Name: Identificação de eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern Blotting e reação em cadeia da polimerase (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-20T13:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: Aprenda a identificar eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern blotting e PCR. Este método preciso permite gerar modelos genéticos para estudos de biologia molecular.

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Este trabalho recebeu o apoio do programa geral da Fundação Nacional de ciências naturais da China (subvenções no. 31571432), humano Fundação Provincial de ciências naturais da China (Grant No. 2015JC3097) e a pesquisa Fundação de educação Bureau de Hunan Província, China (Grant No. 15 K 054).

1. projeto de direcionamento Construct(s), sondas para Southern Blot e Primers para PCR
<ol><li>Selecione o primeiro exon codificação (exon 2) do gene Myh9 para interrupção ou inserção na aplicação do nocaute/TOC-no relatado aqui.</li>
	<li>Recupere as 5 kb upstream e 5 kb a jusante sequências de DNA cercam o Myh9 exon 2 do site genome.ucsc.edu .</li>
	<li>Analise padrões de digestão restrição de enzimas (REs) com 1 – 2 cortes nesta região de 10 kb usando software de pDRAW para determinar o RE(s) apropriado para digerir o DNA genômico de mancha do Sul. Nota: Dra eu cumpre esta exigência e é selecionado para o efeito.</li>
	<li>Selecione um fragmento 4KB imediato a montante do exon Myh9 2 como o braço esquerdo de homologia (LHA) e uma 1,7 kb fragmento imediata sequência a jusante como o braço direito de homologia (RHA); Escolha um fragmento de 1 kb 5' montante do LHA como a sonda esquerda (LP) para a mancha do Sul e um fragmento de 1,2 kb 3' a jusante do RHA como a sonda certo (RP), com base na análise acima.</li>
	<li>Use um programa de primer3 para projetar primers para amplificar os quatro fragmentos de DNA por PCR para diante e reversos. Desenha um par de primers com o primer frente residido perto do terminal 3' de um gene de resistência de neomyocin seleção marcador (P1) e o primer reverso localizado fora o RHA (P2). Nota: Este par de primer será usado para identificar o alvo ES clones por PCR29.</li>
	<li>Encontrar um clone de BAC 129Sv cobrindo o locus do gene do rato Myh9 visitando o site bacpac.chori.org (Nota: DNA isogénicas é preferencial). Isole DNA de BAC usando um kit adequado para peças grandes de ADN, seguindo as instruções fornecidas pelo fabricante de purificação. Nota: DNA purificado de BAC será usado como modelo para amplificação por PCR.</li>
	<li>Desenhe uma representação esquemática do direcionamento construções, sondas e primers para resumir esta informação.</li>
</ol>2. geração de segmentação Construct(s) e sondas para borrão do Sul e na preparação de Primers para PCR
<ol><li>Encomendar os primers PCR descritos acima e dissolvê-los em uma concentração de 20 µM.</li>
	<li>Amplificar os braços de homologia e sondas por PCR em uma solução de reação, incluindo 1 µ l µ l para a frente e 1 reversa as primeiras demão, 1 µ l de DNA BAC (50 ng) como o modelo, 5 µ l de tampão para Pfu e 1 µ l de Pfu ultra como a DNA polimerase , e H2O até 50 µ l. realizar a PCR em uma máquina PCR nas seguintes condições: 95 ° C por 3 min; 95 ° C por 30 s; 60 ° C por 30 s; 72 ° C e 1 kb/min; 30 ciclos; Finalmente, 72 ° C por 10 min.</li>
	<li>Purificar os produtos de PCR usando um kit de limpeza PCR de acordo com o protocolo fornecido pelo fabricante e eluir os fragmentos de DNA com 40 µ l de H2s Digest O. os produtos PCR purificados com REs predefinidos em uma solução de reação contendo 5 µ l de tampão de x 10 para REs , 2,5 µ l de RE1 e 2,5 µ l de RE2 e o DNA eluted, a 37 ° C por 2 h. executar um gel de DNA de 1% para separar as faixas de DNA alvo, o gel que contém ADN sob a luz UV, o alvo do imposto especial de consumo purificar os fragmentos de DNA alvo do gel usando um DNA gel de extração kit de acordo o protocolo fornecido pelo fabricante e eluir os fragmentos de DNA com 40 µ l de H2O.</li>
	<li>Clonar a homologia braços e cassette(s) expressão de substituição para o vetor de mpNTKV-LoxP segundo a ordem do amplificado e purificado RHA, LHA e substituição expressão cassette(s) lançado de outros vetores para obter o direcionamento final construct(s). Clone fragmentos de DNA das sondas amplificados e purificados para o vetor T-fácil.</li>
	<li>Confirme as sequências de nucleotídeos de todos os fragmentos de DNA clonados por sequenciamento27,28.</li>
</ol>3. preparação de direcionamento Construct(s), a eletroporação de pilhas do ES e a amplificação de Clones de ES
<ol><li>Prepare cada construção direcionamento usando um kit de maxiprep de plasmídeo de acordo com o protocolo fornecido pelo fabricante. Linearizar cada construto shRNA digerindo isso com não I em uma reação de 400 µ l, incluindo 40 µ l de tampão 10x para não eu, 10 µ l de não eu, 100 µ g de DNA e H2O até 400 µ l, a 37 ° C durante a noite.</li>
	<li>Purifica o linear construct(s) de direcionamento.<ol>
<li>Extrair a solução digerido reação 1 x com igual volume de álcool isoamílico: fenol: clorofórmio (25:24:1) e centrifugar uma força de 2.000 x g por 10 min.</li>
		<li>Transferir o sobrenadante para um novo tubo de 1,5 mL, precipitar o DNA usando 2.5 x etanol e 3 x 0,1 M de acetato de sódio (pH 5.2) (relação de volume) e centrifugar a uma força de 2.000 x g durante 10 minutos.</li>
		<li>Remova o sobrenadante, lave o DNA de pelotas 1 x 1 ml de etanol a 75% e centrifugar a uma força de 2.000 x g por 5 min.</li>
		<li>Remover o sobrenadante e secar o sedimento de DNA por 5 min.</li>
		<li>Dissolva o sedimento de DNA linear em estéril tampão Tris-EDTA (TE) em uma concentração final de 1 µ g / µ l.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Misture 50 µ g de cada construção direcionamento linear com 0,5 x 107 ES células. Executar o electroporation a 320 V e 250 µF. placa as células electroporated ES em pratos com neo-resistente alimentadores MEF.</li>
	<li>Após 24h, alterne para meio de celular ES com 400 µ g/mL G418 e 200 µM ganciclovir e continuar a cultura para 4-5 dias com uma mudança de média diária. Pega clones resistentes de ES em placas boas 48. Nota: Normalmente, quatro placas de 48-boas são usadas por construção.</li>
	<li>Duplica as placas de 48-bem. Nota: Um conjunto de placas é criopreservado, e o outro conjunto é usado para a preparação de DNA genômica.</li>
</ol>4. preparação de DNAs Genomic e a digestão com Restriction Enzyme(s)
<ol><li>Prepare gDNAs de células ES usando um kit comercial (kit de purificação de DNA genômico) com pequenas modificações.<ol>
<li>Remover a mídia da cultura de pilha ES e adicione 500 µ l de solução de lise de núcleos, incluindo RNaseA, diretamente aos poços para lisar as células. Nota: O lisado celular pode ser armazenado a-80 ° C ou tratado imediatamente.</li>
		<li>Pipetar subindo e descendo várias vezes para lisar as células totalmente e transfira para um tubo limpo 1,5 mL.</li>
		<li>Adicione um terço do volume da solução de precipitação de proteínas para o tubo de 1,5 mL, vórtice vigorosamente durante 20 s, relaxa as amostras no gelo por 5 min e em seguida, centrifugar a uma força de 2.000 x g durante 5 min. o sobrenadante de transferência para outro limpo 1,5 mL tubo contai Ning igual volume de isopropanol; Misture suavemente a solução. (Note que o brancos como fio de vertentes podem ser vistos neste momento). Centrifugar a uma força de 2.000 x g por 1 min; em seguida, descarte o sobrenadante.</li>
		<li>Lave o pellet gDNA com 1 mL de etanol a 70% à temperatura ambiente, centrifugar uma força de 2.000 x g por 1 min, aspirar o sobrenadante cuidadosamente e em seguida, secar o sedimento gDNA por 3 min.</li>
		<li>Dissolver o gDNAs com 100 µ l de solução de reidratação de DNA e, em seguida, incubar a 65 ° C, durante 1 h, ou a 4 ° C durante a noite.</li>
		<li>Loja da gDNAs 2 – 8 ° c.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Digerir o gDNAs com pré-concebidos RE Dra I. definir a reacção de digestão de 30 µ l misturando 3 µ l de 10x buffer para Dra I, 3 µ l de Dra eu, 10 µ g de H2O e gDNAs/amostra até 30 µ l e incubar a 37 ° C durante a noite.</li>
	<li>Verificar a integridade da digestão pelo gel de DNA, análise de 5 µ l da reação digerida e em seguida, adicione a 3 µ l de buffer de DNA-carregamento para a etapa subsequente de 10x.</li>
</ol>5. sul da mancha e a identificação da PCR
<ol><li>Rastreio de mancha do Sul<ol>
<li>Separe o gDNAs digerido por eletroforese e transferência a uma membrana.<ol>
<li>Preparar um gel de agarose a 1% da electroforese com brometo de etídio (EB), carregar as amostras da etapa 4.3 e uma escada de 1 kb e funcione o gel com uma tensão baixa (30-40 V) durante a noite.</li>
			<li>Retire o gel e tirar uma foto com um sistema de geração de imagens de gel de DNA após eletroforese. Verifique se o digerido e separados gDNAs exibir uma imagem do esfregaço como.</li>
			<li>Mergulhe o gel em uma bandeja com 0,2 N HCl solução e agitar suavemente durante 20 min à temperatura ambiente.</li>
			<li>Transferir o gel para DNA-desnaturar a solução e agitar suavemente durante 20 min à temperatura ambiente.</li>
			<li>Alternar o gel em solução de DNA-neutralizando e agitar suavemente durante 20 min à temperatura ambiente. Nota: O gel é propenso à quebra após esta etapa, assim que deve ser manuseado com cuidado.</li>
			<li>Use o sistema de transferência rápida descendente para transferir os DNAs do gel para a membrana. Monte a TurboBlotter e a pilha mancha de acordo com as instruções fornecidas pelo fabricante. Nota: x 10 ou 20 solução salina-citrato de sódio (CCD) de x é usado como um buffer de transferência. Em geral, 3 h de transferência é suficiente para a transferência de 95% de gDNAs de gel para a membrana; no entanto, um maior tempo de transferência é inócuo.</li>
			<li>Tirar a membrana e lavá-lo com 2 x SSC por 1 min, absorver o líquido com tecidos e em seguida, cross-link o DNA com a membrana usando um agente reticulante UV. Nota: A membrana pode ser armazenada a 4 ° C, durante uma semana.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Rotule as sondas de DNA com radioactividade.<ol>
<li>Purifica os plasmideos sonda usando um kit miniprep de acordo com o protocolo fornecido pelo fabricante.</li>
			<li>Lançamento do DNA fragmentos das sondas do vetor do plasmídeo por EcoR digestão em uma solução de reação, incluindo 5 µ l de tampão para EcoR eu, 2 µ l de EcoR eu enzima, 20 µ g de DNA de plasmídeo e H2O até 50 µ l , por 2 h.</li>
			<li>Executar um 1% de DNA do gel para separar os fragmentos de DNA de sonda do vetor e purificar os fragmentos de DNA das sondas com um kit de extração de gel de DNA de acordo com o protocolo fornecido pelo fabricante.</li>
			<li>Usando 1 µ l da solução de DNA, medir a concentração de DNA, os fragmentos de DNA de sonda com um espectrofotômetro no comprimento de onda de 260/280 nm.</li>
			<li>Preparar 40-ng da sonda DNAs em um tubo de 1,5 mL com 45 µ l de tampão TE, ferva por 3 min, girar rapidamente e em seguida, coloque os tubos no gelo por 2 min.</li>
			<li>Adicionar os DNAs de calor desnaturado sonda ao tubo contendo grânulos de DNA-rotulagem de ready-to-go (-dCTP), pipetar acima e para baixo, para misturar, adicionar 5 µ l de dCTP [α32P] e em seguida, incubar a 37 ° C por 15 min.</li>
			<li>Purificar as sondas etiquetadas usando microcolumns de G-50 de acordo com as instruções fornecidas pelo fabricante e, em seguida, medir a radioatividade por um contador de cintilação (opcional).</li>
		</ol>
</li>
		<li>Cruzar o membrane(s) com as sondas rotuladas.<ol>
<li>Prehybridize da membrana.<ol>
<li>Escaldar a solução de hibridação a 42 ° C por 30 min. Mix 20 mL da solução de hibridação escaldadas com 200 µ g de esperma de salmão cozida DNA em um tubo de 50 mL.</li>
				<li>Coloca a membrana no tubo de hibridização. Adicione a solução de prehybridization mista no tubo de hibridização. Coloque-o no forno da hibridação (conjunto de rolamento e a temperatura de 42 ° C) e deixar o prehybridization prosseguir por 30 min.</li>
			</ol>
</li>
			<li>Cruzar a membrana com a rotulado ição.<ol>
<li>Retire o tubo de hibridização e despeje a solução prehybridization em um tubo de 50 mL; Adicione a sonda desnaturada (aquecida a 100 ° C por 3 min) da etapa 5.1.2.7 a este tubo e misture delicadamente. Nota: Reduza quaisquer bolhas de indução.</li>
				<li>Retornar a solução mista para o tubo de hibridização e realizar a hibridação a 42 ° C durante a noite.</li>
			</ol>
</li>
		</ol>
</li>
		<li>Lave o membrane(s) para remover sondas nonhybridized.<ol>
<li>Coloque o membrane(s) em uma bandeja com 1x SSC + 0,1% SDS e agitar suavemente em 55 a 60 ° C por 10 min.</li>
			<li>Transferir o membrane(s) para uma bandeja com 0.5 x SSC + 0,1% SDS e agitar suavemente em 55 a 60 ° C por 10 min.</li>
			<li>Verificar a radioatividade sobre a membrane(s) usando um contador Geiger portátil para decidir se uma terceira lavagem é necessária.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Expor a radioatividade na membrana para películas de raio x.<ol>
<li>Retire o líquido do lavado membrane(s).</li>
			<li>Abraçar o membrane(s) com filme plástico e consertar tudo na gaveta a exposição.</li>
			<li>Expor a membrana de duas folhas de filme de raio-x em um quarto escuro.</li>
			<li>Coloque a fita de exposição a-80 ° C durante a noite ou mais.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Desenvolva os filmes para visualizar os resultados. Avalie se um clone de ES correspondente é o desejado com a recombinação direcionada ou não, de acordo com os tamanhos das bandas de DNA detectados por sondas.</li>
		<li>Rehybridize na mesma membrana por outra sonda após tirar a sonda utilizada de acordo com o seguinte procedimento: Retire a membrana usada, lavá-lo 1x com limpar H2O e então, incube-lo na solução de distribuição (formamida 55%, 2% SEPI, 1% SDS, H 2 O) a 65 ° C com agitação suave para 1 – 2 h.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Identificação da PCR
	<ol>
<li>Realizar a identificação de PCR dos clones ES desejados em uma solução de reação de 50 µ l incluindo 5 µ l de tampão de x PCR 10, 2 µ l de 50 mM de MgSO4, 1 µ l de 10mm dNTP, 1 µ l de primer para a frente de 20 µM, 1 µ l de primer reverso de 20 µM , 1 µ l de alta-fidelidade platinum Taq, gDNAs (~ 100 ng) e H2O até 50 µ l.</li>
		<li>Use as seguintes condições de reação de PCR: uma desnaturação inicial a 94° C por 3 min, 30 ciclos de desnaturação a 94° C por 30 s, recozendo a 60° C por 30 s e uma extensão a 68° C para 132 s e uma etapa final de 68° C por 10 min.</li>
		<li>Analise os produtos PCR por eletroforese em agarose 1,0%.</li>
		<li>Clone os fragmentos PCR com seu tamanho esperado para o vetor T-fácil e sequência para confirmar a presença de uma sequência parcial do vetor alvo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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<li>Takeda, K., Kishi, H., Ma, X., Yu, Z. X., Adelstein, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ablation+and+mutation+of+nonmuscle+myosin+heavy+chain+II-B+results+in+a+defect+in+cardiac+myocyte+cytokinesis%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Ablation and mutation of nonmuscle myosin heavy chain II-B results in a defect in cardiac myocyte cytokinesis.</a> Circulation Research. 93 (4), 330-337 (2003).</li>
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</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Atualmente, desenhador nucleases para genoma edição ainda não podem substituir tecnologia gene-alvo baseada em célula ES devido a seus problemas de efeitos fora do alvo e a dificuldade em inserir uma longa DNA fragmento30,31. Como os métodos de ouro para a identificação de HR eventos que ocorreram em pilhas do rato ES, este relatório fornece um protocolo detalhado da mancha do Sul e PCR para o campo. Nós validado a confiabilidade desses métodos, analisando clones...

A tecnologia do gene definião HR em pilhas do ES murino fornece uma ferramenta poderosa para dissecando as celulares consequências de mutações genéticas específicas1,2. A importância e o significado desta tecnologia são refletidas no seu reconhecimento por 2007 Prêmio Nobel de Fisiologia ou medicina de3,4; Enquanto isso, ele representa o advento da era moderna da engenharia do gene5. Gene-alvo através de HR pode ser utilizado para engenheiro praticamente qualquer alteração desde mutações pontuais até grandes rearranjos cromossômicos no genoma do rato ES células6,7. É sabido que, antes do surgimento das ferramentas de edição chamada genoma, a geração de um rato de nocaute do gene necessário a aplicação da tecnologia de gene-alvo no ES células8,9,10. Durante as últimas duas décadas, mais de 5.000 ratos gene-alvo foram produzidos por esta abordagem para a modelagem de doenças humanas ou estudar o gene funções11. Estabeleceu-se um esforço de todo o genoma nocaute para a distribuição de vetores do gene-alvo, alvo clones de células ES e ratos ao vivo para a comunidade científica2,12,13,14 , 15. sem dúvida, ES baseada em célula mediada por HR gene-alvo tecnologia avançou grandemente nossa compreensão das funções dos genes, jogados num contexto fisiológico ou patológico.
Porque o HR é um evento relativamente pouco frequente em mamíferos células16,17, o importante e o próximo passo a seguir direcionamento de gene em células de ES murino é analisar inúmeras colônias de ES para identificar alguns clones com mutações resultantes HR com o direcionamento de vetor18. Os métodos de ouro para a identificação de eventos HR incluem mancha do Sul e PCR19,20. As vantagens das abordagens incluem que mancha do Sul pode identificar corretamente direcionados ES clones e permite que os pesquisadores analisar a estrutura do evento gene-alvo, tais como a verificação de uma inserção de cópia única de construção, enquanto um Estratégia baseado em PCR permite mais rápida triagem para HR eventos21,22. Embora esses métodos têm desvantagens, tais como que eles são demorados e podem ter falsos positivos, o uso combinacional deles é amplamente aceites e aplicados pela maioria dos laboratórios em identificar eventos HR, particular em pilhas do ES, para gerar geneticamente modificado animais.
Três isoformas de miosina nonmuscle II (NM II) nos mamíferos, cada um composto por dois IIs NMHC idênticos que são codificadas por genes diferentes três (nomeado Myh9, Myh10 e Myh14) e dois pares de cadeias leves, são referidas como NM II-A, II-B e II-C23. Estudos anteriores indicaram que pelo menos as isoformas de NM II-A e II-B são essenciais para o desenvolvimento do mouse porque a ablação na vivo dessas isoformas resulta em embrionárias letalidade24,25,26. Para contornar este problema e obter novos insights sobre as funções específicas do isoform de NM II-A e II-B em fases posteriores do desenvolvimento do mouse, uma substituição genética foi adoptada a estratégia usando ES baseada em célula mediada por HR gene-alvo tecnologia para gere uma série de modelos de rato27. No curso de identificação de clones ES desejados, mancha do Sul e métodos PCR foram utilizados, e estas provaram para ser eficiente e confiável27,28.
Este trabalho pretende fornecer uma descrição detalhada do Sul da mancha e PCR, incluindo o projeto de segmentação vector(s) ição e as primeiras demão e a execução de experiências, bem como a análise dos resultados, exemplificado através da identificação de evento HR ocorrência em pilhas do ES para a criação do mouse NM II de substituição genética de modelos e dados representativos. Os protocolos destes dois métodos aqui apresentados também podem ser adoptados para identificar os genótipos de células geneticamente modificadas ou de animais.

<table><tbody><tr>Centro de Recursos <td>BAC CLONE</td><td>BACPAC (BPRC)</td><td>BMQ-330E21</td><td></td></tr><tr><td>QIAGEN Kit de construção grande</td><td>QIAGEN</td><td>12462</td><td></td></tr><tr><td>QIAquick Kit de extração de gel</td><td>QIAGEN</td><td>28704</td><td></td></tr><tr><td>QIAquick PCR Kit de purificação</td><td>QIAGEN</td><td>28104</td><td></td></tr><tr><td>QIAprep Spin Miniprep Kit</td><td>QIAGEN</td><td>27104</td><td></td></tr><tr><td>QIAGEN Plasmid Plus Maxi Kit</td><td>QIAGEN</td><td>12963</td><td></td></tr><tr><td>PfuUltra DNA Polimerase de Alta Fidelidade</td><td>Agilent</td><td>600382</td><td></td></tr><tr><td>T-easy vector</td><td>Promega</td><td>A1360</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Lise de Núcleos</td><td>Promega</td><td>A7941</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Precipitação de Proteínas</td><td>Promega</td><td>A7951</td><td></td></tr><tr><td>Solução de Desnaturação de DNA</td><td>VWR</td><td>351-013-131</td><td></td></tr><tr><td>Solução Neutralizante de DNA</td><td>VWR</td><td>351-014-131</td><td></td></tr><tr><td>Grânulos de Rotulagem de DNA Prontos para Uso (-dCTP)</td><td>VWR</td><td>27-9240-01</td><td></td></tr><tr><td>UltraPure SSC, 20x</td><td>Thermo Fisher</td><td>15557036</td><td></td></tr><tr><td>UltraPur Fenol:Clorofórmio:Álcool Isoamílico (25:24:1, v/v)</td><td>Thermo Fisher</td><td>15593031</td><td></td></tr><tr><td>G418</td><td>Thermo Fisher</td><td>10131035</td><td></td></tr><tr><td>Solução de DNA de esperma de salmão</td><td>Thermo Fisher</td><td>15632011</td><td></td></tr><tr><td>Platinu Taq DNA polimerase de alta fidelidade</td><td>Thermo Fisher</td><td>11304029</td><td></td></tr><tr><td>não I</td><td>Thermo Scientific</td><td>ER0592</td><td></td></tr><tr><td>Dra I</td><td>Thermo Scientific</td><td>ER0221</td><td></td></tr><tr><td>EcoR I</td><td>Thermo Scientific</td><td>ER0271</td><td></td></tr><tr><td>Ganciclovir</td><td>Sigma</td><td>G2536</td><td></td></tr><tr><td>Whatman&nbsp; Sistema de transferência TurboBlotter, kits grandes</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-301-188</td><td></td></tr> <tr><td>[&alpha; 32P]dCTP</td><td>PerkinElmer</td><td>NEG013H100UC</td><td></td></tr><tr><td>ProbeQuan G-50 Micro Colunas</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9034-08</td><td></td></tr><tr><td>Hybrisol I Solução de Hibridização</td><td>Millipore</td><td>S4040</td><td></td></tr><tr><td>Kodak Filme de Raio-X</td><td>Z& Z Médico</td><td>844 5702</td><td></td></tr></tbody></table>

identificação de eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando southern blotting e reação em cadeia da polimerase

Identification of Homologous Recombination Events in Mouse Embryonic Stem Cells Using Southern Blotting and Polymerase Chain Reaction

Relativo a questões dos efeitos fora do alvo e a dificuldade de inserção de um fragmento de DNA a longa na aplicação do desenhador nucleases para tronco embrionárias, edição de genoma tecnologia de gene-alvo baseada em célula (ES) não tem estas deficiências e é amplamente usado para modificar o genoma do animal/rato que vão desde grandes exclusões/inserções para substituições de nucleotídeo único. Notavelmente, identificar os relativamente poucos eventos de recombinação homóloga (HR) necessários para obter desejado ES clones é um passo fundamental, que exige métodos precisos e confiáveis. Mancha do Sul e/ou PCR convencional é frequentemente utilizado para esta finalidade. Aqui, descrevemos os procedimentos detalhados de usar esses dois métodos para identificar o HR eventos que ocorreram em pilhas do ES do rato em que o gene Myh9 endógeno destina-se a ser interrompido e substituído por cDNAs codificação outras cadeias pesadas de miosina nonmuscle do IIs (IIs NMHC). Todo o processo de mancha do Sul inclui a construção de direcionamento vector(s), eletroporação, seleção de drogas, a expansão e armazenamento de células de ES/clones, a preparação, digestão e mancha de DNA genômico (gDNA), a hibridização e lavagem de ição e uma etapa final de autoradiografia sobre os filmes de raio-x. PCR pode ser realizado diretamente com gDNA preparado e diluído. Para obter resultados ideais, as sondas e a enzima de restrição (RE) sites de corte para a mancha do Sul e os primers para PCR devem ser cuidadosamente planejadas. Embora a execução de mancha do Sul é demorada e trabalhosa e resultados PCR tem falsos positivos, a correta identificação pela mancha do Sul e a triagem rápida pelo PCR permite que o aplicativo único ou combinado desses métodos descritos Neste trabalho a ser amplamente utilizado e consultado pela maioria dos laboratórios na identificação de genótipos de pilhas do ES e geneticamente modificado animais.

Neste trabalho, um protocolo detalhado da mancha do Sul e do PCR é descrito, que é utilizado para identificar o HR eventos que ocorreram em pilhas do ES do rato para a geração de modelos de rato de substituição genética II NM, usando ES baseados em células mediada por HR segmentação tecnologia. Embora a mancha do Sul e PCR, bem como tecnologia de gene-alvo tradicional, têm sido amplamente utilizada por várias décadas, o sucesso da aplicação deles precisa ser cuidadosamente planejada. Pelo...

Aqui, apresentamos um protocolo detalhado para identificar os eventos de recombinação homóloga que ocorreram em células-tronco embrionárias do mouse usando a mancha do Sul e/ou PCR. Este método é exemplificado pela geração de nonmuscle myosin II substituição genética rato modelos usando embrionária baseada em células-tronco homóloga mediada por recombinação segmentação tecnologia tradicional.

Identificação de eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern Blotting e reação em cadeia da polimerase

Relative to the issues of off-target effects and the difficulty of inserting a long DNA fragment in the application of designer nucleases for genome ...

Este método pode ajudar a responder a perguntas-chave no campo da biologia molecular e celular, como identificar eventos de recombinação homólogos em células-tronco embrionárias de camundongos. A principal vantagem desta técnica é que ela é precisa, confiável e amplamente utilizada. Assim, este método pode fornecer informações sobre a identificação de eventos de recombinação homólogos em célula-tronco embrionária do rato.Também pode ser aplicado a outros sistemas, como células geneticamente modificadas ou animais. Geralmente, o novo indivíduo neste método vai lutar porque leva muito tempo e envolve múltiplos passos. Para cada gDNA, misture 30 microlitadores de 10 x buffer para DRA um, três microliters de DRA um e 10 microgramas de gDNAs por amostra.Adicione água até que o volume final seja de 30 microlitadores, e incubar a 37 graus celsius durante a noite para digerir os gDNAs. Prepare um gel de eletroforese de 1%agarose com brometo de ethidium. Carregue as amostras adquiridas anteriormente junto com uma escada KB de um KB no gel, e execute-as a 30 a 40 volts durante a noite.No dia seguinte, mergulhe o gel em uma bandeja contendo uma solução de ácido clorídrico newton 0,2. Use um agitador para agitar a bandeja suavemente por 20 minutos em temperatura ambiente. Transfira o gel para uma bandeja contendo uma solução de desnaturação de DNA.Agite suavemente por 20 minutos em temperatura ambiente. Em seguida, transfira o gel para uma bandeja contendo uma solução de neutralização de DNA. E agite suavemente por 20 minutos em temperatura ambiente.Usando um sistema de transferência descendente rápido, transfira os DNAs do gel para a membrana. Em seguida, monte a mancha turva e a pilha de manchas, conforme descrito nas instruções fornecidas pelo fabricante. Depois disso, tire a membrana e lave-a com duas citratos de sódio salino X por um minuto.Absorva o líquido com tecidos, e então use um crosslinker UV para cruzar o DNA com a membrana. Para começar a rotular as sondas de DNA com radioatividade, adicione o calor desnaturado DNAs sonda ao tubo contendo as contas prontas para a rotulagem de DNA. Pipeta para cima e para baixo para misturar.E adicione cinco microliters de triphosfato de deoxicytodine radioativamente rotulado. Incubar a 37 graus celsius por 15 minutos. Purifique os testes rotulados usando colunas G 50 micro de acordo com as instruções fornecidas pelo fabricante.Use um contador de cintilação para medir a radioatividade. Para começar a hibridizar as membranas com as sondas rotuladas, coloque a membrana no tubo de hibridização. Adicione a solução mista de pré-hibridização.Coloque o tubo no forno de hibridização e deixe a pré-hibridização prosseguir a 42 graus celsius por 30 minutos. Em seguida, retire o tubo do forno e despeje a solução de pré-hibridização em um tubo de 50 mililitros. Adicione a sonda desnaturada e misture delicadamente.Para remover as sondas não hibridizadas, coloque a membrana em uma bandeja contendo uma citrato de sódio salino X com SDS de 0,1% e agite suavemente a 55 a 60 graus celsius por 10 minutos. Depois disso, enrole a membrana com plástico e fixe-a no de exposição. Em uma sala escura, exponha a membrana a duas folhas de filme de raio-X.Desenvolva o filme para visualizar os resultados. Determine se um clone ES correspondente é o desejado com o alvo de recombinação ou não, de acordo com os tamanhos das bandas de DNA detectadas pelas sondas. Neste estudo, a mancha do sul e o PCR são utilizados para identificar eventos de RH que ocorrem em células ES de camundongos para a geração de NM dois modelos de camundongos de substituição genética usando a tecnologia de segmentação mediada por RH baseado em células ES.Como os DNAs genômicos são cortados em muitos fragmentos com diferentes comprimentos, eles exibem uma mancha como status no gel de DNA. Isso sugere uma digestão completa dos DNAs genômicos. Como um passo final de mancha sul, os sinais de uma sonda rotulada por radioatividade hibridização com um fragmento de DNA alvo são mostrados no filme.O aparecimento de bandas esperadas reflete a ocorrência de eventos de RH nos clones do ES. De acordo com o pré-sinal do estudo, os clones ES com alelo mutado têm duas faixas de tamanho distintas. Enquanto os clones do tipo selvagem ES têm apenas uma banda, sugerindo que os clones ES desejados são heterozigosos.Após a reação do PCR, os produtos PCR podem ser analisados no gel de DNA. Se uma banda NPCR específica do tamanho correto for observada, isso sugere a ocorrência de eventos de RH que podem ser confirmados ainda mais pelo sequenciamento dessa banda PCR. A implicação dessa técnica se estendeu à terapia de identificação de mutação de ponto porque a fundação é idêntica.Ao tentar este procedimento é importante lembrar de ser paciente e cuidadoso. Após esse procedimento, outro método como a microinjeção de células ES em blastocistos pode ser realizado a fim de responder a perguntas adicionais como a formação de animais quiméricos. Ao alto de seu desenvolvimento, essa técnica abriu caminho para o pesquisador em seu campo de biologia molecular e celular explorar a função de um gene específico ou a consequência de um gene mutante em camundongos ou além.Não se esqueça que trabalhar com o etiquetador de radioatividade P32 DCTB pode ser extremamente perigoso e precauções como blindagem com placa de proteção devem estar sempre tomando durante a realização deste procedimento.

identification-homologous-recombination-events-mouse-embryonic-stem

Research

JoVE Journal

Genetics

Genética

Neste vídeo, descrevemos a técnica de Southern blotting para identificar eventos de recombinação homóloga no genoma de células-tronco embrionárias de camundongos usando sondas radiomarcadas. As regiões de DNA contendo eventos de recombinação homóloga aparecem como bandas distintas quando a membrana contendo o DNA ligado à sonda é exposta a raios-X.

Southern Blotting para detectar recombinação homóloga no genoma de células-tronco embrionárias de camundongos

O fibroblasto embrionário de camundongo pode ser reprogramado em células-tronco pluripotentes induzidas com baixa eficiência pela expressão forçada dos fatores de transcrição Oct-4, Sox-2, Klf-4, c-Myc. Os raros intermediários da reação de reprogramação são FACS isolados por meio de marcação com anticorpos contra os fabricantes de superfície celular Thy-1.2, Ssea-1 e Epcam.

Marcador de superfície celular Purificação Mediada de iPS Intermediários celulares a partir de um modelo Reprogramável mouse

Proteínas, muitas vezes contêm vários domínios que podem exercer diferentes funções celulares. Gene knock-out (KO) não consideram essa diversidade funcional. Aqui, relatamos uma abordagem de estrutura-função com base na troca de cassete mediada por recombinação (RMCE) em KO células estaminais embrionárias que permite a dissecação molecular de vários domínios funcionais ou variantes de uma proteína.

Estudos de estrutura-função em células estaminais embrionárias Rato Usando recombinase mediada por troca cassete

Aqui, descrevemos os métodos para executar o ChIP-Seq e CARIP-Seq, incluindo preparação de biblioteca para o sequenciamento de última geração, para gerar epigenomic global e cromatina associada RNA mapas em pilhas do ES.

CARIP-Seq e ChIP-Seq: métodos para identificar a cromatina associada RNAs e interações da proteína-ADN em células-tronco embrionárias

Relatamos a aplicação da captura de conformação de cromossomos quantitativos seguida de sequenciamento de alto throughput em corpos embrionários gerados a partir de células-tronco embrionárias. Esta técnica permite identificar e quantificar os contatos entre melhoradores putativos e regiões promotoras de um determinado gene durante a diferenciação de células-tronco embrionárias.

Identificação de contatos intensificadores-promotores em corpos embrionários por captura quantitativa de conformação de cromossomo (4C)

Este artigo tem como objetivo demonstrar o uso de células-tronco embrionárias haploides partehenogenéticas como um substituto para o esperma para a construção de embriões semi-clonados.

Aplicação de Células-Tronco Embrionárias Haploid Partehenogenéticas do Rato como um substituto do esperma

Os ensaios de captura de loop D (DLC) e extensão de loop D (DLE) utilizam o princípio da ligadura de proximidade juntamente com a PCR quantitativa para quantificar a formação de D-loop, a extensão de D-loop e a formação de produtos no local de uma ruptura induzível de fita dupla em Saccharomyces cerevisiae.

Detecção de Intermediários de Recombinação Homóloga via Ligadura de Proximidade e PCR Quantitativa em Saccharomyces cerevisiae

A manutenção da integridade do genoma do ovócito é necessária para garantir a fidelidade genética no embrião resultante. Aqui, apresentamos um protocolo preciso para detectar quebras de fita dupla de DNA em células germinativas femininas de mamíferos.

Detecção de quebras de fita dupla de DNA em ovócitos de camundongos

O presente protocolo descreve um método de politransfecção reversa de células-tronco embrionárias de camundongos durante o cultivo com meios 2i e LIP. Este método produz maior viabilidade e eficiência do que os protocolos tradicionais de transfecção direta, ao mesmo tempo em que permite a otimização one-pot das proporções plasmidiais.

Uma técnica otimizada de politransfecção reversa baseada em células-tronco embrionárias de camundongo para rápida exploração de proporções de ácidos nucleicos

Este artigo estabelece um pipeline para suspensões de células e núcleos únicos de alta qualidade de embriões de camundongos gastrulados para sequenciamento de células e núcleos únicos.

Sequenciamento de RNA de célula única de embriões de camundongos inteiros mutantes: do epiblasto ao fim da gastrulação

Erros meióticos nas sinapses e recombinação são comuns aos oócitos de mamíferos. A análise rigorosa das proteínas envolvidas nesses processos é essencial para entender como e por que a oogênese geralmente dá errado. As técnicas apresentadas aqui permitem o monitoramento abrangente da recombinação e sinapses para avaliar a qualidade do oócito em camundongos.

Preparação de Spreads Cromossômicos Meióticos de Oócitos de Camundongos para Avaliação de Sinapse e Recombinação

Aprenda a identificar eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern blotting e PCR. Este método preciso permite gerar modelos genéticos para estudos de biologia molecular.

Identificação de eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern Blotting e reação em cadeia da polimerase (Vídeo) | JoVE Journal

Identificação de eventos de recombinação homóloga em células-tronco embrionárias de camundongo usando Southern Blotting e reação em cadeia da polimerase

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