Name: Murino salivar avaliação funcional através de pilocarpina estimulação seguinte fracionada de radiação (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-04T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 10 s
Description: Aprenda a avaliar a função salivar murina por estimulação com pilocarpina, incluindo traqueostomia, coleta de saliva e dissecção de glândulas. Este método modular permite estudar disfunção glandular e testar intervenções.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Pesquisa reportada nesta publicação foi apoiada pelo Instituto Nacional de dentária e Craniofacial Research (NIDCR) e o National Cancer Institute (NCI) do institutos nacionais da saúde sob prêmio número R56 DE025098, DE027695 UG3 e CA206296 F30. O conteúdo é exclusivamente da responsabilidade dos autores e não representa necessariamente a opinião oficial do institutos nacionais da saúde. Este trabalho também foi apoiado pela NSF DMR 1206219 e a inovação IADR no prêmio de cuidado Oral (2016).
Gostaríamos de agradecer o Dr. Eri Maruyama e Andrew Hollomon por sua ajuda com a coleta de saliva. Gostaríamos de agradecer sua assistência com dissecação de glândula Pei-Lun Weng. Gostaríamos de agradecer a Matthew Ingalls por sua assistência na preparação de figura. Gostaríamos de agradecer o Dr. Elaine Smolock e Emily Wu para leitura crítica deste manuscrito.

Todos na vivo os procedimentos descritos abaixo foram aprovados pela Comissão Universidade recursos animais na Universidade de Rochester, Rochester. NY.
1. preparação
<ol><li>Usando uma balança analítica, pese 20 mg de pilocarpina. Dissolvê-lo em 2 mL de solução salina estéril em um tubo de microcentrifugadora. Nota: Porque pilocarpina é sensível à luz e perde atividade ao longo do tempo, esta solução deve ser preparada no dia da injeção e protegida da luz até administrado.</li>
	<li>Usando uma balança analítica, pesar e identificar todos os tubos de coleção e capilares de vidro. O número de tubos de coleção e capilares de vidro deve corresponder ao número de ratos.</li>
</ol>2. traqueostomia
<ol><li>Pese de camundongos C57/BL6 usando uma balança analítica.</li>
	<li>Utilizando uma seringa de 0,5 mL com agulha 29 x ½", anestesia os ratos com uma solução salina estéril intraperitonealmente injetado de 100 mg/kg quetamina e 10 mg/kg de xilazina. Prossiga para a etapa seguinte quando o mouse não responde mais aos estímulos (ou seja, ausência do reflexo de retirada de pedal), que geralmente ocorre dentro de 5 a 10 min após a injeção.</li>
	<li>Depois da preparação de lubrificante em um aplicador com ponta de algodão, delicadamente aplicam-se aos olhos e posicione o mouse em uma posição supina no palco. O animal anestesiado deve ser mantido na superfície quente. Nota: Todas as etapas são realizadas à temperatura ambiente.</li>
	<li>Proteger o nariz, os membros e cauda no palco usando fita cirúrgica.</li>
	<li>Limpar e molhar a garganta com uma compressa com álcool. Nota: Isto vai ajudar a impedir a entrada de incisões subsequentes de peles.</li>
	<li>Levantar a pele do pescoço na linha média ventral com fórceps, fazer um corte pequeno, superficial, usando tesouras de dissecação. Orientar a tesoura na abertura e abra lentamente as lâminas por via subcutânea para separar tecido aviões.</li>
	<li>Mantendo a pele levantada, cuidadosamente, corte 1 cm abaixo da boca.</li>
	<li>Faça duas incisões laterais em aspectos inferiores e superiores do primeiro corte. Usando fórceps, delicadamente afastado refletem a pele para permitir o acesso a estruturas de cabeça e pescoço.</li>
	<li>Usando o microscópio de dissecação na ampliação de X 8, Visualizar as glândulas submandibulares (mediana: Figura 1).</li>
	<li>Usando a pinça fina, levante suavemente as glândulas para expor os quatro músculos infra-hioideos (cinta) sobrejacente a traqueia. Evite rasgar ou interromper a vasculatura circundante ou ductos excretores.</li>
	<li>Se a coleta de saliva de mais de um rato, repita passos 2.1-2.10 com cada rato antes de continuar. Nota: Este procedimento pode ser realizado com segurança em até 5 ratos simultaneamente.</li>
	<li>Com tesouras pequenas de dissecação, remova a porção medial dos músculos enquanto permanecer tão próximo quanto possível na linha mediana. Só corte quanto for necessário para visualizar a traqueia e manter músculos fora do caminho durante o procedimento. Evite roubar qualquer navios nas proximidades, porque se houver depleção de volume secundário a hemorragia significativa, a pilocarpina não será eficaz na indução de secreção.</li>
	<li>Refletem os músculos da cinta da traqueia.</li>
	<li>Visualize a laringe, traqueia e glândula tireoide. Certifique-se de que a traqueia é clara de sobrejacente tecido.</li>
	<li>Faça uma incisão horizontal na traqueia inferior/posterior a tireoide usando tesouras pequenas de dissecação. Certifique-se de que as vias aéreas é patente e clara de fluido.</li>
</ol>3. saliva coleção
<ol><li>Remova a fita perto palco de dissecação boca e ângulo para baixo (45°, cranialmente) para ajudar com o fluxo de saliva.</li>
	<li>Utilizando uma seringa de 0,5 mL com agulha 29 x ½", execute a injeção intraperitoneal de 10 pilocarpina de peso de corpo µ l/g para uma dose total de 100 mg/kg.</li>
	<li>Inicie um timer. Se vários mouses de dosagem, reduza o tempo de chumbo movendo-se rapidamente e por ter um assistente injetar simultaneamente os ratos restantes.</li>
	<li>Usando pinças padrão, abra a boca para acesso de tubo capilar.</li>
	<li>Depois de observa-se uma gota de saliva na boca, coloca a extremidade proximal do tubo capilar no fluido, com a extremidade distal, colocada em um tubo de coletando posicionado abaixo do palco dissecação (ambos os tubos pre-pesados). Nota: Em ratos fêmeas C57/BL6 6-10 semanas de idade, salivação bruta ocorre dentro de 2 min de injeção de pilocarpina.</li>
	<li>Se saliva está construindo na boca, mas não flui através do tubo, tente novamente o passo anterior. Certifique-se de que o tubo não é colocado diretamente contra uma superfície da mucosa, que pode obstruir a entrada.</li>
	<li>Colete a saliva para um total de 12 min após estimulação de pilocarpina. Garantir que o estoma permanece claro. Nota: Aumento do volume tidal e secreções (salivares, urinárias, fecais) são normais durante este tempo.</li>
	<li>Se os ratos têm deprimido função de saliva (ex., devido a lesão ou a intervenção), transfira o líquido restante da boca para o tubo de coleta usando uma micropipeta P200. Se a recolha de vários mouses, certifique-se de que as dicas são alteradas.</li>
	<li>Registro do peso da saliva coletada mais tubos de 12 min após a injeção de pilocarpina.</li>
</ol>4. a glândula dissecação
<ol><li>Eutanásia em ratos pela eutanásia de CO2 (conforme descrito nas orientações AVMA para eutanásia de animais: edição de 2013) seguido por toracotomia, tendo o cuidado de preservar as estruturas da cabeça e do pescoço. Por esta razão, evite deslocamento cervical como um método de eutanásia.</li>
	<li>Coloque o mouse em uma posição supina no palco. Reposicione as glândulas no site original sobre a traqueia (Figura 1).</li>
	<li>Usando um microscópio dissecação sob magnificação de X 8, Visualizar as glândulas maiores: o PG, SMG e SLG. Para distinguir as glândulas durante a dissecção, identifica que o PG é difuso, lateral para a SMG e SLG a mentir. Nota: Se a dissecar o PG, isto deve ser feito primeiro porque é o menos definidas e mais susceptível de ser rasgado.</li>
	<li>Agarrar a cauda do PG com fórceps, puxando-o longe de estruturas subjacentes e aplicar suavemente a tensão antes de cortar a cabeça do PG com tesoura de dissecação.</li>
	<li>Ruptura da cápsula que rodeia os SMGs usando fórceps. Separe delicadamente SMG a torto e a direito.</li>
	<li>Livre o dorso da SMG de tecido nonglandular aderido, usando fórceps.</li>
	<li>Remova o SMG do pescoço pelo ducto de Wharton tenso de desenho com fórceps e cortar o duto com tesoura de dissecação.</li>
	<li>Suavemente separa o SLG a SMG usando fórceps. Nota: A SIG é o aspecto súpero a SMG.</li>
	<li>Usando uma balança analítica, pesos registros de SMG.</li>
</ol>

<ol><li>Bradley, P., O'Hara, J. <a target="_blank" href="http://www.surgeryjournal.co.uk/article/S0263-9319(15)00194-5/pdf">Diseases of the salivary glands.</a> Surgery (Oxford). 33 (12), 614-619 (2015).</li>
<li>Fox, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+enhancement+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Caries+Research%22%5BJournal%5D)">Salivary enhancement therapies.</a> Caries Research. 38 (3), 241-246 (2004).</li>
<li>Konings, A. W. T., Coppes, R. P., Vissink, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+mechanism+of+salivary+gland+radiosensitivity%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Radiation+Oncology+Biology+Physics%22%5BJournal%5D)">On the mechanism of salivary gland radiosensitivity.</a> International Journal of Radiation Oncology Biology Physics. 62 (4), 1187-1194 (2005).</li>
<li>Burlage, F. R., Coppes, R. P., Meertens, H., Stokman, M. A., Vissink, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parotid+and+submandibular%2Fsublingual+salivary+flow+during+high+dose+radiotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Radiotherapy+and+Oncology%22%5BJournal%5D)">Parotid and submandibular/sublingual salivary flow during high dose radiotherapy.</a> Radiotherapy and Oncology. 61 (3), 271-274 (2001).</li>
<li>Aure, M. H., Konieczny, S. F., Ovitt, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+gland+homeostasis+is+maintained+through+acinar+cell+self-duplication%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Salivary gland homeostasis is maintained through acinar cell self-duplication.</a> Developmental Cell. 33 (2), 231-237 (2015).</li>
<li>Aure, M. H., Arany, S., Ovitt, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+Glands%3A+Stem+Cells%2C+Self-duplication%2C+or+Both%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dental+Research%22%5BJournal%5D)">Salivary Glands: Stem Cells, Self-duplication, or Both?</a> Journal of Dental Research. 94 (11), 1502-1507 (2015).</li>
<li>Ono, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+effects+of+cevimeline+and+pilocarpine+on+salivary+mechanisms%2C+cardiovascular+response+and+thirst+sensation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Distinct effects of cevimeline and pilocarpine on salivary mechanisms, cardiovascular response and thirst sensation in rats.</a> Archives of Oral Biology. 57 (4), 421-428 (2012).</li>
<li>Proctor, G. B., Carpenter, G. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+salivary+gland+function+by+autonomic+nerves%5BTitle%5D)+AND+%22Auton+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Regulation of salivary gland function by autonomic nerves.</a> Auton Neuroscience. 133 (1), 3-18 (2007).</li>
<li>Nezu, A., Morita, T., Tojyo, Y., Nagai, T., Tanimura, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+agonistic+effects+of+pilocarpine+on+Ca%282%2B%29+responses+and+salivary+secretion+in+the+submandibular+glands+of+live+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Physiology%22%5BJournal%5D)">Partial agonistic effects of pilocarpine on Ca(2+) responses and salivary secretion in the submandibular glands of live animals.</a> Experimental Physiology. 100 (6), 640-651 (2015).</li>
<li>Urita, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rebamipide+and+mosapride+enhance+pilocarpine-induced+salivation%5BTitle%5D)+AND+%22North+American+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Rebamipide and mosapride enhance pilocarpine-induced salivation.</a> North American Journal of Medical Sciences. 1 (3), 121-124 (2009).</li>
<li>Arany, S., Benoit, D. S., Dewhurst, S., Ovitt, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoparticle-mediated+gene+silencing+confers+radioprotection+to+salivary+glands+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Therapy%22%5BJournal%5D)">Nanoparticle-mediated gene silencing confers radioprotection to salivary glands in vivo.</a> Molecular Therapy. 21 (6), 1182-1194 (2013).</li>
<li>Kondo, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+differences+in+the+acinar+cells+of+the+murine+major+salivary+glands%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dental+Research%22%5BJournal%5D)">Functional differences in the acinar cells of the murine major salivary glands.</a> Journal of Dental Research. 94 (5), 715-721 (2015).</li>
<li>Evans, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Severe+impairment+of+salivation+in+Na%2B%2FK%2B%2F2Cl-+cotransporter+%28NKCC1%29-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Severe impairment of salivation in Na+/K+/2Cl- cotransporter (NKCC1)-deficient mice.</a> Journal of Biological Chemistry. 275 (35), 26720-26726 (2000).</li>
<li>Delanian, S., Lefaix, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+radiation-induced+fibroatrophic+process%3A+therapeutic+perspective+via+the+antioxidant+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Radiotherapy+and+Oncology%22%5BJournal%5D)">The radiation-induced fibroatrophic process: therapeutic perspective via the antioxidant pathway.</a> Radiotherapy and Oncology. 73 (2), 119-131 (2004).</li>
<li>Guchelaar, H. J., Vermes, A., Meerwaldt, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiation-induced+xerostomia%3A+pathophysiology%2C+clinical+course+and+supportive+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Support+Care+Cancer%22%5BJournal%5D)">Radiation-induced xerostomia: pathophysiology, clinical course and supportive treatment.</a> Support Care Cancer. 5 (4), 281-288 (1997).</li>
<li>Lin, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measuring+short-term+%CE%B3-irradiation+effects+on+mouse+salivary+gland+function+using+a+new+saliva+collection+device%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Measuring short-term γ-irradiation effects on mouse salivary gland function using a new saliva collection device.</a> Archives of Oral Biology. 46 (11), 1085-1089 (2001).</li>
<li>Montenegro, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profound+differences+between+humans+and+rodents+in+the+ability+to+concentrate+salivary+nitrate%3A+Implications+for+translational+research%5BTitle%5D)+AND+%22Redox+biology%22%5BJournal%5D)">Profound differences between humans and rodents in the ability to concentrate salivary nitrate: Implications for translational research.</a> Redox biology. 10, 206-210 (2016).</li>
<li>Choi, J. S., Park, I. S., Kim, S. K., Lim, J. Y., Kim, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphometric+and+Functional+Changes+of+Salivary+Gland+Dysfunction+After+Radioactive+Iodine+Ablation+in+a+Murine+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Thyroid%22%5BJournal%5D)">Morphometric and Functional Changes of Salivary Gland Dysfunction After Radioactive Iodine Ablation in a Murine Model.</a> Thyroid. 23 (11), 1445-1451 (2013).</li>
<li>Imamura, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+pilocarpine-induced+saliva+secretion+by+adrenergic+agonists+in+ICR+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+and+Experimental+Pharmacology+and+Physiology%22%5BJournal%5D)">Inhibition of pilocarpine-induced saliva secretion by adrenergic agonists in ICR mice.</a> Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 39 (12), 1038-1043 (2012).</li>
<li>Ma, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+Secretion+of+Saliva+in+Transgenic+Mice+Lacking+Aquaporin-5+Water+Channels%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Defective Secretion of Saliva in Transgenic Mice Lacking Aquaporin-5 Water Channels.</a> Journal of Biological Chemistry. 274 (29), 20071-20074 (1999).</li>
<li>Parkes, M. W., Parks, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Supersensitivity+of+salivation+in+response+to+pilocarpine+after+withdrawal+of+chronically+administered+hyoscine+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Supersensitivity of salivation in response to pilocarpine after withdrawal of chronically administered hyoscine in the mouse.</a> British Journal of Pharmacology. 46 (2), 315-323 (1972).</li>
<li>Nishiyama, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Up-Regulated+PAR-2-Mediated+Salivary+Secretion+in+Mice+Deficient+in+Muscarinic+Acetylcholine+Receptor+Subtypes%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology+and+Experimental+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">Up-Regulated PAR-2-Mediated Salivary Secretion in Mice Deficient in Muscarinic Acetylcholine Receptor Subtypes.</a> Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 320 (2), 516(2007).</li>
<li>Yang, B., Song, Y., Zhao, D., Verkman, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotype+analysis+of+aquaporin-8+null+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Cell+Physiology%22%5BJournal%5D)">Phenotype analysis of aquaporin-8 null mice.</a> American Journal of Physiology-Cell Physiology. 288 (5), C1161-C1170 (2005).</li>
<li>Kamiya, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((X-Ray-Induced+Damage+to+the+Submandibular+Salivary+Glands+in+Mice%3A+An+Analysis+of+Strain-Specific+Responses%5BTitle%5D)+AND+%22BioResearch+Open+Access%22%5BJournal%5D)">X-Ray-Induced Damage to the Submandibular Salivary Glands in Mice: An Analysis of Strain-Specific Responses.</a> BioResearch Open Access. 4 (1), 307-318 (2015).</li>
<li>Patel, R. M., Varma, S., Suragimath, G., Zope, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimation+and+Comparison+of+Salivary+Calcium%2C+Phosphorous%2C+Alkaline+Phosphatase+and+pH+Levels+in+Periodontal+Health+and+Disease%3A+A+Cross-sectional+Biochemical+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+and+Diagnostic+Research%22%5BJournal%5D)">Estimation and Comparison of Salivary Calcium, Phosphorous, Alkaline Phosphatase and pH Levels in Periodontal Health and Disease: A Cross-sectional Biochemical Study.</a> Journal of Clinical and Diagnostic Research. 10 (7), ZC58-ZC61 (2016).</li>
<li>Droebner, K., Sandner, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+the+salivary+secretion+assay+in+F508del+mice--the+murine+equivalent+of+the+human+sweat+test%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cystic+Fibrosis%22%5BJournal%5D)">Modification of the salivary secretion assay in F508del mice--the murine equivalent of the human sweat test.</a> Journal of Cystic Fibrosis. 12 (6), 630-637 (2013).</li>
<li>Lamy, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+mouse+whole+saliva+soluble+proteome+induced+by+tannin-enriched+diet%5BTitle%5D)+AND+%22Proteome+Science%22%5BJournal%5D)">Changes in mouse whole saliva soluble proteome induced by tannin-enriched diet.</a> Proteome Science. 8 (1), 65(2010).</li>
<li>Mahomed, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+mucin+immunohistochemistry+in+salivary+gland+tumors+and+head+and+neck+squamous+cell+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Oncology%22%5BJournal%5D)">Recent advances in mucin immunohistochemistry in salivary gland tumors and head and neck squamous cell carcinoma.</a> Oral Oncology. 47 (9), 797-803 (2011).</li>
<li>Kohlgraf, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitation+of+SPLUNC1+in+saliva+with+an+xMAP+particle-based+antibody+capture+and+detection+immunoassay%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Quantitation of SPLUNC1 in saliva with an xMAP particle-based antibody capture and detection immunoassay.</a> Archives of Oral Biology. 57 (2), 197-204 (2012).</li>
<li>Maimets, M., Bron, R., de Haan, G., van Os, R., Coppes, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Similar+ex+vivo+expansion+and+post-irradiation+regenerative+potential+of+juvenile+and+aged+salivary+gland+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Radiotherapy+and+Oncology%22%5BJournal%5D)">Similar ex vivo expansion and post-irradiation regenerative potential of juvenile and aged salivary gland stem cells.</a> Radiotherapy and Oncology. , (2015).</li>
<li>Lombaert, I. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+of+salivary+gland+function+after+stem+cell+transplantation+in+irradiated+glands%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Rescue of salivary gland function after stem cell transplantation in irradiated glands.</a> PLoS One. 3 (4), e2063(2008).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Apresentamos um método várias etapas para avaliar a função de glândula salivar, que pode ser aplicada para estudar terapêutica e lesão da glândula. Nosso procedimento envolve a traqueostomia, coleta de saliva e dissecação de glândula, cada qual com aplicações experimentais que podem suportar um estudo integrado da biologia de glândula salivar. Por exemplo, traqueostomia murino tem sido usada para gestão geral das vias respiratórias durante os procedimentos de obstruir a cavidade oral.
Adequada...

Distúrbios da glândula salivar incluem síndromes de desregulação ou secreção prejudicada, levando a subprodução (xerostomia e hipossalivação) de saliva1ou superprodução (sialorrhea). Em ambos os casos, há interesse em melhorar a nossa compreensão da biologia da glândula salivar com o objectivo final de desenvolvimento terapêutico2.
As glândulas salivares são órgãos altamente radiosensitive e muitas vezes são danificadas durante a radioterapia de câncer de cabeça e pescoço, levando a permanente boca seca (xerostomia)3,4. Ao contrário de outros tecidos radiosensitive, no entanto, a taxa de rotatividade das glândulas salivares é relativamente baixa, e o mecanismo de perda secretora é mal compreendido5,6. Neste cenário de lesão única, estratégias de regeneração e protecção contra as radiações de tecido requerem avaliação funcional salivar. Experimentalmente, coleta de saliva murino é uma ferramenta particularmente valiosa em avaliar a resposta de glândula a radiação e agentes terapêuticos.
Aqui, apresentamos um método para executar e quantificar a secreção de saliva estimulada usando pilocarpine, um potente agonista muscarínico7. Pilocarpina estimula o sistema nervoso autônomo para induzir a secreção de glândula8,9. Para completar este teste apropriadamente, uma traqueostomia é necessária para garantir que o rato mantém uma via aérea patente durante todo o procedimento e para reduzir os riscos de asfixia e aspiração de secreções em pool na cavidade oral10.
Este é um procedimento terminal, culminando na remoção de uma das três principais glândulas salivares: as parótidas (PG), a submandibular (SMG) e a sublingual (SLG). Para estudos funcionais, glândula pesos são registados e são frequentemente usados para normalizar a saliva medição11,12,13. Este dados são particularmente importantes em estudos de radiação, em que a atrofia da glândula é um resultado esperado14,15
Há variabilidade na literatura em relação à secreção de saliva como estimulada é executada e relatou16. Por exemplo, doses de pilocarpina dentro da literatura extensão pelo menos três ordens de magnitude17,18,19,20,21,22,23. Aqui, apresentamos um protocolo de pilocarpina otimizada de alta dose com a intenção de melhor reprodutibilidade na execução do método, bem como fornecendo uma plataforma modular de técnicas (traqueostomia, coleta de saliva e dissecação de glândula) que pode ser adaptado como precisava.
Além de demonstração de protocolo, incluímos dados funcionais representativos do fluxo de saliva em 2 semanas seguintes à radiação fracionada (4 doses de Gy 6.85) para a região SMG.

<table><tbody><tr><td>Cloridrato de pilocarpina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P6503</td><td>Pilocarpina</td></tr><tr><td>Estudante Vannas Tesoura de mola</td><td>Fine Science Tools</td><td>91500-9</td><td>Tesoura de mola para traqueostomia</td></tr><tr><td>Solução salina estéril</td><td>Medline</td><td>RDI30296H</td><td>Solução salina</td></tr><tr><td>Dumont # 7 Fórceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11274-20</td><td>Fórceps curvo</td></tr><tr><td>Dumont # 5 Fórceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-10</td><td>Fórceps Reta</td></tr> Padrão <tr><td>Padrão Fórceps</td><td>Ferramentas de Belas Ciências</td><td>11000-12</td><td>Fórceps Blunt</td></tr><tr><td>Tesoura Fina- Carboneto de Tungstênio</td><td>Ferramentas de Belas Ciências</td><td>14568-09</td><td>Tesoura de Dissecção</td></tr><tr><td>Microhematócrito Tubos Capilares Heparinizados</td><td>Fisher Scientific</td><td>22362566</td><td>Tubos Capilares</td></tr><tr><td>Lubrificante Pomada</td> <td>para os OlhosRefresh</td><td>N/A</td><td>Refresh Lacri-Lube</td></tr><tr><td>Goat policlonal anti-Nkcc1</td><td>Santa Cruz Biotech</td><td>SC-21545</td><td>Nkcc1 Anticorpo</td></tr><tr><td>DAPI (4',6-Diamidino-2-Fenilindol, Dicloridrato)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>D1306</td><td>DAPI</td></tr><tr><td>GraphPad Prism</td><td></td><td>GraphPad ver6.0</td><td>Software Estatístico</td></tr><tr><td>Aplicador com ponta de algodão</td><td>Medline</td><td>MDS202000</td><td>Aplicador para pomada ocular</td></tr><tr><td>0,5 cc Seringa de insulina, 29G x 1/2 "</td><td>BD</td><td>7629</td><td>Seringa para injeção intraperitoneal</td></tr></tbody></table>

murino salivar avaliação funcional através de pilocarpina estimulação seguinte fracionada de radiação

Murine Salivary Functional Assessment via Pilocarpine Stimulation Following Fractionated Radiation

Hipossalivação é comumente observada na reação auto-imune da síndrome de Sjögren ou seguir lesão de radiação para as glândulas salivares maiores. Nestes casos, perguntas permanecem sobre a patogênese da doença e de intervenções eficazes. A técnica otimizada que permite a avaliação funcional das glândulas salivares é inestimável para investigação terapêutica, disfunção e biologia de glândula exócrina. Aqui, apresentamos uma abordagem passo a passo para executar pilocarpina estimulou a secreção de saliva, incluindo a traqueostomia e a dissecação das três principais murino glândulas salivares. Também detalhamos a anatomia cabeça e pescoço murino apropriada acessada durante estas técnicas. Esta abordagem é escalável, permitindo vários mouses para serem processados simultaneamente, melhorando assim a eficiência do fluxo de trabalho. Nosso objetivo é melhorar a reprodutibilidade destes métodos, cada qual tem mais aplicativos dentro do campo. Além da recolha de saliva, discutimos métricas para quantificar e normalizando a capacidade funcional desses tecidos. Dados representativos são incluídos a partir de glândulas submandibulares com função deprimida glândula salivar 2 semanas seguintes à radiação fracionada (4 doses de 6.85 Gy).

Quando realizar pilocarpina dose alta estimulada coleta de saliva, é importante manter as vias aéreas para evitar aspiração ou asfixia de secreções na cavidade oral. Um esquema da traqueostomia é fornecido (Figura 1). Após incisão traqueal, o estoma deve ficar claro de tecidos e fluidos.
Para aprimorar a ação capilar durante a coleta de saliva, ratos devem ser posicionados de cabeça para baixo em um...

Apresentamos uma abordagem detalhada para realizar coleta de saliva, incluindo murino traqueostomia e o isolamento dos três glândulas salivares maiores.

Murino salivar avaliação funcional através de pilocarpina estimulação seguinte fracionada de radiação

Hyposalivation is commonly observed in the autoimmune reaction of Sj&#246;gren's syndrome or following radiation injury to the major salivary glands. In ...

O objetivo geral deste procedimento é avaliar a função salivar murina por estimulação com pilocarpina. Este método pode ser aplicado para entender a história natural da disfunção das glândulas salivares e para testar a eficácia de quaisquer intervenções potenciais. Nosso protocolo fornece uma plataforma modular de técnicas, incluindo traqueotomia murina, coleta de saliva e dissecção de glândulas.Clinicamente, essa técnica tem implicações para estudos que avaliam a boca seca ou a produção excessiva de saliva. E também pode ser aplicado a outros procedimentos intraorais que requerem manejo das vias aéreas. Aqueles que aprendem este protocolo pela primeira vez podem achar a traqueostomia e a dissecção da glândula desafiadoras.Esperamos que este vídeo ajude você a aprender a técnica adequada de isolamento da glândula, bem como a anatomia relevante. Usando uma balança analítica, pesar 20 miligramas de pilocarpina e dissolva-a em 2 mililitros de solução salina estéril. As soluções de pilocarpina devem ser feitas frescas no dia do uso.Em seguida, pese todos os recipientes de coleta para o procedimento e pese o mouse para dosá-lo com precisão. Use a cepa C57 black 6. Depois de anestesiar o camundongo e confirmar a anestesia com a pinça do dedo do pé, aplique pomada oftálmica usando um aplicador com ponta de algodão e posicione o camundongo em decúbito dorsal.Em seguida, prenda seus membros, nariz e cauda com fita cirúrgica. Em seguida, limpe e molhe o pescoço usando um lenço umedecido com álcool. Agora, use uma pinça para beliscar o colo da linha média ventral e, com uma tesoura, faça um corte pequeno e superficial.Em seguida, guie a tesoura para a abertura e abra lentamente as lâminas por via subcutânea para separar os planos dos tecidos. Enquanto mantém a pele levantada, faça outro corte com cuidado um centímetro abaixo da boca. Em seguida, faça duas incisões laterais, inferior e superior ao primeiro corte.Agora, usando uma pinça, separe suavemente a pele para acessar a anatomia da cabeça e do pescoço. Prossiga usando um microscópio de dissecação com ampliação de oito vezes. Usando uma pinça fina, levante suavemente a glândula submandibular para expor os quatro músculos infra-hióideos que recobrem a traqueia.Evite rasgar ou interromper a vasculatura circundante ou os ductos excretores. Se coletar saliva de mais de um camundongo, prepare todos os camundongos até este ponto antes de prosseguir. Uma pessoa pode lidar com até cinco ratos simultaneamente.Agora, para continuar a cirurgia, use uma pequena tesoura de dissecação para remover a porção medial dos músculos da cinta, mantendo-se perto da linha média. Remova apenas o músculo suficiente para visualizar a traqueia e evitar que os músculos interfiram no procedimento. Ao dissecar os músculos da cinta, é especialmente importante evitar cortar os vasos próximos.Um corte pode levar à depleção de volume secundária à hemorragia e, assim, tornar a pilocarpina ineficaz para a indução da secreção salivar. Para prosseguir, reflita os músculos da cinta para longe da traqueia para visualizar a laringe, a traqueia e a glândula tireoide. Certifique-se de que a traqueia esteja livre de tecido sobrejacente.Por fim, faça uma incisão horizontal na traqueia, inferior à tireoide, usando uma pequena tesoura de dissecação, não um bisturi. Certifique-se de que essas vias aéreas estejam patentes e livres de fluido. Para a coleta de saliva, primeiro remova a fita perto da boca e, em seguida, incline o estágio de dissecção a 45 graus para direcionar o fluxo de saliva cranialmente.Em seguida, use uma seringa de 0,5 mililitro com uma agulha de calibre 29 de meia polegada para administrar uma injeção intraperitoneal de pilocarpina. Em seguida, inicie um cronômetro. Se vários ratos estiverem sendo injetados, trabalhe rapidamente com a ajuda de um assistente.Em seguida, use uma pinça padrão para abrir a boca e colocar um tubo capilar na posição. Uma gota de saliva deve se formar em alguns minutos. Coloque uma extremidade do tubo capilar na saliva e coloque a outra extremidade em um tubo coletor posicionado abaixo do estágio de dissecação.Conforme necessário, reposicione o tubo para retirar a saliva. Evite entrar em contato com os tecidos da mucosa, pois o muco pode obstruir a entrada. Colete saliva por 12 minutos a partir do momento da injeção.O estoma deve permanecer limpo por toda parte. Se o camundongo tiver função de saliva deprimida, transfira o fluido de sua boca para o tubo de coleta usando uma micropipeta P200. Sempre use um tubo ou ponta diferente para cada mouse.Depois de completar todas as coletas, pese novamente os recipientes de coleta. Depois de sacrificar o camundongo por asfixia por dióxido de carbono, faça uma toracotomia cuidadosa e coloque o camundongo em decúbito dorsal no estágio do microscópio de dissecação. Em seguida, reposicione as glândulas no local da cirurgia original.Com ampliação de oito vezes, visualize as glândulas principais, PG, SMG e SLG. O PG é difuso e está posicionado lateralmente ao SMG e ao SLG. Disseque o PG primeiro.Segure a cauda do PG com uma pinça, puxando-a para longe das estruturas subjacentes. Construa até uma tensão suave e, em seguida, corte a cabeça do PG com uma tesoura de dissecação. Em seguida, rompa a cápsula ao redor das SMGs com uma pinça.Em seguida, separe suavemente o SMG esquerdo e direito. Em seguida, libere o aspecto dorsal do SMG do tecido não glandular circundante. Para remover o SMG, aperte o duto de Wharton com uma pinça e corte o duto com uma tesoura de dissecação.O SLG está no aspecto superolateral do SMG. Para separar as duas glândulas, segure cada uma com uma pinça separada e posicione um dente no plano do tecido entre as glândulas. Então, aumente lentamente a tensão e as duas glândulas se separarão gradualmente.Depois de isolar o tecido glandular, pese imediatamente os vasos de coleta. Como controle positivo para a análise, SMGs de camundongos foram irradiados e comparados aos controles. Duas semanas após quatro frações de radiação a 6,85 gray, a função da saliva diminuiu significativamente.Tanto a secreção total de saliva quanto a secreção normalizada para o peso úmido da glândula apresentaram redução da capacidade funcional salivar, demonstrando a sensibilidade do ensaio. Em seguida, as SMGs foram dissecadas. Eles podem ser consertados, seccionados e manchados.A coloração de hematoxilina e eosina foi usada para comparar a arquitetura macroscópica com ou sem estimulação com pilocarpina. Além disso, os tecidos foram imunomarcados para um transportador de cloreto de sódio-potássio de membrana, NKCC1. Em ambas as colorações, os tecidos apresentaram morfologia celular semelhante, independentemente da estimulação da pilocarpina.Depois de assistir a este vídeo, você deve ter uma boa compreensão de como avaliar a função salivar murina por estimulação com pilocarpina. Uma vez dominada, essa técnica completa pode ser feita em menos de uma hora. Este método permite que os pesquisadores salivares coletem saliva total para quantificar a função da glândula e isolar de forma limpa e reprodutível as três principais glândulas salivares.Ao tentar este procedimento, especialmente com mais de um camundongo, é importante mover-se rapidamente e encerrar a coleta de saliva no momento correto. Após este procedimento, a composição e a atividade enzimática podem ser determinadas a partir da saliva total, enquanto os tecidos glandulares podem ser processados para histologia ou imunocoloração.

murine-salivary-functional-assessment-via-pilocarpine-stimulation

Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Um protocolo para a canulação do mouse glândula salivar submandibular via ducto de Wharton, é descrito. Para este experimento, a solução de azul de tripano é usado como um tintureiro para demonstrar como esta técnica efetivamente oferece infusões na glândula alvo, e sugerir a confiabilidade dessa nova abordagem como uma potencial terapia medicamentosa / célula clínicos para a regeneração das glândulas salivares.

Canulação da glândula submandibular do rato através do duto salivar de Wharton

A função dos neurônios de mamíferos nascido de adultos continua a ser uma área ativa de pesquisa. A radiação ionizante inibe o nascimento de novos neurônios. Usando computador guiada por tomografia irradiação focal (CFIR), segmentação anatômica tridimensional de populações específicas progenitoras neurais agora pode ser usado para avaliar o papel funcional da neurogênese adulta.

Interrogatório funcional do Adulto Hypothalamic Neurogenesis com Focal Radiológica Inibição

A hipofunção das glândulas salivares, um dos principais efeitos adversos da radioterapia de cabeça e pescoço, diminui a qualidade de vida do paciente. A demonstração da eficácia de novas terapias em modelos animais é um pré-requisito antes da transição clínica. Este protocolo descreve a administração retroductal e a irradiação local das glândulas submandibulares de ratos.

Retroductal submandibular Glândula instilação e localizada fracionado irradiação em um modelo de rato de salivar Hipofunção

Nós descrevemos um método que utiliza a irradiação periférica direcionada para induzir comportamento à fadiga, como em ratos. A dose de irradiação não letal selecionado leva a uma redução de uma semana em atividade de execução roda voluntária.

Um mouse modelo de fadiga induzida por irradiação periférica

Hipofunção das glândulas salivares é uma consequência frequente da terapia de radiação e doença auto-imune. Reprodutível avaliação da função da glândula salivar em modelos do rato destas doenças é um desafio técnico. Aqui, um método simples para a medição exata e reproduzível da produção de saliva em camundongos é descrito.

Um método para a medição da função da glândula salivar em ratos

Entrega de drogas local para as glândulas submandibulares é de interesse em biologia de glândula salivar de entendimento e para o desenvolvimento de novas terapêuticas. Apresentamos um protocolo de injeção retroductal atualizadas e detalhadas, destinado a melhorar a precisão de entrega e reprodutibilidade experimental. O aplicativo aqui apresentado é a entrega de nanopartículas poliméricas.

Injeção de Retroductal de nanopartículas para a glândula Submandibular murino

Usar culturas queratinócitos tridimensionais para visualizar a morfologia e os marcadores funcionais de glândulas salivares pode fornecer introspecções novas nos mecanismos de dano de tecido depois da radiação. Descrito aqui é um protocolo para secção, cultura, irradiar, mancha, e imagem 50 – 90 μm de espessura secções salivares antes e após a exposição à radiação ionizante.

Tratamento de radiação de culturas organotypic de glândulas salivares submandibulares e parótidas modelos chave in vivo características

A imagem por imunofluorescência é limitada pela capacidade de observar processos biológicos complexos e dependentes do tempo em apenas um único instantâneo no tempo. Este estudo descreve uma abordagem de imagem ao vivo conduzida em cortes de glândula submandibular de camundongos com corte preciso. Esta abordagem permite a observação em tempo real das interações célula-célula durante a homeostase e os processos de regeneração e reparo.

Interrogando interações célula-célula na glândula salivar via imagem de células vivas ex vivo

Aqui, apresentamos um protocolo para aplicar agulhamento de fogo sob orientação ultrassonária nas camadas glandulares ou musculares para o tratamento da sialorreia em pacientes traqueotomiados após AVC.

Acupuntura com agulha de fogo guiada por ultrassom para tratar sialorreia em pacientes traqueotomiados

Um modelo murino de estimulação eléctrica neuromuscular (EENM), uma modalidade segura e barata clínica, para os músculos do compartimento anterior é descrito. Este modelo tem a vantagem de a modificação de um dispositivo facilmente disponível clínica para a finalidade de obter contracções musculares segmentados e específicos em ratos.

Um modelo murino de treinamento muscular por eletroestimulação neuromuscular

Aprenda a avaliar a função salivar murina por estimulação com pilocarpina, incluindo traqueostomia, coleta de saliva e dissecção de glândulas. Este método modular permite estudar disfunção glandular e testar intervenções.

Murino salivar avaliação funcional através de pilocarpina estimulação seguinte fracionada de radiação

Explorar mais vídeos