Name: Os papéis de forças físicas no início Chick embrionárias morfogênese de sondagem (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 33 s
Description: Explore a modelagem computacional de forças mecânicas na morfogênese cerebral embrionária de galinha usando experimentos ex-ovo. Este método permite caracterizar o papel das forças físicas no desenvolvimento neural.

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Z.C. reconhece o apoio do fundo de inicialização de Dartmouth e o Branco Weiss - sociedade para bolsa de estudos de ciência, administrada pela ETH Zurique. Os autores agradecer Qiaohang Guo, DRS Larry A. Taber, Benjamen A. Filas e Yunfei Shi para debates úteis, bem como os revisores anônimos para comentários. Este material é baseado em trabalho suportado pela nacional Science Foundation pós-graduação bolsa de pesquisa sob Grant no. DGE-1313911. Qualquer opinião, conclusões e conclusões ou recomendações expressadas neste material são as dos autores (s) e não refletem necessariamente as opiniões da National Science Foundation.

1. preparação de meios de cultura de tecido
<ol><li>Use uma garrafa de 0,5 L de meio modificado águia de Dulbecco (DMEM) com 4,5 g/L glicose, bicarbonato de sódio e L-glutamina como base para os meios de cultura.</li>
	<li>Em uma capa de estéril de fluxo laminar, adicione 10 mL de antibióticos para a 0,5 L de DMEM.</li>
	<li>Usando uma pipeta esterilizada, transferi 50 mL da solução de antibióticos de DMEM para um tubo cônico estéril 50 mL.</li>
	<li>Adicione 50 mL de soro de garota para a solução de antibióticos DMEM restante na garrafa 0,5 L de capuz estéril.</li>
	<li>Armazenar a solução final (referida daqui por diante como garota de meios de cultura [CCM]) em alíquotas de 50 mL tubo cônico a-20 ° C.</li>
</ol>2. ovo incubação
<ol><li>Uso delicado toalhetes com álcool 70% para limpar específicos isentos de organismos patogénicos Leghorn branca frango ovos fertilizados. Organize os ovos em uma orientação longitudinal nos suportes.</li>
	<li>Transformar em uma incubadora do ovo para definir uma temperatura-alvo de 37,5 ° C e manter a umidade em 48-55%. A umidade é controlada pela adição de uma quantidade adequada de água para a incubadora.</li>
	<li>Incube os ovos de HH11-13, cerca de 40-44 h.</li>
	<li>Deixe que os ovos esfriarem em temperatura ambiente por cerca de 15-30 min antes da pulverização e limpeza com etanol a 70%.</li>
</ol>3. Puxe a capilares de vidro
<ol><li>Monte um 10 tubos capilares de vidro cm de comprimento com um diâmetro exterior de 1,0 mm e um diâmetro interno de 0,5 mm em um extrator da micropipeta.</li>
	<li>Definir o calor e puxe parâmetros para 750 e 400, respectivamente. Pressione o botão de tração para puxar o tubo capilar em finas agulhas.</li>
</ol>4. filtro de papel método de transportadora
<ol><li>Corte círculos de aproximadamente 3 cm de diâmetro de papel de filtro.</li>
	<li>Corte um retângulo aproximadamente 1 cm por 2 cm do círculo usando um furador. Certifique-se de remover quaisquer salientes ou cantos em ponto.</li>
</ol>5. o embrião da colheita e preparação
<ol><li>Quebrar ovos do fundo, separe o shell suavemente e cuidadosamente depositar o conteúdo em uma placa de Petri 150 x 15 mm. Para garantir que o lado do embrião é acima, mantenha os ovos na mesma orientação que eles foram incubados enquanto estalar os.</li>
	<li>Remova a albumina fina utilizando uma pipeta de Pasteur descartável.</li>
	<li>Separe a gema usando fórceps terminou sem corte a albumina espessa. Certifique-se de que a albumina espessa foi removida raspando levemente a parte superior da gema com a pinça terminou sem corte.</li>
	<li>Use pinça de ponta fina para centralizar e coloque um anel de papel de filtro sobre o embrião, combinando o longo eixo do anel com o longo eixo do embrião.</li>
	<li>Corte a gema ao redor do anel de filtro de papel com uma tesoura.</li>
	<li>Puxe o anel e o embrião fora a gema em uma direção oblíqua em direcção ao local onde a gema primeiro foi cortada.</li>
	<li>Lave os embriões em dois pratos de 100mm sequenciais com temperatura 1 x salina tamponada fosfato (PBS).</li>
	<li>Coloque um anel de papel de filtro em um prato de petri 35mm primeiro. Então coloque o lado dorsal do embrião para o papel de filtro já em 35mm placa de Petri.</li>
	<li>Coloque um anel de aço inoxidável em cima do sanduíche de papel de filtro. Tenha atenção para não danificar o embrião.</li>
	<li>Adicione 3 mL de CCM previamente preparado para cada placa de Petri.</li>
	<li>Remova a VM de cada embrião por desnatação levemente a agulha capilar puxada através da parte superior do embrião e descascando a VM afastado, a partir do final do anterior (mesmo por cima do posencéfalo) e prosseguir para a notocorda (figura 1A).</li>
	<li>Coloque oito pratos de Petri 35mm em um prato de 150 mm que foi forrado com toalhitas de tarefa delicada saturada de água (para manter a umidade).</li>
	<li>Lugar de Petri 150 mm em um saco plástico vedável Então enche o saco com uma mistura de gases composta de 95% O2 e 5% de CO2.</li>
	<li>Feche o saco e coloque-o em uma incubadora de 37,5 ° C.</li>
	<li>Incube os embriões para um adicional 27 h até HH15-HH16 (figura 1B).</li>
</ol>6. indução de tensão superficial
<ol><li>Remover os embriões da incubadora e usar um sistema de tomografia computadorizada (OCT) de coerência óptica para a imagem deles. Usar a OCT para determinar o ângulo de torção do tubo neural (NT) (Figura 2).</li>
	<li>Transferir os embriões para um microscópio de luz e visualizar a ampliação de 10x. Use uma pipeta de 200 microlitro incrementalmente 0,2 mL de mídia retirar o prato de petri.</li>
	<li>Com imagens de brightfield em cada intervalo para observar os efeitos da interface mídia-ar sobre o embrião.</li>
	<li>Remova a mídia até que a tensão de superfície do outro lado do embrião induz a torsão (Figura 1).</li>
	<li>Imagem do embrião, usando o sistema OCT mais uma vez para estabelecer um ângulo de torção final para comparação controlar os embriões.  Nota: As imagens de Bright-campo foram adquiridas usando um microscópio de dissecação. Um sistema de tomografia de coerência óptica com um microscópio anexado foi usado para adquirir pilhas imagem transversal dos embriões ao vivo. Imagens foram obtidas em um domínio de digitalização3 3 x 10 x 3 mm e, em seguida, processadas em um software de imagem. Por último, as modelo físico de imagens foram tiradas com uma single-lens reflex câmera digital.</li>
</ol>7. física modelagem das forças de tensão superficial/VM
<ol><li>Desenvolva uma geometria 3D simplificada que se assemelha a um embrião entre 17-HH14 em software de modelagem comercial (Figura 3A).</li>
	<li>Desenha o molde negativo da geometria 3D em softwares gráficos de computador 3D comercial.</li>
	<li>Uso uma impressora 3D carregada com 1,75 mm acrilonitrila butadieno estireno do filamento para 3D imprimir o molde desenhado, no formato stereolithographic. (STL).</li>
	<li>Para converter o molde, misturar componentes de elastômero de borracha de silicone A e B em partes iguais e despeje a mistura no molde prontamente; conjunto do molde de fundição para curar à temperatura ambiente por 12 h (Figura 3B).</li>
	<li>Marca o modelo físico do embrião ao longo do NT no lado dorsal Visualizar torsão.</li>
	<li>Use uma lamela para replicar a força aplicada para o modelo físico 3D que imita do VM ou tensão superficial (Figura 3D).</li>
	<li>Inserir uma série de fios rígidos de comprimento igual ao lado do modelo físico. Depois que a lamela exerce uma força externa sobre o modelo do cérebro, os fios tornam-se inclinado em um ângulo que depende da localização. Determine o ângulo de rotação por arctan do comprimento projetado sobre o comprimento original de cada fio (Figura 3E).</li>
</ol>8. alterando a direção do Loop coração
<ol><li>Siga as etapas em 3.1 e 3.2 para obter um tubo capilar puxado.</li>
	<li>Siga as etapas no 5.1 através de 5.10 para preparar o embrião.</li>
	<li>Use um par de pinças para virar o papel de filtro para que o embrião se torna ventral-lado para cima.</li>
	<li>Use o tubo capilar puxado para abrir uma fenda na membrana splanchnopleure (SPL).</li>
	<li>Use o tubo capilar para exercer uma força mecânica para empurrar o coração do lado direito para o lado esquerdo.</li>
	<li>Siga as etapas em 5.12 através de 5.15 para observar a mudança na torção.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores declaram não há conflitos de interesse.

Enquanto fenômenos físicos desempenham um papel integral na morfogênese26,,27,28,29,30, os mecanismos específicos de mecânicos, juntamente com a coordenação de mecânica e mecanismos moleculares, continuam em grande parte inexplorados. É conhecido que a flexão ventral e torção para a direita do cérebro primitivo são dois processos centrais que contribuem para o...

Biologia do desenvolvimento moderno investigação centra-se em grande parte sobre o desenvolvimento da compreensão do ponto de vista da genética molecular,1,2,3,4,5,6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13. é conhecido que fenômenos físicos desempenham um papel central na morfogênese, ou a geração de biológicas forma14,15,16,17; no entanto, os mecanismos mecânicos específicos de desenvolvimento permanecem em grande parte espontâneo. Flexão ventral e torção para a direita do tubo cérebro primitivo após Hamburger-Hamilton palco 11 (11 HH)18 são os dois principais processos que contribuem para a forma embrionária de mudança19,20. Em particular, o mecanismo físico subjacente ao desenvolvimento torcional no cérebro embrionário permanece insuficientemente compreendido.
A torsão embrionária no embrião do pintinho está entre os primeiros eventos morfogenéticas de assimetria de esquerda-direita (L-R) em desenvolvimento. Quando o processo de assimetria L-R é perturbado, defeitos de nascimento como situs inversus, isomerismoou heterotaxia ocorrerá21. Aqui nós apresentamos um protocolo que combina ex-ovo experimentos22,23 com modelagem física para caracterizar as forças mecânicas durante o início do desenvolvimento embrionário do cérebro. O objetivo do método apresentado é identificar as responsável pelo cérebro torção e os fatores que afetam o grau de torção durante o início do desenvolvimento12de forças mecânicas. Baseado na observação experimental de que a membrana vitelínico (VM) restringe o lado dorsal do embrião, formulamos a hipótese que a VM fornece a força necessária para induzir a torsão do cérebro em desenvolvimento. Portanto, neste método, retiramos a parte da VM que cobre a área do cérebro para descobrir os efeitos na torção do cérebro. Além disso, o método de aplicar a tensão de superfície líquido foi usado para confirmar o papel mecânico da VM e fornecer uma estimativa da força necessária para a torção do cérebro, que não tinha sido feita anteriormente. As forças de medição durante a morfogénese embrionária é uma tarefa desafiadora. Notavelmente, em um estudo pioneiro, Campàs e colegas de trabalho24 desenvolveu um novo método para quantificar as tensões celulares usando microdroplets injetado. No entanto, esse método foi limitado a medir forças a nível celular, portanto, não aplicável para sondar as forças ao nível de tecido ou organismo. O protocolo apresentado neste trabalho foi desenvolvido para preencher parcialmente essa lacuna.

<table><tbody><tr><td>Ovos de galinha Leghorn brancos específicos fertilizados livres de patógenos</td><td>Charles River</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de Tomografia Óptica Coerente</td><td>Thorlabs</td><td>GAN220C1</td><td></td></tr><tr><td>Elastômero de silicone</td><td>Smooth-On, Inc.</td><td>EcoFlex 00-50</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de dissecação</td><td>Leica</td><td>MZ8</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s Águia Modificada' s Medium (DMEM)</td><td>Lonza</td><td>12-604F</td><td></td></tr><tr><td>Antibióticos</td><td>Sigma</td><td>P4083</td><td></td></tr><tr><td>Soro de pintinho</td><td>Sigma</td><td>C5405</td><td></td></tr><tr><td>Extrator de micropipeta</td><td>Sutter</td><td>Instrument Modelo P-30</td><td></td></tr><tr><td>Papel de filtro</td><td>Whatman</td><td>5202-110</td><td></td></tr><tr><td>Solução salina tamponada com fosfato (PBS)</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>Comsol MultiPhysics</td><td>Software</td> de computação gráfica 3D Comsol <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Microscópio Rhino 5</td><td></td><td></td></tr><tr><td>anexado com OCT</td><td>Nikon&nbsp;</td><td>Câmera digital reflex de lente única FN1</td><td></td></tr><tr><td></td><td>EOS&nbsp;</td><td>T3i</td><td></td> rebelde</tr></tbody></table>

os papéis de forças físicas no início chick embrionárias morfogênese de sondagem

Probing the Roles of Physical Forces in Early Chick Embryonic Morphogenesis

Desenvolvimento embrionário é tradicionalmente estudado do ponto de vista da genética biomolecular, mas a importância fundamental da mecânica na morfogênese está se tornando cada vez mais reconhecida. Em particular, o tubo de coração e cérebro de garota embrionárias, que passam por drásticas mudanças morfológicas como elas se desenvolvem, estão entre os principais candidatos para estudar o papel das forças físicas na morfogênese. Progressiva de flexão ventral e torção para a direita do cérebro tubular embrionário garota acontecem no estágio mais adiantado de assimetria de esquerda-direita-nível de órgão no desenvolvimento embrionário de garota. A membrana vitelínico (VM) restringe o lado dorsal do embrião e tem sido implicada em fornecer a força necessária para induzir a torsão do cérebro em desenvolvimento. Aqui apresentamos uma combinação de novas experiências de ex-ovo e física de modelagem para identificar a mecânica da torsão do cérebro. Fase de Hamburger-Hamilton 11, os embriões são colhidos e culta ex ovo (nos meios de comunicação). O VM é subsequentemente removido usando um tubo capilar puxado. Controlando o nível do fluido e submetendo o embrião para uma interface líquido-ar, a tensão de superfície líquida dos meios de comunicação pode ser usada para substituir o papel mecânico da VM. Também realizaram-se experimentos de microcirurgia para alterar a posição do coração para encontrar a mudança resultante na quiralidade de torção do cérebro. Os resultados do presente protocolo ilustram as funções fundamentais da mecânica na condução morfogênese.

Neste estudo, a VM do embrião em HH11 foi removida da extremidade anterior para a flexão torácica. Os embriões foram fotografados por um sistema de OCT. Nesta fase, a torção do tubo do cérebro não foi iniciado (figura 1A). Após ser incubadas a HH15-16, embriões com sua VM removido exibiram cerebral reduzido tubo torsão, cerca de 35 graus (figura 1B) comparado comparadas o controle de embriões, que exibem a torsão de cerca de 90 g...

Aqui, apresentamos um protocolo introduzindo um conjunto de novas experiências de ex-ovo e abordagens de modelagem física para estudar a mecânica da morfogênese durante a torção de cérebro embrionário precoce garota.

Os papéis de forças físicas no início Chick embrionárias morfogênese de sondagem

Embryonic development is traditionally studied from the perspective of biomolecular genetics, but the fundamental importance of mechanics in morphogenesis ...

O objetivo geral deste protocolo experimental é estudar o papel das forças mecânicas no desenvolvimento inicial do cérebro embrionário por meio de experimentos ex ovo. Este método pode ajudar a responder a questões-chave na biologia do desenvolvimento e na biomecânica, como os papéis das pistas mecânicas na morfogênese, que é a geração da forma biológica. A principal vantagem dessa técnica é que ela permite a caracterização do papel das forças mecânicas na morfogênese no nível do tecido e do organismo.Para iniciar este procedimento, use lenços delicados com 70% de etanol para limpar os ovos de galinha White Leghorn fertilizados e livres de patógenos específicos. Em seguida, arrume os ovos em uma orientação longitudinal em um suporte. Depois disso, defina a incubadora de ovos a uma temperatura alvo de 37,5 graus Celsius e mantenha a umidade em 48 a 55%A umidade é controlada adicionando uma quantidade adequada de água à incubadora.Incubar os ovos por aproximadamente 40 a 44 horas até HH11 a 13. Depois, deixe os ovos esfriarem em temperatura ambiente por aproximadamente 15 a 30 minutos antes de limpar com etanol a 70%. Nesta etapa, quebre os ovos do fundo, separe a casca com cuidado e deposite cuidadosamente o conteúdo em uma placa de Petri de 150 por 15 milímetros.Para garantir que o lado do embrião esteja para cima, mantenha os ovos na mesma orientação em que foram incubados enquanto os quebra. Remova a albumina fina usando uma pipeta Pasteur descartável. Separe a albumina espessa da gema usando a pinça de ponta romba.Certifique-se de que a albumina espessa foi removida raspando levemente a parte superior da gema. Em seguida, usando uma pinça de ponta fina, coloque um anel de papel de filtro sobre o embrião e centralize-o, combinando o eixo longo do anel com o eixo longo do embrião. Em seguida, corte a gema ao redor do anel de papel de filtro com uma tesoura.Em seguida, puxe o anel e o embrião da gema em uma direção oblíqua em direção ao local onde a gema foi cortada pela primeira vez. Em seguida, enxágue o embrião em dois pratos sequenciais de 100 milímetros com PBS em temperatura ambiente. Em seguida, coloque um anel de papel de filtro em uma placa de Petri de 35 milímetros.Coloque o lado dorsal do embrião para cima no outro papel de filtro na placa de Petri de 35 milímetros. Depois disso, coloque um anel de aço inoxidável em cima do sanduíche de papel de filtro. Tome cuidado para não danificar o embrião.Agora, adicione três mililitros do CCM previamente preparado a cada placa de Petri. Remova a membrana vitelina de cada embrião deslizando levemente a agulha capilar puxada pela parte superior do embrião. Em seguida, retire a membrana vitelina, começando pela extremidade anterior e prosseguindo para a notocorda.Em seguida, coloque oito placas de Petri de 35 milímetros em uma placa de 150 milímetros forrada com lenços saturados de água para manter a umidade. Em seguida, coloque a placa de Petri de 150 milímetros em um saco plástico lacrado e encha o saco com uma mistura de gases composta por 95% de oxigênio e 5% de CO2. Feche o saco e coloque-o em uma incubadora de 37,5 graus Celsius.Agora, remova o embrião da incubadora e use um sistema OCT para obter imagens e determinar o ângulo de torção do tubo neural. Transfira os embriões para um microscópio óptico e visualize com ampliação de 10X. Use uma pipeta de 200 microlitros para remover incrementalmente 0,2 mililitros de mídia da placa de Petri.Tire imagens de campo claro após cada rodada de remoção de mídia para observar o efeito da interface mídia-ar no embrião. Continue removendo o meio até que a tensão superficial no embrião induza a torção. Fotografe o embrião usando o sistema OCT mais uma vez para estabelecer um ângulo de torção final para comparação com embriões de controle.Para alterar a direção da alça do coração, use uma pinça para virar o papel de filtro para que o embrião fique com o lado ventral para cima. Em seguida, use o tubo capilar puxado para abrir uma fenda na membrana esplâncnopleura e exercer uma força mecânica para empurrar o coração do lado direito para o lado esquerdo. Aplique a tensão superficial do fluido para manter o coração do lado esquerdo.Em seguida, incube o embrião por mais 20 horas para ver a mudança na quiralidade da torção. Aqui é mostrado um embrião colhido com VM removido em HH11. O mesmo embrião incubado por 27 horas após a remoção do VM mostrando torção reduzida.Aqui está o mesmo embrião que sofreu torção cerebral após a aplicação de tensão superficial do fluido, e aqui está o embrião de controle com torção cerebral normal em um estágio comparável. Ao tentar este procedimento, é importante ter cuidado para não danificar o embrião. Seguindo este procedimento, outros métodos, como a análise de elementos finitos, podem ser realizados para modelar computacionalmente como as forças físicas podem influenciar a morfologia.Portanto, esta técnica desenvolvida aqui abriu caminho para futuros estudos sobre a mecânica da morfogênese em embriões de galinhas. Depois de assistir a este vídeo, você deve entender como colher embriões de galinha para cultura in vitro, remover microcirurgicamente a membrana vitelina, recapitular a força fornecida pela membrana vitelina e monitorar a morfologia embrionária por meio de OCT e imagens de campo claro.

probing-roles-physical-forces-early-chick-embryonic

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Este vídeo demonstra de 2 cores montar toda hibridização in situ, um método pelo qual o padrão de expressão espacial e temporal de 2 genes diferentes podem ser visualizados em embriões de galinha jovens. Este método foi originalmente introduzido por David Wilkinson, Henrique Domingos, Phil e David Ingham Ish-Horowicz.

Monte Whole dupla hibridização in situ de embriões de galinha precoce

Este artigo descreve a rotulagem de superfície...

Rastreamento Deformações Tissue Morfogenéticas no embrião de galinha precoce

Ao enxertar grânulos embebidos em fatores de crescimento ou inibidores específicos de vias de sinalização em embriões em desenvolvimento, é possível testar diretamente seus efeitos in vivo. Neste protocolo, grânulos são enxertados no broto do membro para determinar os efeitos dessas moléculas na expressão gênica e na transdução de sinal.

Alongamento das Beads em Desenvolvimento de frango Limbs embrião para Identificar caminhos da transdução de sinal que afeta Gene Expression

Protocolos que usam barreiras impermeáveis para bloquear eventos de indução entre os tecidos do eixo e flanco do corpo principal no embrião de galinha necessários para a formação do membro são descritos. Grânulos embebidos em sinais indutivos candidatos são usados para superar o efeito da colocação da barreira e a análise da expressão gênica confirma isso.

Aplicação de barreiras impermeáveis ​​combinadas com Candidate Fator Beads Soaked para estudar sinais indutores do pintainho

A falta de ferramentas para medir propriedades materiais e parâmetros tensional na vivo impede Validando seus papéis durante o desenvolvimento. Utilizamos microscopia de força atômica (AFM) e acompanhamento de nanopartículas para quantificar as características mecânicas da célula de gema intacta zebrafish embrião durante epiboly. Esses métodos são confiáveis e amplamente aplicável, evitando intervenções intrusivas.

AFM e Microrheology na célula de embrião de Zebrafish gema

Apresentamos uma instalação da pinça óptica acoplada a um microscópio de folha de luz e a sua aplicação a sonda mecânica de células sem grânulos no embrião da drosófila .

Sondando a célula mecânica com pinça óptica de grânulo-livre no embrião da drosófila

Membros recombinantes são um poderoso modelo experimental que permite estudar o processo de diferenciação celular e a geração de padrões sob a influência de sinais embrionários. Este protocolo apresenta um método detalhado para a geração de membros recombinantes com células mesodérmicas de membros de frango, adaptáveis a outros tipos celulares obtidos de diferentes organismos.

Ensaio de membros recombinantes de frango para entender morfogênese, padronização e primeiros passos na diferenciação celular

O ensaio de contas encharcada envolve a entrega direcionada de reagente de teste em qualquer ponto de desenvolvimento para estudar a regulação da diferenciação celular e morfogênese. Um protocolo detalhado, aplicável a qualquer modelo animal experimental, para preparar três tipos diferentes de contas encharcadas e implantá-las no interdigit de um embrião de frango é apresentado.

Análise da diferenciação celular, morfogênese e padronização durante a embriogênese de frango usando o ensaio de contas encharcadas

Aqui, descrevemos protocolos para três tipos de culturas de explantes de pele embrionária aviária que podem ser usados para examinar interações teciduais, filme de lapso de tempo de imagem 4D (3D mais tempo), perturbação global ou local da função molecular e caracterização de biologia de sistemas.

Usando explantes de pele aviária para estudar padrões de tecidos e organogênese

Este protocolo foi desenvolvido para monitorar longitudinalmente as propriedades mecânicas do tecido da placa neural durante a neurulação embrionária de pintinhos. Baseia-se na integração de um microscópio Brillouin e um sistema de incubação no estágio, permitindo imagens mecânicas ao vivo do tecido da placa neural em embriões de pintinhos cultivados ex ovo .

Monitoramento da Evolução Mecânica do Tecido Durante o Fechamento do Tubo Neural de Embrião de Pintinhos

Explore a modelagem computacional de forças mecânicas na morfogênese cerebral embrionária de galinha usando experimentos ex-ovo. Este método permite caracterizar o papel das forças físicas no desenvolvimento neural.

Os papéis de forças físicas no início Chick embrionárias morfogênese de sondagem

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