Name: Adaptação 3 rápida amplificação do CDNA termina para mapear transcritos em câncer (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-28T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Aprenda a técnica 3' RACE para mapear transcritos de mRNA em linhas celulares de câncer usando primers nested específicos e PCR. Este método identifica ORF, códon de parada e região 3' UTR.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nós gostaríamos de reconhecer Bettine Gibbs para sua ajuda técnica.

Vestir um jaleco, luvas e óculos de segurança em todos os momentos durante a execução de todos os procedimentos no presente protocolo. Certifique-se que recipientes/tubos contendo o reagente de isotiocianato de fenol e guanidina só são abertos em um capuz certificada e descarte de resíduos de fenol em um recipiente designado. Use os reagentes, dicas e tubos estéreis DNAse/RNAse-livre.
1. cultura de pilha
<ol><li>Crescer a linhagem de células HeLa e dois suspensão manto linfoma célula linhas celulares, Granta-519 e Jeko-1, em DMEM contendo 10% FBS e 100 U/mL de penicilina/estreptomicina em uma incubadora umidificada com 5% CO2 a 37 ° C. Diluir as células 01:10... e contar usando um contador de partículas14.</li>
	<li>Para a extração de RNA, placa 500.000 células/poço em um prato bem 6 (mídia de 2 mL por alvéolo). Após incubação de 24h, colete o RNA das células.</li>
</ol>2. extração do RNA
<ol><li>Colheita de células Nota: Com exceção da etapa de centrifugação, execute todas as etapas listadas em um capuz de cultura de tecidos para manter a esterilidade.<ol>
<li>Para células de suspensão (Jeko-1 e Granta-519):<ol>
<li>Transfira as células (juntamente com 2 mL de mídia) para um tubo de 15 mL e centrifugar a 1.725 x g, durante 5 min. Aspire a mídia e deixar o centrifugado no fundo do tubo.</li>
			<li>Ressuspender as células em 50 µ l de 1 x salino de tampão fosfato (PBS). Adicione 500 µ l de reagente de isotiocianato de fenol e guanidina monofásico para cada amostra no tubo de microcentrifuga de 1,5 mL. Misture bem e deixe em temperatura ambiente (RT) por 5 min enquanto inversão do tubo microcentrifuga cada 1 min.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Para células aderentes (HeLa):<ol>
<li>Aspire o meio de cultura celular de cada poço. Adicione 1 mL de PBS a cada poço para lavar fora os detritos.</li>
			<li>Remova a PBS e adicione 500 µ l de reagente de isotiocianato de fenol e guanidina monofásico para cada poço.</li>
			<li>Incube a RT por 5 min com balanço suave. Transfira para um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Lise celular<ol>
<li>Congele a mistura de célula isotiocianato fenol e guanidina a-20 º C por 1h. Nota: A mistura pode ser deixada a-20 ° C durante a noite ou até que seja necessário.</li>
		<li>Descongele o fenol e guanidina isotiocianato mistura de células no gelo. Adicione 100 µ l de clorofórmio para o tubo de microcentrifugadora em uma capa PCR. Vórtice a amostra para 10-15 s até que a mistura é opaco e cor de rosa. Incube a amostra no gelo (a 4 ° C) por 15 min.</li>
		<li>Centrifugar a amostra por 15 min a 20.800 x g e 4 ° C. Remova cuidadosamente a fase aquosa incolor superior (~ 200 µ l) e a transferência para um novo tubo de microcentrifuga de 1,5 mL.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Precipitação do RNA<ol>
<li>Adicione um volume igual de isopropanol para cada amostra. Adicione 1 µ l de coprecipitant (consulte a Tabela de materiais) para cada amostra para agir como um portador para o RNA e ajudar a visualizar o RNA em etapas subsequentes. Incube a amostra a-80 ° C durante pelo menos 4 h. Para melhores resultados, incubar durante uma noite a-80 ° C.</li>
		<li>Transferi a amostra para uma centrífuga de refrigeração. Centrífuga para 35 min a 20.800 x g / 4 ° C; o RNA aparecerá como uma mancha azul na parte inferior do tubo. Remova cuidadosamente o isopropanol da amostra. Adicionar 500 µ l de etanol 80% e resuspenda o pellet vortexing brevemente por 3 s.</li>
		<li>Centrifugue a amostra a 20.800 x g em RT 5 min. Retire todo o etanol da amostra. Deixe a amostra secar ao ar por cerca de 10 min. Ressuspender a amostra em 35 µ l de água livre de RNAse. Coloque em um bloco de calor (65 ° C) por 5 min garantir que o RNA é totalmente em solução e imediatamente colocar o tubo no gelo.</li>
		<li>Determine a concentração de RNA total usando um spectrophotometer conforme descrito anteriormente, exceto o uso de 1,5 µ l da amostra do RNA em vez de 1 µ l15. Opcionalmente, execute 1 µ g de RNA total em um gel de agarose a 1% para determinar a integridade do RNA.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. DNase tratamento
<ol><li>Após a quantificação do RNA, realizar o tratamento de DNAse sobre o RNA total de degradar qualquer DNA genômico. Para cada amostra, adicione os seguintes reagentes do kit de DNAse RNAse-livre para fazer uma reação de total de 20 µ l misture em um tubo de microcentrifugadora separada:<ol>
<li>Misture 2 µ l de DNase 10 X amortecedor da reação com 4,4 µ g de RNA total. Trazer para um total de 14 µ l com água.</li>
		<li>Adicione 2 µ l de RNase-livres DNAse. Incube a 37 ° C por 30 min na presença de 2 µ l de inibidor de RNase (do Kit de transcrição reversa).</li>
		<li>Adicione 2 µ l da solução de paragem e calor em um bloco de calor por 10 min a 70 ° C para inativar a enzima DNAse. Nota: O tratamento de DNAse é opcional.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. síntese de cDNA
Para um volume final de reação de 50 µ l:
<ol><li>Para um volume final de reação de 50 µ l: transferência 22 µ l do DNase tratados RNA para um novo tubo ou transferência 4 µ g de RNA total com água adicionada a um volume total de 22 µ l para um novo tubo. Adicione 2 µ l da T7 oligo dT25 primeira demão da solução de primer 10 µM. A sequência para o primer de25 T7 oligo dT é 5'-GCCGGTAATACGACTCACTATAGTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTTT-3'.</li>
	<li>O kit de transcrição reversa adicione 2 µ l do inibidor de RNase (20 U / µ l), 8 µ l de tampão de reação a 5x, 4 µ l de dNTPs 10 mM e 2 µ l da transcriptase reversa (200 U / µ l). Nota: Configure uma reação sem transcriptase reversa para atuar como um controle negativo.</li>
	<li>Incube a 42 ° C por 1 h. transferência diretamente para o gelo. Aqueça o tubo a 75 ° C por 5 min e colocar o tubo no gelo.</li>
</ol>5. primer busca de transcrição do Gene de fusão
<ol><li>
Projeto da primeira demão
	<ol>
<li>Baixar a sequência do cDNA do navegador genoma Ensemble (ENST00000360839.6/NM_017747) e identificar uma região dentro a ORF da transcrição alvo (ANKHD1) montante do códon de parada. Copie e cole a toda a região (até 700 nucleotídeos) que contêm sequências montante do códon de parada para a região de entrada de sequência de software do projeto da primeira demão (< https://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index>).</li>
		<li>Selecione a opção de design personalizado exibir e selecionar 10 para o número de primers que o sistema deve gerar (resultados retorno) e deixar todos os outros parâmetros definidos como padrão.</li>
		<li>Escolha cinco primers para a frente e duas primeiras demão reversos que não se sobreponham. Ordenar as primeiras demão e reconstituir com água RNAse/DNAse-livre para uma concentração final de 10 µM. Mais detalhes sobre o projeto da primeira demão geral para PCR são cobertos em outro lugar16.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
PCR para identificar potenciais primers para uso em subsequentes 3' corrida Nota: Para determinar os finais frente primers para usar na reação, teste os primers projetados pela criação de combinações diferentes de primers para diante e reversos para o PCR regular em uma capa PCR.<ol>
<li>Transferi o cDNA (2 µ l) para um tubo PCR de 0,5 mL. Adicione 1 µ l do primer para a frente e 1 µ l do primer reverso (a partir de uma solução de primeira demão de 10 mM). Fazer até 12,5 µ l adicionando 8,5 µ l de água livre de nuclease. Adicione 12,5 µ l do 2 x Gel-para-PCR Master Mix.</li>
		<li>Use as seguintes condições ciclagem térmicas de PCR: 95 ° C por 2 min, seguido por 29 ciclos de 95 ° C por 30 s, 60 ° C por 30 s e 72 ° C por 1 min. definir o ciclo final a 68 ° C por 7 min.</li>
		<li>Após a PCR, execute os produtos em um gel de agarose 1% corado com brometo de etídio. Detalhes de eletroforese são como descritos anteriormente com algumas modificações17.<ol>
<li>Dissolva 1 g de agarose em 100 mL de tampão Tris-Acetato (TAE) em um balão de 250 mL. Ferver no microondas.</li>
			<li>Deixar arrefecer durante 1 min e adicionar 7,5 µ l de solução de brometo de etídio (estoque de 10 mg/mL) em uma coifa. Misturar bem, agitando o frasco e despeje em um aparelho de gel horizontal. Deixe às RT a coifa pelo menos 30 min permitir que o gel solidificar.</li>
			<li>Cubra o gel com 1 x TAE de buffer e carregar 10 µ l do produto do PCR para o gel de agarose juntamente com 3 a 5 µ l de escada do peso molecular de ADN. Em 175 V por 10 min. Visualizar os produtos usando um gerador de imagens ou se ainda mais a separação de produtos for necessária, execute o gel para um adicional 5-10 min.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Seleção de primers aninhados para 3' corrida
	<ol>
<li>Analise os resultados do gel do agarose PCR para selecionar primários que têm uma banda única, distinta e forte do PCR. Usar o primer mais 5' (ANKHD15'-CCTTCCCAGCGAGTTTCTAC-3') juntamente com a primeira demão25 oligodT T7 em PCR primeiro executar.</li>
		<li>Selecione o primer aninhado que está localizado a jusante do primeiro primer (ANKHD1 5'-CGTTGGACACAGTGGAATCT-3') e usá-lo com o primer T7 (5'-GGCCTAATACGACTCACTATAG-3') no segundo conjunto de reações de PCR.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. otimização 3' corrida para mapear o 3' UTR usando duas enzimas diferentes
Nota: Tem havido um aumento na diversidade de polimerases de DNA usado para PCR; Portanto, nós queríamos determinar condições padrão que podem ser aplicadas mesmo quando usando enzimas diferentes para reações de PCR de corrida de 3'. Primers para qualquer transcrição reversos são mantidos constantes; as únicas mudanças são nos primers frente aninhados que são específicos para a transcrição do alvo.
<ol><li>
Protocolo 1:3 ' corrida usando uma polimerase de DNA modificada de Pyrococcus furiosus (Pfu)
	<ol>
<li>Primeiro PCR<ol>
<li>Transferir 1 μL de cDNA para um tubo PCR e adicionar 5 µ l de buffer de reação 10 x Pfu . Adicione 1 µ l da primeira cartilha frente aninhada, 1 µ l do primer T7 oligodT25 e 1 µ l de dNTPs (a partir de uma solução de 10 mM).</li>
			<li>Fazer o volume total de até 49 µ l adicionando 40 µ l de água. Adicione 1 µ l de Pfu DNA polimerase e misture bem. Execute o PCR usando o perfil PCR na tabela 1.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Segundo PCR<ol>
<li>Transferir 2 µ l dos produtos de PCR primeiro para um novo tubo PCR e misturar com 5 µ l de buffer de reação Ultra II de Pfu10 x. Adicione 1 µ l do segundo primer PCR aninhado, 1 µ l do T7 primer e 1 µ l de dNTPs (solução de 10 mM).</li>
			<li>Fazer até 49 µ l total reaccional adicionando 39 µ l de água. Adicione 1 µ l de Pfu DNA polimerase. Execute o PCR usando o mesmo perfil PCR como a primeira instalação PCR (tabela 1).</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Protocolo 2:3 ' corrida usando uma DNA polimerase quimérico, consistindo de um domínio de ligação do DNA fundido a um Pyrococcus-como revisão mistura de mestre polimerase PCR
	<ol>
<li>Primeiro PCR<ol>
<li>Transferi 1 μL de cDNA para um tubo PCR. Adicione 1 µ l do primeiro primer aninhado para a frente e 1 µ l do primer T7 oligodT25 . Fazer até 25 µ l adicionando 22 µ l de água.</li>
			<li>Adicione 25 µ l de 2 x PCR Master Mix e misture bem. Use as condições PCR ciclismo descritas na tabela 2.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Segundo PCR<ol>
<li>Transferi 2 µ l dos produtos de PCR primeiro para um novo tubo de PCR. Adicione 1 µ l do segundo primer PCR aninhado junto com 1 µ l do T7 primer reverso.</li>
			<li>Fazer até 25 µ l adicionando 22 µ l de água. Adicione 25 µ l de 2 X PCR Master Mix. Execute o PCR usando o mesmo perfil PCR como a primeira instalação PCR (tabela 2).</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>7. Verifique se o segundo produto PCR de 3' corrida.
<ol><li>Tome 5 a 10 µ l do segundo produto da PCR (bem como produto da primeira rodada de PCRs se a transcrição é abundantemente expressa) e executar em um gel de agarose. Configurar o gel e executar a eletroforese como descrito anteriormente (passos 5.2.3.1 para 5.2.3.3). Visualize resultados em uma imagem.</li>
</ol>8. sequenciamento e purificação do produto
<ol><li>Purifica os produtos PCR gel de segunda PCR usando o Gel e sistema de Clean-Up do PCR fragmento de DNA, conforme o protocolo do fabricante.</li>
	<li>Executar Sanger sequenciamento (em alternativa, enviar o gel purificada primers de sequenciamento adequado para um laboratório de sequenciamento e amostras de produtos PCR). Analisar os dados de sequenciamento Sanger após o sequenciamento.</li>
	<li>Download de software de análise de sequência (ver Tabela de materiais) e importar os arquivos de rastreamento para o software. Uso o individual pura Base QVs (qualidade valores) para obter a Base chamar informações18. Baixe o cromatograma com traços de alta qualidade para visualização. Opcional: O produto purificado de gel pode ser clonado usando um kit de clonagem apropriado e os clones isolados enviados para Sanger sequenciamento.</li>
</ol>

<ol><li>Mandel, C., Bai, Y., Tong, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+factors+in+pre-mRNA+3%27-end+processing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">Protein factors in pre-mRNA 3'-end processing.</a> Cell Mol Life Sci. 65 (7-8), 1099-1122 (2008).</li>
<li>Danckwardt, S., Hentze, M., Kulozik, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3%27+end+mRNA+processing%3A+Molecular+mechanisms+and+implications+for+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">3' end mRNA processing: Molecular mechanisms and implications for health and disease.</a> EMBO J. 27 (3), 482-498 (2008).</li>
<li>Derti, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+quantitative+atlas+of+polyadenylation+in+five+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">A quantitative atlas of polyadenylation in five mammals.</a> Genome Res. 22 (6), 1173-1183 (2012).</li>
<li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+amplification+of+3%E2%80%B2+cDNA+ends+%283%E2%80%B2-RACE%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Rapid amplification of 3′ cDNA ends (3′-RACE).</a> Cold Spring Harb Protoc. 2006 (1), (2006).</li>
<li>Masamha, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CFIm25+regulates+glutaminase+alternative+terminal+exon+definition+to+modulate+miR-23+function%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">CFIm25 regulates glutaminase alternative terminal exon definition to modulate miR-23 function.</a> RNA. 22 (6), 830-838 (2016).</li>
<li>Rodu, B. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0002962915361474">Molecular Biology in Medicine: The polymerase chain reaction: the revolution within.</a> Am J Med Sci. 299 (3), 210-216 (1990).</li>
<li>Bertioli, D. Rapid amplification of cDNA ends. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/protocol/10.1385/0-89603-483-6:233">PCR Cloning Protocols: Methods in Molecular Biology</a>. White, B. A. 67, Humana Press. 233-238 (1997).</li>
<li>Freeman, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cloning+full-length+transcripts+and+transcript+variants+using+5%27+and+3%27+RACE%5BTitle%5D)+AND+%22Lipoproteins+and+Cardiovascular+Disease%3A+Methods+in+Molecular+Biology+%28Methods+and+Protocols%29%22%5BJournal%5D)">Cloning full-length transcripts and transcript variants using 5' and 3' RACE.</a> Lipoproteins and Cardiovascular Disease: Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols). Freeman, L. 1027, Humana Press. 3-17 (2013).</li>
<li>Masamha, C. P., Albrecht, T. R., Wagner, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovery+and+characterization+of+a+novel+CCND1%2FMRCK+gene+fusion+in+mantle+cell+lymphoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hematol+Oncol%22%5BJournal%5D)">Discovery and characterization of a novel CCND1/MRCK gene fusion in mantle cell lymphoma.</a> J Hematol Oncol. 9 (1), 1-5 (2016).</li>
<li>Parker, B. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tumorigenic+FGFR3-TACC3+gene+fusion+escapes+miR-99a+regulation+in+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Investig%22%5BJournal%5D)">The tumorigenic FGFR3-TACC3 gene fusion escapes miR-99a regulation in glioblastoma.</a> J Clin Investig. 123 (2), 855-865 (2013).</li>
<li>Prakash, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+conjoined+genes%3A+Another+mechanism+for+gene+regulation+in+eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Expression of conjoined genes: Another mechanism for gene regulation in eukaryotes.</a> PLOS ONE. 5 (10), e13284(2010).</li>
<li>Mertens, F., Johansson, B., Fioretos, T., Mitelman, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+emerging+complexity+of+gene+fusions+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">The emerging complexity of gene fusions in cancer.</a> Nat Rev Cancer. 15 (6), 371-381 (2015).</li>
<li>Mayr, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolution+and+biological+roles+of+alternative+3%27UTRs%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Evolution and biological roles of alternative 3'UTRs.</a> Trends Cell Biol. 26 (3), 227-237 (2016).</li>
<li>International Committee For Standardization In, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+evaluation+of+automated+blood+cell+counters%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Lab+Haematol%22%5BJournal%5D)">Protocol for evaluation of automated blood cell counters.</a> Clin Lab Haematol. 6 (1), 69-84 (1984).</li>
<li>Desjardins, P., Conklin, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NanoDrop+microvolume+quantitation+of+nucleic+acids%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids.</a> J Vis Exp. (45), e2565(2010).</li>
<li>Lorenz, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymerase+chain+reaction%3A+Basic+protocol+plus+troubleshooting+and+optimization+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Polymerase chain reaction: Basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies.</a> J Vis Exp. (63), e3998(2012).</li>
<li>Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. -Y., Kim, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Agarose+gel+electrophoresis+for+the+separation+of+DNA+fragments%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments.</a> J Vis Exp. (62), e3923(2012).</li>
<li>Curtis, P. C., Thomas, J. L., Phillips, N. R., Roby, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+primer+specific+filter+metrics+for+the+assessment+of+mitochondrial+DNA+sequence+data%5BTitle%5D)+AND+%22Mitochondrial+DNA%22%5BJournal%5D)">Optimization of primer specific filter metrics for the assessment of mitochondrial DNA sequence data.</a> Mitochondrial DNA. 21 (6), 191-197 (2010).</li>
<li>Letowski, J., Brousseau, R., Masson, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Designing+better+probes%3A+Effect+of+probe+size%2C+mismatch+position+and+number+on+hybridization+in+DNA+oligonucleotide+microarrays%5BTitle%5D)+AND+%22J+Microbiol+Methods%22%5BJournal%5D)">Designing better probes: Effect of probe size, mismatch position and number on hybridization in DNA oligonucleotide microarrays.</a> J Microbiol Methods. 57 (2), 269-278 (2004).</li>
<li>Lefever, S., Pattyn, F., Hellemans, J., Vandesompele, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-nucleotide+polymorphisms+and+other+mismatches+reduce+performance+of+quantitative+PCR+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Chem%22%5BJournal%5D)">Single-nucleotide polymorphisms and other mismatches reduce performance of quantitative PCR assays.</a> Clin Chem. 59 (10), 1470-1480 (2013).</li>
<li>Singh, V. K., Govindarajan, R., Naik, S., Kumar, A. <a target="_blank" href="https://pdfs.semanticscholar.org/365f/f55d5d1ca2c64665cf11eaf1a856dc464a19.pdf">The effect of hairpin structure on PCR amplification efficiency.</a> Mol Biol Today. 1, 67-69 (2000).</li>
<li>Kalle, E., Kubista, M., Rensing, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27896140">Multi-template polymerase chain reaction.</a> Biomol Detect Quant. 2, 11-29 (2014).</li>
<li>Stransky, N., Cerami, E., Schalm, S., Kim, J. L., Lengauer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+landscape+of+kinase+fusions+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">The landscape of kinase fusions in cancer.</a> Nat Commun. 5, 4846(2014).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Apesar do advento das tecnologias de sequenciação paralelo maciço, numa base de gene-gene-por, 3' corrida continua a ser o método mais fácil e mais econômico para identificar o PAS e nucleotídeos adjacentes à cauda poli (a). A adaptação descrita aqui expande usando 3' corrida para amplificar e mapear sequências que incluem uma parte da ORF, o códon de parada e o inteiro 3' UTR a transcrição do mRNA de ANKHD1 . Uma grande vantagem do 3' corrida é que, com algumas adaptações menores, produtos de 3' corrida podem s...

A formação da extremidade 3' é um passo crítico na maturação do mRNA que compreende a clivagem do pre-mRNA a jusante de um PAS, seguido pela adição de 250 ~ untemplated adenines, que formam a cauda de poli1,2. Proteína de ligação a poli (PABP) vincula-se à cauda poli (a), e isso protege a transcrição do mRNA de degradação e facilita a tradução1.
As estimativas atuais sugerem que 70% dos genes humanos têm Passe múltiplo e, portanto, submeter-se poliadenilação alternativa, resultando em múltiplos 3' extremidades3. Assim, é importante identificar onde a cauda poli (a) atribui ao resto do 3' UTR, bem como identificar o PAS usado por qualquer transcrição determinada. O advento da próxima geração de sequenciamento resultou na identificação simultânea de 3' UTRs e a passagem de milhares de genes. Este aumento na capacidade de sequenciamento exigiu o desenvolvimento de algoritmos de bioinformatic para analisar os dados envolvendo poliadenilação alternativa da extremidade 3'. Para a detecção de novo ou validação do PAS e, portanto, mapeamento da extremidade 3' de genes individuais de dados de sequenciamento em larga escala, 3' corrida continua a ser o método de escolha4,5. As sequências incluídas em produtos de cDNA de 3' corrida normalmente incluem apenas uma parte do 3' UTR que contém a cauda poli (a), o local de clivagem, o PAS, sequências e o montante do PAS. Ao contrário do PCR, que requer a concepção e utilização do gene específico para diante e reverso primeiras demão, 3' corrida requer apenas duas gene específico aninhado frente primeiras demão. Daí, a PCR requer um conhecimento mais detalhado da sequência de nucleotídeos de uma grande região do gene sendo amplificado4,6. Desde 3' corrida usa o mesmo inverter a primeira demão que metas a poli (a) cauda para todos polyadenylated RNA transcritos, somente os primers para a frente devem ser gene específico, assim, exigindo apenas conhecimento de uma região significativamente menor do mRNA. Isso permite que a amplificação das regiões cujas sequências não são inteiramente caracterizado4,7. Isto permitiu 3' corrida para ser usado não somente para determinar a extremidade 3' de um gene, mas para também determinar e caracterizar regiões grandes montante do PAS que formam uma parcela significativa de 3' UTR. Combinando 5' corrida com o modificado 3' corrida que inclui porções maiores de 3' UTR e flanqueiam regiões, é possível totalmente sequenciar ou clonar uma transcrição de mRNA inteira da extremidade 5' para seus 3' final8.
Um exemplo desta aplicação de modificado 3' corrida é a identificação recente de um romance CCND1-MRCK transcrição de gene de fusão de linhas de células do linfoma de células do manto e pacientes com câncer. O 3' UTR consistia de sequências de genes de ambos os CCND1 e MRCK e foi recalcitrantes a miRNA Regulamento9. Os dois aninhados CCND1 específicos frente primers foram complementares à região imediatamente adjacente e a jusante do CCND1 códon de parada. Embora toda transcriptoma sequenciamento juntamente com ferramentas de bioinformatic específico pode ser usado para detectar fusões gene dentro do 3' UTR10, muitos laboratórios podem não ter os recursos financeiros ou bioinformatic perícia para fazer uso desta tecnologia. Portanto, 3' corrida é uma alternativa para novo de identificação e validação de genes de fusão novela envolvendo a 3' UTR. Considerando o drástico aumento no número de genes de fusão relatados, bem como ler as transcrições, 3' corrida tornou-se uma poderosa ferramenta na caracterização de gene sequências11,12. Além disso, estudos recentes demonstraram que diferentes sequências dentro a 3' UTR, bem como o comprimento de 3' UTR pode afetar a estabilidade de transcrição do mRNA, localização, Traduzibilidade próprios e função13. Devido em parte ao crescente interesse no mapeamento da transcriptoma, tem havido um aumento no número de diferentes polimerases de DNA, sendo desenvolvido para uso em laboratório. É importante determinar que tipos de modificações podem ser feitos para o 3' protocolo de corrida em a fim de utilizar o repertório disponível de polimerases de DNA.
Este trabalho de adaptação 3' corrida para mapear o inteiro 3' UTR de relatórios, o PAS e 3' final local de clivagem da transcrição de ANKHD1 usando aninhados cartilhas dentro da seção de ANKHD1 de transcrição e dois diferentes polimerases de DNA.

<table><tbody><tr><td>Células HeLa</td><td>ATCC</td><td>CCL-2</td><td>Linha celular de câncer cervical.</td></tr><tr><td>Células Jeko-1</td><td>ATCC</td><td>CRL-3006</td><td>Linha celular de linfoma de células do manto.</td></tr><tr><td>Células Granta-519</td><td>DSMZ</td><td>ACC-342</td><td>Linha celular de linfoma de células do manto.</td></tr><tr><td>Soro bovino fetal</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F6178</td><td>Soro bovino fetal para cultura de células.</td></tr><tr><td>Penicilina/Estreptomicina</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>15140122</td><td>Antibiótico e antimicótico.</td></tr><tr><td>Coprecipitante</td> <td>GlycoBlue</td><td></td><td>Ambion AM9545</td>.</tr><tr><td>DMEM</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>10569044</td><td>meios de cultura celular da marca Gibco com GlutaMAX.</td></tr><tr><td>Água livre de nuclease</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>AM9938</td><td>Água livre de Ambion DNase e RNAse (não tratada com DEPC).</td></tr><tr><td>Dulbecco' s Solução tamponada com fosfato</td><td>Corning</td><td>21-030</td><td>1X PBS.</td></tr><tr><td>Clorofórmio</td><td>Sigma&nbsp; Aldrich</td><td>C7559-5VL</td><td></td></tr><tr><td>2-propanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I9516</td><td></td></tr><tr><td>Reagente Álcool</td><td>Sigma Aldrich</td><td>793175</td><td></td></tr><tr><td>Etanol Solução de Brometo de Etídio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E1510</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol</td><td>Reagente ThermoFisherScientific</td><td>15596026</td><td>Reagente monofásico de fenol e isotiocianato de guanidina.</td></tr><tr><td>2X Extensor PCR-para-Gel Master Mix</td><td>Amresco</td><td>N867</td><td>2X PCR-para-Gel Master Mix&nbsp; contendo corante de carregamento usado em ensaios de PCR rápidos de rotina e busca de primer.</td></tr><tr><td>10mM dNTP</td><td>Amresco</td><td>N557</td><td></td></tr><tr><td>RQ1 RNase DNase</td><td>livre Promega</td><td>M6101</td><td>Dnase kit de tratamento.</td></tr><tr><td>Corante de Carregamento de Gel Laranja (6X)</td><td>New England BioLabs</td><td>B7022S</td><td></td></tr><tr><td>2X Phusion High-Fidelity PCR Master Mix com tampão HF</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>F531S</td><td>2X PCR MasterMix contendo uma DNA polimerase quimérica consistindo de um domínio de ligação ao DNA fundido a uma polimerase de revisão semelhante a Pyrococcus e outros reagentes.</td></tr><tr><td>PfuUltra II Fusion HS DNA polimerase</td><td>Agilent Technologies</td><td>600670</td><td>DNA polimerase modificada de Pyrococcus furiosus (Pfu).</td></tr><tr><td>Kit de Transcrição Reversa RevertAid RT</td><td>Thermo Fischer</td><td>K1691</td><td>Usado para&nbsp; transcrição reversa de mRNA em&nbsp; síntese de cDNA. O kit inclui&nbsp; Inibidor de RNAse Ribolock, transcriptase reversa RevertAid M-MuLV e outros reagentes listados no manuscrito.</td></tr><tr><td>Escada perfeita de tamanho 1Kb</td><td>5 Prime</td><td>2500360</td><td>Escada de DNA de peso molecular.</td></tr><tr><td>Alpha Innotech FluorChem Q MultiImage III</td><td>Alpha Innotech</td><td></td><td>Usado para visualizar o gel de agarose corado com brometo de etídio.</td></tr><tr><td>Escada de baixo peso molecular</td><td>New England BioLabs</td><td>N3233L</td><td>Escada de DNA de peso molecular.</td></tr><tr><td>Misturador de Vórtice</td><td>MidSci</td><td>VM-3200</td><td></td></tr><tr><td>Mini Centrífuga</td><td>MidSci</td><td>C1008-R</td><td></td></tr><tr><td>Banho Seco</td><td>MidSci</td><td>DB-D1</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000C</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>ND-2000C</td><td>Espectrofotômetro.</td></tr><tr><td>Mini-Sub-Sub Largo Sistema de eletroforese horizontal Cell GT</td><td>BioRad</td><td>1704469</td><td>Equipamento-aparelho de eletroforese para configurar a</td></tr><tr><td>fonte de alimentação básica de gel PowerPac</td> Fonte de alimentação <td>BioRad</td><td>1645050</td><td>para eletroforese em gel.</td></tr><tr><td>Termociclador</td> <td>Aependorf</td><td>950000015</td> PCR<td>Gradiente</td></tr> <tr><td>AGLE-500</td><td></td>Mastercycler da <td>Agarose</td><td>Dot Scientific</td></tr>.<tr><td>Centrífuga</td><td>Eppendorf</td><td>5810 R</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga</td><td>Eppendorf</td><td>5430R</td><td></td></tr><tr><td>Wizard SV Gel e Fragmento de PCR Sistema de Limpeza de DNA</td><td>Promega</td><td>A9281</td><td></td></tr><tr><td>Kit de Clonagem de PCR TOPO Zero Blunt, com One Shot&nbsp; TOP10 Células de E. coli quimicamente competentes</td><td>ThermoFisherScientific</td><td>K280020</td><td></td></tr><tr><td>Estação de preparação MyPCR Mystaire</td><td>MidSci</td><td>MY-PCR24</td><td>Capuz dedicado ao trabalho de PCR.</td></tr><tr><td>Hotte Hamilton SafeAire II</td><td>ThermoFisherScientific</td><td></td><td>Exaustor.</td></tr><tr><td>Beckman Coulter Z1&nbsp; Partícula&nbsp; Contador</td><td>Beckman Coulter</td><td>6605698</td><td>Contador de partículas. Para contar células antes do revestimento&nbsp; para extração de RNA.</td></tr><tr><td>Software de scanner de sequência da Applied Biosystems v2.0</td><td>Applied Biosystems (através da ThermoFisherScientific)</td><td></td><td>Software para analisar dados de sequenciamento de Sanger.</td></tr></tbody></table>

adaptação 3' rápida amplificação do cdna termina para mapear transcritos em câncer

Adapting 3' Rapid Amplification of CDNA Ends to Map Transcripts in Cancer

Maturação dos mRNAs eucarióticos envolve 3' formação de ponta, que envolve a adição de uma cauda poli (a). A fim de mapear a extremidade 3' de um gene, o tradicional método de escolha é 3' amplificação rápida das extremidades do cDNA (3' corrida). Protocolos para 3' corrida requerem o design cuidadoso e seleção de primers aninhadas dentro da região 3' untranslated (3' UTR) do gene alvo de interesse. No entanto, com algumas modificações, o protocolo pode ser usado para incluir o inteiro 3' UTR e sequências dentro do quadro de leitura aberta (ORF), fornecendo uma imagem mais abrangente da relação entre a ORF e a 3' UTR. Isto está além da identificação do sinal de poliadenilação (PAS), assim como o decote e poliadenilação site fornecido pelo convencional 3' corrida. Expandida de 3' corrida pode detectar incomum 3' UTRs, incluindo fusões gene dentro a 3' UTR, e as informações de sequência podem ser usadas para prever potenciais locais obrigatórios de miRNA, bem como AU rico desestabilizando a elementos que possam afectar a estabilidade da transcrição.

Pesquisa de Primer frente aninhados:
O gel de agarose de A Figura 1 mostra dois produtos distintos de gel PCR (faixas 1 e 2) que uso o mesmo encaminhar a cartilha mas diferentes cartilhas reversos. 3 Lane tem um produto PCR distinto e tem uma distinta cartilha frente e verso. Os primers ideais para usar para a reação de PCR com base são aqueles que dão um produto PCR distinto (faixa 3)...

A amplificação rápida dois diferentes 3' extremidades do cDNA (3' corrida) protocolos descrito aqui fazem uso de dois diferentes polimerases de DNA para mapear sequências que incluem um segmento de quadro de leitura aberta (ORF), o códon de parada e o inteiro 3' UTR de uma transcrição de usando o RNA obtidos de linhagens celulares de cancro diferentes.

Adaptação 3' rápida amplificação do CDNA termina para mapear transcritos em câncer

Maturation of eukaryotic mRNAs involves 3&#39; end formation, which involves the addition of a poly(A) tail. In order to map the 3&#39; end of a gene, the ...

O objetivo geral deste procedimento é determinar as sequências de transcritos de mRNA da extremidade tripla primária para regiões dentro da região codificadora da proteína, usando primers aninhados específicos para transcritos em dois PCRs subsequentes e sequenciando os produtos de PCR purificados. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo genético, como determinar o sinal de poliadenilação, o códon de parada e a sequência da região não traduzida de três primos do transcrito. A principal vantagem dessa técnica é que ela pode ser aplicada a qualquer transcrição se a sequência da pequena região do quadro de leitura aberto for A implicação dessa técnica se estende ao diagnóstico do câncer, pois pode detectar genes de fusão específicos do tumor e variantes de emenda.Tivemos a ideia para esse método pela primeira vez quando identificamos novas transcrições com regiões não traduzidas anteriormente não caracterizadas e com três primos. Para iniciar o protocolo, descongele a mistura de células de isotiocianato de fenol e guanidina no gelo. Depois de descongelado, adicione 100 microlitros de clorofórmio ao tubo de microcentrífuga em uma coifa de PCR.Vortex a amostra por 10 a 15 segundos até que a mistura fique rosa e opaca. Em seguida, incube a amostra no gelo por 15 minutos. Após a incubação, centrifugue a amostra por 15 minutos a 20, 800 g e quatro graus Celsius.Remova cuidadosamente a fase aquosa incolor superior e transfira-a para um novo tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitro. Em seguida, passe para a precipitação e adicione um volume igual de isopropanol à amostra. Adicione um microlitro de co-precipitante à amostra para atuar como um transportador para o RNA e ajudar a visualizar o RNA nas etapas subsequentes.Incube as amostras a 80 graus Celsius por pelo menos quatro horas. Após a incubação, transfira a amostra para uma centrífuga resfriada e gire por 35 minutos a 20.800 g e quatro graus Celsius. Após a rotação, o RNA aparecerá como uma especificação azul na parte inferior do tubo.Remova cuidadosamente o isopropanol da amostra. Adicione 500 microlitros de etanol a 80% e ressuspenda o pellet por um breve vórtice por três segundos. Centrifugue novamente a amostra.Remova todo o etanol da amostra e deixe a amostra secar ao ar por cerca de 10 minutos. Quando a amostra estiver seca, ressuspenda-a em 35 microlitros de água livre de RNase. Em seguida, coloque a amostra em um bloco de calor.Defina a 65 graus Celsius por cinco minutos para garantir que o RNA esteja totalmente em solução. Após o aquecimento, coloque imediatamente o tubo no gelo. Para um volume de reação final de 50 microlitros, adicione quatro microgramas de RNA total com água adicionada a um volume total de 22 microlitros a um novo tubo.Adicione dois microlitros do primer Oligo dT 25 da solução de primer 10 micromolar. Do kit de transcrição reversa, adicione dois microlitros do inibidor de RNase, oito microlitros do tampão de reação 5x, quatro microlitros de dNTPs de 10 milimolares e dois microlitros da transcriptase reversa. Configure uma reação sem transcriptase reversa para atuar como um controle negativo.Incube o tubo a 42 graus Celsius por uma hora. Após a incubação, transfira o tubo diretamente para o gelo antes de transportá-lo para o bloco de aquecimento. Em seguida, aqueça o tubo a 75 graus Celsius por cinco minutos.Depois de aquecê-lo a 75 graus Celsius, coloque o tubo no gelo. Transfira dois microlitros do cDNA para um novo tubo de PCR de 0,5 mililitro. Adicione um microlitro do primer direto e um microlitro do primer reverso de uma solução de primer 10 milimolar.Faça até 12,5 microlitros adicionando 8,5 microlitros de água livre de nuclease e adicione 12,5 microlitros de 2x PCR para mistura master de gel. Em seguida, insira as condições de ciclo térmico de PCR listadas na tela e execute o PCR. Após a PCR, prepare um gel de agarose a 1% corado com brometo de etídio.Dissolver um grama de agarose em 100 mililitros de triacetato ou tampão TAE num balão de 250 ml. Ferva o conteúdo no micro-ondas. Deixe o gel esfriar por um minuto e adicione 7,5 microlitros de solução de brometo de etídio em uma capela.Misture bem girando o frasco. Deitar o conteúdo num aparelho de gel horizontal e deixar solidificar o gel à temperatura ambiente na hotte durante, pelo menos, 30 minutos. Cubra o gel com 1x tampão TAE e carregue 10 microlitros do produto de PCR no gel de agarose junto com três a cinco microlitros da escada de peso molecular do DNA.Execute o gel a 175 volts por 10 minutos. Para a primeira PCR, transfira um microlitro de cDNA para um tubo de PCR e adicione cinco microlitros de tampão de reação 10x Pfu. Adicione um microlitro do primeiro primer direto aninhado, um microlitro do primer T7 Oligo dT 25 e um microlitro de dNTPs de uma solução de 10 milimolares.Faça até 49 microlitros de volume total adicionando 40 microlitros de água. Adicione um microlitro de DNA polimerase Pfu e misture bem. Em seguida, execute o PCR.Em seguida, prepare o segundo PCR. Transfira dois microlitros dos produtos do primeiro PCR para um novo tubo de PCR e misture com cinco microlitros de tampão de reação 10x Pfu ultra two. Adicione um microlitro do segundo primer de PCR aninhado, um microlitro do primer T7 e um microlitro de dNTPs.Faça até 49 microlitros de volume total de reação adicionando 39 microlitros de água e adicione um microlitro de DNA polimerase de Pfu. Execute o PCR usando o mesmo perfil de PCR da primeira configuração de PCR. Alternativamente, em vez de usar a DNA polimerase de Pfu, uma DNA polimerase quimérica pode ser usada nas duas PCRs diferentes.Pegue de cinco a dez microlitros do segundo produto de PCR e execute-o em um gel de agarose. Por fim, visualize o resultado em um gerador de imagens. Este gel de agarose mostra dois produtos de PCR distintos que usam o mesmo primer direto, mas diferentes primers reversos e um produto de PCR distinto que possui um primer direto e reverso distinto.Os primers ideais para usar na reação baseada em PCR são aqueles que fornecem um produto de PCR distinto. Os produtos da segunda reação de PCR com Pfu DNA polimerase e DNA polimerase quimérica produziram os mesmos produtos de PCR de tamanho, apesar de terem diferentes condições de ciclagem de PCR para o RACE de três primos. Os controles negativos da transcriptase reversa não mostraram contaminação genômica do RNA usado na síntese de cDNA, bem como nas reações subsequentes a jusante.Os produtos de PCR purificados em gel foram enviados para sequenciamento. Uma sequência de Sanger representativa de um cromatograma de sequência identificou a localização do códon de parada, o sinal de poliadenilação putativo e o local, bem como a cauda poli A no produto RACE de três primos. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de usar equipamentos de proteção e luvas o tempo todo.Além disso, use DNase e RNase estéreis para seus tubos de reagentes e outros descartáveis. Não se esqueça de que trabalhar com fenol e clorofórmio pode ser extremamente perigoso. E precauções como usar os reagentes em um exaustor e descartar o material em um recipiente de lixo designado devem sempre ser tomadas durante a execução deste procedimento.

adapting-3-rapid-amplification-cdna-ends-to-map-transcripts

Research

JoVE Journal

Genetics

Genética

Devido à natureza transitória do pré-mRNA, pode ser difícil isolar e...

Um método rápido de alta capacidade para Ribonucleoproteínas Mapping (RNPs) no pré-mRNA Humanos

Nós descrevemos a preparação de bibliotecas de DNA com código de barras e posterior captura exon baseada em hibridização para a detecção de mutações associadas ao câncer de chave em amostras de tumor clínicos por sequenciamento paralelo em massa "próxima geração". Alvejado seqüenciamento exon oferece os benefícios de alto rendimento, baixo custo, e cobertura seqüência de profundidade, proporcionando assim alta sensibilidade para detecção de mutações de baixa frequência.

Detectando somáticas Genéticos Alterações em amostras de tumor por Exon Captura e Seqüenciamento Massively Parallel

Um sistema integrado para sequenciamento direcionado de próxima geração de amostras oncológicas é descrito. Este sistema multiplataforma é otimizado para biópsias tumorais de baixa qualidade e baixa quantidade, acomoda baixas entradas de DNA, inclui controles multivariantes bem caracterizados e apresenta um novo chamador de variante que é informado por medidas quantitativas de controle de qualidade pré-analítica.

Integração de Wet and Processes bancada secos Otimiza alvejado Seqüenciamento Next-geração de baixa qualidade e biópsias de tumores de baixa quantidade

Descrevemos um método baseado em sequenciamento de RNA direcionado que inclui a preparação de bibliotecas de cDNA indexadas, hibridização e captura com sondas personalizadas e análise de dados para interrogar transcritos selecionados quanto à expressão gênica, mutações e fusões gênicas. O RNAseq direcionado permite uma avaliação rápida e econômica de transcritos selecionados em um sequenciador de desktop.

Targeted RNA Sequenciação Ensaio para Caracterizar expressão gênica e genômica Alterações

Este protocolo descreve um método para mapeamento pre-mRNA' a extremidade 3 sites de processamento.

3' final de preparação da biblioteca com A-seq2 de sequenciamento

O manuscrito descreve um ensaio PCR digital baseada no chip para detectar uma rara variante de CDH1 transcrição (CDH1a) em normal fresco congelado e tecidos de tumor obtidos de pacientes com câncer gástrico.

Deteção de uma variante de transcrição raro CDH1 em tecidos de câncer gástrico fresco congelado pelo PCR Digital baseada em Chip

Aqui, nós apresentamos um protocolo para detectar mutações somáticas do tumor no ADN de circulação atual nos líquidos biológicos pacientes (biofluids). Nosso método baseado da reacção em cadeia digital do polymerase da gota (dpcr)-permite a quantificação da freqüência alélicas da mutação de tumor (MAF), facilitando um complemento minimamente invasor ao diagnóstico e à monitoração temporal da resposta do tumor.

Deteção e monitoração do ADN de circulação associado do tumor em Biofluids pacientes

ATAC-seq é um método de sequenciamento de DNA que usa a transposase mutante hiperativa, Tn5, para mapear mudanças na acessibilidade da cromatina mediadas por fatores de transcrição. O ATAC-seq permite a descoberta dos mecanismos moleculares subjacentes às alterações fenotípicas nas células cancerígenas. Este protocolo descreve procedimentos de otimização para ATAC-seq em tipos de células epiteliais, incluindo células cancerígenas.

Otimização ATAC-Seq para Pesquisa em Epigenética do Câncer

Aqui, é apresentado um protocolo no qual múltiplas ferramentas de bioinformática são combinadas para estudar as funções biológicas da TMEM200A no câncer. Além disso, também validamos experimentalmente as previsões de bioinformática.

Análise Multiômica de TMEM200A como Biomarcador Pan-Câncer

Este protocolo detalha uma metodologia para detecção de mRNA multiplex com citometria de massa de imagem de proteína em seções de tecido embebidas em parafina fixada em formalina.

Cartografia Molecular de Modalidade Dupla: Integrando a Detecção de RNA Multiplex com a Citometria de Massa por Imagem de Proteínas

Aprenda a técnica 3' RACE para mapear transcritos de mRNA em linhas celulares de câncer usando primers nested específicos e PCR. Este método identifica ORF, códon de parada e região 3' UTR.

Adaptação 3' rápida amplificação do CDNA termina para mapear transcritos em câncer

Explorar mais vídeos