7 de setembro de 2018
Neste trabalho, descrevemos um protocolo para caracterizar T-dependentes e T-independentes respostas do isotipo de imunoglobulina (Ig) em camundongos usando ELISA. Este método usado sozinho ou em combinação com fluxo cytometry permitirá que os investigadores a identificar diferenças nas respostas de isotipo Ig mediada por células B em camundongos após imunização de antígenos T-dependentes e T-independentes.
Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da imunologia sobre respostas de anticorpos dependentes e independentes induzidas por imunização de antígenos, bem como ativação de células B e reações do centro germinativo. A principal vantagem dessa técnica é que ela fornece medições confiáveis e quantitativas de resposta ao isotipo de Ig com uma comparação direta da ativação de células B e imunidade humoral em camundongos. Para imunização com polissacarídeo TNP, carregue uma seringa de insulina mililitro por camundongo com 100 microlitros de solução de antígeno recém-preparada e insira a agulha no quadrante inferior direito de cada animal em um ângulo de aproximadamente 30 graus para evitar a injeção no órgão inferior.
Quando todos os camundongos tiverem sido injetados, devolva os animais às suas gaiolas para serem alojados em uma instalação específica livre de patógenos. Nos momentos experimentais apropriados, coletar 150 a 200 microlitros de sangue de cada animal imunizado por sangramento retro-orbital e permitir que as amostras coagulem em temperatura ambiente por uma a duas horas. No final da incubação, centrifugue as amostras de sangue coagulado e transfira o soro transparente do topo de cada coágulo sanguíneo para um tubo de microcentrífuga estéril de 1,5 mililitro.
Após uma segunda centrifugação para remover qualquer coágulo sanguíneo residual, transfira 50 microlitros de soro para tubos de microcentrífuga estéreis individuais de 1,5 mililitro para armazenamento a 80 graus Celsius negativos. Antes do plaqueamento, revestir imunoplacas individuais de 96 poços com a concentração apropriada de anticorpos de captura específicos do isotipo de Ig de camundongo para o isotipo de Ig sérico total TNP-38BSA antígeno para o isotipo de Ig específico de TNP ou antígeno TNP-3BSA para o isotipo de Ig específico de TNP de alta afinidade e incubar as placas revestidas durante a noite a quatro graus Celsius. Na manhã seguinte, lave as placas duas vezes com 200 microlitros de tampão de lavagem por poço.
Descarte o tampão de lavagem e seque os pratos em uma pilha de toalhas de papel após cada lavagem. Em seguida, bloqueie as placas com 200 microlitros de tampão de bloqueio por poço por uma hora de incubação em temperatura ambiente. Enquanto as placas estão sendo bloqueadas, prepare as diluições padrão e de soro apropriadas e o tampão de bloqueio em uma placa separada de 96 poços não tratada a 150 microlitros por poço, conforme indicado.
Em seguida, lave a placa ELISA com tampão de lavagem conforme demonstrado e adicione 100 microlitros de cada padrão de isotipo de Ig diluído e amostra de soro aos poços apropriados da placa ELISA. Após uma incubação noturna a quatro graus Celsius, lave as placas conforme demonstrado e adicione 100 microlitros de um anticorpo específico do isótipo conjugado com fosfatase alcalina apropriado, diluído em tampão de bloqueio, a cada poço por uma a duas horas de incubação à temperatura ambiente. No final da incubação, lave as placas e adicione 100 microlitros de solução de substrato recém-preparada a cada poço.
Monitorando a reação à medida que ela se desenvolve nos próximos minutos à temperatura ambiente. Quando a reação for robusta o suficiente para analisar, coloque a placa em um leitor de microplacas e clique nas configurações para definir o comprimento de onda para 405 nanômetros. Clique em ok e clique no modelo para atribuir os poços em branco, padrão e desconhecidos apropriados de acordo com a configuração da placa de 96 poços.
Então, quando o padrão mais concentrado atingir uma densidade óptica de cerca de um, 1,5, dois e 2,5, clique em ler para ler a placa e salvar o arquivo de dados resultante após cada análise. Na ausência de imunização, um aumento nos níveis séricos basais de IgM, IgG2a, IgG2b, IgG3 e IgA é observado em camundongos knockout para o fator três associado ao receptor de TNF específico de células B ou B-TRAF3, em comparação com animais de controle de ninhada suficiente para B-TRAF3 pareados por sexo e idade. Sete dias após a imunização com TNP-polissacarídeo ou TNP-KLH, como acabamos de demonstrar, a análise das respostas do isotipo de Ig independente do timo à imunização revela níveis significativamente mais altos de IgG3 específicos de TNP independentes do timo, bem como níveis elevados de IgG2b específicos de TNP dependentes do timo em camundongos nocautes para TRAF3 específicos de células mielóides em comparação com controles de ninhada.
Além disso, a avaliação das respostas primárias e de memória de camundongos dependentes do timo à imunização TNP-KLH indica a presença de respostas primárias IgM dependentes do timo parcialmente diminuídas e respostas primárias e de memória IgG1 defeituosas em camundongos knockout para TRAF3 específicos de células T. Ao tentar este procedimento, é importante lembrar que o ELISA tem limites de detecção que geralmente são definidos pela faixa linear das curvas padrão e, portanto, várias diluições de sua amostra podem ser necessárias. Após este procedimento, outros métodos complementares, como citometria de fluxo ou ponto L, podem ser realizados para obter uma compreensão abrangente das respostas de anticorpos em um determinado ambiente experimental.
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Este artigo descreve um protocolo para caracterizar respostas de isotipos de imunoglobulina (Ig) dependentes e independentes de células T em camundongos utilizando ELISA. O método permite aos pesquisadores identificar diferenças nas respostas de isotipos de Ig mediadas por linfócitos B após imunização com antígeno.
Este protocolo permite que pesquisadores de biofármacos analisem quantitativamente respostas de isotipos de imunoglobulinas dependentes e independentes do timo em modelos murinos, fornecendo subsídios mecanicistas sobre a ativação de linfócitos B e a imunidade humoral. Ao fornecer medições confiáveis e específicas para cada isotipo por ELISA, ele auxilia na validação de alvos e na desmistificação preditiva no desenvolvimento de vacinas e imunomoduladores. O método aprimora a continuidade translacional quando combinado com ensaios complementares, como citometria de fluxo, auxiliando nas decisões de avançar ou não em fases iniciais de descoberta.
O método se insere no continuum de descoberta, desde a validação inicial do alvo até a identificação de compostos líderes e a avaliação pré-clínica, especialmente para imunomoduladores e vacinas, em que o perfil de isotipos prevê resultados funcionais.