Name: Incorporação de parafina e corte fino de biofilmes microbianos colônia para análise microscópica (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 52 s
Description: Aprenda a incorporar biofilmes microbianos em parafina e realizar cortes finos para análise microscópica de expressão gênica. Esta técnica preserva a morfologia nativa e permite visualização de alta resolução.

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Este trabalho foi apoiado pela NSF carreira prêmio 1553023 e prêmio NIH/NIAID R01AI103369.

1. crescimento de Pseudomonas aeruginosa biofilmes de colônia
<ol><li>Preparação de placas de médio-BICAMADA<ol>
<li>Preparar um triptona 10 g/L, o ágar de 10 g/L (veja a Tabela de materiais) solução em água desionizada.</li>
		<li>Autoclave de 20 min. esfriar até 50-60 ° C em banho-maria.</li>
		<li>Despeje a 45 mL da solução de ágar triptona em um prato quadrado 100 mm x 100 mm (ver Tabela de materiais) usando um tubo cónico de 50 mL. Permitir que o ágar solidificar (~ 20-30 min). Despeje uma camada em segundo lugar, 15 mL em cima da primeira camada. Deixe solidificar durante a noite, removendo a condensação de tampas se necessário esfregando com um pano livre de fiapos.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Mancha de biofilmes de colônia<ol>
<li>Marcam as cepas de interesse dos estoques do congelador para LB ágar placas13 e incubar no escuro para 12-16 h a 37 ° C e 80-100% de umidade relativa.</li>
		<li>Para cada estirpe ou replicar, use uma única colônia para inocular 2 mL de LB e incubar no escuro para 12-16 h a 37 ° C com agitação a 250 rpm.</li>
		<li>Subcultura por diluição 1: 100 em fresco LB e incubação no escuro para 2,5-3 h a 37 ° C com agitação a 250 rpm.</li>
		<li>Medir a densidade óptica usando um espectrofotômetro e ajustar com LB estéril para conseguir uma suspensão de células com uma OD500 nm de ~ 0,5.</li>
		<li>Dependendo da colônia desejada tamanho, Pipetar 2,5-10 µ l de suspensão de células em uma placa de médio-BICAMADA (preparada na etapa 1.1) e permitir que o local para secar por ~ 20 min. deixar a tampa petri aberta perto de chamas pode facilitar a secagem.</li>
		<li>Incube a ponto colônias em 25 ° C e 80-100% umidade relativa, no escuro por até 4 dias.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparação da solução de fixador
<ol><li>Prepare a solução de fixador no dia da colheita da amostra. Diluir o formol 37% (FA) em PBS 1x para uma concentração final de 4% FA. Cuidado: FA é volátil e tóxico. Utilize equipamento de protecção e trabalhar em uma coifa bem ventilada.</li>
	<li>Imediatamente antes do uso, dissolver cloridrato de L-lisina em 4% FA (preparado no passo 2.1) à temperatura ambiente a uma concentração final de 50 mM L-lisina HCl.</li>
</ol>3. direcionar a aplicação do fixador para o biofilme de Colônia [opcional]
Nota: Achamos que morfologia de biofilme é melhor preservada durante a gelose é adicionada antes da fixação. No entanto, esta etapa constitui também uma mudança nas condições ambientais que podem afetar a expressão do gene. Padrões de expressão repórter fluorescente, portanto, devem ser verificados usando um protocolo separado no qual é realizada a etapa de fixação antes da adição da gelose, conforme descrito aqui.
<ol><li>No dia da fixação e trabalhando em uma coifa ventilada, pipete o fixador preparado no passo 2, diretamente para a superfície de ágar em torno da borda da colônia, permitindo-lhe alcançar a periferia da colônia sem submergindo-lo. Aplicam-se somente como muito fixador como é necessário para totalmente cercam a colônia, aproximadamente 500 µ l. permitem que o fixador para a colônia e o ágar circundante se espalham.</li>
	<li>Uma vez que o fixador foi completamente absorvido pela colônia e mídia circundante, cerca de 20-30 min, e FA residual não é mais visível na placa, repita o passo 3.1. Permitir que este fixador para a colônia e o ágar circundante se espalham.</li>
	<li>Uma vez que o fixador foi completamente absorvido pela colônia e mídia circundante repita o passo 3.1, desta vez aplicando o fixador à superfície da colônia diretamente. Permitir que este fixador para a colônia e o ágar circundante se espalham, avançar para o passo 4 só afinal fixador tenha sido absorvido e não é mais visível na placa.</li>
</ol>4. sobreposição colônias com ágar
<ol><li>No dia da fixação, prepare um 10 g/L solução de ágar em água desionizada e autoclave para 10-20 minutos para dissolver. Resfriar em um banho de 50 ˚ c.</li>
	<li>Delicadamente, despeje 15 mL da solução de ágar sobre o meio de crescimento e colônia. Permitir que o agar para formar um gel à temperatura ambiente por 5 min (figura 1B).</li>
	<li>Use uma lâmina afiada para cortar um quadrado, 3 camadas de chuck com a colônia laminada entre as duas camadas superiores. Se preparar amostras múltiplas, certifique-se de que cada chuck corta-se um tamanho comparável.</li>
	<li>Suavemente retire o chuck colônia contendo agar em excesso.</li>
	<li>Para levantar as duas camadas superiores de ágar-ágar (contendo a colônia) longe da camada inferior do mandril (Figura 1), molhar a cabeça plana de uma espátula em 1X PBS ou água e introduza delicadamente entre as camadas superior e inferior. A colônia laminada deve separar a camada inferior. Tenha cuidado para não distorcer ou dobrar a colônia laminada quando levantá-lo de sua base.</li>
</ol>5. fixação
<ol><li>Trabalhando em uma boa ventilação exaustora, imediatamente transferir a colônia laminada (ou seja, 2-camada chuck) dentro de um estojo de encastre (ver Tabela de materiais), rotulado com uma caneta resistente a produtos químicos. Coloque a fita de incorporação em um mailer de slide de vidro (veja a tabela de materiais) contendo o fixador preparado em passos 2.1-2.2. Certifique-se que há nenhuma bolha de ar presa dentro da gaveta de encastre.</li>
	<li>Incube a amostra no fixador durante a noite, no escuro à temperatura ambiente.</li>
</ol>6. amostra processamento: Wash Buffer, desidratação, clareira e infiltração
<ol><li>Após a fixação durante a noite, lave a amostra duas vezes em PBS 1x por 1h cada. Para melhores resultados, automatizar a homogeneização de reagente usando o spin função de um processador automático de tecidos (ver tabela de materiais) definido para uma configuração baixa. Se o processador não está disponível, processamento pode ser executado manualmente.</li>
	<li>Siga a tampão de lavagem pela desidratação através de uma série graduada de diluições de etanol (EtOH) em PBS 1x (25%, 50%, 70%, 95%) por 1 hora em temperatura ambiente.</li>
	<li>Desidrata-se em três lavagens de 100% EtOH para 1 h à temperatura ambiente.</li>
	<li>Limpar a amostra desidratada em três lavagens de agente laranja clareira à base de óleo de 100% (ver tabela de materiais) para 1 h à temperatura ambiente.</li>
	<li>Infiltrar a amostra limpa duas vezes com parafina derretida de cera (ver Tabela de materiais), aquecido a 55˚C, de 2h cada.</li>
</ol>7. amostra incorporação
<ol><li>Encha um molde de cera com cera de parafina derretida, aquecida a 55 ˚ c. Use uma espátula aquecida, plana para transferir o chuck infiltrado da gaveta a incorporação em molde de cera, garantindo que o chuck repousa paralelo à base do molde. Evite aplicar pressão excessiva sobre o chuck. Moldes de cera podem ser 3D personalizado imprimido, ou estão comercialmente disponíveis (ver Tabela de materiais).</li>
	<li>Permitir que a cera solidificar durante a noite a 4 ˚ c. Amostras moldadas em cera sólida podem ser armazenadas indefinidamente no 4 ˚ c.</li>
	<li>Uma vez que a cera tem solidificado, excisar a amostra do molde e aparar a cera em excesso ao redor da amostra com uma lâmina de barbear. Deixe a cera em excesso, estendendo-se desde uma extremidade da amostra, paralela ao plano de corte, que pode ser usada para fixá-lo no micrótomo (ver Tabela de materiais). Também deixar uma bainha de cera, de aproximadamente 1 mm de espessura, em torno da amostra e suavizar seus rostos.</li>
</ol>8. corte
<ol><li>Aqueça a banho-maria a 42 ˚ c. Fixar a amostra no micrótomo com a superfície da colônia orientada perpendicularmente à borda da lâmina (ver Tabela de materiais).</li>
	<li>Corte a amostra em intervalos de 50 µm até o avião desejado da colônia foi alcançado, do qual serão recolhidas as seções.</li>
	<li>Corte uma fita do número desejado de 10 µm espessura seções usando um micrótomo definido como uma velocidade de corte de 75-80 rpm e um ângulo de 6-10. Use um pincel de ponta fina para retirar a fita da lâmina.</li>
	<li>Usando uma gota de água na ponta de uma pipeta Pasteur (preferida) ou fórceps, gentilmente transferi a faixa de opções para o banho de água. Tenha cuidado para evitar bolhas de ar captura sob a seção.</li>
	<li>Imediatamente inserir um slide para o banho de água e posicioná-lo abaixo da faixa de opções em um ângulo de 45º.</li>
	<li>Toca a borda estreita da faixa de opções para o slide, logo abaixo do rótulo fosco. A faixa de opções deve aderir.</li>
	<li>Puxe o slide sair do banho de água, ajustar o ângulo a ser perpendicular à superfície da água e permitindo que a faixa de opções deitado contra o deslizamento ao longo de seu comprimento. Evite prendendo o excesso de água abaixo da faixa de opções.</li>
	<li>Delicadamente se o slide em um tecido absorvente de fiapos, absorção de água em excesso da seção.</li>
	<li>Colocar o slide em uma toalha de papel e deixe-o secar à temperatura ambiente durante a noite, no escuro. Slides podem ser armazenados indefinidamente no 4 ˚ c no escuro.</li>
</ol>9. calor-fixação, reidratação e montagem
<ol><li>Aqueça uma chapa quente nivelada a 45 ˚ c. Calor do slide para 30-60 min. A cera se tornará semi-fundido e achatar contra o slide.</li>
	<li>Delicadamente Levante o slide da placa quente e colocá-lo horizontalmente sobre uma superfície lisa, nivelada, temperatura, usando cuidado para assegurar que a cera derretida não puxa para o outro lado do slide, até que a cera se solidifica (~ 1 min).</li>
	<li>Usando um mailer de slide de vidro, de cera slides em quatro lavagens de agente por 5 min cada, usando um aspirador de Büchner para remover a solução entre lavagens de limpeza.</li>
	<li>Lavar as lâminas três vezes em 100% EtOH por 1 min cada.</li>
	<li>Hidratar os slides em uma série graduada de etanol na ordem inversa de processamento (95%, 70%, 50% e 25%) por 1 min, que cada um seguido de duas lavagens 1-min em 1X PBS.</li>
	<li>Imediatamente, montar as seções em um meio de montagem de tampão Tris (ver Tabela de materiais) e uma lamela, evitando a introdução de bolhas de ar. Permitir que o meio de montagem polimerizar durante a noite em temperatura ambiente.</li>
	<li>Uma vez polimerizada, sele a lamela para o slide usando esmaltes claros. Selado de slides podem ser armazenados indefinidamente no escuro no 4 ˚ c.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Amostras de tecido parafina-incorporação e fino-corte é uma técnica histológica clássica que permite imagens de estruturas morfológicas-micro e é comumente usada em tecidos de eucariotas e aplicou-se com algum sucesso para amostras microbianas8 ,9. Enquanto cryoembedding permite forte retenção de sinal endógeno e imunofluorescência, incorporação de parafina é geralmente é preferível, pois proporciona melhor preservação da morfologia16. Em...

A maioria dos micróbios têm a capacidade de forma de biofilmes, comunidades de células realizaram em conjunto pelas matrizes de produção própria. Biofilmes podem ser cultivadas em muitos tipos de configurações físicas, com diferentes regimes de fornecimento de nutrientes e substrato. Ensaios específicos para a formação de biofilme tendem a produzir estruturas multicelulares reprodutíveis e arquiteturas comuns são observadas para espécies filogeneticamente diversos no nível macroscópico ou comunidade. Quando os micróbios são crescidos como colônias em meio sólido sob uma atmosfera, morfologia macroscópica transmite informações sobre a capacidade de produção de matriz e muitas vezes se correlaciona com outros traços 1,2,3. A arquitetura interna das colónias microbianas também pode fornecer pistas sobre biofilme específico química e fisiologia, mas tem sido difícil de caracterizar. Recentes aplicações de técnicas de cryoembedding e cryosectioning de colônias bacterianas permitiram imaging e visualização de características específicas na resolução sem precedentes 4,5,6. No entanto, estudos com tecido animal mostraram que parafina incorporação fornece superior preservação da morfologia quando comparado com o cryoembedding 7 e tem sido usado para visualizar as bactérias em tecidos 8,9. Portanto, nós desenvolvemos um protocolo para fixação, incorporação de parafina e corte fino de biofilmes microbianos de colônia. Aqui, iremos descrever a preparação de Pseudomonas aeruginosa PA14 colônia-biofilme seções finas 10,11, mas temos aplicado também com sucesso esta técnica de biofilmes formados pelas bactérias Pseudomonas synxantha, Bacillus subtilis, e Vibrio cholerae12.
O processo de incorporação de parafina e fino-corte biofilmes segue uma lógica simples. Primeiro, os biofilmes são encerradas em uma camada de ágar para preservar a morfologia durante o processamento. Em segundo lugar, os biofilmes envolto estão submersas no fixador a macromoléculas crosslink e preservar a micromorfologia. Estes são então desidratados com álcool, limpo com um solvente apolar mais e em seguida infiltradas com cera de parafina líquida. Uma vez que se infiltrou, as amostras são incorporadas em blocos de cera para corte. Seções são cortadas, montadas em lâminas e depois reidratadas para devolvê-los para um estado mais nativo. A partir deste ponto, podem ser manchadas ou cobertos de meio de montagem para análise microscópica.
Este protocolo produz seções finas de biofilmes microbianos apropriados para análise histológica. Subestruturas de biofilme colônia são visíveis quando seções finas preparadas usando este método são imaginadas por microscopia de luz. Biofilmes também podem ser cultivadas em manchas de fluorescente contendo mídia específica para recursos individuais ou manchados na etapa de reidratação, imediatamente antes da montagem (etapas 9.5-9,6). Finalmente, os micróbios podem ser projetados para produzir proteínas fluorescentes de maneira constitutiva ou regulamentado permitindo em situ relatórios de célula distribuição ou gene expressão dentro dessas comunidades. Usamos esses métodos para determinar a profundidade de biofilme de colônia, distribuição de célula, distribuição da matriz, os padrões de crescimento e expressão gênica spatiotemporal.

<table><tbody><tr><td>Pipeta Pasteur de 5 3/4"</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-6A</td><td>Comprada em biostores universitárias&nbsp;</td></tr><tr><td>Ágar&nbsp;</td><td>Teknova&nbsp;</td><td>A7777</td><td></td></tr><tr><td>Buchner Aspirador (Vácuo) Flask&nbsp;</td><td>Pyrex</td><td>5340</td><td>Comprado de biostores universitárias&nbsp;</td></tr><tr><td>Caneta de Marcação Resistente a Químicos</td><td>VWR</td><td>103051-182</td><td>Fabricante: Leica</td></tr><tr><td>Clear Fingernail Polish&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Indicador</td></tr><tr><td>de Grau Vermelho Congo</td> comprado na loja <td>VWR</td><td>AAAB24310-14</td><td>Fabricante: Alfa Aesar</td></tr><tr><td>Coomassie Blue&nbsp;</td><td>VWR</td><td>EM-3340</td><td>Fabricante: EMD Millipore</td></tr><tr><td>TRIS-buffered Mounting Medium (w/ DAPI)&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>50 247 04</td><td>Fabricante: Microscopia Eletrônica Ciências</td></tr><tr><td>Embedding Mold&nbsp;</td><td></td><td></td> Molde de Embutir <td>impresso em 3D</td></tr><tr><td>(comercial)&nbsp;</td><td>Ciências de Microscopia Eletrônica</td><td>70182</td><td></td></tr><tr><td>Etanol 200P</td><td>Decon Labs, Inc.&nbsp;</td><td>2701</td><td>Comprado em biostores universitárias&nbsp;</td></tr><tr><td>Pincel de ponta fina Compre</td><td></td><td></td><td>na loja, pincel de pintura</td></tr><tr><td>Lamínulas de Vidro 60x22mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-519-21C</td><td></td></tr><tr><td>Envelope de Reidratação de Vidro&nbsp;</td><td>Envelope Ted Pella</td><td>21043</td><td>20 slides&nbsp;</td></tr><tr><td>Histoclear-II, agente de limpeza à base de óleo laranja</td><td>Fisher Scientific</td><td>50 899 90150</td><td>Fabricante: National Diagnostics&nbsp;</td></tr><tr><td>Histosette, de Incorporação</td><td>Fisher Scientific</td><td>15 182 701A</td><td></td></tr><tr><td>Cloridrato de L-lisina&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP386 100</td><td></td></tr><tr><td>Lâminas de Micrótomo de Perfil Baixo</td><td>Fisher Scientific</td><td>22 210 048</td><td>Fabricante: Sturkey&nbsp;</td></tr><tr><td>Micropipeta&nbsp;</td><td>VWR</td><td>89080-004</td><td>Promo-pack</td></tr><tr><td>Micropipeta Tips&nbsp;</td><td>Ver secção de comentários</td><td>Ver secção de comentários</td><td>p10 (Fisher Scientific, 02 707 469), p200 (VWR, 89079-474), p1250 (VWR, 89079-486)</td></tr><tr><td>Micrótomo&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>905200U/00016050</td><td>Modelo: HM355S, Fabricante: Microm, NÃO-CATÁLOGO, Catálogo do Fornecedor # 905200U/00016050</td></tr><tr><td>Formaldeído, 37% Aquoso (Formalina)</td><td>Ricca Chemical</td><td>RSOF0010-500A</td><td></td></tr><tr><td>Paraplast Xtra (cera de parafina)</td><td>VWR</td><td>15159-486</td><td>Fabricante: McCormick Scientific&nbsp;</td></tr><tr><td>Placas de Petri Quadradas 100x100x15mm</td><td>Produtos Descartáveis de Laboratório&nbsp;</td><td>D210-16</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de potássio&nbsp;</td><td>EMD Chemicals&nbsp;</td><td>PX1405-1</td><td>Componente de solução salina tamponada com fosfato, preparado internamente</td></tr><tr><td>Fosfato de potássio</td><td>Fisher Scientific</td><td>P380-500</td><td>Componente de solução salina tamponada com fosfato, preparado internamente</td></tr><tr><td>Lâminas de barbear&nbsp;</td><td>VWR</td><td>55411-050</td><td>Comprado em biostores universitárias&nbsp;</td></tr><tr><td>Aquecedor de Slides&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC0865259</td><td>NÃO-CATÁLOGO, Catálogo do Fornecedor # 12857D</td></tr><tr><td>Cloreto de sódio&nbsp;</td><td>VWR</td><td>0241-1KG</td><td>Componente de solução salina tamponada com fosfato, preparado internamente</td></tr><tr><td>Fosfato de sódio&nbsp;</td><td>VWR</td><td>BDH9296.500</td><td>, Componente de solução salina tamponada com fosfato, preparado internamente</td></tr><tr><td>Lâminas de Histologia Suprafrost&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-544-2</td><td></td></tr><tr><td>Banho de Água para Flutuação de Tecidos&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC0815797</td><td>Fabricante: Ted Pella, Catálogo de Fornecedores # 28156-B</td></tr><tr><td>Processador Automático de Tecidos&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>813160U/Q#00009061</td><td>Modelo: STP120 Processador de Tecidos</td></tr><tr><td>Triptona&nbsp;</td><td>Teknova&nbsp;</td><td>T9012</td><td></td></tr><tr><td>Extrato de levedura</td><td>Teknova&nbsp;</td><td>Y9010</td><td></td></tr></tbody></table>

incorporação de parafina e corte fino de biofilmes microbianos colônia para análise microscópica

Paraffin Embedding and Thin Sectioning of Microbial Colony Biofilms for Microscopic Analysis

Corte através de incorporação de parafina é uma técnica amplamente estabelecida em sistemas eukaryotic. Aqui nós fornecemos um método para a fixação, incorporação e corte de biofilmes intactos colônia microbiana usando cera de parafina perfundida. Para adaptar esse método para uso em biofilmes de colônia, desenvolveu técnicas para a manutenção de cada amostra no seu substrato de crescimento e estratificação-lo com uma sobrecamada de agar e adicionado lisina para a solução de fixador. Essas otimizações melhoram a retenção de amostra e preservação de recursos recorrendo. Amostras preparadas desta maneira são passíveis de fino seccionamento e por microscopia de luz, fluorescência e transmissão de imagem. Nós aplicamos esta técnica a colônia de biofilmes de Pseudomonas aeruginosa Pseudomonas synxantha, Bacillus subtilise Vibrio cholerae. O elevado nível de detalhe visível nas amostras geradas por esse método, combinado com a estirpe de repórter engenharia ou a utilização de corantes específicos, pode fornecer insights emocionantes sobre a fisiologia e o desenvolvimento de comunidades microbianas.

Este método gera o biofilme-cortes finos onde características morfológicas distintas e zonas de expressão gênica podem ser fotografadas por DIC, microscopia de fluorescência e TEM. Enquanto DIC imagem usando um 40 X objetivo de imersão de óleo pode ser suficiente para mostrar algumas características morfológicas (Figura 2E), encontramos essa fluorescência microscopia de cepas é projectado para proteína constitutivamente expressa fluorescente fornece avançado ...

Descrevemos a fixação, incorporação de parafina e técnicas de corte finas para biofilmes microbianos de colônia. Em amostras preparadas, padrões de expressão de subestrutura e repórter de biofilme podem ser visualizados por microscopia.

Incorporação de parafina e corte fino de biofilmes microbianos colônia para análise microscópica

Sectioning via paraffin embedding is a broadly established technique in eukaryotic systems. Here we provide a method for the fixation, embedding, and ...

O objetivo geral deste procedimento é gerar seções de biofilme embebidas em parafina que podem ser usadas para avaliar a distribuição da expressão gênica conforme relatado pela produção de proteínas fluorescentes dentro de morfologias nativas intactas. Este método pode ajudar a responder questões-chave no estudo de comunidades microbianas, como a expressão de genes específicos na produção de substâncias exopoliméricas distribuídas no contexto da arquitetura de biofilme nativo. A principal vantagem desta técnica é que ela permite a análise da expressão gênica dentro da morfologia preservada das seções transversais do biofilme, ao mesmo tempo em que é passível de tratamentos a jusante, como coloração de características distintas e imagens de alta resolução, como microscopia confocal ou eletrônica.Depois de preparar a solução de ágar-triptona de acordo com o protocolo de texto, use um tubo cônico de 50 mililitros para despejar 45 mililitros da solução em um prato quadrado de 100 milímetros por 100 milímetros. Deixe o ágar-ágar solidificar por aproximadamente 20 a 30 minutos. Despeje uma segunda camada de 15 milímetros em cima da primeira camada, deixe solidificar durante a noite e, se

paraffin-embedding-thin-sectioning-microbial-colony-biofilms-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

Um método para a incorporação de colônias de leveduras permitindo o corte de microscopia óptica e eletrônica. Este protocolo permite a determinação da distribuição de células esporuladas e células pseudohyphal dentro colônias fornecendo uma nova ferramenta para a compreensão da organização de tipos de células dentro de uma comunidade de fungos.

Levedura Método Embedding Colony

O vídeo a seguir descreve como preservar a morfologia de um tecido com fixação de formalina e inclusão em parafina.

Preservação de tecido embebido em parafina fixada em formalina (FFPE): um método para estudar a morfologia do tecido

Fonte: Bucher, T., et. al., Metodologias para Estudo de Biofilmes de B. subtilis como Modelo para Caracterização de Inibidores de Biofilmes de Pequenas Moléculas. J. Vis. Exp.(2016)Este vídeo demonstra a preparação de colônias maduras de biofilme bacteriano para imagens de alta resolução. Ele cobre etapas de fixação, desidratação, montagem e revestimento metálico para preservar e visualizar a morfologia do biofilme.

Preparação de Colônias de Biofilmes Bacterianos para Análise Morfológica

Este vídeo descreve um método para cultivar e analisar qualitativamente biofilmes bacterianos em hifas fúngicas usando microscopia. Os biofilmes bacterianos freqüentemente se formam em superfícies fúngicas e envolvem vários processos de interação bactéria-fungo, como cooperação metabólica, competição ou predação.

Um método de preparação de amostras para visualizar bactérias formadoras de biofilme em hifas fúngicas

Este estudo apresenta o desenvolvimento de metodologias reprodutíveis para estudar inibidores de biofilme e seus efeitos sobre a multicelularidade de Bacillus subtilis.

Metodologias para o estudo<em&gt; B. subtilis</em&gt; Os biofilmes como um modelo para a caracterização de pequena molécula biofilme Inibidores

Este protocolo descreve um novo método para crescer e qualitativamente analisar biofilme bacteriano sobre hifas fúngicas por microscopia confocal e eletrônica.

Um novo método para a análise qualitativa Multi-escala de Bacteriana biofilmes em filamentosa fúngica Colonies Usando Confocal e Microscopia Eletrônica

Para visualizar e quantificar as características internas dos biofilmes candida albicans, preparamos amostras intactas fixas que são esclarecidas pela correspondência de índice simétrico. Em seguida, a microscopia de secção óptica pode ser usada para obter dados de imagem tridimensionais, embora a espessura total do biofilme.

Esclarecendo e Imagem Candida albicans Biofilmes

Aqui, fornecemos protocolos detalhados, robustos e complementares para realizar imagens de coloração e resolução subcelular de modelos de cultura celular tridimensional fixa que variam de 100 μm a vários milímetros, permitindo assim a visualização de sua morfologia, composição do tipo celular e interações.

Coloração e Imagem de Alta Resolução de Modelos Organoides e Esferoides Tridimensionais

Este protocolo visa fornecer procedimentos detalhados para coleta, fixação e manutenção de amostras de plantas micoheterotróficas, aplicando diferentes técnicas de microscopia, como microscopia eletrônica de varredura e transmissão, microscopia de luz, confocal e fluorescência para estudar a colonização fúngica em tecidos e sementes geridas com fungos micorrizais.

Técnicas de Microscopia para Interpretação da Colonização Fúngica em Tecidos de Plantas Micoheterotróficas e Germinação Simbiótica de Sementes

O ensaio de células formadoras de colônia (CFC) é um ensaio in vitro em que células progenitoras hematopoéticas formar colônias em meio semi-sólido. Uma combinação de morfologia da colônia, morfologia celular e citometria de fluxo são utilizados para avaliar a capacidade dos progenitores a proliferar e se diferenciar ao longo dos diferentes linhagens hematopoiéticas.

Formadoras de Colônias celular Assay (CFC) para células hematopoiéticas humanas

Aprenda a incorporar biofilmes microbianos em parafina e realizar cortes finos para análise microscópica de expressão gênica. Esta técnica preserva a morfologia nativa e permite visualização de alta resolução.

Incorporação de parafina e corte fino de biofilmes microbianos colônia para análise microscópica

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