Name: Frequente de amostra de sangue da cauda-ponta em camundongos para a avaliação da secreção pulsátil de hormônio luteinizante (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 58 s
Description: Aprenda a técnica de amostragem frequente de sangue da ponta da cauda em camundongos C57BL/6 para avaliar a secreção pulsátil do hormônio luteinizante. Este método minimiza o estresse e melhora a precisão em estudos de neuroendocrinologia reprodutiva.

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Os autores Obrigado DRS Jennifer Yang e Alexander (Sasha) Kauffman para assistência técnica com esta técnica, bem como numerosas discussões úteis e críticas. Soro hormônio ensaios foram realizados por Yang et al., 2017 do The University of Virginia centro de pesquisas em reprodução ligante ensaio e núcleo de análise, apoiado por Eunice Kennedy Shriver FORMULADORES/NIH (NCTRI) Grant P50-HD28934.
Fontes de apoio à pesquisa: R01 FORMULADORES 86100 (KMB), RBM foi apoiado por T32 FORMULADORES 007203.

O método descrito aqui é de acordo com o National institutos de saúde Cuidado Animal e diretrizes de uso e foram autorizados pelo Comitê de uso da Universidade da Califórnia, San Diego e institucional Cuidado Animal.
1. a aclimatação para manipulação
<ol><li>Procedimento de tratamento<ol>
<li>Coloque gaiolas de rato na biossegurança do armário. Retire o primeiro rato da gaiola e coloque sobre uma superfície apropriada (por exemplo, uma tampa de gaiola limpa) dentro da armário de biossegurança.</li>
		<li>Contenha suavemente o mouse na superfície de trabalho, mantendo a base da cauda com o indicador e o polegar de uma mão. Então, firmemente acaricie a superfície ventral da cauda, da base até a ponta da cauda, com o indicador e o polegar da outra mão. Repetir esta acariciando 6 vezes (ou seja, 1 conjunto) e retornar o mouse para sua gaiola.</li>
		<li>Esperar 6 min e repita a etapa 1.1.2. Nota: No total, passo 1.1.2 será repetido 4 vezes por rato (ou seja, 4 conjuntos de 6 cursos), para que cada rato receberá um total de 24 cursos de cauda em cada dia de tratamento.</li>
	</ol>
</li>
	<li>A frequência de manipulação diária<ol>
<li>De cinco até duas semanas antes do dia de coleta de sangue planejada, lidar com ratos, conforme descrito na etapa 1.1, cinco dias por semana (os ratos não são tratados no sábado ou no domingo até as duas semanas finais de aclimatação).</li>
		<li>Se o tratamento experimental durante o período de amostragem incluirá qualquer manipulação adicional (por exemplo, agarrando ou injeção intraperitoneal), aclimatar os ratos para esta atividade de manipulação durante cada sessão de manipulação. Nota: Para a aclimatação aos procedimentos de injeção, utilize uma agulha cega para realizar uma injeção de Souza.</li>
		<li>Durante as duas semanas antes do dia de coleta de sangue planejada, lidar com ratos, conforme descrito no ponto 1.1, sete dias por semana.</li>
		<li>Pelo menos duas semanas antes do dia da coleta de sangue planejada, casa de ratos em pares para minimizar as interrupções aos ratos durante a amostragem.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparação dos tubos de colheita de sangue
<ol><li>Preparar o buffer de ensaio de LH ultra-sensível em uma garrafa de vidro: albumina de soro bovino 0,2% e 0,05% Tween-20 em PBS [0,2 g de KCl, 8 g de NaCl, 1,44 g Na2HPO4 (anidro), 0,24 g KH2PO4, água ultrapura para 1 L, pH 7,4, filtro e autoclave] , loja a 4° C. 1 Nota: Volume do buffer de ensaio de LH ultra-sensível estar preparado pode ser calculado com base no número de amostras e o volume por exemplo, como indicado abaixo (2.2 & discussão)</li>
	<li>Prepare tubos de colheita de sangue (tubos de microcentrifuga de 0,6 mL). Rotule os tubos e buffer de ensaio alíquota (57 µ l de buffer por tubo; note-se, este volume pode variar dependendo do volume de sangue coletado ou a proporção do sangue para o buffer desejado). Tubos pode ser preparado dias à frente de amostragem, loja a 4 ° C.</li>
</ol>3. coleta de sangue
<ol><li>Preparação dos materiais de coleta de sangue.<ol>
<li>Preparar o gabinete de segurança biológica para uso e providenciar os seguintes materiais de capuz ou em um carrinho nas proximidades: 10 µ l Pipetar (conjunto de 3 µ l ou volume de coleta de sangue desejado), pontas de pipeta, escaninho para pontas de pipetas utilizadas, temporizador, impressão com o número de animais e amostra números (waste para notas em relação a problemas de amostragem ou animais), gelo balde com tubos de colheita de sangue, tesouras e gaze pequena (2 "x 2"). Nota: O "contar até" função com um temporizador de laboratório é útil porque ele não tem um alarme sonoro que poderia perturbar os ratos</li>
		<li>Use um marcador permanente para marcar a cauda de cada rato (perto da base) para auxiliar a identificação rápida do mouse correto durante a amostragem.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Recorte da preparação coleção cauda e pre-sangue.<ol>
<li>Em 45 min antes do início da coleção de sangue, remover o primeiro rato de sua gaiola e coloque sobre uma superfície apropriada (uma tampa de gaiola limpa funciona bem) dentro a biossegurança do armário.</li>
		<li>Use uma tesoura afiada, estéril para remover 1-2 mm da ponta da cauda do rato, após preparação asséptica (ou seja, esfregar com álcool e betadine). Nota: Isto pode ser realizado em animais acordados com contenção suave ou sob anestesia de isoflurano.  Além disso, analgesia pode ser fornecida após a recomendação do IACUC local.</li>
		<li>Cuidadosamente acariciar a cauda do rato como descrito acima (1.1.2; 1-2 traços são geralmente suficientes) até a gota de formas de sangue na ponta da cauda.</li>
		<li>Use uma pipeta com uma ponta limpa 3 µ l de sangue da ponta da cauda e descartar a ponta da pipeta com sangue.</li>
		<li>Antes de retornar o mouse para sua gaiola, certifique-se de que o fluxo de sangue parou. Se necessário, aplique uma pressão suave com gaze estéril.</li>
		<li>Repita as etapas 3.2.1 - 3.2.5 para todos os mouses. Podem ser colhidas amostras de sangue subsequente por firmemente acariciando cauda do rato até que uma gotícula de formas de sangue na ponta da cauda. Nota: Se uma gota de sangue não forma após pinceladas firmes, a cauda pode ser dabbed com uma gaze embebida em soro fisiológico. Os coágulos são mais propensos a forma durante a amostragem menos frequente (ou seja, > intervalos de 15 min). Uma vez que o coágulo é liberado da veia, pode continuar a amostragem.</li>
		<li>Continue a coletar 3 µ l de sangue de cada rato conforme descrito acima cada 6 min para aproximadamente 45 min, durante este período de preparação de pré-sangue coleção. Descarte a sangue e pipeta de ponta.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Colheita de sangue<ol>
<li>Colete 3 µ l de sangue da ponta da cauda como descrito acima. Tenha cuidado para assegurar que o inteiro 3 µ l amostra para a ponta da pipeta (sem bolhas ou contaminação de roupa de cama). Ejete a amostra de sangue para o buffer de ensaio em um tubo rotulado. Misturar por inversão e retornar o tubo de gelo.</li>
		<li>Antes de retornar o mouse para sua gaiola, certifique-se de que o fluxo de sangue parou. Se necessário, aplique uma pressão suave com gaze estéril.</li>
		<li>Repita os passos de 3.3.1 - 3.3.2 para cada mouse, cada 6 min, durante o período de amostragem predeterminado. Monitorar cada animal por sinais de perigo (pálpebras, por exemplo, parcialmente fechadas, posição encurvada [não causado por outro tratamento] ou falta de resposta ao tratamento) e encerrar a colheita de amostras, se necessário. Nota: Aflição comportamental ou outras complicações que exigem o término da amostragem extremamente raramente ocorrem em nosso laboratório.</li>
		<li>Se os animais não são sacrificados após colheita de sangue, certifique-se de que o fluxo de sangue da ponta da cauda completamente parou. Limpe qualquer sangue derramado desde o interior da cada animal gaiola (ou gaiolas de mudança) e retornar as gaiolas animais para o rack de habitação.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. processamento e análise da amostra
<ol><li>Armazenar as amostras de sangue a-20 ° C até análise. Nota: LH é analisada em amostras de sangue total diluídas no buffer de ensaio; Não há separação de soro ou plasma é necessária antes de armazenamento ou análise.</li>
	<li>Amostras de sangue de ensaio por ELISA ultra-sensível como descrito anteriormente, os valores1 e relatório em ng/mL de sangue total, após a correção para a diluição do volume da amostra no buffer de ensaio.</li>
	<li>Identifica os pulsos de LH no conjunto de dados. Calcular e comparar a amplitude de pulso média e frequência de pulso (ou intervalo de pulso inter) conforme apropriado para o conjunto de dados. Nota: Programas e critérios publicados13,14 ,15,16 , para a detecção de pulsos de LH estão disponíveis.</li>
</ol>

<ol><li>Steyn, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+methodology+for+and+assessment+of+pulsatile+luteinizing+hormone+secretion+in+juvenile+and+adult+male+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Development of a methodology for and assessment of pulsatile luteinizing hormone secretion in juvenile and adult male mice.</a> Endocrinology. 154 (12), 4939-4945 (2013).</li>
<li>McArdle, C. A., Roberson, M. S. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcArdle%2C+CA+%22Knobil+and+Neill%27s+Physiology+of+Reproduction%22">Knobil and Neill's Physiology of Reproduction</a>. Plant, T. M., Zeleznik, A. J. , (2015).</li>
<li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology+and+Pharmacotherapy%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology and Pharmacotherapy. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Steiner, R. A., Bremner, W. J., Clifton, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+luteinizing+hormone+pulse+frequency+and+amplitude+by+testosterone+in+the+adult+male+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Regulation of luteinizing hormone pulse frequency and amplitude by testosterone in the adult male rat.</a> Endocrinology. 111 (6), 2055-2061 (1982).</li>
<li>Moore, A. M., Prescott, M., Marshall, C. J., Yip, S. H., Campbell, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancement+of+a+robust+arcuate+GABAergic+input+to+gonadotropin-releasing+hormone+neurons+in+a+model+of+polycystic+ovarian+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Enhancement of a robust arcuate GABAergic input to gonadotropin-releasing hormone neurons in a model of polycystic ovarian syndrome.</a> Proceedings of National Academy of Science U S A. 112 (2), 596-601 (2015).</li>
<li>Czieselsky, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulse+and+Surge+Profiles+of+Luteinizing+Hormone+Secretion+in+the+Mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Pulse and Surge Profiles of Luteinizing Hormone Secretion in the Mouse.</a> Endocrinology. 157 (12), 4794-4802 (2016).</li>
<li>Campos, P., Herbison, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetic+activation+of+GnRH+neurons+reveals+minimal+requirements+for+pulsatile+luteinizing+hormone+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Optogenetic activation of GnRH neurons reveals minimal requirements for pulsatile luteinizing hormone secretion.</a> Proceedings of National Academy of Science U S A. 111 (51), 18387-18392 (2014).</li>
<li>Yang, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+Psychosocial+Stress+Inhibits+LH+Pulsatility+and+Kiss1+Neuronal+Activation+in+Female+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Acute Psychosocial Stress Inhibits LH Pulsatility and Kiss1 Neuronal Activation in Female Mice.</a> Endocrinology. 158 (11), 3716-3723 (2017).</li>
<li>Clarkson, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Definition+of+the+hypothalamic+GnRH+pulse+generator+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Definition of the hypothalamic GnRH pulse generator in mice.</a> Proceedings of National Academy of Science U S A. 114 (47), E10216-E10223 (2017).</li>
<li>Lewis, V. J., Thacker, W. L., Mitchell, S. H., Baer, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+technic+for+obtaining+blood+from+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">A new technic for obtaining blood from mice.</a> Laboratory Animal Science. 26 (2 Pt 1), 211-213 (1976).</li>
<li>Abatan, O. I., Welch, K. B., Nemzek, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+saphenous+venipuncture+and+modified+tail-clip+blood+collection+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+of+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Evaluation of saphenous venipuncture and modified tail-clip blood collection in mice.</a> Journal of the American Association of Laboratory Animal Science. 47 (3), 8-15 (2008).</li>
<li>Durschlag, M., Wurbel, H., Stauffacher, M., Von Holst, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+blood+collection+in+the+laboratory+mouse+by+tail+incision--modification+of+an+old+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Repeated blood collection in the laboratory mouse by tail incision--modification of an old technique.</a> Physiology and Behavior. 60 (6), 1565-1568 (1996).</li>
<li>Goodman, R. L., Karsch, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulsatile+secretion+of+luteinizing+hormone%3A+differential+suppression+by+ovarian+steroids%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Pulsatile secretion of luteinizing hormone: differential suppression by ovarian steroids.</a> Endocrinology. 107 (5), 1286-1290 (1980).</li>
<li>Clarke, I. J., Cummins, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+gonadotropin-releasing+hormone+pulse+frequency+associated+with+estrogen-induced+luteinizing+hormone+surges+in+ovariectomized+ewes%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Increased gonadotropin-releasing hormone pulse frequency associated with estrogen-induced luteinizing hormone surges in ovariectomized ewes.</a> Endocrinology. 116 (6), 2376-2383 (1985).</li>
<li>Vidal, A., Zhang, Q., Medigue, C., Fabre, S., Clement, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DynPeak%3A+an+algorithm+for+pulse+detection+and+frequency+analysis+in+hormonal+time+series%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">DynPeak: an algorithm for pulse detection and frequency analysis in hormonal time series.</a> PLoS One. 7 (7), e39001(2012).</li>
<li>Merriam, G. R., Wachter, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Algorithms+for+the+study+of+episodic+hormone+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Algorithms for the study of episodic hormone secretion.</a> American Journal of Physiology. 243 (4), E310-E318 (1982).</li>
<li>Xie, T. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Deletion+of+Ghrelin-O-Acyltransferase+on+the+Pulsatile+Release+of+Growth+Hormone+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroendocrinology%22%5BJournal%5D)">Effect of Deletion of Ghrelin-O-Acyltransferase on the Pulsatile Release of Growth Hormone in Mice.</a> Journal of Neuroendocrinology. 27 (12), 872-886 (2015).</li>
<li>Koch, C. E., Leinweber, B., Drengberg, B. C., Blaum, C., Oster, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+between+circadian+rhythms+and+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Stress%22%5BJournal%5D)">Interaction between circadian rhythms and stress.</a> Neurobiology of Stress. 6, 57-67 (2017).</li>
<li>Tuli, J. S., Smith, J. A., Morton, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corticosterone%2C+adrenal+and+spleen+weight+in+mice+after+tail+bleeding%2C+and+its+effect+on+nearby+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal%22%5BJournal%5D)">Corticosterone, adrenal and spleen weight in mice after tail bleeding, and its effect on nearby animals.</a> Laboratory Animal. 29 (1), 90-95 (1995).</li>
<li>United States Department of Agriculture. Animal Welfare Inspection Guide. , Available from:
 <a target="_blank" href="https://www.aphis.usda.gov/animal_welfare/downloads/Animal-Care-Inspection-Guide.pdf">https://www.aphis.usda.gov/animal_welfare/downloads/Animal-Care-Inspection-Guide.pdf</a> (2017).</li>
<li>Steyn, F. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+method+for+the+determination+of+pulsatile+growth+hormone+secretion+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Development of a method for the determination of pulsatile growth hormone secretion in mice.</a> Endocrinology. 152 (8), 3165-3171 (2011).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Aqui descrevemos um protocolo para coleta de sangue frequentes toda a cauda-dica de amostras de sangue para avaliação da secreção pulsátil de LH em camundongos. Este protocolo permite a coleta de amostras para a deteção das alterações agudas na secreção pulsátil de LH após a exposição ao estresse psicossocial e é well-suited para avaliação dos pulsos de LH sob outras manipulações agudas ou crônicas.
Um componente crítico do presente protocolo para alcançar perfis confiáveis e robustos, de puls...

Função gonadal em mamíferos é dependente da secreção de gonadotrofinas, hormônio luteinizante (LH) e folículo estimulante hormônio, da glândula pituitária. As gonadotrofinas são secretadas em um padrão pulsátil ou aumento em resposta à secreção hipotalâmica do hormônio liberador de gonadotrofinas (GnRH). A síntese e secreção de LH e FSH são regulados através de ação endócrina, parácrina e autócrina de uma variedade de moléculas incluindo GnRH hipotalâmico, hormônios esteroides gonadais e o sistema de União-inibina-folistatina, bem como uma miríade de condições fisiológicas, incluindo equilíbrio de energia e estresse. 2
O padrão pulsátil de LH no sangue que decorre uma descarga bastante abrupta de LH no sangue periférico, seguido por aproximadamente exponencial eliminação. Importantes características do padrão incluem a frequência de cada descarga de LH e a amplitude da resposta do LH, ambos os quais são ditados, em parte, pela liberação de GnRH. devido à dificuldade em coletar sangue portal do eixo hipotálamo-hipófise para medição de GnRH pulsátil, a amostragem e a medição de LH é usado como um proxy para o Regulamento de GnRH do eixo hipotálamo-hipófise-gonadal. Portanto, a informação crítica é codificada na frequência e a amplitude dos pulsos de LH, o que não pode ser determinada a partir de uma única amostra.
Análise da secreção pulsátil de LH historicamente tem sido limitada a grandes mamíferos (os seres humanos, primatas e ovelhas) devido ao seu volume de sangue grande e tolerância para coleta de amostra de sangue frequente. Em roedores, amostragem de sangue frequentes limitou-se o rato e conseguida através de habitação cateter atrial. 3 , 4 o custo relativamente baixo e a disponibilidade de genética (por exemplo, cre-lox, CRISPR) e manipulações de complexo circuito neural (por exemplo, optogenetics, chemogenetics) fazem ratos um organismo modelo atraente; no entanto, obtenção de amostras de sangue frequentes e posterior análise das concentrações de LH até recentemente, provou indescritíveis. Esta tarefa monumental foi pioneira por Steyn e colegas de trabalho. 1 desde então, diversos laboratórios começaram a utilizar de amostra de sangue frequentes e ensaios de LH ultra sensíveis para avaliar a secreção pulsátil de LH em uma variedade de paradigmas experimentais. 5 , 6 , 7 , 8 , 9 Note-se que a busca de um método prático de coletar várias amostras de sangue dos ratos foi em andamento pelo menos 40 anos10 , com vários refinamentos feitos ao longo do caminho. 11 , 12
Avaliação dos padrões de pulso do LH (ou seja, frequência e amplitude) representa um refinamento maior no acompanhamento a secreção de gonadotrofinas basal neste modelo animal geneticamente tractable. Tradicionalmente, as concentrações de LH em camundongos foram determinadas em uma amostra de sangue. Uma fraqueza de amostras de ponto único é um conjunto de dados altamente variável, porque as concentrações de LH são naturalmente flutuando durante cada pulso. Outro ponto fraco é que medidas isoladas inerentemente perder informação crítica veiculada pelos padrões de secreção de LH pulso. Assim, um método para coletar amostras de sangue frequentes em comportar-se livremente, ratos desenfreados (exceto para manuseio suave durante a amostragem) fornecerá informações avançadas e revelar-se útil para muitos laboratórios investigando Regulamento hormônio pulsátil.
Aqui, descrevemos um protocolo para a recolha de frequentes (a cada 6 min) amostras de ratos acordados, desenfreadas de sangue. É importante, inclui uma manipulação de protocolo de aclimatação que permite a detecção robusta e contínua de secreção pulsátil de LH em amostras de sangue total coletado durante um período de tempo em que pré e pós-avaliação para um desafio agudo pode ser determinado, como a resposta ao estresse psicossocial de imobilização e contenção. Um ensaio eficaz para as concentrações de LH de amostras de sangue total foi descrito anteriormente; 1 que este protocolo está focado em um método para coletar as amostras de sangue para medição de pulso do LH.

<table><tbody><tr><td>Gabinete de biosegurança</td><td>Lab Products Inc</td><td>L / F-B</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de soro bovino</td><td>Sigma</td><td>A5403</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma</td><td>P2287</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4 (anidro)</td> <td>Sigma</td><td>S7907</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma</td><td>P5655</td><td></td></tr><tr><td>Água ultrapura</td><td>Millipore</td><td></td><td>Água purificada e filtrada</td></tr><tr><td>Dispositivo de contenção de roedores Broome</td> Harvard <td>Apparatus</td><td>52-0460</td><td>Não é necessário para coleta de sangue, mas foi usado na coleta de dados representativos.</td></tr><tr><td>DynPeak</td><td>n/a</td><td>n/a</td><td>http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0039001</td></tr></tbody></table>

frequente de amostra de sangue da cauda-ponta em camundongos para a avaliação da secreção pulsátil de hormônio luteinizante

Frequent Tail-tip Blood Sampling in Mice for the Assessment of Pulsatile Luteinizing Hormone Secretion

Em muitos sistemas endócrino, hormônios ou fatores circulantes não são liberados continuamente, mas são secretados como um pulso discreto em resposta a um fator liberador. Medidas de amostragem de ponto único são inadequadas para compreender plenamente o significado biológico do padrão secretora de hormônios pulsátil ou sob condições fisiológicas normais, ou nas condições de desregulação. Hormônio luteinizante (LH) é sintetizado pelas células gonadotróficas da hipófise anterior e secretado em um padrão pulsátil que requer coleta frequente de amostras de sangue para avaliação do pulso. Isto não foi possível, em camundongos, até recentemente, devido ao desenvolvimento de um ensaio de LH de alta sensibilidade e frequente de avanço em uma técnica para coleta de amostra de baixo volume, inicialmente descrita por Steyn e colegas. 1 aqui descrevemos um protocolo para a coleta de amostra de sangue periférico frequentes de ratos com aclimatação de manipulação suficiente para detectar a secreção pulsátil de LH. O atual protocolo detalha um período de aclimatação expandida que permite a avaliação de robustos e contínuas de pulsos de LH durante várias horas. Neste protocolo, a ponta da cauda é cortada e o sangue é colhido da cauda com uma pipeta à mão. Para avaliação do LH pulsátil em ratos gonadectomized, seriais amostras são coletadas a cada 5-6 min de 90-180 min. importante, a coleta de sangue e medição de robustas pulsos de LH podem ser realizados em ratos acordados, livremente comportamento, dados a adequada manipulação aclimatação e esforço para minimizar os estressores ambientais. Aclimatação suficiente pode ser alcançada dentro de 4-5 semanas antes da coleta de sangue. Este protocolo destaca avanços na metodologia para garantir a coleta de amostras de sangue total para a avaliação dos padrões de secreção de LH pulsátil durante várias horas no mouse, um poderoso modelo animal para pesquisa neuroendócrino.

Padrões de pulso LH representativos de 4 ratos são mostrados na Figura 1 (dados reimpressos de Yang et al., 2017). LH foi medida em amostras de sangue frequentes para determinar a resposta a um desafio de estresse psicossocial agudo. Adultos camundongos C57/Bl6 fêmeas foram ovariectomia e manipulados conforme detalhado neste protocolo para coleta de sangue frequente. Foram coletadas amostras de sangue para o primeiro 90 min em todos os animais para e...

Aqui nós apresentamos um protocolo de amostragem de sangue de cauda-dica para coleta de amostra frequente em camundongos desenfreados. Este método é útil para avaliar os padrões de secreção pulsátil de hormônio luteinizante e pode ser adaptado para a análise de outros fatores circulantes.

Frequente de amostra de sangue da cauda-ponta em camundongos para a avaliação da secreção pulsátil de hormônio luteinizante

In many endocrine systems, circulating factors or hormones are not released continuously, but are secreted as a discrete pulse in response to a releasing ...

O objetivo geral da amostragem frequente de sangue na ponta da cauda é obter amostras de sangue total para a medição da secreção pulsátil do hormônio luteinizante conhecida como LH em camundongos acordados não anestesiados e com comportamento normal. Este método pode ajudar a responder a questões-chave no campo da neuroendocronologia reprodutiva, fornecendo um protocolo confiável para avaliar a secreção pulsátil do hormônio luteinizante em camundongos. A principal vantagem dessa técnica é que o manuseio e a habituação frequentes garantirão medições robustas e confiáveis do pulso do hormônio luteinizante após tratamentos experimentais agudos ou crônicos.Durante cinco semanas antes da coleta de sangue, manuseie os camundongos diariamente, de segunda a sexta-feira. Nas duas últimas semanas, manuseie os ratos no sábado e no domingo também. Execute o regime de manuseio do mouse em um gabinete de biossegurança.Remova o primeiro mouse de sua gaiola e coloque-o em uma superfície adequada dentro do gabinete. Contenha suavemente o mouse nesta superfície, segurando a base de sua cauda. Em seguida, com a outra mão, acaricie firmemente a superfície ventral da cauda da base até a ponta.Faça isso um total de seis vezes e, em seguida, retorne o mouse à sua gaiola. Isso constitui um conjunto de manipulação. Agora aguarde seis minutos e execute outro conjunto de manuseio.Continuando esse padrão com intervalos entre conjuntos, execute quatro conjuntos de manuseio por sessão de gerenciamento. No total, isso fornece vinte e quatro golpes de cauda por sessão. Se os tratamentos experimentais durante o período de amostragem incluírem quaisquer métodos adicionais de manuseio, como scruffing ou injeção intraperitoneal, aclimate também os camundongos a essa atividade de manuseio durante as sessões de manuseio.Duas semanas antes do dia planejado para a coleta de sangue, alojar os camundongos em pares para minimizar sua interrupção durante o período de amostragem. Para as coletas de sangue, prepare tubos de microcentrífuga de 0,6 mililitro para armazenamento de sangue. Rotule os tubos e, para três coletas de sangue de microlitros, alíquota de cinquenta e sete microlitros de tampão ACES em cada tubo.Depois de preparados, armazene os tubos a quatro graus Celsius. No gabinete de biossegurança tenha os seguintes itens prontos: pontas de pipeta, uma lixeira, um cronômetro, um registro experimental, um balde de gelo contendo os tubos de coleta de sangue, tesoura afiada e estéril, um marcador permanente e uma pequena gaze. Quarenta e cinco minutos antes de iniciar a coleta de sangue, remova o primeiro camundongo de sua gaiola e coloque-o em uma superfície adequada.Em seguida, marque a cauda para identificar rapidamente este rato de seu parceiro de gaiola. Agora use uma tesoura para remover um a dois milímetros da ponta da cauda. Depois de cortar essa cauda, acaricie-a cuidadosamente até que uma gota de sangue se forme na ponta.Em seguida, colete três microlitros de sangue e descarte o sangue e a ponta na lixeira. Em seguida, certifique-se de que o fluxo sanguíneo parou. Se necessário, aplique uma leve pressão com gaze estéril.Em seguida, retorne o mouse à sua gaiola por seis minutos. Agora, em intervalos de seis minutos ao longo de quarenta e cinco minutos, acaricie a cauda com firmeza para coletar amostras de sangue adicionais do camundongo. Se uma gota de sangue não se formar, enxugue a cauda com uma gaze embebida em solução salina para ajudar a limpar o coágulo sanguíneo.Durante o período de pré-amostragem, rejeitar todas as alíquotas de sangue. Após quarenta e cinco minutos, iniciar o período de amostragem. Ao coletar amostras, transfira três microlitros de sangue para um tubo de coleta, misture o tubo por inversão e coloque-o de volta no gelo.Prossiga agora com a amostragem durante o tempo que for necessário. Uma vez terminado, eutanasiar os camundongos ou garantir que o fluxo sanguíneo da cauda tenha parado completamente e, em seguida, fornecer aos camundongos uma gaiola limpa. Em seguida, transfira amostras de sangue para uma caixa de armazenamento e armazene as amostras a menos vinte graus Celsius até que possam ser analisadas.O hormônio luteinizante ou LH foi medido em amostras de sangue frequentes para determinar a resposta a um desafio agudo de estresse psicossocial. Camundongos C57 pretos fêmeas adultas foram ovariectomizados e amostras de sangue foram coletadas por noventa minutos para estabelecer uma linha de base pré-tratamento da secreção pulsátil de LH. Para o tratamento de estresse durante a amostragem de noventa minutos, os animais experimentais foram colocados em dispositivos de contenção de roedores e transferidos para uma nova gaiola, enquanto os controles permaneceram em suas gaiolas domésticas e não foram contidos.A análise mostrou que os animais de controle apresentaram pulsos claros e inequívocos de LH durante todo o período de amostragem. Em contraste, o estresse psicossocial da contenção suprimiu rápida e inequivocamente a secreção pulsátil de LH no grupo experimental. Ao se preparar para usar essa técnica, é importante lembrar de minimizar os distúrbios ambientais, como ruído ou interrupções de outros investigadores, que podem estressar os camundongos e interromper a secreção pulsátil de LH.Desde o seu desenvolvimento pelo Dr. Stein e outros no laboratório de Chen, esta técnica começou a abrir caminho para pesquisadores no campo da neuroendocrinologia explorarem a regulação do pulso de LH em uma espécie onde ferramentas moleculares e genéticas complexas são práticas e disponíveis.

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