% de FBS e 1% de antibióticos. Depois de contar e diluir as células e aplicá-las nas superfícies por 30 minutos, use HBSS 0,1% BSA para lavar as superfícies e substitua o meio de cultura.Em seguida, devolva as culturas à incubadora. Duas horas depois, aspire o meio e substitua-o por meio de cultura suplementado com 10 nanogramas por mililitro de IL4 antes de obter imagens das células. Quando limpo conforme descrito neste vídeo, o vidro de cobertura é excepcionalmente plano, sem características de superfície óbvias; enquanto a absorção de hidrocarbonetos de cadeia longa seguida de polimento superficial cria um grau de nanotopografia visto aqui.Em superfícies limpas de lamínula, os macrófagos se fundem a uma taxa muito baixa. Em contraste, após 24 horas na presença de IL4, os macrófagos aplicados em superfícies adsorvidas com compostos contendo hidrocarbonetos de cadeia longa sofrem fusão robusta. Além disso, a absorção do solvente por si só não torna o vidro uma superfície fusogênica.Aqui, a largura total na metade do máximo, ou FWHM, de estruturas menores que o limite de difração do microscópio óptico é usada para avaliar quantitativamente as diferenças potenciais na resolução. É importante ressaltar que não há diferença aparente no FWHM de esferas fluorescentes de 100 nanômetros entre as várias superfícies, sugerindo que as características do vidro necessárias para a imagem de fluorescência foram suficientemente preservadas. Neste experimento, macrófagos foram aplicados nas superfícies contendo hidrocarbonetos de cadeia longa.Em seguida, foi realizada uma forma de microscopia de super-resolução chamada Microscopia de Reconstrução Óptica Estocástica Direta 3D. Esses vídeos demonstram que uma variedade de técnicas de imagem ao vivo são viáveis quando macrófagos são aplicados às superfícies. Uma vez dominado, modificar o vidro para tornar a superfície fusogênica pode ser feito em meia hora, se for feito corretamente.Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de segui-lo cuidadosamente. Após este procedimento, outros métodos, como a microscopia de fluorescência, podem ser realizados para obter visualizações de fusão com contraste molécula-específico. Isso permitirá experimentos projetados para identificar proteínas diretamente envolvidas no momento da fusão.Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para os investigadores adquirirem visões resolvidas no tempo da fusão de macrófagos. No futuro, isso nos ajudará a entender melhor o mecanismo de fusão de macrófagos. Depois de assistir a este vídeo, você poderá modificar a tampa de vidro para estudar a fusão de macrófagos.Não se esqueça de que trabalhar com ácido e tolueno pode ser extremamente perigoso, e EPI e ventilação adequada devem sempre ser usados durante a execução deste procedimento.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Source: Lê-Bury, G., et al. Phagosome Migration and Velocity Measured in Live Primary Human Macrophages Infected with HIV-1. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates live confocal imaging of HIV-1-infected human macrophages to visualize and quantify phagosome migration using GFP fluorescence and bright field tracking, providing insights into how HIV alters intracellular trafficking during Fc receptor–mediated phagocytosis.

Live Imaging of Phagosome Migration in HIV-1-Infected Human Macrophages

Este vídeo demonstra um ensaio para monitorar eventos independentes de fagocitose de glóbulos vermelhos mediados por macrófagos. As hemácias humanas opsonizadas com imunoglobulina G (IgG) de camundongo são incubadas com macrófagos de camundongo e observadas em microscópio confocal. As hemácias são engolfadas por macrófagos por meio de uma formação de copo fagocítico e direcionadas para degradação lisossômica.

Imagem em tempo real da fagocitose de macrófagos de glóbulos vermelhos opsonizados por IgG

Este vídeo demonstra uma técnica de microscopia de fluorescência de reflexão interna total (TIRF) de alta resolução para visualização em tempo real da formação e fechamento de fagossomos durante a fagocitose mediada por macrófagos de glóbulos vermelhos opsonizados (RBCs) opsonizados por IgG presos à superfície de um prato de fundo de vidro. Os macrófagos estendem os pseudópodes ao redor das hemácias e os engolfam dentro dos fagossomos, destacando-os da superfície do vidro.

Visualização baseada em microscopia TIRF da formação e fechamento de fagossomos

Phagocytic cells play a major role in the innate immune system by removing and eliminating invading microorganisms in their phagosomes. Phagosome ...

Estudo da fagolisossomo Biogenesis em macrófagos ao vivo

Este protocolo descreve a funcionalização de superfície personalizável do sistema de destiobiotina, estreptavidina e APTES para isolar tipos específicos de células de interesse. Além disso, este manuscrito cobre as aplicações, otimização e verificação desse processo.

Um método de isolamento celular alvejado via funcionalização da superfície de vidro

Descrevemos uma configuração experimental para visualizar com alta resolução sem precedentes a formação e fechamento de fagossomos em três dimensões em macrófagos vivos, usando microscopia de fluorescência de reflexão interna total. Permite o monitoramento da base do copo fagocítico, dos pseudópodes que se estendem, bem como do local preciso da cisão do fagossomo.

&quot;Fagossomo Encerramento Ensaio&quot; para Visualize Formação fagossomo em Três Dimensões Usando Total Internal Reflection Microscopia fluorescente (TIRFM)

Aqui descrevemos os métodos usando microscopia confocal de fiação disco de imagem única fagocíticas eventos por macrófagos peritoneais residente do rato. Os protocolos podem ser estendidos a outras células fagocíticas.

Time-Lapse imagem em 3D da fagocitose por macrófagos de rato

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Um ensaio celular do repórter do macrófago para examinar a sinalização nf-kB/AP-1 mediada pelo receptor em macrófagos em camadas de proteína adsorbed em superfícies poliméricas

Este protocolo descreve a fabricação de uma janela de imagem integrada implantável usando impressão a laser 3D. A janela consiste em um sistema de microlentes acopladas a micro-andaimes. O método envolve a polimerização de dois fótons (2PP) do fotorresistente biocompatível SZ2080 em uma sequência contínua, otimizando a eficiência de fabricação e o alinhamento entre os diferentes componentes.

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