13 de abril de 2018
Este protocolo descreve a fabricação de um sistema de cultura de células para permitir a propagação de células-tronco em um andaime de polímero condutor para estimulação elétrica em vitro e subsequentes na vivo implantação da célula-tronco-semeado andaime usando um técnica minimamente invasiva.
O objetivo geral deste procedimento é criar uma plataforma para estimulação elétrica in vitro de células-tronco em um andaime de polímero condutor, com subsequente implantação in vivo. Este método pode ajudar a responder a questões-chave na pesquisa de AVC e biologia de células-tronco, fornecendo um meio de modular as células-tronco. A principal vantagem é que as células-tronco podem ser otimizadas in vitro e, posteriormente, implantadas.
Embora esse método possa fornecer uma visão sobre a recuperação do AVC, ele também pode ser aplicado a outros sistemas como um novo método de entrega celular. Geralmente, os usuários novos nessa técnica terão dificuldades devido à precisão necessária para a montagem da câmara celular e à técnica envolvida na craniectomia. Na preparação, autoclave as placas de metal de 2,5 por 12,5 centímetros e as válvulas de fluxo.
Em seguida, usando uma lâmina de câmara como modelo, corte dois pedaços de PDMS. Uma peça serve para delinear o perímetro da câmara. Na segunda peça, corte duas peças adjacentes de dentro da lâmina da câmara.
Ambas as peças devem ser retangulares e combinar com a corrediça da câmara. Agora, coloque os materiais em camadas. Comece com a placa de metal, depois o PDMS não cortado, depois a placa de polipirrol, orientada perpendicularmente, depois o PDMS com recortes e, finalmente, a câmara celular.
Alinhe as camadas com cuidado e prenda o aparelho. Em seguida, corte dois pedaços de um fio de metal para estender do aparelho até a parte externa da incubadora que o conterá. Comprimentos de 60 centímetros geralmente são longos o suficiente.
Em seguida, use pasta de prata para prender um fio em cada extremidade da placa de polipirrol que se projeta do lado de fora da câmara. Uma vez curada a pasta de prata, reforce e sele as conexões usando um epóxi. Agora, registre a resistência em todo o conjunto usando um multímetro.
O campo aplicado deve ser o mesmo em cada câmara. Em seguida, coloque as células no conjunto e estimule-as eletricamente conforme descrito no protocolo de texto. Antes de implantar as células, remova os fios do conjunto.
Em seguida, solte as câmaras celulares e separe o PDMS do andaime condutor. O andaime agora está pronto para implantação. Um dia antes da cirurgia, forneça ampicilina ao animal em questão em sua água potável.
No dia da cirurgia, anestesiar o rato com isoflurano e confirmar a anestesia com uma pinça no dedo do pé. Agora, aplique lágrimas artificiais nos olhos do rato para mantê-los úmidos. Depois de raspar o crânio, coloque o animal na capa e prepare-se para uma cirurgia estéril.
Use roupas de proteção, desembale as ferramentas esterilizadas e esterilize o couro cabeludo. Para a craniectomia, faça um orifício acima do córtex esquerdo até a dura-máter. Faça a abertura um pouco maior que 1 por 3 milímetros, o tamanho do implante.
Em seguida, abra a dura-máter e remova a dura-máter do cérebro usando uma agulha cirúrgica microfina. Remova o equipamento da incubadora de cultura TC e desative os equipamentos. Em seguida, implante cuidadosamente o andaime condutor do sistema in vitro no córtex do rato.
Em seguida, cubra o implante com Surgicel para prendê-lo, ou ele pode se mover durante o fechamento da pele. Agora, suture a ferida com sutura de seda 4-0. Após completar as suturas, injetar subcutaneamente nos ratos buprenorfina SR. Em seguida, coloque o rato em uma gaiola de recuperação até que ele recupere a consciência.
O procedimento pós-operatório é detalhado no protocolo de texto. As células progenitoras neurais humanas foram expostas à estimulação elétrica e, em seguida, coradas com ensaios de viabilidade celular. A cor verde é indicativa de uma célula viva.
As células foram claramente capazes de sobreviver à estimulação elétrica. Os fatores liberados das células neuroprogenitoras que são importantes na recuperação do AVC foram avaliados a partir de um micrograma de RNA total usando RTPCR quantitativo. Depois de normalizar os resultados usando o método do limiar do ciclo delta delta, eles revelam então a exposição à estimulação elétrica regulada positivamente pela expressão de BDNF e THBS1.
Depois de assistir a este procedimento, você deve ter uma boa compreensão de como criar um sistema de cultura de células para células-tronco eletricamente condutoras e subsequente implantação dessas células-tronco em um modelo de rato. Uma vez dominado, o procedimento pode ser feito em 45 minutos se for realizado corretamente. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar de sempre monitorar os animais quanto ao padrão respiratório adequado e à cor da membrana, para garantir a anestesia adequada.
Não se esqueça de que trabalhar com ratos e células-tronco pode ser perigoso, e precauções, como usar EPI adequado, devem sempre ser tomadas.
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Este protocolo descreve a fabricação de um sistema de cultura celular para semeadura de células-tronco em uma estrutura de polímero condutor. Ele permite a estimulação elétrica in vitro e posterior implantação in vivo utilizando uma técnica minimamente invasiva.
Andaimes condutores elétricos para entrega de células-tronco oferecem uma plataforma inovadora para modular o fenótipo celular antes do transplante, abordando um desafio fundamental na medicina regenerativa e na modelagem de doenças neurológicas. Esta abordagem permite a otimização in vitro das propriedades das células-tronco, reforçando a confiança preditiva em estudos downstream in vivo e facilitando o avanço com ajuste de risco em pipelines pré-clínicos. A modularidade do método o posiciona como uma capacidade reutilizável para diversas aplicações em terapia celular e engenharia de tecidos.
Este método integra-se ao continuum de descoberta a pré-clínico ao permitir a modulação de células-tronco in vitro, seguida por testes in vivo em modelos de doenças, como acidente vascular cerebral. Ele permite a otimização iterativa e análises comparativas entre diferentes condições experimentais.