Name: Hepatectomy parcial de Lobular: Um modelo cirúrgico para regeneração hepática morfológica (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-31T13:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 37 s
Description: Aprenda a técnica de hepatectomia parcial lobular em camundongos neonatos para estudar regeneração hepática morfológica. Este método minimamente invasivo permite investigar células-tronco hepáticas sem insultos químicos.

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Agradecemos Chu P. para a realização de H & E e histologia; e C. Wang e r. McCarty para debates úteis. Pesquisa foi apoiada através de financiamento da Virgínia e D. K. Ludwig fundos para pesquisa do câncer; Nacional coração, pulmão e Instituto de sangue (R01HL058770 e U01HL099999); e o Instituto de Califórnia a medicina regenerativa (RC1 00354) subvenções I.W. Y.R. foi apoiado pelo humano Frontier Science programa carreira desenvolvimento Award (CDA00017), Fundação alemã de pesquisa (RI 2787/1), o Instituto de células-tronco de Siebel e o Thomas e Stacey Siebel Foundation (GHBJI-1119368-104). JMT foi apoiado pelo NIH (T32GM007365), o Prêmio Nacional de serviço de pesquisa (1F30DK108561) e Paul e Daisy Soros Fellowship para Nova americanos.

Todos os animais foram realizados experimentos em estrita conformidade com as directrizes estabelecidas pela Associação de avaliação e acreditação do laboratório Animal conta internacional (AAALAC) e da Universidade de Stanford painel administrativo em animais de laboratório Cuidados (APLAC), (número de protocolo #10266) e nos Estados Unidos, ou o Europeu Animal Welfare Act, Directiva 2010/63/UE. O protocolo foi aprovado pelo Comité de ética de experimentos Animal do governo da Baviera, Alemanha e recebeu a permissão não: 55.2-1-54-2532-150-2015.
1. preparação animal
<ol><li>Prepare uma gaiola vazia com roupa de cama adequada sobre uma almofada de aquecimento.</li>
	<li>Antes de tocar os animais com luvas, esfrega da cama da mãe para as luvas.</li>
	<li>Remova todos os filhotes da sua mãe e coloque na gaiola vazia. Remover algumas das roupas de cama da mãe e colocá-lo na gaiola vazia com os filhotes.</li>
	<li>Coloca a mãe em uma gaiola separada, limpa e seca, longe do campo cirúrgico.</li>
	<li>Don luvas novas, limpo, estéril antes da preparação do campo cirúrgico.</li>
</ol>2. preparação do campo cirúrgico
<ol><li>Utilizando uma pipeta de 10 mL, adicione 10 mL de salina tamponada fosfato (PBS) para um prato de Petri de 10 cm.</li>
	<li>Pipete 2 mL da solução de antiséptica betadine ou equivalente na prato de Petri de 10cm.</li>
	<li>Coloque um escopo dissecação no campo cirúrgico. Ligue dissecando lâmpada de escopo e ajustar o nível de luz para conforto do cirurgião. Um filhote pode ser colocado no campo cirúrgico sob a lâmpada de escopo a dissecação. Luz adequada pode ser confirmada pela ausência de sombras na superfície ventral do filhote.</li>
	<li>Preparar a câmara de anestesia de isoflurano (ver Tabela de materiais) com um cone de nariz. A câmara deve ser limpa sem evidências de urina ou fezes. Coloque o cone de nariz e tubagem associada no âmbito dissecação no campo cirúrgico. Desvie o fluxo de oxigênio e isoflurano exclusivamente para o cone de nariz.</li>
	<li>Preparar uma área de recuperação pós-operatória com uma almofada de aquecimento, situado a aproximadamente 37 ° C. A recuperação pós-operatória deve consistir em 4 pedaços de gaze colocada em cima da almofada de aquecimento. Se possível, esfrega a gaze no fundamento, fezes e urina para conservar o perfume da mãe da mãe. Nota: É aconselhável usar uma lâmpada de calor, como isso torna difícil controlar a temperatura. Temperaturas elevadas resultará na morte de camundongos neonatais.</li>
	<li>Preparar e esterilizar todos os instrumentos cirúrgicos com uma autoclave. As ferramentas necessárias incluem: microdissecando tesouras, pinças microdissecando, gaze, pinça hemostática e qualquer sutura não absorvível de monofilamento de 6-0. Instrumentos cirúrgicos podem ser reesterilizados em com qualquer esterilizador de grânulo de vidro.</li>
</ol>3. parcial Hepatectomy Lobular
<ol><li>Anestesia o filhote, colocando-o no nariz cone em sua volta e suavemente a gravar seus pés e mãos no lugar. O filhote deve receber 5% de isoflurano em oxigênio.<ol>
<li>Permitir que o filhote se sentar por 5 min ou até devidamente anestesiado, que pode ser verificado por um teste do beliscão do dedo do pé.</li>
		<li>Injete 5 mg/kg de carprofeno por via subcutânea, antes da incisão. Nota: A cirurgia toda deveria ser não mais do que 30 min. resultados mais pobres podem ser observados em recém-nascidos que estão sob anestesia geral para mais de 30 min. Tome precauções para minimizar a duração da cirurgia através da preparação de campo minuciosa e umectação da pele antes da sutura para minimizar a sutura induzida pele lágrimas.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Limpe suavemente a parede abdominal posterior com uma pequena gaze molhada com betadine. Permitir que o betadine secar por 1 min.</li>
	<li>Faça uma incisão de esquerdo médio-clavicular 0,5 cm imediatamente abaixo da caixa torácica com o microdissecando tesoura e pinça. Delicadamente, separar a pele usando fórceps e efectue uma segunda incisão mais profunda na cavidade peritoneal (ver Figura 1, esquerda e centro)</li>
	<li>Aplica suavemente a pressão lateral de ambos os lados do abdome usando as costas, extremidades sem corte da tesoura e pinça microdissecando para forçar o ápice do lobo esquerdo fora da cavidade peritoneal. O ápice esquerdo do lobo esquerdo deve ser facilmente visualizado (Figura 1, direito).</li>
	<li>
Partir do ápice, amputar e pesar a quantidade de tecido a ser removido.
	<ol>
<li>Usando a tesoura de micro-dissecção, delicadamente ampute a quantidade desejada de tecido a partir do ápice do lobo esquerdo.</li>
		<li>Cheio o tecido amputado em um tubo de 1,5 mL de PBS. Pesar o tecido amputado usando uma balança analítica (ver Tabela de materiais). Nota: Coloque um pedaço de gaze ou papel sobre a balança e tare-lo. Depois, coloque o tecido amputado na gaze ou papel e medir sua massa.</li>
		<li>Corrigi a área amputada em 2% paraformaldeído na temperatura ambiente durante 1 h e lugar no ideal da temperatura de corte (OCT) composto sobre gelo seco para análise de biópsia. Analise seções congeladas por corte 7-10 µm as seções usando qualquer padrão criostato.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Usando um pedaço de laminado de gaze, delicadamente substitua o lobo esquerdo na cavidade peritoneal. Deixe a gaze na cavidade até o sangramento parar.</li>
	<li>Retire a gaze e molhar o local cirúrgico e a área circundante com gaze embebida com PBS.</li>
	<li>Feche o local cirúrgico com monofilamento de 6-0, suturas não absorvíveis com um corrido. O peritônio e a pele devem ser fechadas separadamente. Nota: Molhar suavemente a pele com gaze embebida com PBS pode minimizar as lágrimas de sutura induzida.</li>
	<li>Delicadamente mas completamente limpa o filhote com gaze embebida com PBS e garantir que não há restos de sangue ou betadine. Rolo da gaze embebida e esfregue suavemente sobre o sinal de ferida para limpar qualquer sangue ou betadine. Nota: Isto é especialmente importante como a mãe pode canibalizar os filhotes, se são limpos inadequadamente.</li>
	<li>Retire o filhote do cone do nariz e coloque-o sobre a área de recuperação que inclui a gaze exposta a fezes e urina da mãe. Uma vez que o filhote se recupera, substitua o filhote na gaiola vazia com roupa de cama da mãe. Nota: Não utilize uma lâmpada de calor. O uso de uma lâmpada de calor pode causar o neonato a superaquecer.</li>
	<li>Repita o procedimento para o número desejado de filhotes. Embora todos os filhotes podem ser usados, é geralmente aconselhável deixar alguns filhotes não operadas a ser substituído junto com os filhotes operados.</li>
	<li>Substitua todos os filhotes simultaneamente com roupa de cama da sua mãe na gaiola da mãe.</li>
</ol>4. recuperação e análise
<ol><li>
Acompanhar diariamente nos ratos.
	<ol>
<li>Verifique que a ferida permanece fechada e remova qualquer filhotes mortos, se houver.</li>
		<li>Se reabre a ferida, prepare a área local e recuperação cirúrgica como anteriormente descritas e repita as etapas 3.8 a 3.12.</li>
		<li>Injete 5 mg/kg de carpofen por via subcutânea de 24 e 48 h após o procedimento.</li>
		<li>Acompanhar os filhotes para 56 dias ou mais.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Eutanásia dos animais após a quantidade desejada de dias pós-operatórios por exposição de dióxido de carbono (CO2) e deslocamento cervical.<ol>
<li>Coloque os ratos na indução / câmara de eutanásia e ativar o CO2 até ratos param de respirar.</li>
		<li>Certifique-se de eutanásia por deslocamento cervical. Empurre para baixo no pescoço dorsal do mouse usando o fore-dedo e o polegar e usando a outra mão, puxe para baixo na cauda.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Remover o todo fígado em bloco e pesá-lo.
	<ol>
<li>Com cuidado, separe cada lóbulo e pesar separadamente. Nota: Remova o fígado por dissecção cuidadosa dos vasos diafragma e hepática e portal. Separe os lóbulos do outro por dissecar cuidadosamente cada lóbulo na sua fixação proximal.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Determine a extensão da regeneração, comparando a massa do lobo esquerdo amputado à massa do fígado inteiro. Um lobo esquerdo ileso é aproximadamente 30% do fígado inteiro.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores têm sem divulgações.

Lesão hepática aguda tem sido tradicionalmente estudado usando química (paracetamol, etanol, tetracloreto de carbono), ou modelos cirúrgicos (70% hepatectomy parcial). A resposta regenerativa após hepatectomy parcial 70% tem sido caracterizada a participação global hepatócito hipertrofia e várias rodadas de divisão celular4,5. Para parar a hemorragia, no entanto, este modelo é limitado, como os principais vasos devem ser ligados, deixando um ambiente anormal para...

A capacidade de regenerar um órgão, ou para restaurar a forma e função, foi pensada para ser principalmente perdido ao longo do tempo evolutivo. O potencial regenerativo do fígado dos mamíferos adulto após lesão aguda de química ou física foi encontrado para envolver a mobilização de todos os hepatócitos restantes, resultando em ondas de hipertrofia e algumas rodadas de divisão celular, resultando em um funcional, mas arquitetonicamente diferente órgão1,2,3,4,5. Recentemente, estudos começaram a caracterizar a resposta regenerativa dos órgãos de mamíferos neonatais a lesão na primeira semana de vida6,7,8. Estes estudos têm mostrado que, quando feridos durante o desenvolvimento neonatal, certos órgãos de mamíferos respondem com regeneração morfológica em vez de compensação crescimento ou fibrose7,8.
Estudos recentes demonstraram que a regeneração da estrutura global e a função ocorre durante o início período neonatal6,7,8. Lesão hepática estabelecidos protocolos envolvem lesão química ou administração de etanol9,10,11, paracetamol12,13,14,15 , tetracloreto de carbono16,17,18,19, 70% hepatectomy parcial4,20,21ou remoção da esquerda e lóbulos medianos. Administração química leva à morte de células do hepatócito, mas muitas vezes deixa o micro e macroestruturas intactas. Regeneração morfológica não pode prontamente ser estudada neste contexto, como a arquitetura hepática em geral não se extinguiu. A hepatectomy parcial 70% envolve a ligadura da sutura dos vasos grandes, que é necessária para parar o sangramento, mas deixa um ambiente não-fisiológica com interrupção permanente da vasculatura. Além disso, esse método só tem sido utilizado em roedores adultos, e sua aplicação para neonatos tecnicamente é extremamente difícil. Com isto em mente, desenvolvemos um método em que 20-30% do ápice do lobo esquerdo é removido em um recém-nascido mouse P0 (figura 1A-1B). Este método é cirurgicamente conservador, minimamente invasivo, não tecnicamente desafiador e leva à perda da morfologia sem a ligadura da vasculatura, deixando espaço para a regeneração ocorra de efectivação. O protocolo resultante do passo a passo, descrito abaixo, permite a qualquer pesquisador realizar uma hepatectomy parcial lobular em ratos neonatais para estudar mamíferos regeneração neonatal nas fases iniciais de vida pós-natal. Esse método também tem aplicações claras para estudos comparativos em medicina regenerativa e biologia de células-tronco, como ele pode ser usado no fígado durante as fases posteriores da vida.
Os estudos mais comuns de lesão hepática aguda são quimicamente induzida dano, amputação de fígado adulta ou hepatectomy parcial de 70%. Dano químico muitas vezes envolve a administração intravenosa, intraperitoneal ou oral de paracetamol, tetracloreto de carbono ou etanol e é um modelo de lesão relativamente fácil e não-invasiva. Como já discutido, resultados de dano químico na morte de celular do hepatócito, mas muitas vezes folhas estroma e parênquima estruturas intactas, tornando-se difícil fazer afirmações sobre regeneração morfológica. Dano químico muitas vezes gira em torno dos vasos hepáticos, tornando-se uma técnica útil para estudar o local e a lesão de células específicas, mas também dificulta a interrogar, no nível do órgão inteiro, outras populações que pode situar-se longe dos navios e que podem contribui para a regeneração. Apesar dessas limitações, dano químico continua a ser um modelo de lesão altamente fisiologicamente relevantes e úteis.
Adulto hepatectomy parcial de 70% envolve a remoção dos lobos esquerdos e medianos após ligadura da vascularização hepática. A resposta a hepatectomy tem sido bem caracterizada: o fígado amputado 14 dias pós 70% hepatectomy parcial desenvolve uma arquitetura grosseiramente diferente do lobo original intacto, como os hepatócitos dos lobos direito e caudados restantes submeter-se hipertrofia e algumas rodadas de divisão celular4,5. Isto torna-se massa perdida e função, mas falha regenerar os dois lobos amputados e, portanto, não substitui a morfologia bruta. Como resultado, a resposta da lesão a hepatectomy parcial 70% é útil para estudar os mecanismos de crescimento compensatório com regeneração limitada.
Aqui, descrevemos totalmente um protocolo para um hepatectomy lobular parcial neonatal. O procedimento envolve a seleção apropriada de animais e preparação, preparação do campo cirúrgico, cirurgia e recuperação. Otimização e adaptação de cada uma dessas etapas podem ser necessárias para diferentes aplicações do protocolo.
Temos amplamente realizada e otimizado este protocolo sobre filhotes de C57BL/6J de tipo selvagem (JAX 000664), no entanto, para estudar populações de células diferentes e mecanismos de regeneração, também usamos vários animais transgénicos, incluindo ratos, abrigando diversos Cre e CreERT2 transgenes e/ou bater-ins (JAXAxin2CreERT2 018867, e Sox9CreERT2 JAX 018829) em combinação com repórteres fluorescentes, tais como sistemas de arco-íris e mTmG (R26VT2/GK3, R26 mT/mG) 22 , 23. não encontramos nenhuma necessidade de mudar esta metodologia para as estirpes de mouse diferente, como não nos resultados de sobrevivência ou potencial regenerativo foram observadas diferenças.
Além de usar diferentes estirpes animais, realizamos também parcial hepatectomies lobular em neonatais ratos tratados com pequenas moléculas, tais como 4-hidroxi-tamoxifeno e 5-ethynyl-2-desoxiuridina (EdU). Dimetilsulfóxido (DMSO) e etanol foram usados como solventes, como verificou que o óleo de milho era uma importante causa de morbidade. Caso contrário encontramos que a administração intraperitoneal de pequenas moléculas não afetou sobrevivência ou resultados regenerativos. Podemos prever que o presente protocolo será adaptado para uso com outras moléculas pequenas para interrogar os vários aspectos da regeneração.
Cirurgias de rato neonatal podem ser tecnicamente desafiadoras e podem exigir conhecimentos especiais na manipulação de animais e de dissecação microscópica. Experiência de criação de animais é necessária para evitar o canibalismo materno após a cirurgia e durante o período de recuperação imediata.

<table><tbody><tr><td>Animais</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mãe com ninhada de filhotes recém-nascidos do dia 0 (qualquer cepa)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mãe de aluguel e ninhada de aluguel (opcional)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número de catálogo</td><td>Comentários</td></tr><tr><td>Reagentes padrão</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Soro tamponada com fosfato (PBS)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Providina-iodo ou solução</td><td></td><td></td><td></td> anti-séptica equivalente</tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número de catálogo</td><td>Comentários</ forte></td></tr><tr><td><forte>Equipamento Cirúrgico</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscópio de dissecação</td><td>Zeiss</td><td>ZEMSDV4L MFR # 435421-9901-000</td><td></td></tr><tr><td>Micro tesoura reta da mola de 3mm</td><td>Vannas</td><td>72932-01</td><td></td></tr><tr><td>fórceps 5SF</td><td>Dumont</td><td>11252-00</td><td></td></tr><tr><td>fórceps reta de Kelly</td><td>Grainger</td><td>17-050G</td><td></td></tr><tr><td>Almofada de aquecimento</td><td>Sunbeam</td><td>000771-810-000</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Abbott Labs</td><td>0044-5260-05</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de anestesia para roedores</td><td>Kent Scientific</td><td>1205S</td><td></td></tr><tr><td>Gaze, 10.16 x 10.16cm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-761-52</td><td></td></tr><tr><td>Nome</td><td>Empresa</td><td>Número do catálogo</td><td>Comentários</td></tr><tr><td>Equipamento padrão</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>tubo de microcentrífuga de 1,5ml</td><td>Suturas</td> monocryl <td>Eppendorf 22363204</td><td></td></tr><tr><td>6-0</td> Placa de Petri <td>Ethicon</td><td>MCP489G</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher Scientific</td><td>S35839</td><td></td></tr><tr><td>Pipet-Aid, Simples, 110V</td><td>Drummond</td><td>4-000-110</td><td></td></tr><tr><td>Balanças Analíticas NewClassic ME da Mettler Toledo</td><td>Fisher Scientific</td><td>01-912-402</td><td></td></tr><tr><td>Câmara de Indução de Baixo Custo</td><td>Kent Scientific</td><td>SOMNO-0730</td><td></td></tr></tbody></table>

hepatectomy parcial de lobular: um modelo cirúrgico para regeneração hepática morfológica

Partial Lobular Hepatectomy: A Surgical Model for Morphologic Liver Regeneration

Regeneração morfológica do órgão após perda de tecido aguda é comum entre vertebrados inferiores, mas é raramente observada em mamíferos vida pós-natal. Regeneração hepática adulta após hepatectomy parcial 70% resulta em hipertrofia do hepatócito com alguns replicação em lóbulos remanescentes com a restauração da atividade metabólica, mas com perda permanente de lóbulo ferido morfologia e arquitetura. Aqui, detalhamos um novo método cirúrgico no recém-nascido que deixa um ambiente fisiológico conducente à regeneração. Este modelo envolve a amputação do ápice do lobo esquerdo e um regime de tratamento conservador subsequentes e não possui a necessidade de ligadura dos vasos sanguíneos do fígado ou lesão química, deixando um ambiente fisiológico onde regeneração pode ocorrer. Estendemos este protocolo para amputações no juvenis ratos (P7-14), durante o qual o fígado lesionado transita de regeneração do órgão para crescimento compensatório por hipertrofia. O protocolo apresentado, breve 30 min fornece uma estrutura para estudar os mecanismos de regeneração, seu declínio idade-associadas em mamíferos e a caracterização dos putativo hepático tronco ou progenitoras.

Figura 1A detalha um cronograma geral da hepatectomy lobular parcial neonatal (esquemática na figura 1B) e a duração prevista do tempo de espera até a regeneração é observada. Regeneração sutil do lobo esquerdo pode ser observada 7-14 dias pós-cirurgia. Regeneração total observou-se muitas vezes após 56 dias pós cirurgia. Os ratos devem não mostra sinais de anormalidade fisiológica após a cirurgia.
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Aqui, apresentamos um novo método para ressecção parcial do lobo esquerdo hepático em camundongos neonatais (dia 0). Este novo protocolo é apropriado para estudar a resposta de lesão no cenário neonatal e lesão hepática aguda.

Hepatectomy parcial de Lobular: Um modelo cirúrgico para regeneração hepática morfológica

Morphological organ regeneration following acute tissue loss is common among lower vertebrates, but is rarely observed in mammalian postnatal life. Adult ...

O objetivo geral deste procedimento cirúrgico é induzir a regeneração morfológica do fígado por meio de hepatectomia lobular parcial. Este método pode responder a questões-chave nos campos da biologia de células-tronco e medicina regenerativa sobre regeneração morfológica do fígado e células-tronco específicas do fígado. As principais vantagens dessa técnica são que ela é minimamente invasiva e não requer insultos químicos ou cauterização.Antes de tocar nos animais, esfregue a roupa de cama da gaiola da mãe nas luvas. Em seguida, transfira todos os filhotes e algumas roupas de cama da gaiola da mãe para uma gaiola vazia em cima de uma almofada de aquecimento. Em seguida, coloque um filhote sob um microscópio de dissecação.Depois de confirmar o nível adequado de sedação por falta de resposta ao beliscão do dedo do pé, use uma pequena gaze para desinfetar a parede abdominal posterior do animal com betadine. Use uma tesoura de microdissecação e uma pinça para fazer uma incisão de meio centímetro hemiclavicular esquerdo imediatamente abaixo da caixa torácica. Use a pinça para separar suavemente a pele.Em seguida, faça uma segunda incisão mais profunda na cavidade peritoneal e use a borda romba posterior da tesoura de microdissecação e fórceps para aplicar uma leve pressão lateral em ambos os lados do abdômen, forçando o ápice do lobo esquerdo para fora da cavidade peritoneal. Quando o ápice esquerdo do lobo esquerdo estiver visível, ampute a quantidade experimental apropriada de tecido do lobo e coloque o tecido em um tubo de 1,5 mililitro de PBS no gelo. Usando um pedaço de gaze enrolado, retorne suavemente o lobo esquerdo para a cavidade peritoneal.Remova a gaze quando o sangramento parar e molhe o local da cirurgia e a área circundante com gaze embebida em PBS. Feche o local da cirurgia com suturas e um ponto corrido. Em seguida, role suavemente, mas completamente, uma gaze embebida em PBS sobre o filhote e o local da ferida, garantindo que não haja restos de sangue ou betadina.Permita que o filhote se recupere perto de compressas de gaze expostas às fezes e urina da mãe. Quando todos os filhotes tiverem sido hepatectomiados, devolva todos os animais e roupas de cama para a gaiola da mãe. Depois de pesar os lóbulos, fixe as amostras de tecido em paraformaldeído a 2% por uma hora em temperatura ambiente.No final da fixação, transfira os tecidos para moldes de congelamento individuais contendo o meio de temperatura de corte ideal para congelamento em gelo seco. E adquira seções de 7 a 10 micrômetros de cada lóbulo usando qualquer criostato padrão. Verifique os filhotes diariamente por pelo menos 56 dias para confirmar que suas feridas permanecem fechadas e injete analgesia 24 e 48 horas após a cirurgia.No ponto final experimental apropriado, colha e pese o fígado de cada filhote em bloco. Em seguida, separe cuidadosamente cada lobo individual em sua inserção proximal e compare a massa do lobo esquerdo amputado com a massa de todo o fígado para determinar a extensão da regeneração em cada lobo. A regeneração sutil do lobo esquerdo pode ser observada 7 a 14 dias após a cirurgia e a regeneração completa é frequentemente observada após 56 dias.Sem diferença significativa nas áreas de hepatócitos no fígado regenerado revelada pela análise histológica. Além disso, injeções de camundongos neonatais com EdU indicam um aumento significativo no número de células em proliferação no lobo esquerdo em regeneração lesionado em comparação com controles não lesionados, sugerindo que a proliferação celular contribui para a regeneração do lobo esquerdo em neonatos. A hepatectomia em camundongos juvenis pós-natal no dia 14 resulta em uma diminuição da regeneração no lobo esquerdo com uma compensação aumentada dos lobos não lesionados.Indicando que, em 14 dias, a resposta da lesão à ressecção aguda muda da regeneração específica do lobo para a compensação global. Uma vez dominada, essa técnica pode ser concluída em 15 minutos se executada corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante ter o máximo de cuidado possível para não causar estresse extra à mãe ou aos filhotes.Após este procedimento, outros métodos, como hepatecomias seriadas ou lesões hepáticas crônicas, podem ser feitos para avaliar melhor o potencial regenerativo do fígado. Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para pesquisadores no campo da biologia de células-tronco explorarem a regeneração hepática em camundongos neonatais. Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como completar uma amputação controlada específica do lobo do fígado de camundongo neonatal.Não se esqueça de que trabalhar com isoflurano é extremamente perigoso e precauções como máscara facial e luvas devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.

partial-lobular-hepatectomy-surgical-model-for-morphologic-liver

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Uma alta incidência de recorrência tumoral após ressecção de metástases hepáticas continua sendo um problema não resolvido. O modelo de camundongo ilustrado pode ser útil para investigar as razões de tais recorrências. Ele combina um modelo de ressecção hepática com injeção intra-hepática de células tumorais pela primeira vez.

A Influência do fígado ressecção no crescimento do tumor intra-hepática

Indução rápida hipertrofia hepática usando associando partição do fígado e ligadura da veia porta para um hepatectomy encenada (ALPPS) tem sido proposto para ressecção de tumores no fígado ressecável no limite. Este modelo pode elucidar os mecanismos envolvidos na hipertrofia rápida e permite testes de drogas que promovem ou bloqueiam a aceleração da regeneração.

Modelo do rato da partição fígado associando e ligadura da veia porta para procedimento encenado Hepatectomy (ALPPS)

Descrevemos um protocolo para a realização de hepatectomy parcial (PHx) e transplante de células através do baço em NOD. SCID (ASSENTIMENTO. CB17-Prkdcscid/J) ratos. Neste protocolo, uma incisão é feita para expor e fazer a ressecção do lobo esquerdo do fígado seguido por outra incisão para o transplante intrasplenic de células.

Intrasplenic transplante de hepatócitos após Hepatectomy parcial na NOD. Ratos SCID

Estabelecemos uma nova técnica cirúrgica para um modelo de perfusão na vivo único lóbulo hepático em ratos como um pré-requisito para estudar mais na vivo parcial fígado engenharia no futuro.

Uma nova técnica cirúrgica como fundamento na Vivo parcial engenharia fígado de rato

Este protocolo descreve o procedimento para remover o lobo ventral do fígado em zebrafish adulto para permitir o estudo da regeneração hepática.

Hepatectomia Parcial em Zebrafish Adulto

Hepatócitos carregados de lipídios são inerentes à regeneração hepática, mas geralmente são perdidos após a centrifugação do gradiente de densidade. Aqui, apresentamos um protocolo de isolamento celular otimizado que retém hepatócitos esteatóticos, produzindo populações representativas de hepatócitos regeneradores após hepatectomia parcial em camundongos.

Isolamento de Hepatócitos Regeneradores após Hepatectomia Parcial em Camundongos

Inúmeros estudos têm demonstrado as vantagens da ressecção anatômica. No entanto, se a ressecção anatômica pode aumentar as taxas de ressecção R0 permanece controverso. Consequentemente, o presente estudo descreve um procedimento inovador envolvendo o conceito em bloco combinado com ressecção anatômica em hepatectomia laparoscópica, que pode reduzir a recorrência pós-operatória e metástases.

Aplicação do Conceito em Bloco Combinado com Ressecção Anatômica em Hepatectomia Laparoscópica

A associação da partição hepática e da ligadura da veia porta para hepatectomia estadiada (ALPPS) demonstrou resultar em regeneração hepática notável após várias semanas após a cirurgia de primeiro estágio. Modelos animais submetidos a ALPPS foram desenvolvidos para explorar a capacidade potencial de regeneração hepática e alcançar resultados clínicos favoráveis.

Um modelo de camundongo da partição hepática associada e ligadura da veia porta para procedimento de hepatectomia encenada auxiliado por microscopia

Organoides gerados a partir de tumores de pacientes são injetados ortotopicamente no fígado de camundongos. A ressecção do tecido hepático não tumoral leva a um ambiente regenerativo no tecido hepático onde o tumor está localizado.

Um modelo de xenoenxerto organoide derivado de paciente com câncer hepatocelular para investigar o impacto da regeneração hepática no crescimento do tumor

O modelo de camundongo de hepatectomia parcial 2/3 (66%) é bem descrito na literatura, mas hepatectomias mais extensas mimetizando a síndrome do pequeno para o tamanho após o transplante de fígado raramente foram usadas. Descrevemos um procedimento de hepatectomia estendida de 78% em um modelo de camundongo que resulta em aproximadamente 50% de letalidade pós-operatória em camundongos saudáveis.

Hepatectomia estendida de 78% em modelo cirúrgico de camundongo

Aprenda a técnica de hepatectomia parcial lobular em camundongos neonatos para estudar regeneração hepática morfológica. Este método minimamente invasivo permite investigar células-tronco hepáticas sem insultos químicos.

Hepatectomy parcial de Lobular: Um modelo cirúrgico para regeneração hepática morfológica

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