Name: Usando um artrômetro de joelho para avaliar as contribuições de tecido-específica para contratura de flexão do joelho em ratos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: Aprenda a medir a extensão do joelho em ratos usando um artrômetro de precisão. Este método reprodutível e independente do usuário permite quantificar a amplitude de movimento articular e avaliar a eficácia de intervenções terapêuticas em pesquisa musculoesquelética.

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Os autores gostaria agradecer Joao Tomas por sua assistência técnica com o dispositivo e Khaoula Louati para assistência no desenvolvimento dos métodos de análise de imagem.

O modelo de imobilização do joelho rato usado foi aprovado pela Universidade de Ottawa Animal cuidados serviço veterinário e o Comitê de ética local.
1. preparação animal
<ol><li>No final do período de imobilização predeterminado, eutanásia em ratos pela administração de dióxido de carbono. Nota: Aqui usamos um modelo de imobilização com uma placa e 2 parafusos (um inserido no fêmur proximal e a outra na tíbia distal), que evita a violação de qualquer joelho mista estruturas e mantém uma posição joelho-flexionados de 135° conforme descrito anteriormente6 . Durante um período de tempo, isto produz uma flexão de joelho contratura11.</li>
	<li>Cobrir a área dentro e ao redor da superfície que será colocado sobre o artrômetro com almofadas de proteção absorvente, à prova de água. Use luvas, avental e proteção para os olhos, enquanto completava o experimento.</li>
	<li>Usando um bisturi, dividir a pele para expor a placa e parafusos (ver a nota seguinte etapa 1.1); Insira o parafuso mais proximal no fêmur proximal e insira o parafuso mais distal na tíbia distal. Palpe para localizar os parafusos. Uma vez que as cabeças dos parafusos são acessíveis, remova o parafuso com uma chave de fenda. Nota: Durante o período de imobilização, as cabeças dos parafusos podem tornar-se coberta por tecidos moles. Se isso ocorrer, use o bisturi suavemente remover o tecido e descobrir as cabeças dos parafusos.</li>
	<li>Uma vez que os parafusos são removidos, retire a placa manualmente ou usando fórceps de um kit de dissecação.</li>
	<li>Usando uma tesoura e pinça, cortar a extremidade inferior para remover a pele da fáscia subjacente.</li>
</ol>2. o animal posicionando sobre o artrômetro motorizado
Nota: Todos os testes devem ser realizado à temperatura ambiente. Aqui o artrômetro é alimentado por um padrão norte americano 120 V de entrada. A saída do adaptador é 12 V e 500 mA.
<ol><li>Posicionar o animal a ser testado em seu lado com a perna experimental (a perna a ser testado) virada para cima (Figura 2).<ol>
<li>Segura o fêmur no grampo metal sulcado integrado para a fase de montagem do artrômetro. Fazem furos através do músculo usando uma chave de fenda de precisão Coloque a pinça distal para o grande trocanter e proteja o fêmur. Ajuste o côndilo femoral lateral sobre o centro de rotação do artrômetro (Figura 1, 2).</li>
		<li>Posição o movable braço com dois bornes eretos por trás a perna, apenas superior ao calcâneo, para empurrar o joelho em extensão passiva, uma vez o motor elétrico é ativada.</li>
		<li>Aperte a braçadeira de fêmur em sua base, usando uma chave de hex, até que ele é seguro.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Certifique-se a câmera está correctamente montada sobre o artrômetro usando uma chave de fenda e está no Foco Manual. Foco da câmera sobre o côndilo femoral.</li>
	<li>Selecione a configuração de direção com o artrômetro (no sentido horário ou anti-horário), dependendo da direção do joelho ROM sendo testado e a posição do rato.</li>
	<li>Ative o artrômetro motor pressionando simultaneamente o botão Power e começar . Nota: A necessidade de empurrar o poder e botão iniciar simultaneamente é uma característica de segurança do dispositivo, o que impede o acionamento acidental.<ol>
<li>Observe que o motor artrômetro irá mover a uma velocidade de 6,6 RPM e depois parar para 2.1 s, ao atingir o primeiro torque pré-estabelecido.</li>
		<li>Nota: que quando o primeiro torque é alcançado, o LED correspondente acenderá e a câmera digital vai tirar uma foto do joelho automaticamente. Nota: Uma vez que a foto é tirada, o artrômetro vai continuar para a próxima, mais torque predefinido. Foram aplicados os torques de quatro, o artrômetro irão parar. Uma vez que o rato está posicionado sobre o artrômetro e o teste é iniciado, o tempo total para testar um joelho é aproximadamente 18,8 vezes s. podem variar ligeiramente, dependendo da condição da contractura articular. As imagens captadas são usadas para medir a extensão em cada binário.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. capturar o ângulo de extensão do joelho usando o artrômetro motorizado
Nota: Uma vez que o motor tenha parado em cada torque aplicado, uma câmera digital é acionada para tirar uma foto. A câmera está posicionada no frame que está diretamente acima da articulação do joelho sendo testado e incidiu sobre o côndilo femoral.
<ol><li>Continuar com os testes com o mesmo joelho do mesmo animal, mas em uma situação diferente, por exemplo, depois de um myotomy da musculatura posterior transarticular é executada para isolar o componente de arthrogenic (não-muscular) de uma contratura, ou com um joelho de um outro animal.<ol>
<li>Quando completar a myotomy, disse o músculo proximal o suficiente para o joelho para garantir que a cápsula não é cortada. Nota: É mais fácil completar o myotomy quando a perna em extensão, após a aplicação do torque configuração 4 (17.53 N-cm). Em seguida, repita os passos 2.1 através de 3.1.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Uma vez que ambas as pernas foram testadas em todas as condições (por exemplo, antes e depois da myotomy), alienar a carcaça animal e todos os materiais de risco biológico, seguindo o protocolo institucional e limpar o artrômetro.</li>
</ol>4. joelho ROM medição análise
<ol><li>Analise a ROM usando o ImageJ. Nota: Aqui versão 1.45 s foi usado.</li>
	<li>Abra o arquivo que contém a imagem digital, tirada pela câmera montada sobre o artrômetro de rato. Nota: A pessoa que realizar a análise deve ficar cego para o agrupamento experimental do animal (por exemplo, imobilizada contra controle).</li>
	<li>Selecione a ferramenta ângulo na barra de ferramentas principal e traçar o ângulo de malrotação desenhando uma linha femoral do meio da braçadeira do fêmur para o côndilo lateral (alinhado com a diáfise femoral, Figura 2) e uma linha da tíbia de lateral côndilo femoral para o maléolo lateral (Figura 2). Nota: O ângulo fêmoro-tibial corresponde ao ângulo máximo de extensão do joelho em cada binário predefinido.</li>
	<li>Use a ferramenta de medição clicando Analyze | Medida para mostrar o ângulo calculado produzido pelas 2 linhas desenhadas acima. Use a Convenção de 0° para significar a extensão completa.</li>
</ol>

<ol><li>Clavet, H., Hébert, P. C., Fergusson, D., Doucette, S., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Joint+contracture+following+prolonged+stay+in+the+intensive+care+unit%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Medical+Association+Journal%22%5BJournal%5D)">Joint contracture following prolonged stay in the intensive care unit.</a> Canadian Medical Association Journal. 178 (6), 691-697 (2008).</li>
<li>Campbell, T. M., Dudek, N., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCampbell%2C+TM+%22Essentials+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%3A+musculoskeletal+disorders%2C+pain%2C+and+rehabilitation%22">Essentials of Physical Medicine and Rehabilitation: musculoskeletal disorders, pain, and rehabilitation</a>. Silver, J. K., Frontera, W. R., Rizzo, T. D. , Saunders. Ch. 126 (2015).</li>
<li>Dehail, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acquired+deforming+hypertonia+and+contractures+in+elderly+subjects%3A+definition+and+prevalence+in+geriatric+institutions+%28ADH+survey%29%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Physical+and+Rehabilitation+Medicine%22%5BJournal%5D)">Acquired deforming hypertonia and contractures in elderly subjects: definition and prevalence in geriatric institutions (ADH survey).</a> Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. 57 (3), 11-23 (2014).</li>
<li>Korp, K., Richard, R., Hawkins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Refining+the+idiom+%26%2334%3Bfunctional+range+of+motion%26%2334%3B+related+to+burn+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Burn+Care+and+Research%22%5BJournal%5D)">Refining the idiom &#34;functional range of motion&#34; related to burn recovery.</a> Journal of Burn Care and Research. 36 (3), 136-145 (2015).</li>
<li>Elliott, L., Walker, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rehabilitation+interventions+for+vegetative+and+minimally+conscious+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychological+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Rehabilitation interventions for vegetative and minimally conscious patients.</a> Neuropsychological Rehabilitation. 15 (3-4), 480-493 (2005).</li>
<li>Campbell, T. M., Reilly, K., Laneuville, O., Uhthoff, H., Trudel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+replaces+articular+cartilage+in+the+rat+knee+joint+after+prolonged+immobilization%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Bone replaces articular cartilage in the rat knee joint after prolonged immobilization.</a> Bone. 106, 42-51 (2017).</li>
<li>Trudel, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+alterations+of+rabbit+Achilles%27+tendon+after+immobilization+correlate+with+bone+mineral+density+but+not+with+magnetic+resonance+or+ultrasound+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Mechanical alterations of rabbit Achilles' tendon after immobilization correlate with bone mineral density but not with magnetic resonance or ultrasound imaging.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 88 (12), 1720-1726 (2007).</li>
<li>Harvey, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretch+for+the+treatment+and+prevention+of+contractures%5BTitle%5D)+AND+%22Cochrane+Database+of+Systematic+Reviews%22%5BJournal%5D)">Stretch for the treatment and prevention of contractures.</a> Cochrane Database of Systematic Reviews. 1, Cd007455(2017).</li>
<li>Trudel, G., Himori, K., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrasting+alterations+of+apposed+and+unapposed+articular+cartilage+during+joint+contracture+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Contrasting alterations of apposed and unapposed articular cartilage during joint contracture formation.</a> Archives of Physical Medicine Rehabilitation. 86 (1), 90-97 (2005).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K., Goudreau, L., Laneuville, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+the+reversibility+of+knee+flexion+contractures+with+time%3A+an+experimental+study+using+the+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Musculoskeletal+Disorders%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of the reversibility of knee flexion contractures with time: an experimental study using the rat model.</a> BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 338(2014).</li>
<li>Trudel, G., Uhthoff, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contractures+secondary+to+immobility%3A+is+the+restriction+articular+or+muscular%3F+An+experimental+longitudinal+study+in+the+rat+knee%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Physical+Medicine+and+Rehabilitation%22%5BJournal%5D)">Contractures secondary to immobility: is the restriction articular or muscular? An experimental longitudinal study in the rat knee.</a> Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 81 (1), 6-13 (2000).</li>
<li>Chimoto, E., Hagiwara, Y., Ando, A., Itoi, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progression+of+an+arthrogenic+motion+restriction+after+immobilization+in+a+rat+experimental+knee+model%5BTitle%5D)+AND+%22Upsala+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Progression of an arthrogenic motion restriction after immobilization in a rat experimental knee model.</a> Upsala Journal of Medical Sciences. 112 (3), 347-355 (2007).</li>
<li>Ando, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remobilization+does+not+restore+immobilization-induced+adhesion+of+capsule+and+restricted+joint+motion+in+rat+knee+joints%5BTitle%5D)+AND+%22Tohoku+Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Remobilization does not restore immobilization-induced adhesion of capsule and restricted joint motion in rat knee joints.</a> Tohoku Journal of Experimental Medicine. 227 (1), 13-22 (2012).</li>
<li>Abdel, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+joint+contracture+on+the+contralateral+unoperated+limb+in+a+rabbit+knee+contracture+model%3A+a+biomechanical+and+genetic+study%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of joint contracture on the contralateral unoperated limb in a rabbit knee contracture model: a biomechanical and genetic study.</a> Journal of Orthopaedic Research. 30 (10), 1581-1585 (2012).</li>
<li>Hildebrand, K. A., Sutherland, C., Zhang, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rabbit+knee+model+of+post-traumatic+joint+contractures%3A+the+long-term+natural+history+of+motion+loss+and+myofibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthopaedic+Research+%22%5BJournal%5D)">Rabbit knee model of post-traumatic joint contractures: the long-term natural history of motion loss and myofibroblasts.</a> Journal of Orthopaedic Research . 22 (2), 313-320 (2004).</li>
<li>Klein, L., Player, J. S., Heiple, K. G., Bahniuk, E., Goldberg, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isotopic+evidence+for+resorption+of+soft+tissues+and+bone+in+immobilized+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Bone+and+Joint+Surgery.+American+Volume%22%5BJournal%5D)">Isotopic evidence for resorption of soft tissues and bone in immobilized dogs.</a> Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 64 (2), 225-230 (1982).</li>
</ol>

Os autores não têm divulgações ou conflitos de interesses para declarar.

O artrômetro de joelho do rato foi desenvolvido para reproducibly e confiantemente determinar a extensão máxima do joelho rato após uma intervenção. Vantagens deste dispositivo incluem a geração consistente de torque através de articulação com uma força constante de braço de comprimento e extensão do joelho. Outra vantagem inclui a habilidade de ajustar o torque em um nível que permite repetitivo de teste na mesma articulação para avaliar a influência de diferentes estruturas articulares no joelho ROM, tais como músculo,...

Ter amplitude total de movimento (ROM) das articulações é fundamental para saúde e bem-estar1. Uma perda em ROM passiva conjunta é chamada uma contratura2. Contraturas conjuntas podem surgir de várias condições, incluindo repouso prolongado, paralisia, artroplastia conjunta, queimaduras, infecção e condições neurológicas1,3,4,5. Uma contratura do joelho pode ser incapacitante, pois acelera a degeneração articular, aumenta o risco de quedas e prejudicialmente afeta a capacidade da pessoa para realizar tarefas básicas funcionais, incluindo caminhadas, sentado e subir escadas6, 7.
Uma vez estabelecida, contraturas do joelho são difíceis de tratar, e, portanto, determinar quais pacientes estão em maior risco de desenvolver esta condição é essencial para a prevenção e evitar a morbidade associada a contratura8. Experimentos são projetados para avaliar 1) as condições causando ou influenciando contraturas de articulação de joelho, 2) e a severidade de contraturas, 3) sua progressão temporal, 4) os tecidos envolvidos na contratura, 5) sua reversibilidade, bem como 6) a utilidade das várias intervenções preventivas e curativas no joelho mista ROM. Para todas estas experiências, um método válido, objectivo, preciso e reprodutível para medir a ROM é crítico. Outras medidas auxiliares (gasto de energia, Histomorfometria, conteúdo de expressão e da proteína do gene) são marcadores úteis para entender a fisiopatologia de contraturas conjuntas, mas a limitação mecânica é o que limita o paciente e conduz à deficiência. Alguns dos desafios nesta área de pesquisa inclui os métodos heterogêneos pelo qual joelho ROM pode ser testado experimentalmente, bem como a falta de dados quantitativos9. O uso de uma variedade de diferentes métodos experimentais leva a resultados que não são comparáveis de laboratório para laboratório. Isto levou a controvérsia sobre as condições (tais como a artroplastia de imobilização ou articulação) que causar contraturas comum10. Um método automatizado de medir experimentalmente ROM comum após uma intervenção, por conseguinte, é necessário.
Aqui, descrevemos um protocolo independente de usuário, válido, preciso e reprodutível para avaliar o joelho de rato ROM usando um Custom-Built artrômetro ligado a uma câmera digital para medir precisamente o ROM de joelho em extensão. Nós testamos o efeito de vários períodos de imobilização no joelho ROM. Em seguida, descrevemos os métodos de medição ROM em torques previamente especificado nas imagens digitais resultantes usando fixos Marcos ósseos. Em geral, esses métodos confiável medem joelho rato ROM e fornecem dados quantitativos.

<table><tbody><tr><td>Artrômetro</td><td>Centro de Reabilitação do Hospital de Ottawa - Engenharia de Reabilitação&nbsp;</td><td>Câmera N/A</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Canon</td><td>EOS-500D</td><td>Comumente conhecida como EOS Rebel T1i</td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>National Institutes of Health</td><td>Versão 1.45s</td><td></td></tr><tr><td>Absotbent Underpads</td><td>VWR</td><td>820202-845</td><td></td></tr><tr><td>Kit de Dissecção</td><td>Fisher</td><td>08-855</td><td>O kit inclui:&nbsp; Fórceps: pontas médias, niquelado &nbsp; Tesoura: 1,5 pol. (40 mm), aço inoxidável &nbsp; Cabo da faca de dissecação: niquelado &nbsp; Lâminas de faca: aço inoxidável, pacote de 3 &nbsp; Pipeta de gota: glass &nbsp; Agulha de dissecação dobrada: aço inoxidável com cabo de plástico &nbsp; Agulha de dissecação reta: aço inoxidável com cabo de plástico Régua de Vinylite 6 pol. (15 cm)</td></tr><tr><td>Chave de Fenda de Precisão</td><td>Mastercraft</td><td>057-3505-8</td><td></td></tr><tr><td>Lâminas de Bisturi - #10</td><td>Ferramentas de Ciência Fina</td><td>10010-00</td><td></td></tr><tr><td>Chave de Fenda</td><td>Stanley</td><td>057-3558-2</td><td></td></tr><tr><td>Chaves Hexagonais</td><td>Mastercraft</td><td>058-9684-2</td><td></td></tr><tr><td>Adaptador de pó universal AC para DC</td><td>RCA</td><td>108004951</td><td></td></tr></tbody></table>

usando um artrômetro de joelho para avaliar as contribuições de tecido-específica para contratura de flexão do joelho em ratos

Using a Knee Arthrometer to Evaluate Tissue-specific Contributions to Knee Flexion Contracture in the Rat

Faixa de joelho normal de movimento (ROM) é fundamental para o bem-estar e permite realizar atividades básicas como andar, subir escadas e sentado. ROM perdido é chamado uma contractura articular e resulta em aumento de morbilidade. Devido à dificuldade de inversão estabelecida joelho contraturas, deteção adiantada é importante, e, portanto, conhecer os fatores de risco para o seu desenvolvimento é essencial. O rato representa um bom modelo com o qual pode ser estudado o efeito de uma intervenção, devido à semelhança da anatomia do joelho rato dos humanos, habilidade do rato para tolerar a longa duração da imobilização do joelho em flexão, e porque os dados mecânicos podem ser correlacionados com análise histológica e bioquímica do tecido no joelho.
Usando um artrômetro automatizado, vamos demonstrar um método validado, preciso, reprodutível, usuário independente de medir a extensão ROM de rato a articulação do joelho em torques específicos. Este artrômetro pode ser usado para determinar os efeitos das intervenções no joelho mista ROM no rato.

A quantidade de extensão do joelho, determinada por vários períodos de imobilidade são resumidas para aumentar a duração da imobilidade e mostrar que contraturas mais graves foram produzidas seguindo crescentes comprimentos de imobilização. Resultados representativos usando o ImageJ são mostrados na Figura 3.
A capacidade de medir a extensão máxima dos joelhos de rato de forma válida, precisa e repr...

O objetivo do protocolo é medir a amplitude de extensão do movimento do joelho rato. Os efeitos de várias doenças que aumentam a rigidez da articulação do joelho e a eficácia dos tratamentos podem ser quantificados.

Usando um artrômetro de joelho para avaliar as contribuições de tecido-específica para contratura de flexão do joelho em ratos

Normal knee range of motion (ROM) is critical to well-being and allows one to perform basic activities such as walking, climbing stairs and sitting. Lost ...

Este método pode ajudar a responder a perguntas-chave no campo musculoesquelético, como o efeito de uma intervenção na faixa articular do joelho usando um modelo de rato. A principal vantagem desta técnica é que ela fornece um método preciso, reprodutível e independente do usuário para medir a extensão articular do joelho de rato. Comece usando tesouras e fórceps para deglove a extremidade inferior do rato eutanizado e remova a pele da fácia subjacente.Em seguida, posicione o corpo de lado com a perna experimental voltada para cima. Coloque o fêmur no grampo metálico ranhurado que é integrado ao estágio de montagem do artrômetro. Fixar o fêmur perfurando furos através do músculo com a chave de fenda de precisão para colocar o grampo distal no maior trochanter.Em seguida, ajuste o condíle femoral lateral sobre o centro de rotação do artrômetro. Posicione o braço móvel com dois postes eretos atrás da perna, apenas proximal ao calcâneo para empurrar o joelho em extensão passiva assim que o motor elétrico for ativado. Use uma chave hexa, para apertar o grampo do fêmur em sua base até que esteja preso.Certifique-se de que a câmera está bem montada no artilômetro usando uma chave de fenda. Verifique se a câmera está em foco manual, e concentre a câmera no femora condyle. Ajuste a direção do artrômetro no sentido horário ou no sentido anti-horário, dependendo da direção da faixa de movimento do joelho que está sendo testada e da posição do rato.Ative o motor do artrômetro pressionando simultaneamente a energia e os botões de partida. O motor artrômetro se moverá a uma velocidade de 6,6 rpm e depois parará por 2,1 segundos ao atingir o primeiro torque predefinido. Quando o primeiro torque é atingido, o LED correspondente acenderá e a câmera digital tirará uma foto do joelho automaticamente.Uma vez que a foto é tirada, o artrômetro continuará para o próximo torque predefinido mais alto. Uma vez aplicados os quatro torques, o artrômetro vai parar. Uma vez que o rato é posicionado no artrômetro e os testes são iniciados, o tempo total para testar um joelho é de aproximadamente 18,8 segundos.Para isolar o componente artrogênico ou não muscular de uma contratura, reinicie a sequência de torque para liberar a força aplicada na perna e, em seguida, realize uma miotomia nos músculos transarticulares posteriores. Dissecar o músculo proximal o suficiente para a articulação do joelho para garantir que a cápsula não seja cortada. Depois de testar as duas pernas antes e depois da miotomia, e dissecar todos os tecidos necessários, descarte a carcaça animal e todos os materiais de risco biológico seguindo o protocolo institucional e limpe o artrômetro.Abra o arquivo contendo a imagem digital tirada pela câmera montada no artrômetro na Imagem J.A pessoa que realiza a análise deve ficar cega para o agrupamento experimental do animal. Selecione a ferramenta de ângulo da barra de ferramentas principal e trace o ângulo femoral-tibial desenhando uma linha femoral do meio do grampo do fêmur até o condíle lateral, e a linha tibial do condíle femoral lateral ao maleeolus lateral. Use a ferramenta de medição clicando em Analisar e, em seguida, medir para mostrar o ângulo calculado produzido pelas duas linhas desenhadas acima.Use a convenção de zero graus para significar extensão total. Este número mostra extensão máxima do joelho após 16 semanas de imobilização para sete ratos em comparação com o membro contralateral não imobilizado. Para o joelho imobilizado, a capacidade de extensão máxima foi reduzida em comparação com o contralateral.Após a miotomia, a capacidade máxima de extensão do joelho experimental e contralateral aumentou, no entanto, o joelho experimental continua a demonstrar uma contratura de flexão. Ao tentar este procedimento, é importante garantir que o grampo femoral esteja bem protegido para evitar o movimento do joelho durante os testes. Após este procedimento, outros métodos como a análise histológica do joelho, a estrutura articular pode ser realizada para responder a perguntas adicionais relativas às alterações teciduais e celulares que ocorrem na articulação do joelho para afetar seu alcance em movimento.

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Medicine

Medicina

Modelos animais são ferramentas importantes para a avaliação de enxertos de engenharia tecidual. Este trabalho apresenta o protocolo de preparação de um enxerto de polímero biodegradável eletrofiado para uso na engenharia de tecidos do ligamento cruzado anterior, bem como um protocolo cirúrgico para implantação em modelo de rato.

Atímica Rat Modelo de Avaliação da Engineered Ligamento Cruzado Anterior Enxertos

Este protocolo apresenta um modelo de rato in vivo de capsulite adesiva. O modelo inclui uma fixação interna da glenoumeral conjunta com a fixação da sutura extra-articulares por um tempo prolongado, resultando em uma diminuição da gama rotacional de movimento (ROM) e aumento de rigidez articular.

Modelo do rato de capsulite adesiva do ombro

Aqui, nós apresentamos um protocolo para descrever uma técnica minimamente invasora para a imobilização da junção de joelho em um modelo do rato. Este protocolo reprodutível, baseando-se no modus da separação da músculo-abertura e na habilidade da mini-incisão, é apropriado para estudar o mecanismo molecular subjacente da contratura comum adquirida.

Técnica de fixação interna mini-invasiva para estudo de contratura de flexão de joelho induzida por imobilização em ratos

A quantificação da força máxima do extensor do joelho é imprescindível para entender adaptações funcionais ao envelhecimento, doença, lesão e reabilitação. Apresentamos um novo método para medir repetidamente o torque isométrico de extensão do joelho in vivo.

Medição in vivo da função muscular extensor do joelho em camundongos

Aqui, apresentamos o modelo de lesão da cartilagem intra-articular induzida por carga cíclica do joelho de rato, gerado por 60 compressões cíclicas acima de 20 N, resultando em danos à cartilagem condilar femoral em ratos.

Um Método Não Invasivo para Gerar o Modelo de Lesão da Cartilagem Intra-Articular Induzida por Carga Cíclica do Joelho de Rato

Este protocolo estabelece um modelo de defeitos de cartilagem de espessura total (FTCD) através da perfuração de orifícios no sulco troclear femoral de ratos e mensuração do comportamento da dor e alterações histopatológicas subsequentes.

Desenvolvimento e Avaliação de um Modelo de Defeitos Cartilaginosos em Rato

Apresentamos um protocolo para manipulação de Tuina realizada em ratos com osteoartrite de joelho induzida por gesso imobilizado. Com base nos resultados preliminares, sugeriu-se que a eficácia do método dependia da redução da inflamação e da perda de cartilagem.

Manipulação de Tuina para Reduzir a Inflamação e Perda de Cartilagem em Ratos com Osteoartrite de Joelho

Nesse protocolo, um modelo de osteoartrite de joelho foi elaborado pelo método de Videman modificado, e os procedimentos operatórios e precauções da acupotomia são detalhados. A eficácia da acupotomia tem sido demonstrada testando-se as propriedades mecânicas do quadríceps femoral e tendíneo e as propriedades mecânicas e morfológicas da cartilagem.

Aplicação de Acupotomia em Modelo de Osteoartrite de Joelho em Coelhos

Este protocolo descreve os métodos de intervenção de Tuina em modelo de osteoartrite de joelho (KOA) induzido por injeção de monoiodoacetato de sódio em ratos, que fornece uma referência para a aplicação de Tuina em modelos animais de OA. Este protocolo também estuda o mecanismo efetivo de Tuina para KOA, e os resultados ajudarão a promover sua aplicação.

Intervenção Tuina em Modelo de Osteoartrite de Joelho Induzida por Injeção de Monoiodoacetato de Sódio em Rato

Osteoartrose do joelho é frequentemente visto no departamento de Ortopedia. Apresentamos em detalhe o processo de tratamento de osteoartrite do joelho inteiro com injeção de plasma rico em plaquetas, incluindo preparação, procedimentos e avaliação.

Preparação, procedimentos e avaliação da injeção de Plasma rico em plaquetas no tratamento da osteoartrose do joelho

Aprenda a medir a extensão do joelho em ratos usando um artrômetro de precisão. Este método reprodutível e independente do usuário permite quantificar a amplitude de movimento articular e avaliar a eficácia de intervenções terapêuticas em pesquisa musculoesquelética.

Usando um artrômetro de joelho para avaliar as contribuições de tecido-específica para contratura de flexão do joelho em ratos

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