21 de junho de 2018
Identificação de variantes genéticas contribuindo para doenças humanas complexas nos permite identificar novos mecanismos. Aqui, vamos demonstrar uma abordagem de genotipagem multiplex de genes candidatos ou análise de percurso de gene que maximiza a cobertura de baixo custo e é passível de estudos de coorte-baseado.
Este método pode ajudar a responder a questões-chave nos campos de diagnóstico clínico e genética, como a detecção de marcadores genéticos associados a resultados de doenças, incluindo o vírus do papiloma humano. A principal vantagem dessa técnica é que ela é um método de diagnóstico direcionado e eficiente em termos de custo. Para iniciar este procedimento, reconstitua quaisquer primers liofilizados ordenados com água de grau molecular.
Puxe os primers para frente e para trás para cada ensaio multiplexado em uma mistura de primer padrão, de modo que contenha cada primer em uma concentração de zero vírgula cinco milimolares. Depois disso, prepare uma mistura mestre para o PCR, conforme descrito no protocolo de texto. Adicione quatro microlitros dessa mistura a cada poço de uma placa de PCR de 384 poços, juntamente com um microlitro de DNA genômico em uma concentração entre cinco e 10 nanogramas por microlitro.
Cubra a placa com uma tampa de placa e centrifugue por 200 vezes G por um minuto em temperatura ambiente. Em seguida, execute o PCR conforme descrito no protocolo de texto. Carregue um microlitro de produto PCR com três microlitros de tampão de carga em um gel de agarose 2%.
Execute a 100 volts por 45 minutos para garantir que a amplificação do DNA foi bem-sucedida. Em seguida, prepare uma combinação mestre SAP conforme descrito no protocolo de texto. Adicione dois microlitros da mistura mestre SAP recém-feita a cada poço da placa PCR executada anteriormente.
Centrifugar brevemente a 1 000 vezes G durante um minuto. Em seguida, devolva a placa ao termociclador. Opere o termociclador a 37 graus Celsius por 40 minutos.
E então a 85 graus Celsius por cinco minutos para inativar a enzima. Depois de calcular o factor de diluição para cada primário, combinar os volumes determinados de cada um para formar um conjunto de primários. Adicione água conforme necessário para diluir esta piscina.
Monte a mistura master de extensão para o ensaio de plexo alto ou baixo, conforme descrito no protocolo de texto. Adicione dois microlitros da mistura master de extensão a cada poço da placa, elevando o volume total em cada poço para nove microlitros. Centrifugue brevemente a 1.000 vezes G por um minuto e, em seguida, retorne a placa ao termociclador.
Depois disso, adicione 16 microlitros de água deionizada a cada poço, elevando o volume total para 25 microlitros por poço. Aplique seis miligramas de resina uniformemente em uma placa de resina de covinhas inteira. Deixe a resina secar por 20 minutos em temperatura ambiente.
Em seguida, aplique a resina na placa de reação. Usando um misturador de suspensão, gire a placa em velocidade lenta por cinco minutos em temperatura ambiente. Em seguida, centrifugue a placa a 3.200 vezes G por cinco minutos para evitar a aplicação da resina no chip de espectro de massa.
Carregue o layout de amostra da placa para a interface de software do sistema. Usando um sistema de distribuição, aplique a mistura de analito de genotipagem da placa ao chip de genotipagem. Carregue o chip no sistema MALDI-TOF para gerar os espectros de massa a partir da mistura do analito e interprete-o usando a interface de software da plataforma.
Neste estudo, a genotipagem multiplex é realizada usando espectrometria de massa. Dados representativos de SNP são gerados e analisados para o gene candidato IL13 em uma coorte clínica de descoberta fenotipada para alergia alimentar. Uma variante, rs1295686, está associada à alergia alimentar comprovada por desafio.
Esta associação é confirmada em uma coorte de replicação usando a abordagem de genotipagem multiplex demonstrada neste protocolo. Uma meta-análise dos resultados das duas coortes fornece fortes evidências da associação entre IL13 com AF. Ao tentar este procedimento, é importante não contaminar nenhuma amostra ou reagente. Também é importante preparar uma mistura master extra de 10% para cada PCR, a fim de levar em conta qualquer erro de pipetagem.
Após este procedimento, outros métodos, como PCR em tempo real, podem ser realizados para responder a perguntas adicionais, como se a expressão gênica se correlaciona com os marcadores genéticos associados à doença identificados. Após seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para pesquisadores nas áreas de diagnóstico clínico e genética explorarem associações de doenças em coortes de pacientes. Não se esqueça de que, ao trabalhar com reagentes de genotipagem e o sistema MALDI-TOF pode ser perigoso, e precauções como o uso de luvas e jaleco devem sempre ser tomadas ao realizar este procedimento.
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Este estudo apresenta uma abordagem de genotipagem multiplex para analisar genes candidatos relacionados a doenças humanas complexas. O método é econômico e adequado para estudos baseados em coortes, melhorando a detecção de marcadores genéticos associados aos desfechos da doença.
A genotipagem multiplex com espectrometria de massa permite uma análise de alto rendimento e com custo eficaz de variantes genéticas em coortes clínicas, apoiando a validação de alvos na pesquisa de doenças complexas. Essa abordagem aumenta a confiança preditiva ao associar locos candidatos, como o IL13, a desfechos fenotípicos como alergia alimentar, por meio de estudos de associação estatisticamente robustos. Isso posiciona o rastreamento genético como uma ferramenta escalável de descoberta para reduzir riscos em hipóteses terapêuticas em estágios iniciais de pipelines de P&D.
O método se insere no continuum de descoberta que vai da triagem genética à identificação de compostos líderes, fornecendo coortes geneticamente estratificadas para validação de alvos e triagem de compostos em etapas subsequentes.