Name: Gravações simultâneas de potenciais de campo corticais Local, eletrocardiograma, eletromiograma e respirar o ritmo de um rato andando livremente (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-02T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 7 s
Description: Aprenda a registrar simultaneamente potenciais de campo locais, ECG, EMG e respiração em ratos livremente móveis. Este método integrado simplifica a análise de dados e reduz custos experimentais em neurociência.

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Este trabalho foi apoiado pela Kaken-Oi (17 H 05939; 17 H 05551), a Fundação Nakatomi e o Suzuken Memorial Foundation.

Todos os procedimentos envolvendo assuntos animais foram realizados de acordo com as diretrizes do NIH para o cuidado e o uso de animais.
1. preparação da matriz de Microunidade Integrativa
<ol><li>Crie uma matriz de micro-drive para gravações de LFP corticais como descrito em outra parte1,2,3. Deixe pelo menos 6 furos metais abertos sobre uma placa de interface de eletrodo (BEI) para uso como canais de ECG/EMG/BR que estão ligados a fios bioflex, conforme descrito no ponto 1.2.</li>
	<li>Cortar um fio de bioflex para 6 peças com comprimentos de 5,0 cm. descasque fora o politetrafluoroetileno (PTFE) revestimento de ambas as extremidades de todos os pedaços de arame com comprimentos de ~5.0 mm. Conecte uma extremidade de cada uma das peças para um dos buracos metálicos abertos (canais de ECG/EMG/BR) fio sobre o BEI com um pin de ouro.</li>
	<li>Corte um fio de esmalte em dois pedaços de 5,0 cm. Solde uma extremidade de cada um destes fios para os canais de terra/referência (g/r), o BEI (Figura 3, ver também anterior papéis12,13).</li>
	<li>Para a preparação de eletrodos de ECG, cortar um fio de bioflex em dois pedaços de 16 cm. Retire o revestimento de PTFE das extremidades destes pedaços de arame em comprimentos de ~5.0 mm em uma extremidade (extremidade curta) e ~ 15mm na outra extremidade (extremidade longa).</li>
	<li>Forma um anel de arame com diâmetro de 2,0 mm, dobrando o final longo do fio e a forma do anel de fixação por solda.</li>
	<li>Para a preparação de eletrodos de EMG, corte um fio de bioflex em 2 pedaços, com comprimentos de 8 cm. descasque fora o revestimento de PTFE, de ambos os lados destes pedaços de arame com comprimentos de ~5.0 mm.</li>
	<li>Para a preparação de eletrodos de BR, cortar um fio de bioflex em 2 pedaços, com comprimentos de 6,0 cm. descasque fora o revestimento de esmalte de ambas as extremidades destes pedaços de arame com comprimentos de ~5.0 mm. Solde uma extremidade de cada um destes pedaços de arame na cabeça de um parafuso de aço inoxidável (diâmetro de haste medidor: 1.0 mm, comprimento da haste: 4.0 mm).</li>
	<li>Para a preparação de eletrodos de terra/referência (gr), corte um fio de esmalte em 2 pedaços, com comprimentos de 6,0 cm. descasque fora o revestimento de esmalte de ambas as extremidades destes pedaços de arame com comprimentos de ~5.0 mm. Solde uma extremidade de cada um destes pedaços de arame na cabeça de um aço inoxidável-st parafuso de enguia (diâmetro da haste: 1.4 mm, comprimento da haste: 3,0 mm).</li>
	<li>Gás esterilizar todos os eléctrodos e parafusos de aço inoxidáveis e mantê-los em um espaço limpo.</li>
</ol>2. a implantação dos eléctrodos ECG/EMG
Nota: Execute todas as etapas cirúrgicas com técnica asséptica, usando luvas esterilizadas e instrumentos esterilizados em autoclave. Para todas as etapas que envolvem a criação de uma incisão, esterilizar a pele com álcool 70% antes e cobrir a incisão com cirúrgicos.
<ol><li>Consertar um anestesiados rato (1,0-3,0% isoflurano gás) de costas sobre uma almofada de calor plana. Dar a buprenorfina como um analgésico. Coloque pomada veterinária sobre os olhos do rato para evitar ressecamento. Use betadine para limpar a superfície da pele.</li>
	<li>Fazer uma incisão de ~2.0 cm na área medial no peito. Expor os músculos intercostais, separando os músculos do peito. Suture os anéis dos eléctrodos ECG para os músculos intercostais.</li>
	<li>Corrigi o estômago do animal na rampa de calor. Fazer uma incisão de ~1.0 cm na área do pescoço dorsal.</li>
	<li>Introduza os eletrodos de ECG por via subcutânea através da incisão no peito. Deslize as pontas para a área do pescoço dorsal e retirá-los da incisão no pescoço. Sutura da incisão no peito.</li>
	<li>Insira uma extremidade de cada um dos eletrodos EMG por via subcutânea para um comprimento de ~2.0 cm através da incisão de pescoço. Fixe os eletrodos de EMG para o músculo do pescoço por sutura.</li>
</ol>3. a implantação de matriz de Microunidade integrativa e os eletrodos de BR
<ol><li>Corrigi o rato em um dispositivo estereotáxica. Fazer uma incisão de ~3.0 cm na cabeça ao longo da linha mediana desde o ponto entre os olhos para a área do pescoço. Expor o crânio.</li>
	<li>Faça duas craniotomias circulares com diâmetros de 0,7-1,0 mm acima do bulbo olfatório anterior 11,0 mm e 1 mm bilateral bregma com uma broca de alta velocidade. Dois eletrodos de BR no crânio do implante até que as pontas das hastes parafuso estão ligadas à superfície do cérebro.</li>
	<li>Fazer duas craniotomias circulares com diâmetros de 0,7-1,0 mm acima do córtex frontal anterior 2,7 mm e 2,7 mm bilateral de bregma. Implante de dois eletrodos g/r no crânio até a ponta da haste parafuso é anexada à superfície do cérebro.</li>
	<li>Faça seis a oito furos com diâmetros de 1,0 mm na área circundante a craniotomia grande. Parafusos de ancoragem do implante (diâmetro da haste: 1.4 mm, comprimento da haste: 3,0 mm) no crânio.</li>
	<li>Fazer uma craniotomia grande circular com um diâmetro de ~2.0 mm acima do hipocampo posterior 3,8 mm e 2,5 mm bilateral de bregma. Coloque a matriz de microunidade Integrativa, tal que a ponta da cânula da matriz unidade situa-se acima a craniotomia grande</li>
	<li>Preencher o espaço de abertura entre a ponta da cânula e a superfície do cérebro com ~ 100 µ l de duas soluções, i. e., alginato de sódio 0,5% (em massa) e cloreto de cálcio 10% (em massa). Nota: Este processo forma um gel transparente em ~ 5 min, depois que as duas soluções são misturadas no crânio.</li>
	<li>Cobrir a cânula, eletrodos de BR, eletrodos g/r, e parafusos de ancoragem com cimento dental com uma espessura de 0,5 cm... ser cuidadoso não para cobrir as extremidades abertas dos eléctrodos BR e g/r com o cimento para esta etapa.</li>
	<li>Solde as extremidades abertas dos eléctrodos de ECG, EMG, BR e g/r para as pontas de fio individual que anteriormente estavam ligadas ao BEI (consulte as etapas 1.2 e 1.3).</li>
	<li>Cobrir a parte inferior da matriz de microunidade integrativa e todos os fios de eletrodo, com cimento dental. Certifique-se de que todos os fios de eletrodo são completamente coberto para que o rato não pode coçá-los após a implantação.</li>
	<li>Depois de recuperar a consciência suficiente para manter a prostração esternal, retornar o animal ao seu cag em casa de acrílico transparente e mantê-lo por conta própria, com livre acesso à água e comida. Após a cirurgia, trate o animal com antibióticos (gentamicina).</li>
	<li>Após a cirurgia, monitore os animais com observação diária. Verifique que andam corretamente, e que eles não rangem quando o experimentador toca a matriz micro drive.</li>
</ol>4. in Vivo gravações
Nota: Todos os sinais são amplificados, amostragem de 2 kHz e passa-banda filtrada (0.1 - 500 Hz) exceto para atividades de unidade (band-pass filtrado (500-6 kHz) e amostrados a 30 kHz).
<ol><li>O BEI da matriz de microunidade Integrativa Conecte o headstage de um dispositivo de gravação.</li>
	<li>Avança os tetrodes girando os parafusos por algumas semanas após a cirurgia. Uma vez que o tetrodes são adjacentes às áreas alvo cérebro, firmar os tetrodes áreas durante um período de vários dias para gravações estáveis.</li>
	<li>Monitore os sinais elétricos, enquanto o animal se move livremente em uma câmara de gravação.</li>
</ol>

<ol><li>Kloosterman, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-drive+Array+for+Chronic+in+vivo+Recording%3A+Drive+Fabrication%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Micro-drive Array for Chronic in vivo Recording: Drive Fabrication.</a> JoVE. (26), e1094(2009).</li>
<li>Nguyen, D. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-drive+Array+for+Chronic+in+vivo+Recording%3A+Tetrode+Assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Micro-drive Array for Chronic in vivo Recording: Tetrode Assembly.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (26), e1098(2009).</li>
<li>Jog, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetrode+technology%3A+advances+in+implantable+hardware%2C+neuroimaging%2C+and+data+analysis+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Tetrode technology: advances in implantable hardware, neuroimaging, and data analysis techniques.</a> J Neurosci Methods. 117 (2), 141-152 (2002).</li>
<li>Fenske, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+multilevel+in+vivo+and+in+vitro+analysis+of+heart+rate+fluctuations+in+mice+by+ECG+telemetry+and+electrophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Comprehensive multilevel in vivo and in vitro analysis of heart rate fluctuations in mice by ECG telemetry and electrophysiology.</a> Nat Protoc. 11 (1), 61-86 (2016).</li>
<li>Rossi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+aging+on+the+specialized+conducting+system%3A+a+telemetry+ECG+study+in+rats+over+a+6+month+period%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">The effect of aging on the specialized conducting system: a telemetry ECG study in rats over a 6 month period.</a> PLoS One. 9 (11), 112697(2014).</li>
<li>Cesarovic, N., Jirkof, P., Rettich, A., Arras, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implantation+of+radiotelemetry+transmitters+yielding+data+on+ECG%2C+heart+rate%2C+core+body+temperature+and+activity+in+free-moving+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Implantation of radiotelemetry transmitters yielding data on ECG, heart rate, core body temperature and activity in free-moving laboratory mice.</a> JoVE. (57), (2011).</li>
<li>Zeredo, J. L., Kumei, Y., Shibazaki, T., Yoshida, N., Toda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+biting+behavior+induced+by+acute+stress+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Res+Methods%22%5BJournal%5D)">Measuring biting behavior induced by acute stress in the rat.</a> Behav Res Methods. 41 (3), 761-764 (2009).</li>
<li>Young, G. A., Khazan, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electromyographic+power+spectral+changes+associated+with+the+sleep-awake+cycle+and+with+diazepam+treatment+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Biochem+Be%22%5BJournal%5D)">Electromyographic power spectral changes associated with the sleep-awake cycle and with diazepam treatment in the rat.</a> Pharmacol Biochem Be. 19 (4), 715-718 (1983).</li>
<li>Oishi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polygraphic+Recording+Procedure+for+Measuring+Sleep+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Polygraphic Recording Procedure for Measuring Sleep in Mice.</a> JoVE. (107), e53678(2016).</li>
<li>Chaput, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory-phase-related+coding+of+olfactory+information+in+the+olfactory+bulb+of+awake+freely-breathing+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Respiratory-phase-related coding of olfactory information in the olfactory bulb of awake freely-breathing rabbits.</a> Physiol Behav. 36 (2), 319-324 (1986).</li>
<li>Ravel, N., Pager, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+patterning+of+the+rat+olfactory+bulb+unit+activity%3A+Nasal+versus+tracheal+breathing%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci+Lett%22%5BJournal%5D)">Respiratory patterning of the rat olfactory bulb unit activity: Nasal versus tracheal breathing.</a> Neurosci Lett. 115 (2-3), 213-218 (1990).</li>
<li>Okada, S., Igata, H., Sakaguchi, T., Sasaki, T., Ikegaya, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+device+for+the+simultaneous+recording+of+cerebral%2C+cardiac%2C+and+muscular+electrical+activity+in+freely+moving+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Sci%22%5BJournal%5D)">A new device for the simultaneous recording of cerebral, cardiac, and muscular electrical activity in freely moving rodents.</a> J Pharmacol Sci. 132 (1), 105-108 (2016).</li>
<li>Sasaki, T., Nishimura, Y., Ikegaya, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+Recordings+of+Central+and+Peripheral+Bioelectrical+Signals+in+a+Freely+Moving+Rodent%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Pharm+Bull%22%5BJournal%5D)">Simultaneous Recordings of Central and Peripheral Bioelectrical Signals in a Freely Moving Rodent.</a> Biol Pharm Bull. 40 (5), 711-715 (2017).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Para entender como o cérebro modula os níveis de atividade periférica e vice versa, em grande escala gravação métodos para capturar simultaneamente bio-sinais elétrica de várias áreas do corpo são necessárias. Este estudo descreveu um procedimento cirúrgico e um sistema de gravação para monitoramento de potenciais de campo local cerebral, cardíaca, a magnitude da construção muscular e as taxas respiratórias, que foram melhoradas em um sistema de gravação que é usado para gravações extracelulares no tecido cerebral. Este ...

O sistema nervoso central controla Estados de corpo em resposta às mudanças ambientais diferentes, e este controle é tipicamente representado como alterações no ritmo cardíaco, ritmo respiratório e contrações musculares. No entanto, poucos estudos têm testado como fatores fisiológicos periféricos estão associados com atividade cortical. Para resolver esse problema, um método de gravação em grande escala para monitoramento bio-sinais elétrica de tecidos centrais e periféricos é necessário. No córtex cerebral, os sinais do campo local potenciais (LFP) registam-se extracelularmente por eletrodos que são inseridos os tecidos corticais1,2,3. Para gravar simultaneamente múltiplos sinais LFP das regiões corticais de pequenos mamíferos, como ratos e camundongos, vários estudos têm desenvolvido vários tipos de assemblies de eletrodo sob medida que são denominados unidades de micro. A microcarro convencional é composta de anexado às partes médios dos eletrodos (que são tipicamente tetrodes), um corpo de núcleo que acomoda os parafusos e eletrodos e uma placa de interface elétrica (BEI) que acomoda metais furos para parafusos de metal Ligue as extremidades abertas dos eletrodos (Figura 1, Figura 2e Figura 3). Este conjunto de eléctrodo permite ao operador controlar a profundidade de muitos eletrodos inseridos no cérebro ao longo de dias ou semanas e permite a realização de gravações crônicas a longo prazo da atividade neuronal como o animal é desafiado com vários tarefas comportamentais. Nos órgãos periféricos, sinais de batimentos cardíacos são registrados como eletrocardiogramas (ECGs) por um par de eletrodos que são implantados ou em torno do coração área4,5,6, e sinais de músculo esquelético como electromyograms (EMGs) com eletrodos que são inseridos o músculo tecido7,8,9. A relação entre os sinais elétricos do bulbo olfatório e o ritmo respiratório (BR) tem sido estudada com única unidade gravações10,11. Em sistemas de gravação convencional, estes sinais de diferentes tecidos foram capturados por dispositivos de gravação independente, o que significa que um sistema experimental adicional é necessário para sincronizar precisamente estes dispositivos múltiplos para simultânea gravações de sinais do cérebro e corpo. Este sistema foi desenvolvido para superar este problema. Neste sistema, todos os sinais elétricos, gravados a partir de órgãos periféricos, incluindo ECGs EMGs e sinais elétricos do bulbo olfatório que refletem o ritmo de respiração, são integrados em uma única matriz micro drive-1,2 ,3, aqui denominado de uma matriz de microunidade integrativa. Este sistema requer apenas um dispositivo de gravação multi-canal e é aplicável para qualquer matriz de micro-drive convencional. As vantagens desta técnica são que não exige qualquer dispositivos especiais ou sinais de gatilho para coincidir com o tempo de gravação de múltiplos dispositivos, e permite o processamento de dados mais conveniente, desde que todos os sinais são registrados como tipos de dados similares. Esta técnica ajudará a compreensão dos neurofisiológicos das associações entre órgãos centrais e periféricos. Este documento descreve os procedimentos associados com a técnica e apresenta representativos conjuntos de dados obtidos de um rato.

<table><tbody><tr><td>Fio de Conexão FEP Encalhado em Aço Inoxidável&nbsp;</td><td>Cooner Wire Company, Chatsworth, CA</td><td>AS 633</td><td>Bioflex wire</td></tr><tr><td>EIB-36-PTB</td><td>Neuralynx, Inc., Bozeman, MT</td><td>EIB-36-PTB</td><td></td></tr><tr><td>EIB Cereplex&nbsp; M</td><td>Blackrock&nbsp; Microsystems, Salt Lake City, UT</td><td></td><td>Palco digital</td></tr><tr><td>Cereplex Direct&nbsp;</td><td>Rocha Negra Microsystems, Salt Lake City, UT</td><td></td><td>Sistema de aquisição de dados</td></tr><tr><td>UEW fio de ímã de poliuretano Oyaide.com</td><td>, Tóquio, Japão</td><td>UEW 0.14mm 20m&nbsp;</td><td>Fio de esmalte</td></tr><tr><td>SD-102</td><td>Narishige, Tóquio, Japão</td><td>SD-102</td><td>Furadeira de alta velocidade</td></tr><tr><td>Minimo ONE SERIES ver.2</td><td>Minitor Co.,Ltd, Tóquio, Japão</td><td>C2012</td><td>Furadeira de alta velocidade Fonte de Alimentação&nbsp;</td></tr><tr><td>Provinice 250 mL</td><td>Shofu Inc., Kyoto, Japão</td><td>213620136</td><td>Cimento dentário</td></tr><tr><td>para pequenos animais Anestesizante&nbsp;</td><td>Biomachinery, Chiba, Japão</td><td>TK-7</td><td>Anestesista&nbsp;</td></tr><tr><td>Cloridrato de buprenorfina</td><td>Sigma-Aldrich, St. Louis, MO</td><td>B7536-1ML</td><td>Analgésico</td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>DS Pharma Saúde Animal, Osaka, Japão&nbsp;</td><td>Isoflu 250mL</td><td></td></tr><tr><td>Vaselina, Branca&nbsp;</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Osaka, Japão</td><td>224-00165&nbsp;</td><td>Pomada veterinária</td></tr><tr><td>&nbsp; Alginato de sódio</td><td>Nacalai tesque, Kyoto, Japão</td><td>31131-85</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de Cálcio Dihidratado</td><td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Osaka, Japão</td><td>031-00435&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Parafuso de aço inoxidável M1.0&times; 4.0&nbsp;</td><td>MonotaRO, Hyogo, Japão</td><td>42617504</td><td>Parafuso de aço inoxidável para eletrodos BR</td></tr><tr><td>Parafuso de aço inoxidável M1.4&times; 3.0</td><td>MonotaRO, Hyogo, Japão</td><td>42617687</td><td>Parafuso de aço inoxidável para eletrodos e âncoras g/r</td></tr></tbody></table>

gravações simultâneas de potenciais de campo corticais local, eletrocardiograma, eletromiograma e respirar o ritmo de um rato andando livremente

Simultaneous Recordings of Cortical Local Field Potentials, Electrocardiogram, Electromyogram, and Breathing Rhythm from a Freely Moving Rat

Monitoramento da dinâmica fisiológica do cérebro e tecidos periféricos é necessária para abordar uma série de perguntas sobre como o cérebro controla corpo funções e ritmos do órgão interno, quando os animais são expostos aos desafios emocionais e alterações em seus ambientes de vida. Em geral, experimentos, os sinais de diferentes órgãos, como o cérebro e o coração, registam-se por sistemas de gravação independente que requerem vários dispositivos de gravação e diferentes procedimentos para processamento de arquivos de dados. Este estudo descreve um novo método que pode monitorar simultaneamente bio-sinais elétricos, incluindo dezenas de potenciais locais de campo em várias regiões do cérebro, eletrocardiogramas que representam o ritmo cardíaco, electromyograms que representam acordado / contração muscular com o sono e respirando os sinais, em um rato andando livremente. A configuração de gravação desse método é baseada em uma matriz de microunidade convencional para gravações de potenciais corticais campo local na qual dezenas de eletrodos são acomodadas, e os sinais obtidos esses eletrodos são integrados em um único quadro eléctrico montado na cabeça do animal. Aqui, este sistema de gravação foi melhorado para que os sinais de órgãos periféricos também são transferidos para uma placa de interface elétrica. Em uma única cirurgia, eletrodos primeiro são implantados separadamente em partes do corpo apropriado e as áreas do cérebro de alvo. As extremidades abertas de todos estes eletrodos são então soldadas para canais individuais da placa elétrica acima da cabeça do animal para que todos os sinais podem ser integrados a única placa eléctrica. Esta placa de ligação a um dispositivo de gravação permite para a coleção de todos os sinais em um único dispositivo, o que reduz custos experimentais e simplifica o processamento de dados, pois todos os dados podem ser tratados no mesmo arquivo de dados. Esta técnica ajudará a compreensão dos neurofisiológicos das associações entre órgãos centrais e periféricos.

Esse método pode capturar simultaneamente sinais bioelétricos de múltiplos órgãos que representam a atividade neuronal do cérebro, frequência cardíaca, respiração, ritmo e contrações do músculo esquelético (Figura 1). Figura 4 fornece dados de gravação representativo de um rato livremente movente que foi livremente forrageamento em uma caixa retangular (25 × 40 cm2). O conjunto de dados de exemplo incl...

Este estudo apresenta um método para a gravação simultânea dos potenciais do campo local no cérebro, eletrocardiogramas, electromyograms e respirando os sinais de um rato andando livremente. Esta técnica, o que reduz custos experimentais e simplifica a análise de dados, irá contribuir para a compreensão das interacções entre o cérebro e os órgãos periféricos.

Gravações simultâneas de potenciais de campo corticais Local, eletrocardiograma, eletromiograma e respirar o ritmo de um rato andando livremente

Monitoring the physiological dynamics of the brain and peripheral tissues is necessary for addressing a number of questions about how the brain controls ...

O objetivo geral deste implante cirúrgico de eletrodos é registrar sinais bioelétricos centrais e periféricos simultaneamente de um rato em movimento livre. Esse método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da neurociência, como memória, cognição, emoção e interações cérebro-corpo. A principal vantagem dessa técnica é que um único dispositivo de gravação coleta todos os sinais bioelétricos da ampla gama de áreas do corpo.Tivemos a ideia para esse método pela primeira vez quando notamos que as atividades musculares e cardíacas são representadas por sinais elétricos semelhantes aos sinais extracelulares cerebrais. Portanto, consideramos que todos os sinais podem ser gravados por um único dispositivo de gravação multicanal. Para começar, prepare uma matriz de micro-drive padrão para gravações LFP corticais.Deixe pelo menos seis orifícios de metal abertos em uma placa de interface de eletrodo para os canais de sinalização. Em seguida, faça seis comprimentos de cinco centímetros de fio Bioflex para transportar os sinais. Retire cerca de cinco milímetros do revestimento PFTE em ambas as extremidades.Em seguida, conecte um fio a cada orifício de metal na placa usando um pino d

simultaneous-recordings-cortical-local-field-potentials

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Nós desenvolvemos um método para ressonância magnética funcional simultânea e gravação eletrofisiológicas no cérebro de roedores, proporcionando uma plataforma para a investigação da relação entre a atividade neural e sinalizar o nível de oxigenação do sangue (BOLD) dependente de ressonância magnética.

FMRI simultânea e Eletrofisiologia no cérebro de roedores

Este vídeo demonstra o procedimento detalhado para preparar um rato anestesiado para registros eletrofisiológicos da atividade cerebral de vários locais. O couro cabeludo é dissecado para acessar o crânio e os orifícios são feitos em locais precisos para instalar e prender os eletrodos. Os eletrodos de microfios de tungstênio são então inseridos no local de destino para registrar os dados.

Registros eletrofisiológicos in vivo de atividades cerebrais de vários locais em ratos

O vídeo demonstra a gravação eletrofisiológica simultânea de várias regiões do cérebro em um rato usando uma matriz integrativa de micro-drives. Os eletrodos de registro são colocados no bulbo olfatório, os eletrodos de referência no córtex frontal e os eletrodos de matriz de micro-drive no hipocampo. O rato pode forragear livremente e a gravação simultânea de todos os eletrodos implantados é registrada usando a matriz.

Um método de matriz de micro-drive para registro eletrofisiológico de várias regiões do cérebro

Este vídeo demonstra o procedimento para gravações simultâneas de eletroencefalografia co-localizada (EEG) e potenciais de campo local (LFPs) em um rato anestesiado. O processo envolve preparar o rato e anexar eletrodos estimulantes às almofadas do bigode. Um eletrodo de aranha EEG é colocado no crânio do rato para medições de EEG de superfície. Ao mesmo tempo, um microeletrodo multicanal é inserido em uma região específica do cérebro através de um orifício no crânio para registrar a atividade...

Registros Eletroencefalográficos Simultâneos e Potenciais de Campo Local em um Rato Anestesiado

O vídeo demonstra a gravação de sinais de eletroencefalograma (EEG) de filhotes de ratos induzidos por convulsões. Pegue um filhote em movimento livre implantado com eletrodos conectados a um sistema de aquisição de dados. Uma neurotoxina é administrada para induzir crises epilépticas e a atividade de explosão elétrica resultante é monitorada usando o sinal de EEG.

Registro de Convulsões Induzidas por Eletroencefalografia em Filhotes de Rato em Movimento Livre

Instruções para a construção de baixo custo e implantação cirúrgica de uma montagem eletroencefalográfica transcraniana crônica de alta densidade em camundongos são fornecidas. Técnicas de gravação, extração e processamento de sinais também são descritas.

De alta densidade Electroencefalografia Aquisição em um modelo de roedor Usando de baixo custo e de código aberto Recursos

Aqui, nós introduzimos uma técnica nova projetada registrar o electroencephalography (EEG) em filhotes epileptic neonatal movendo-se livremente e descrever seus procedimentos, caraterísticas, e aplicações. Este método permite gravar EEG por mais de uma semana.

Gravação de EEG em Ratos Neonatais de Movimentação Livre Usando um Novo Método

Este protocolo descreve um método simples para gravação simultânea de co localizada Eletroencefalografia (EEG) e multi-laminar local campo potencial em um rato anestesiado. Um orifício de trépano, perfurado o crânio para a inserção de um microeléctrodo é mostrado para produzir distorção negligenciável do sinal EEG.

Gravação simultânea de eletroencefalografia co localizada e potencial do campo Local em roedores

Desenvolvemos uma técnica que registra simultaneamente tanto eletrocorticografia e potenciais de campo local em resposta a estímulos nociceptivos do laser de ratos movimentando-se livremente. Esta técnica ajuda a estabelecer uma relação direta dos sinais de electrocortical o nível macroscópico e mesoscópica e que facilita a investigação de informação nociceptiva processamento no cérebro.

Gravações simultâneas de potenciais de campo corticais Local e Electrocorticograms em resposta a estímulos nociceptivos Laser de ratos movimentando-se livremente

Aqui, descrevemos uma configuração para gravação simultânea do eletrocardiograma e pressão intra-arterial (BP) em ratos experimentais, que podem ser feitos com equipamento padrão em instalações de animais e podem ser aplicados a fisiológicos ou farmacológicos estudos para investigar os mecanismos de patogenicidade ou terapêuticos em medicina cardiovascular.

Gravação simultânea de eletrocardiografia e sangue invasiva pressão medida em ratos

Este protocolo foi desenvolvido para criar um sistema confiável e de fácil acesso para registrar EEG de roedores em movimento livre.

Um protocolo econômico e minimamente invasivo para gravação crônica de eletroencefalografia em vários locais em camundongos que se movem livremente

Aprenda a registrar simultaneamente potenciais de campo locais, ECG, EMG e respiração em ratos livremente móveis. Este método integrado simplifica a análise de dados e reduz custos experimentais em neurociência.

Gravações simultâneas de potenciais de campo corticais Local, eletrocardiograma, eletromiograma e respirar o ritmo de um rato andando livremente (Vídeo) | JoVE Journal

Gravações simultâneas de potenciais de campo corticais Local, eletrocardiograma, eletromiograma e respirar o ritmo de um rato andando livremente

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