Name: Elementos-chave da foto atração bioensaio para insetos estudos ou programas de monitoramento (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-26T12:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 17 s
Description: Aprenda a usar arenas de bioensaio de fotoatração para otimizar a atração de insetos em estudos de comportamento. Este método flexível permite avaliar cores de luz ideais em laboratório antes de testes de campo.

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1. bioensaio componentes
<ol><li>
Construção de arena terrestre
	<ol>
<li>Tiras de metal de uso intermitente material de 2,54 cm de comprimento. Dobre cada tira em um meio círculo com um diâmetro de 15,24 cm (Figura 1).</li>
		<li>Ligue as extremidades de cada meio círculo e uma forma de trevo de quatro peças. Conecte uma porca e um parafuso de máquina #10 para os extremos de cada meio círculo para mantê-los juntos.</li>
		<li>Faça um furo no ponto médio de cada semicírculo 0,79 cm da parte inferior da arena. Apor os titulares de 5 milímetros LED furos feitos no meio de cada semicírculo.</li>
		<li>Com o objetivo de reduzir a reflexão, spray de tinta de spray preta fosca em toda a arena14 para cobrir o piscar de metal. Usar uma textura líquida (ex., Fluon) para impedir que os insetos pulando fora da arena a tinta spray.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Construção de arena aérea Nota: A arena aérea tem um tamanho e uma dimensão semelhante à arena terrestre; no entanto, utilizou-se material poliacrílico (Figura 2). O plástico transparente permite que toda a luz passar. O plástico transparente impede a reflexão que interfere com o experimento. O plástico transparente também permite que o experimento seja filmado.<ol>
<li>Passe os pontos mais distantes de cada semicírculo para permitir que os recipientes de recolha para Aparafuse a arena principal. A forma de trevo envia insetos de volta para o meio. Não há cantos externos incentivam inseto Congregação; no entanto, os copos de coleção de insetos aéreos têm todos os cantos internos e sem cantos externos.</li>
		<li>Para recipientes de coleta aérea da arena, usar parafuso polymethylpentene tops (125 mL, 64 mm de diâmetro exterior, 74 mm de altura) e furar a parte de baixo (15 mm de diâmetro).</li>
		<li>Em cada uma das partes inferiores dos recipientes, apor tubos roscados (15 mm de diâmetro, comprimento de 60 mm).</li>
		<li>Anexe um titular de LED de 5 mm para as tampas de cada recipiente. Cada tampa de gaiola de coleção sobre o orifício grande das gaiolas coleção da linha.</li>
		<li>A tubulação roscada da arena no pequeno orifício no lado oposto da gaiola coleção do assento. Certifique-se que a ponta do tubo rosca inteira esteja alinhada com as paredes dentro da arena e se encaixa apertado para a gaiola de coleção. Nota: O tubo rosqueado era feito de Teflon. O Teflon brilha a cor do LED que mantém sua gaiola de coleção. A tubulação roscada foi o único elemento que brilha com relação os insetos na arena devido a uma substância de plástico cinza na base de cada gaiola de coleção.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Preparação de eletrônica Nota: Há várias cores (comprimentos de onda) de diodos emissores de luz são dependentes químicos usados para construir o LED e, portanto, uma ampla variedade de cores são possíveis (tabela 1).<ol>
<li>Para todos os experimentos, use padrão 5mm LEDs com fios positivos e negativos. Os LEDs podem ser estreitos em sua gama de comprimento de onda ± 5 nm ou podem ser grandes em sua gama de comprimento de onda ± 50 nm.</li>
		<li>Defina o ângulo como o ângulo máximo cônico, na qual uma exposição pode ser vista. Caso contrário, estes são conhecidos como buraco LEDs. Através do buraco LEDs exigem através de slots de buraco em um PCB, um chicote de fios de fiação, ou fios soldados aos terminais positivos e negativos. Superfície de montagem de LEDs exigem adequada PCB design e solda para incorporá-las.</li>
		<li>Incorporar o sistema eletrônico para controlar a ingestão de energia LED (LED intensidade) resistências variáveis (Figura 3). Use um espectrômetro de luz para verificar a intensidade (W/m2) e o comprimento de onda (nm) dos LEDs para cada experimento.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparação de arena
<ol><li>
Antes e entre cada replicar, cuidadosamente desmontar e limpar a arena usando um sabão inodoro, não abrasivo em água morna para remover quaisquer odores ou attractants indesejados. Use uma esponja com um baixo nível de abrasivo para evitar riscar a arena.
	<ol>
<li>Completamente seco da arena e coloque-a para terminar o ar de secagem em preparação para o próximo julgamento. Isso evitará manchas de água desenvolvendo. Arranhões e marcas de água podem causar refração sobre esses pontos na arena. Distorções criam erro nos resultados.</li>
		<li>Sempre que a arena deve ser tratada, use luvas de nitrilo para evitar a introdução de odores humanos sobre as superfícies da arena.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Gravar as seguintes condições ambientais: umidade, temperatura, pressão barométrica, data, hora de início/fim, fontes de luz externas e posições de LED na arena. Gravar esses valores e monitorar suas tendências de experimento para experimento. Isso garante repetições experimentais uniformes adequadas, gravar as condições ambientais, antes e após as repetições.</li>
	<li>
Tipos de experiências Nota: Esta configuração é capaz de testar luz única e competitiva.<ol>
<li>Para o teste de luz única, use uma luz emitida em um único trevo enquanto o resto das folhas trevo tem nada emitindo a partir deles.</li>
		<li>Para experiência competitiva, emitem luz de todos os quatro artérias com características diferentes em concorrência uns com os outros. Nota: Outras experiências podem avaliar a importância do estado de insetos (alimentar, fome, teneral, acoplado, sangue alimentado, etc.) e palco de história de vida. Software de gravação/análise comportamental pode ser usado para registrar e quantificar o comportamento. Para experiências noturnas, câmeras de infravermelhas podem ser usadas para exibir os insetos, que irão brilhar branco no IR gravar em contraste com a escura arena.</li>
		<li>Rode LED posições após cada replicar para controlar o efeito potencial de interferência de luz entre fontes de luz adversárias e quaisquer preferências ambientais.</li>
		<li>Para contar o número de coleções de insetos que não vá nos furos, use LEDs infravermelhos, uma câmera infravermelha e software14. A gravação de vídeo irá mostrar que o número de besouro visitas para cada LED. Uma coleção não é contabilizada a menos que o inseto se move do centro da arena em direção a um LED em vez de seguir uma borda passado um LED.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Instalação de arena
	<ol>
<li>Construa um pedestal com quatro frascos de pedreiro idênticos e coloque um pano de linho preto em cima deles. O pano de linho é preto para impedir que a luz refletindo fora da parte inferior da arena.</li>
		<li>Coloque a placa de base da arena no topo do pedestal. Monte cada pedaço da arena em cima desta placa de base.</li>
		<li>Coloque a trevo arena centralmente em torno do ponto de lançamento da placa de base. Manter esta central permite que os insetos que emergem do centro do experimento, dando-lhes sem preferência inicial.</li>
		<li>Instale a luz emitindo-se diodos (LEDs) para os titulares de LED do contêiner quatro coleção.</li>
		<li>Configure o equipamento elétrico para controlar as luzes.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. começando bioensaios
<ol><li>
Coloque a tampa clara da arena pela arena paralelo à placa de base. Se os insetos são liberados através da placa de base, a tampa da arena já deve estar na arena. Isso contém insetos e permite a avaliação visual ou gravação de vídeo (insetos terrestres).
	<ol>
<li>Se necessário por espécies (insetos aéreos), imobilize temporariamente os insetos para permitir a extração de suas gaiolas (emergência) e permitir a introdução de arena. Derrubando os insetos pode ser realizada com temporariamente com dióxido de carbono ou uma temperatura fria (<-20 ° C para mosquitos-4,00 ° c para mosquitos).</li>
		<li>Usando um aspirador, extrai o sexo desejado e contagem de insetos dos insetos batidos para baixo. Em seguida, introduza os insetos para a arena através da placa de base. Use um tubo ou outra ferramenta de aspiração para a extração de insetos. Muito manuseio ou longas exposições reduzirá a sobrevivência.</li>
		<li>Começa as gravações de bioensaio/avaliação antes aclamação para confirmar os insetos estão respondendo apenas para a luz e não exibindo uma resposta de fuga. Para evitar a fuga de resposta, uma proporcionar um tempo de aclimatação de 1 h para os insetos antes de ligar o sistema eletrônico. Insetos orientam no sentido de comprimentos de onda específicos da luz durante sua resposta de fuga quando colocado em um ambiente novo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. terminando e quantificando os bioensaios
Nota: A duração de cada replicar experimental dependerá de comportamento de insetos e de tempo de resposta, em geral usar uma exposição mais longa, mais respostas tendem a ser mais informativo.
<ol><li>Registro das condições ambientais.</li>
	<li>Pare as gravações, tais como a câmera de infravermelho, se usado.</li>
	<li>No caso de utilizar câmaras de coleção: após cada replicar, coloque a trevo arena em um freezer para matar os insetos para quantificação. A arena não deve ser deixada no congelador por muito tempo, porque o ambiente frio pode causar o plástico de crack.</li>
	<li>Quantificar o comportamento de insetos por contagem respondentes insetos em gaiolas de coleção ou análise de vídeo. Insetos que permaneceram na arena trevo foram contados como não tendo feito nenhuma escolha. Por exemplo, Culicoides foram encontrados para ser mais atraídas pela luz UV em comparação com fazendo nenhuma escolha7.</li>
</ol>

<ol><li>Briscoe, A. D., Chittka, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+evolution+of+color+vision+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Entomol%22%5BJournal%5D)">The evolution of color vision in insects.</a> Annu. Rev. Entomol. 46, 471-510 (2001).</li>
<li>Srinivasan, M. V., Venkatesh, S. Embodying natural vision into machines. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSrinivasan%2C+MV+%22From+living+eyes+to+seeing+machines%22">From living eyes to seeing machines</a>. , Oxford University Press. U.K. 249-265 (1997).</li>
<li>Srinivasan, M., Moore, R. J. D., Thurrowgood, S., Soccol, D., Bland, D. From Biology to engineering: insect vision and applications to robotics. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSrinivasan%2C+M+%22Frontiers+in+sensing%22">Frontiers in sensing</a>. Barth, F. G., Humphrey, J. A. C., Srinivasan, M. V. , Springer. Vienna, Austria. 19-39 (2012).</li>
<li>Allan, S. A., Day, J. F., Edman, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visual+ecology+of+biting+flies%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.Rev.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Visual ecology of biting flies.</a> Annu.Rev. Entomol. 32, 297-316 (1987).</li>
<li>Brown, A. W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+of+the+responses+of+the+female+Aedes+mosquito+Part+V.+The+role+of+visual+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Entomol.+Res%22%5BJournal%5D)">Studies of the responses of the female Aedes mosquito Part V. The role of visual factors.</a> Bull. Entomol. Res. 44, 567-574 (1953).</li>
<li>Brown, A. W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+responses+of+the+female+Aedes+mosquito+Part+VI.+The+attractiveness+of+coloured+cloths+and+Canadian+species%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Entomol.+Res%22%5BJournal%5D)">Studies on the responses of the female Aedes mosquito Part VI. The attractiveness of coloured cloths and Canadian species.</a> Bull. Entomol. Res. 45, 67-78 (1954).</li>
<li>Snyder, D., Cernicchiaro, N., Cohnstaedt, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sugar-feeding+status+alters+biting+midge+photoattraction%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Vet.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Sugar-feeding status alters biting midge photoattraction.</a> Med. Vet. Entomol. 30, 31-38 (2016).</li>
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<li>Lelito, J. P., Fraser, I., Mastro, V. C., Tumlinson, J. H., Baker, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+visual-cue-based+stickytraps+for+monitoring+of+emerald+ash+borers%2C+Agrilus+planipennis+%28Col.%2C+Buprestidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Novel visual-cue-based stickytraps for monitoring of emerald ash borers, Agrilus planipennis (Col., Buprestidae).</a> J. Appl. Entomol. 132, 668-674 (2008).</li>
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<li>Steverding, D., Troscianko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+role+of+blue+shadows+in+the+visual+behaviour+of+tsetse+flies%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+R.+Soc.+Lond.+B%22%5BJournal%5D)">On the role of blue shadows in the visual behaviour of tsetse flies.</a> Proc. R. Soc. Lond. B. 271, 16-17 (2004).</li>
<li>Cohnstaedt, L. W., Gillen, J. I., Munstermann, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Light-emitting+diode+technology+improves+insect+trapping%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Mosq.+Control+Assoc%22%5BJournal%5D)">Light-emitting diode technology improves insect trapping.</a> J. Am. Mosq. Control Assoc. 24, 331-334 (2008).</li>
<li>Duehl, A. J., Cohnstaedt, L. W., Arbogast, R. T., Teal, P. E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+light+attraction+to+increase+trap+efficiency+for+Tribolium+castaneum+%28Coleoptera%3A+Tenebrionidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Economic+Entomol%22%5BJournal%5D)">Evaluating light attraction to increase trap efficiency for Tribolium castaneum (Coleoptera: Tenebrionidae).</a> J. Economic Entomol. 104, 1430-1435 (2011).</li>
<li>Schmid, R. B., Snyder, D., Cohnstaedt, L. W., McCornack, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hessian+Fly+%28Diptera%3A+Cecidomyiidae%29+Attraction+to+Different+Wavelengths+and+Intensities+of+Light-EmittingDiodes+in+the+Laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Hessian Fly (Diptera: Cecidomyiidae) Attraction to Different Wavelengths and Intensities of Light-EmittingDiodes in the Laboratory.</a> Environ. Entomol. 46 (4), 895-900 (2017).</li>
<li>Cohnstaedt, L. W., Snyder, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+features+of+a+proposed+insecticidal+sugar+trap+for+biting+midges%5BTitle%5D)+AND+%22Vet.+Ital%22%5BJournal%5D)">Design features of a proposed insecticidal sugar trap for biting midges.</a> Vet. Ital. 52 (3-4), 265-269 (2016).</li>
</ol>

Bioensaios de foto-atração são uma ferramenta importante para determinar as cores atraentes ideal e minimizar as opções para ensaios de campo destas cores. No entanto, vários fatores devem ser considerados ao otimizar o bioensaio para um inseto específico, incluindo: única luz vs. experiências competitivas de luz, brilho, faixa espectral ideal, interferência de luz ambiente, estada dos insetos e comportamentos naturais que possam limitar as possíveis respostas.
A maioria dos insetos t...

Quase toda a vigilância entomológica depende do olfato ou atrativos visuais e muitas vezes ambos. Atrativos olfativos voláteis podem dispersar em todo o ambiente, resultando em uma grande área atraente. No entanto, atrativos visuais podem ter um alcance mais limitado devido o invertebrados olho composto resolução imagens1,2,3. Portanto, os atrativos visuais devem ser otimizados para o inseto de interesse para maximizar a atração e a armadilha projetado para tirar proveito dos comportamentos naturais do inseto alvo.
Atração visual baseia-se em comprimentos de onda do sol ou outras fontes de luz que é absorvida ou refletida pela superfície de um objeto; organismos ver esta absorção/refração de comprimentos de onda como cor. Visão de inseto foi encontrado para incluem azul, verde e ultravioleta (UV) comprimentos de onda1. Os insetos usam sua visão para ajudar em encontrar companheiros, comida e abrigo4. Insetos visualmente podem definir tamanhos de objeto, cores, formas, movimentos e contrastes5,6. Insetos desconhecimento ativos são geralmente atraídos pela luz de diferente contraste e intensidade4, enquanto insetos diurnos podem resolver as cores e imagens, além do contraste devido à maior disponibilidade de fóton durante o dia. Armadilhas de monitoramento usam pistas visuais do inseto, a sua vantagem para otimizar a atração e capturar7.
O método mais comum de avaliar foto-atração foi a observação de inseto movimento em direção à várias formas coloridas tais como flores8 ou objetos (tais como cartões pegajoso9,,10). Bioensaios visuais usando colonizados insetos podem ajudar a identificar a gama de comprimentos de onda e/ou intensidades, óptima que reduz o número de ensaios de campo. Bioensaios visuais tais como o "túnel de luz de lado duplo" foram projetados para testes de moscas11. O problema com dois túneis de luz faces são que eles não respondem por insetos que não são coletados. A maioria dos insetos vão ficar preso nos cantos internos e bordos em arenas. Também somente duas cores podem ser testadas de uma só vez. Outros ensaios incluem os métodos de Steverding & Troscianko (2004)12, que reduziu a mosca tsé-tsé atração de grandes bandas (± 50 nm) de cores claras. Luz, emitindo-se diodos (LEDs) foram incorporados as armadilhas para melhorar a atração de insetos, otimizando os comprimentos de onda da luz emitida1,13,14. Otimizando a atração visual destas armadilhas ou dispositivos de monitorização irão melhorar a eficiência de coleta de insetos usando comportamentos inata do inseto para atrair insetos. Desta forma, resultados de bioensaio são usados para otimizar a tecnologia de captura existente. O "terrestre artrópode armadilha" que melhorou a armadilha de cúpula-tipo padrão da indústria para vigilância de besouro de farinha vermelho (EUA patente # US8276314B2)) e o "método e composições para melhoria luz armadilhas" que incorporou da luz-emitindo-se diodos em antena armadilhas de insetos (EUA patente # US2009/0025275A1). As duas patentes usam tecnologia LED que foi otimizada usando os resultados de bioensaio para melhorar significativamente as armadilhas de insetos.
Este estudo descreve uma arena de bioensaio de atração de fotografia e métodos que permitem que os investigadores avaliar a resposta inseto para restringir os comprimentos de onda como uma cor atraente do competidor ou única. Equipamento e modificações experimentais são apresentadas para insetos noturnos, diurnos, terrestres e aéreos.

<table><tbody><tr>material <td></td><td></td><td></td><td>de piscamento de metal</td></tr><tr><td>#10 parafuso</td><td></td> de máquina de aço inoxidável <td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>#10 porca</td><td></td> de travamento de aço inoxidável <td>Estoque</td><td></td></tr><tr><td>5 mm suporte de LED</td><td>Radio Shack Corp</td><td>276-080</td><td></td></tr><tr><td>tinta</td><td></td> spray preta fosca <td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>Fluon</td><td></td><td>Stock</td><td></td></tr><tr><td>tampa de rosca poliacrílica</td><td></td><td></td><td></td>moldada</tr><tr><td>Nalgene</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>Nunc polimetilpenteno</td><td>125 mL, 64 mm de diâmetro externo, 74 mm de altura</td></tr><tr><td></td> Tubos <td></td><td>de Teflon roscados</td> Estoque <td>15 mm de diâmetro, 60 mm de comprimento</td></tr><tr><td>Espectrômetro de luz StellarNet</td><td>Stellar Net, Inc</td><td>BLACK Comet C-SR-25</td><td></td></tr><tr><td>Fonte de luz infravermelha LED</td><td>Tracksys LTD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>câmera de vídeo infravermelha</td><td>Panasonic Corp</td><td>WV-BP330 Panasonic CCTV câmera</td><td></td></tr><tr><td>MEDIACRUISE software</td><td>Canopus Corp</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

elementos-chave da foto atração bioensaio para insetos estudos ou programas de monitoramento

Key Elements of Photo Attraction Bioassay for Insect Studies or Monitoring Programs

Atrativos visuais otimizados aumentará a eficiência de captura de insetos usando comportamentos de inata do inseto alvo (foto-táxis positivos) como um meio para atrair o inseto dentro de uma população controle ou monitoramento de armadilha. Díodos (LEDs) criaram opções de iluminação personalizável com comprimentos de onda específicos (cores), intensidades e larguras de banda, todos os quais podem ser personalizados para os insetos alvo. Bioensaios comportamentais foto-atração podem usar LEDs para otimizar as cores atraentes para uma espécie de inseto até fases da história de vida específicos ou comportamentos (acasalamento, alimentação ou procuram abrigo). Pesquisadores devem então confirmar os resultados de bioensaio no campo e entender a distância limitada atraente dos atrativos visuais.
A arena de bioensaio trevo é um método flexível para avaliar atração foto ao mesmo tempo avaliar uma gama de comportamentos naturais de insetos tais como fuga e respostas de alimentação. A arena pode ser usada para experimentos de insetos terrestres ou aéreos, bem como insetos diurnos e noturnos. Técnicas de coleta de dados com a arena estão filmando, contando o contacto com as luzes ou fisicamente coleta de insetos são atraídos para as luzes. As contas de ensaio para insetos que fazem não-escolha e as arenas podem ser única (não-competitivas) cor ou várias cores (competitivas). O trevo design faz com que insetos com forte thigmotaxis para retornar para o centro da arena, onde eles podem exibir todas as opções em um LED competitivo testes. A arena trevo aqui apresentada tem sido usada com mosquitos, percevejos, mosca Hessian, moscas domésticas, mordidas de mosquitos, besouros de farinha vermelho e prejuízos. Bioensaios são usados para desenvolver precisos e armadilhas de insetos eficazes para guiar o desenvolvimento e otimização de armadilhas de insetos usados para monitorar as flutuações de população de pragas para avaliações de risco doença vetor, a introdução de espécies invasoras, ou utilizados para supressão da população.

A arena terrestre tem sido usada para melhorar armadilhas para farinha vermelho besouros14 de monitoramento de pragas e as arenas aéreas para bárbaro voa15 e mordidas de mosquitos7. Embora os trevo arenas foram semelhantes, as condições de cada espécie de inseto eram diferentes e acomodados a avaliação dos insetos noturnos ou diurnos que pode rastejar ou voar. Mais importante, estes estudos de laboratório traduzido em...

Arenas de bioensaio foto-atração são usados para determinar as cores de luz ideal para maximizar a atração de insetos; no entanto, bioensaios e métodos são específicos para habitats e comportamentos insetos-alvo. Modificações e equipamento personalizável são explicadas para insetos noturnos ou diurnos e terrestres ou aéreos.

Elementos-chave da foto atração bioensaio para insetos estudos ou programas de monitoramento

Optimized visual attractants will increase insect trapping efficiency by using the target insect&#39;s innate behaviors (positive photo-taxis) as a means ...

Este método pode ajudar a responder a questões-chave na vigilância e controle de insetos, melhorando a atração das armadilhas existentes e incorporando cores ou luzes no projeto de futuras armadilhas de monitoramento e controle. A principal vantagem dessa técnica é a avaliação inicial de cores atraentes e comportamentos de insetos em laboratório, antes dos testes caros e demorados em campo. Os insetos têm comportamentos ou instintos inatos que devem ser usados para tornar o monitoramento e a captura mais eficazes.A arena de bioensaio foi projetada para ser um método flexível para avaliar comportamentos em qualquer espécie de inseto, antes dos testes de campo. Este protocolo usa uma arena aérea, mas um design de arena terrestre também está disponível. A diferença crítica entre as arenas aéreas e terrestres é o uso do espaço vertical, que altera o tamanho da arena.Ao selecionar um tipo de arena para um experimento, considere a espécie de inseto que está sendo estudada. A arena aérea tem a capacidade de capturar insetos em um recipiente de coleta, enquanto a arena terrestre é um objeto bidimensional e realmente é projetada para registrar visitas às luzes. Para começar, desmonte e limp

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JoVE Journal

Behavior

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Este manuscrito demonstra e discute técnicas usadas para pesquisa susceptibilidade de pesticidas e detectar a resistência ao contato e pesticidas sistêmicos em pragas artrópodes.

Bioensaios de Resistência a Inseticidas Monitoramento

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Bioensaio eletroantenográfica como uma ferramenta de triagem para voláteis da planta hospedeira

As larvas de Drosophila são sensíveis à luz e respondem às mudanças na luz circundante. Este vídeo descreve um ensaio que testa sua capacidade de evitar a luz, chamado de ensaio do ponto de luz. O protocolo apresentado demonstra como configurar o ensaio com um LED de luz azul e mostra como registrar o comportamento do animal em resposta ao encontro com a luz.

Ensaio de ponto de luz: um método para investigar o comportamento fototático da Drosophila

A perda de colônias de abelhas mel é um desafio para os serviços de polinização de culturas. As atuais práticas de proteção de polinizadores garantem uma abordagem alternativa para minimizar o contato de abelhas com pesticidas nocivos usando produtos químicos repelentes. Aqui, fornecemos métodos detalhados para um protocolo de rastreamento visual para detecção de dissuasores para abelhas.

Protocolo de rastreamento de vídeo para a tela de quimioterapia para abelhas

Os protocolos são descritos para avaliar a toxicidade de produtos químicos para mosquitos imaturos e adultos para o desenvolvimento como novas classes de larvicidas, adulticides e Endectocidas. Os protocolos permitem o elevado-throughput teste de químicas múltiplas na dose de ponto único e posterior avaliação através do ensaio de resposta de dose para determinar a toxicidade em contato ou ingestão.

Protocolos para testar a toxicidade de romance químicas inseticidas para mosquitos

Aqui, descrevemos a construção e a utilização de um túnel de vento para odor mediada ensaios comportamentais com insetos. O projeto de túnel de vento facilita a liberação das fontes de odor por vários métodos, com e sem estímulos visuais. Experiências de túnel de vento são métodos importantes para identificar produtos químicos voláteis comportamentalmente ativos.

Um túnel de vento para Odor mediada insetos ensaios comportamentais

Este protocolo introduz um ensaio do luz-ponto para investigar o comportamento phototática da Drosophila larval. Neste ensaio, um ponto luminoso é gerado como a estimulação clara, e o processo da vacância clara larval é gravado por um sistema Light-based infravermelho da imagem latente.

Ensaio Light Spot-Based para análise de Drosophila larval Phototaxis

O presente artigo detalha um protocolo passo-a-passo para eletroantennogramas bem sucedidos e de baixo ruído em vários gêneros de mosquitos, incluindo fêmeas e machos.

Um guia passo-a-passo para eletroantennografia de mosquitos

Para estudar os impactos da luz artificial à noite (ALAN) em insetos voadores noturnos, a amostragem precisa ser limitada à noite. O protocolo descreve uma armadilha automatizada de interceptação de voo de baixo custo que permite aos pesquisadores amostrar em períodos definidos pelo usuário com maior replicação.

Armadilha de interceptação de voo automatizada de baixo custo para a sub-amostragem temporal de insetos voadores atraídos pela luz artificial à noite

Descrevemos a metodologia e a importância do bioensaio de aplicação tópica para medir a suscetibilidade de inseticidas em mosquitos e moscas frutíferas. O ensaio apresentado é de alto rendimento, utiliza massa de insetos - permitindo assim calcular uma dose letal relativizada em massa em vez de concentração - e provavelmente tem menor variabilidade do que outros métodos semelhantes.

Bioensaio de aplicação tópico para quantificar toxicidade de inseticida para mosquitos e moscas de frutas

Este protocolo descreve o ensaio alimentar obrigatório para avaliar o efeito potencialmente tóxico de um fitoquímico sobre as larvas de insetos lepidópteros. Este é um bioensaio de insetos altamente escalável, fácil de otimizar a dose subletal e letal, atividade dissuasora e efeito fisiológico. Isso poderia ser usado para a triagem de inseticidas ecológicos.

Desenvolvimento de um Sistema de Ensaio Alimentar para Avaliação do Efeito Inseticida de Fitoquímicos sobre Helicoverpa armigera

Aprenda a usar arenas de bioensaio de fotoatração para otimizar a atração de insetos em estudos de comportamento. Este método flexível permite avaliar cores de luz ideais em laboratório antes de testes de campo.

Elementos-chave da foto atração bioensaio para insetos estudos ou programas de monitoramento

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