Name: Na geração de Vitro do Somite derivados de humanos induzida por células tronco pluripotentes (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 21 s
Description: Aprenda a diferenciar células-tronco pluripotentes induzidas humanas em derivados de somito, incluindo miotomo, dermatoma, esclerótomo e sindetomo, em condições quimicamente definidas. Este método avança a modelagem de doenças musculoesqueléticas e terapias celulares.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Gostaríamos de agradecer Dr. Junya Toguchida (CiRA) por sua ajuda com a administração do projeto e o financiamento de aquisição, Sr. Mitsuaki Shibata (CiRA) e MS. Mei Terashima (CiRA) para sua assistência técnica, Dr. Yayoi Toyooka (CiRA) e Dr. Daisuke Kamiya (CiRA) sua revisão do manuscrito e Sr. Masaya Todani (CiRA) para fornecer uma ilustração (Figura 1). Agradecemos também a todos os membros dos laboratórios Ikeya e Toguchida (CiRA) pelo apoio durante este estudo. Este trabalho foi apoiado pela Grants-in-aid para a investigação científica da sociedade de Japão para a promoção da ciência (JSPS) (26670661), o programa para as células iPS de intratável doenças pesquisa utilizando doenças específicas do Japão de ciência e tecnologia Agência (JST) e a agência de Japão para pesquisa médica e desenvolvimento (AMED), o núcleo centro para pesquisa da pilha de iPS da rede de centro de pesquisa para a realização da medicina regenerativa (JST/AMED) e o fundo de pesquisa de células iPS (em parte para Makoto Ikeya e Junya Toguchida). Makoto Ikeya era também apoiada pelos Grants-in-aid para pesquisa científica (JSPS) (16H 05447) e o programa de aceleração para a investigação de doenças intratáveis utilizando células iPS de doenças específicas (AMED).

Todos os protocolos experimentais envolvendo humanos iPSCs foram aprovados pelo Comitê de ética do departamento de medicina e pós-graduação faculdade de medicina, Universidade de Kyoto.
1. humana iPSCs preparação antes da indução
Nota: Cultura humana iPSCs (201B7-PAX3-GFP) no alimentador de SNL células16 com suplementado com 4 ng/mL fator de crescimento fibroblástico básico humano recombinante (FGF2) e 0,5% de penicilina e estreptomicina célula Primaz ES (doravante como meio de hESC, consulte A tabela 1). Quando a proporção de confluência atinge 70%-80%, passagem as células como descrito anteriormente,17.
<ol><li>
Passagem de iPSCs humana no SNL alimentador células17
	<ol>
<li>Para passagem, adicionar PBS para o prato de cultivo celular e enxágue as células. Em seguida, remover a PBS (daqui por diante, este processo será referido como lavagem com PBS).</li>
		<li>Adicionar 1 mL de solução CTK (ver tabela 1) a temperatura (RT) e espere até que as células de alimentador SNL começam a desanexação da parte inferior do prato.</li>
		<li>Remover a solução CTK e então lave duas vezes com PBS.</li>
		<li>Adicionar 1 mL de meio de hESC (ver tabela 1) para o prato, então raspar as células com uma espátula e coletar em um tubo cônico de 15 mL.</li>
		<li>Pipetar delicadamente o conteúdo cinco vezes com uma ponta de µ l a 1.000 e então transfira para um prato novo, repleto de hESC médio. Use uma relação de divisão de 1:4 para 01:10, dependendo a proporção de confluência antes de passagem. Além disso, varia o volume de meio hESC dependendo da escala do prato (por exemplo, 3 mL para um prato de 6 cm, 8 mL para um prato de 10 cm).</li>
		<li>Incube as iPSCs humano em 37 ° C e 5% de CO2.</li>
		<li>Mudar o médio todos os dias (exceto o dia após a passagem) e cultura de células até o próximo procedimento passaging.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Alimentador-livre de cultivo de iPSCs humano antes da indução de PSM Nota: para minimizar o efeito de fatores de crescimento secretados de células de alimentador SNL, cultura a iPSCs humana sob condições de alimentador-livre com um meio de cultura celular livre de alimentador (ver quadro 1) em soluções de matriz extracelular (ECM) (ver tabela 1) prato revestido por 3 dias antes da indução de PSM.<ol>
<li>Dia -4 (4 dias antes do início da indução do PSM)<ol>
<li>Para preparar o prato revestido solução de ECM, adicione 4 mL de solução de ECM sobre um prato de 10 cm a 4 ° C durante a noite. Nota: Coloque a solução de ECM no gelo enquanto prepara.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Dia -3<ol>
<li>Primeiro, remova a solução de ECM do prato e adicionar 8 mL de meio de cultura celular livre de alimentador.</li>
			<li>Para iniciar o alimentador-livre cultivo, lave uma vez com PBS para lavar as células cultivadas.</li>
			<li>Adicione 1 mL de solução CTK em RT até as células de alimentador SNL começam a desanexação da parte inferior do prato. Nota: Utilização de microscopia para confirmar todas as células do alimentador são desanexados do fundo.</li>
			<li>Remover a solução CTK e lave com PBS duas vezes, para que todas as células de alimentador SNL são totalmente removidas.</li>
			<li>Adicionar 1 mL de meio de cultura celular alimentador-livre para o prato, em seguida, raspar as células com uma espátula e recolhê-los em um tubo cônico de 15 mL.</li>
			<li>Gentilmente Pipetar três vezes usando uma ponta de 1.000 µ l o conteúdo e, em seguida, transferir para um novo prato de 10cm revestidos solução ECM (preparado durante a etapa 1.2.1). Use uma relação de divisão de aproximadamente 1:2 para 1:4, dependendo do rácio de confluência antes livre de alimentador de cultivo.</li>
			<li>Incube as iPSCs humano em 37 ° C e 5% de CO2 por 3 dias, alterando o meio dia -1.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. PSM diferenciação e isolamento por fluorescência-ativado da pilha (FACS) de classificação
<ol><li>
Diferenciação de PSM (dia 0-dia 4)
	<ol>
<li>Aspire o meio de cultura celular livre de alimentador e adicionar 8 mL de meio de indução de PSM (meio basal CDM, suplementado com 10 µM SB431542, 10 µM CHIR99021, 2 µM, DMH1 e 20 ng/mL FGF2, ver tabela 1). Nota: Confluência de célula na iniciação de diferenciação PSM é fundamental para a eficiência de indução. Utilização de microscopia para confirmar a relação confluente é aproximadamente 30%.</li>
		<li>Incube as células a 37 ° C, com 5% de CO2, 4 dias, alterando o meio no dia 3.</li>
		<li>Colheita de células para FACS no dia 4 (seção 2.2, abaixo).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Isolamento de células positivas de PSM DLL1 por fluorescência-ativado da pilha (FACS) de classificação Nota: abaixo é um procedimento para a preparação da pilha antes de FACS classificação de células positivas DLL1. Execute o FACS classificação usando um citômetro de fluxo, de acordo com o protocolo do fabricante.<ol>
<li>Aspire o meio e, em seguida, lave com PBS. Posteriormente, adicionar 1 mL do reagente de dissociação de célula e deixe por 3 min em RT</li>
		<li>Adicionar 4 mL de meio base de MDL, raspar as células com uma espátula e recolhê-los em um tubo cônico de 15 mL.</li>
		<li>Contar o número de células, usando um contador automatizado de células e, em seguida, centrifugar a 280 x g durante 3 min.</li>
		<li>Cuidadosamente Retire o sobrenadante por aspiração e ressuspender as células em buffer FACS (ver tabela 1) na concentração de 1,0 x 107 células/mL. Para uma amostra de controlo negativo (isotipo controle, ou na Convenção, sem anticorpos), transferir 50 µ l em um tubo cônico de 15 mL e então suspenda com 450 µ l de tampão de FACS.</li>
		<li>Adicionar DLL1 anticorpo (ver Tabela de materiais) na proporção de 1/200. Proteger o tubo de luz e manter em gelo por 30 min.</li>
		<li>Centrifugar a 280 x g por 3 min.</li>
		<li>Cuidadosamente, aspirar o sobrenadante e ressuspender em buffer FACS (1.0 x 107 células/mL) suplementado com 1 mg/mL DAPI.</li>
		<li>Transferência num tubo de colheita, incorporado com uma malha de nylon de 35 µm na tampa para filtragem, em seguida, coloque o tubo no gelo até classificação for concluído. Execute o mesmo procedimento com a amostra de controlo negativo (etapa 2.2.4).</li>
		<li>Execute a classificação usando um citômetro de fluxo de acordo com o protocolo do fabricante.</li>
		<li>Colete as células positivas de DLL1 classificadas em um tubo cônico de 15 mL, contendo 4 mL de meio basal CDM, suplementado com 10 µM de Y27632. Para a extração de RNA total, centrifugar a 280 x g durante 3 min depois Resuspenda em tampão de lise de RNA e armazenar a-30 ° C. Consulte a extração do RNA e transcrição reversa RT-qPCR procedimentos (seção 5.1) para obter informações mais detalhadas.</li>
		<li>Executar a diferenciação de SM usando as células classificadas de acordo com o abaixo protocolo (secção 3).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. SM diferenciação do PSM
<ol><li>
Diferenciação de SM de DLL1 células PSM classificadas positivas (dia 4 – dia 8) Nota: preparar as placas de 12 Poços revestidos solução ECM anteontem FACS classificação. Para preparar um prato de 12-Poços revestidos solução ECM, adicionar 1 mL de solução de ECM em cada poço a 4 ° C e deixar durante a noite. Manter a solução de ECM no gelo enquanto prepara.<ol>
<li>A seguir passo 2.2.10, centrifugar a 280 x g por 3 min.</li>
		<li>Cuidadosamente aspirar o sobrenadante e ressuspender em 1 mL de meio de indução de SM (meio basal CDM, suplementado com 10 µM SB431542 e 5 µM CHIR99021, ver tabela 1).</li>
		<li>Conte o número de células, usando um contador automatizado de células.</li>
		<li>Semente de 1,0 x 105 células para cada poço das placas 12-poços de ECM revestidas solução contendo 1 mL de meio de indução de SM suplementado com 10 µM de Y27632.</li>
		<li>Incube a 37 ° C com 5% de CO2 por 4 dias até o dia 8. Mude o meio não contendo Y27632 no dia 5 (o dia depois da classificação de FACS) e dia 7.</li>
		<li>Execute a diferenciação de derivados de SM usando células de SM induzidas de acordo com os protocolos abaixo. Para extração de RNA total de células de SM induzidas, coletar as células em um tubo cônico de 15 mL e centrifugar 280 x g por 3 min, em seguida, resuspenda em tampão de lise de RNA e armazenar a-30 ° C.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. SM derivados (DM, MYO, D, SCL, SYN) diferenciação de SM
Nota: Para demonstrar a competência-cheia de células de SM, primeiro execute o DM (dermomyotome) e indução de SCL (sclerotome) nesse sentido, utilizando células de SM iPSC-derivado. Posteriormente, realizar MYO (Miótomo) e indução de D (dermátomo) usando as células do DM e realizar a indução de SYN (syndetome) usando as células SCL. Abaixo estão os protocolos para a indução de cada derivado (DM, MYO, D, SCL e SYN) de células de SM induzidas in vitro.
<ol><li>
DM de diferenciação de células SM (dia 8 – dia 11)
	<ol>
<li>Aspire o meio e, em seguida, adicionar 1 mL de meio de indução de DM (meio basal de MDL suplementado com 5 µM CHIR99021 e 10 ng/mL BMP4, ver tabela 1).</li>
		<li>Incube as células a 37 ° C, com 5% de CO2, 3 dias até dia 11. Mude o médio no dia 10 (dia 2 de DM indução).</li>
		<li>Executar MYO e D diferenciação usando induzido DM células de acordo com os protocolos abaixo.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Diferenciação de MYO de células DM (dia 11-dia 41)
	<ol>
<li>Aspire o meio e, em seguida, adicionar 1 mL de meio de indução de MYO (meio basal de MDL suplementado com 5 µM CHIR99021, ver tabela 1).</li>
		<li>Incube as células a 37 ° C, com 5% de CO2, durante 30 dias até 41 dias. Altere o meio em 3 dias.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Diferenciação de D de células DM (dia 11-dia 20)
	<ol>
<li>Aspire o meio e, em seguida, adicionar 1 mL de meio de indução D (meio basal de MDL suplementado com 5 µM CHIR99021 e 10 ng/mL BMP4, ver tabela 1).</li>
		<li>Incube as células a 37 ° C, com 5% de CO2, durante 9 dias até o dia 20. Altere o meio em 3 dias.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Diferenciação de SCL de células SM (dia 8 – dia 11)
	<ol>
<li>Aspire o meio e, em seguida, adicionar 1 mL de meio de indução de SCL (meio basal de MDL suplementado com 100 nM SAG e 0,6 µM LDN193189, ver tabela 1)14.</li>
		<li>Incube as células a 37 ° C, com 5% de CO2, 3 dias. Mude o médio no dia 10 (indução de dia 2 do SCL).</li>
		<li>Execute a diferenciação de SYN usando células SCL induzidas de acordo com o protocolo abaixo.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Diferenciação de SYN de células SCL (dia 11-dia 32) Nota: preparar as placas de 24 Poços revestidos solução ECM no dia antes de iniciar a indução de SYN. Para preparar um prato de 24-bem revestidos solução ECM, adicionar 0,5 mL de solução de ECM em cada poço a 4 ° C e deixar durante a noite. Manter a solução de ECM no gelo enquanto prepara.<ol>
<li>Aspire o meio depois lave com PBS, em seguida, adicionar 0,2 mL de reagente de dissociação de célula para cada poço e deixe por 3 min em RT</li>
		<li>Adicionar 0,8 mL de meio base de MDL a cada poço em seguida, raspar e coletar todas as células em um tubo cônico de 15 mL.</li>
		<li>Centrifugar a 280 x g por 3 min.</li>
		<li>Cuidadosamente aspirar o sobrenadante e ressuspender em 1 mL de meio de indução de SYN-1 (meio basal de MDL suplementado com 20 ng/mL FGF8, ver tabela 1), em seguida, contar o número de células, usando um contador automatizado de células.</li>
		<li>Semente 5.0 x 104 células em cada poço das ECM solução-revestido 24-bem placas contendo 1 mL de meio de indução de SYN-1.</li>
		<li>Incube a 37 ° C, com 5% de CO2, por 3 dias.</li>
		<li>No dia 14 (indução do dia 3 de SYN), substitua o meio médio de indução de SYN-2 (meio basal CDM, suplementado com 10 ng/mL BMP7 e 10 ng/mL TGFβ3, ver tabela 1).</li>
		<li>Incube a 37 ° C, com 5% de CO2, 18 dias até dia 32. Altere o meio em 3 dias.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. caracterização de produtos derivados de iPSC
Nota: Após diferenciação, caracteriza derivados de iPSCs humana usando PCR quantitativo em tempo real (RT-qPCR), imunocitoquímica (ICC), ensaios imunoenzimático (ELISA) e ensaios de estimulação mecânica de estiramento, conformemente.
<ol><li>
Colheita de células, extração de RNA total, transcrição reversa e análise quantitativa de PCR (RT-qPCR) em tempo real
	<ol>
<li>Coletar as amostras de células (procedimentos 2.2.10, 3.1.6, 5.4.3) em um tubo de 1,5 mL e, em seguida, centrifugar a 280 x g durante 3 min.</li>
		<li>Remover o sobrenadante e ressuspender em 350 µ l de tampão de lise de RNA, fornecida por um kit de extração de RNA total apropriado.</li>
		<li>Extraia o RNA total usando o kit de acordo com o protocolo do fabricante.</li>
		<li>Reverso transcrever o isolado 1 µ g de RNA total de cDNA, de acordo com o protocolo do fabricante.</li>
		<li>Execute RT-qPCR usando apropriadas enzimas, reagentes e primeiras demão de acordo com o protocolo do fabricante. Sequências de cartilha utilizadas neste estudo estão listadas na tabela 2.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Imunocitoquímica (ICC)
	<ol>
<li>Antes de executar a imunocitoquímica com anticorpos, consertar as células com 2% paraformaldeído a 4 ° C por 10 min e lave duas vezes com PBS.</li>
		<li>Para permeabilização, incube com 0,2% de metanol ou 0,2% polissorbato 20/PBS (adiante designado PBS-T) a 4 ° C por 15 min.</li>
		<li>Remover os reagentes de permeabilização e tratar as células com um apropriado bloqueio buffer ou 1% bovina albumina de soro/PBS a 4 ° C por 60 min.</li>
		<li>Adicione o primeiro anticorpo diluído com tampão de bloqueio de 10% em PBS-T e o lugar em uma máquina de agitação a 4 ° C durante a noite.</li>
		<li>Lavar três vezes com PBS-T (adicione PBS-T e coloque na máquina de agitação em RT por 10 min).</li>
		<li>Adicione o segundo anticorpo, diluído em tampão de bloqueio de 10% em PBS-T e coloque na máquina de agitação em RT por 60 min. Os anticorpos de primeiros e segundo para ICC utilizado neste estudo são listados na tabela 3. Nota: Desta etapa em diante, protege o placa/prato da luz por envolvê-lo em papel alumínio.</li>
		<li>Lave duas vezes com PBS-T.</li>
		<li>Para contador de coloração, adicione 1/5000 DAPI diluído com PBS e coloque na máquina de agitação em RT por 5 min.</li>
		<li>Remover a solução DAPI e adicionar PBS em cada poço.</li>
		<li>Observe a coloracao celular usando um microscópio de fluorescência. Alternativamente, armazene o prato/placa a 4 ° C por até 1 mês.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Enzima-lig da imunoabsorção ensaio (ELISA) para a análise funcional de iPSC-derivado D Nota: células de fibroblastos dérmicos humanos (HDF) estão disponíveis comercialmente. Cultura de HDF em DMEM suplementado com 10% de soro fetal bovino (ver tabela 1).<ol>
<li>Semente de 1,0 x 105 células de iPSC-derivado D e HDF em placas de 24 poços contendo 1 mL de cada meio de cultura (meio de indução: d: D, HDF: DMEM suplementado com 10% de soro fetal bovino).</li>
		<li>Depois de 3 dias de cultivo celular, coletar 100 µ l de cada meio, coloque em um tubo de 1,5 mL e armazenar a 4 ° C.</li>
		<li>Executar a série de procedimentos, tais como a adição de anticorpos de deteção e anticorpos secundários, de acordo com as instruções do fabricante e quantificar o número de destinos, gerando uma curva padrão contra a concentração do controle amostras de analito.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Ensaio de estimulação mecânica de estiramento para análise funcional de iPSC-derivado SYN Nota: adultos humanos tenocytes são comercialmente disponíveis (ver Tabela de materiais). Cultura humana iPSC-derivado SYN e tenocytes humano adulto em uma célula de dispositivo para o ensaio de estimulação mecânica de estiramento de alongamento, conforme descrito abaixo de18,19. Uso SYN indução médio-2 e tenocytes crescimento médio (ver Tabela de materiais) como um meio de cultivo para cada derivado de iPSC SYN e tenocytes humano adulto, respectivamente.<ol>
<li>A 24 h antes de esticar, células de placa 1,0 x 105 de iPSC-derivado SYN e tenocytes humana em borracha de silicone bem-tipo ECM solução-revestido multi câmaras, cada uma com uma superfície de cultura de 1,5 x 1,5 cm (ver a Tabela de materiais).</li>
		<li>Definir as câmaras no dispositivo para alongamento da célula e forçar monoaxiais tensão cíclica (0,5 Hz, 5%) para 12h.</li>
		<li>Para a extração de RNA total, adicionar 350 µ l de tampão de lise de RNA, em seguida, raspar e coletar as células em um tubo de 1,5 mL para extração de RNA total e posterior análise de RT-qPCR (veja procedimento 5.1).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Tanaka, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+reproducible+myogenic+differentiation+from+human+iPS+cells%3A+prospects+for+modeling+Miyoshi+Myopathy+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Efficient and reproducible myogenic differentiation from human iPS cells: prospects for modeling Miyoshi Myopathy in vitro.</a> PLoS One. 8 (4), e61540(2013).</li>
<li>Sakurai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+modeling+of+paraxial+mesodermal+progenitors+derived+from+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">In vitro modeling of paraxial mesodermal progenitors derived from induced pluripotent stem cells.</a> PLoS One. 7 (10), e47078(2012).</li>
<li>Chal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human+muscle+fibers+and+satellite-like+cells+from+human+pluripotent+stem+cells+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocl%22%5BJournal%5D)">Generation of human muscle fibers and satellite-like cells from human pluripotent stem cells in vitro.</a> Nature Protocl. 11 (10), 1833-1850 (2016).</li>
<li>Chal, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+pluripotent+stem+cells+to+muscle+fiber+to+model+Duchenne+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Differentiation of pluripotent stem cells to muscle fiber to model Duchenne muscular dystrophy.</a> Nature Biotechnology. 33 (9), 962-969 (2015).</li>
<li>Umeda, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+chondrogenic+paraxial+mesoderm%2C+directed+specification+and+prospective+isolation+from+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Human chondrogenic paraxial mesoderm, directed specification and prospective isolation from pluripotent stem cells.</a> Scientific Reports. 2, 455(2012).</li>
<li>Loh, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+the+Pairwise+Choices+Leading+from+Pluripotency+to+Human+Bone%2C+Heart%2C+and+Other+Mesoderm+Cell+Types%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mapping the Pairwise Choices Leading from Pluripotency to Human Bone, Heart, and Other Mesoderm Cell Types.</a> Cell. 166 (2), 451-467 (2016).</li>
<li>Xi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Human+Somitogenesis+Guides+Somite+Development+from+hPSCs%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">In Vivo Human Somitogenesis Guides Somite Development from hPSCs.</a> Cell Reports. 18 (6), 1573-1585 (2017).</li>
<li>Chal, J., Pourquie, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+muscle%3A+skeletal+myogenesis+in+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Making muscle: skeletal myogenesis in vivo and in vitro.</a> Development. 144 (12), 2104-2122 (2017).</li>
<li>Tam, P. P., Beddington, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+formation+of+mesodermal+tissues+in+the+mouse+embryo+during+gastrulation+and+early+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The formation of mesodermal tissues in the mouse embryo during gastrulation and early organogenesis.</a> Development. 99 (1), 109-126 (1987).</li>
<li>Aulehla, A., Pourquie, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+gradients+during+paraxial+mesoderm+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Perspectives+in+Biology%22%5BJournal%5D)">Signaling gradients during paraxial mesoderm development.</a> Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (2), a000869(2010).</li>
<li>Christ, B., Scaal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+differentiation+of+avian+somite+derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Experimental+Medicine+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Formation and differentiation of avian somite derivatives.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 638, 1-41 (2008).</li>
<li>Brent, A. E., Schweitzer, R., Tabin, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+somitic+compartment+of+tendon+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A somitic compartment of tendon progenitors.</a> Cell. 113 (2), 235-248 (2003).</li>
<li>Sakurai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bidirectional+induction+toward+paraxial+mesodermal+derivatives+from+mouse+ES+cells+in+chemically+defined+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Bidirectional induction toward paraxial mesodermal derivatives from mouse ES cells in chemically defined medium.</a> Stem Cell Research. 3 (2-3), 157-169 (2009).</li>
<li>Zhao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecule-directed+specification+of+sclerotome-like+chondroprogenitors+and+induction+of+a+somitic+chondrogenesis+program+from+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Small molecule-directed specification of sclerotome-like chondroprogenitors and induction of a somitic chondrogenesis program from embryonic stem cells.</a> Development. 141 (20), 3848-3858 (2014).</li>
<li>Nakajima, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+human+somite+development+and+fibrodysplasia+ossificans+progressiva+with+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Modeling human somite development and fibrodysplasia ossificans progressiva with induced pluripotent stem cells.</a> Development. 145 (16), (2018).</li>
<li>McMahon, A. P., Bradley, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Wnt-1+%28int-1%29+proto-oncogene+is+required+for+development+of+a+large+region+of+the+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The Wnt-1 (int-1) proto-oncogene is required for development of a large region of the mouse brain.</a> Cell. 62 (6), 1073-1085 (1990).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li>
<li>Suzuki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((targeting+of+the+transcription+factor+Mohawk+in+rats+causes+heterotopic+ossification+of+Achilles+tendon+via+failed+tenogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">targeting of the transcription factor Mohawk in rats causes heterotopic ossification of Achilles tendon via failed tenogenesis.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (28), 7840-7845 (2016).</li>
<li>Marturano, J. E., Arena, J. D., Schiller, Z. A., Georgakoudi, I., Kuo, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+mechanical+and+biochemical+properties+of+developing+embryonic+tendon%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Characterization of mechanical and biochemical properties of developing embryonic tendon.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (16), 6370-6375 (2013).</li>
<li>Maretto, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+Wnt%2Fbeta-catenin+signaling+during+mouse+development+and+in+colorectal+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Mapping Wnt/beta-catenin signaling during mouse development and in colorectal tumors.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (6), 3299-3304 (2003).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Um método conhecido para a indução do PSC-derivado SM através de PSM é a combinação de CHIR99021 + A83-01 (inibidor TGFβ) durante a indução de PSM do PSC, mas não durante o processo de maturação de PSM6. No presente estudo, a sinalização de WNT/beta-catenina foi inibida usando C59 para induzir SM de PSM. No entanto, introduzimos o uso de CHIR99021 para ativar o caminho de WNT durante a diferenciação de SM. Esta decisão foi feita com base na constatação que vários WNTs são expressos nos tecidos circundantes de SM e dados o fato de que os repórteres WNT são ativos em SM20. Como resultado, observamos que a epitelização, uma característica de SM em vivo, apenas sob a condição com CHIR99021, baseado no acúmulo de CDH11 em junções célula-célula (Figura 2E). Esta observação indica o envolvimento crítico de sinalização durante a diferenciação do PSM e SM epitelização, portanto que nosso protocolo melhor pode recapitular o ambiente endógeno de sinalização de WNT. No entanto, implica também uma nova possibilidade de ajuste fino do WNT/beta-catenina via de sinalização durante a diferenciação, como robustez e eficiência de diferenciação podem variar significativamente dependendo os tipos de células, linhas celulares e vários compostos químicos de WNT-indutores usados por cada pesquisador.
Esse método também nos permite gerar todos os quatro SM derivados, MYO, D, SCL e SYN, de iPSCs humana. Nossos protocolos em etapas usando o CDM podem ser usados para identificar os requisitos de sinalização durante o humano somitogenesis/somite padronização e fornecem insights importantes sobre desenvolvimento humano de SM. Por exemplo, nossos métodos poderiam ser útil para estudar os mecanismos de relógio de segmentação, um sistema de oscilação molecular que regula a formação de SM. Ele foi exaustivamente investigado no zebrafish, filhotes e ratos, mas não em seres humanos devido à falta de ferramentas experimentais adequadas.
Além disso, nosso método pode ser aplicável para futuras terapias clínicas baseada em célula. Por exemplo, humano D iPSC-derivado ou SYN pode ser transplantado pele severamente lesionada ou rompido tendões para regeneração e tratamento. No entanto, várias limitações precisam ser resolvidos antes que esse método pode ser aplicado praticamente. Embora no presente estudo, usamos células de alimentador SNL para iPSC manutenção e solução de ECM, que é extraída do sarcoma de rato Engelbreth-Holm-enxame, como uma superfície de revestimento sobre o prato durante a indução, estes reagentes de origem animal não-humano devem ser removido para melhorar a qualidade da clínica. Além disso, célula quantidade e qualidade, que inclui a pureza e a maturação das células desejadas, também devem ser melhorados. Além disso, não só o número de células, mas também a força de célula é uma característica importante para a regeneração do tendão/ligamento. Além disso, o desenvolvimento de marcadores de superfície para a purificação e um método novo para reconstituição 3D são indispensáveis para avançar nossos protocolos clínicos terapias baseadas em células.

Desenvolver um método de diferenciação direcionado para um tipo de célula desejado do EPS é um passo necessário para traduzir o estudo de PSC-derivado de células para aplicações clínicas. Expressão forçada de genes-chave é uma estratégia promissora para a diferenciação de células-órgão de EPS e melhorou a nossa compreensão do Regulamento genético de determinação do destino de celular, morfogênese de órgão e organização durante a embriogênese1. Além disso, recapitulando os ambientes de sinalização endógenos, usando o desenvolvimento de embriões de rato e pintinho como um roteiro, é considerada essencial para a diferenciação direcionada das EPS. No entanto, dada a aplicação do PSC-derivado de células em estudos clínicos, tais como terapias baseadas em células, a segunda estratégia é mais adequada porque não requer manipulação genética.
Vários estudos têm relatado a indução da mesoderme do humano e do mouse PSCs em condições quimicamente definidas. Normalmente, esses métodos têm confiado na União/nodal/transformar o fator de crescimento β (TGFβ) sinalização e osso Proteína morfogenética (BMP) de sinalização, acredita-se que realizar diferenciação meso-endoderme e mesoderme, resultando em uma eficiência baixa indução de o paraxial mesoderm (aproximadamente 20%)2. Em outras palavras, o PSC-derivados mesoderme induzida por essas vias de sinalização foi principalmente mesoderme lateral da placa e não paraxial mesoderm. Recentemente, alguns estudos têm demonstrado a produção eficiente de mesoderme paraxial PSC-derivado com base em estratégias diferentes3,4,5,6,7,8 . Nestes estudos, EPS foram cultivados com concentrações relativamente altas de quinase de glicogénio sintase 3 (GSK3) inibidores (ativadores de sinalização WNT), consequentemente a eficiência de indução da mesoderme paraxial atingiu 70% – 95%6,7 .
Em somitogenesis, a mesoderme paraxial primeiro forma o mesoderm presomitic (PSM) posteriormente e então forma somitas (SMs) na parte anterior a transição mesênquima-para-epiteliais9,10. Ligante de entalhe Delta-like 1 (DLL1) é conhecido por ter um papel crucial durante a somitogenesis, como controle oscilatório de DLL1 expressão, tanto no nível de mRNA e proteína, regula a segmentação de SM. SMs de eventualmente se subdivide em duas partes, dando origem à dermomyotome (DM) dorsalmente e sclerotome (SCL) ventralmente11. Posteriormente, o DM diferencia no dermátomo (D), um precursor da derme e Miótomo (MYO), um precursor do músculo esquelético; Além disso, uma porção ventral do SCL forma o syndetome (SYN), um precursor de tendões e ligamentos12 (Figura 1). Alguns pesquisadores têm relatado a indução de derivados de PSC-derivado SM como MYO4,13 e SCL14; no entanto, existem várias limitações nestes estudos. Notavelmente, uma vez que nosso conhecimento dos ambientes sinalização de D e SYN é fragmentário, protocolos de indução para D e SYN ainda não foram sistematicamente estabelecidos. Para demonstrar a cheio-competência da SMs induzida de EPS, é essencial para mostrar a diferenciação multi capacidade de SMs induzidas em todos os quatro derivados (D, MYO, SCL e SYN), enquanto estudos anteriores focaram-se apenas a específicos derivados de SM. Aqui, nós relatamos sobre como gerar todos os quatro derivados de SM, incluindo D e SYN, através do PSM e SM fates de iPSCs humana15. Acreditamos que estabelecer um método in vitro gradual que os modelos do processo de desenvolvimento de SM poderia contribuir para o estudo da SM como humano desenvolve-se durante a embriogênese, sem o uso de embriões.

<table><tbody><tr><td>ALX4_Goat anticorpo</td><td>Santacruz</td><td>sc-22066</td><td></td></tr><tr><td>Apo-transferrina</td><td>Sigma</td><td>T1147</td><td></td></tr><tr><td>BMP4</td><td>R & D</td><td>314-BP-010</td><td></td></tr><tr><td>BMP7</td><td>R& D</td><td>354-BP-010</td><td></td></tr><tr><td>Albumina de soro bovino</td><td>Sigma</td><td>A8806</td><td></td></tr><tr><td>Cloreto de cálcio</td><td>Nacalai tesque</td><td>067730-15</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo CDH11_Mouse</td><td>Sinalização celular</td><td>13577</td><td></td></tr><tr><td>Dispositivo de estiramento celular</td><td>Strex</td><td>STB-140</td><td></td></tr><tr><td>Concentrado lipídico quimicamente definido</td><td>Gibco</td><td>11905-031</td><td></td></tr><tr><td>CHIR99021</td><td>Axônio</td><td>1386</td><td></td></tr><tr><td>COL1A1_Rabbit anticorpo</td><td>Abcam</td><td>ab34710</td><td></td></tr><tr><td>COL2A1_Mouse anticorpo</td><td>Thermo scientific</td><td>MS-235</td><td></td></tr><tr><td>Colagenase IV</td><td>Thermofisher</td><td>17104019</td><td></td></tr><tr><td>DLL1 APC-conjugated_Mouse anticorpo</td><td>R & D</td><td>FAB1818A</td><td>para FACS</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma</td><td>D6046</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>11320-082</td><td></td></tr><tr><td>DMH1</td><td>Tocris</td><td>4126</td><td></td></tr><tr><td>EN1_Rabbit anticorpo</td><td>Abcam</td><td>ab70993</td><td></td></tr><tr><td>Soro bovino fetal</td><td>Nichirei</td><td>171012</td><td></td></tr><tr><td>FGF2</td><td>Wako</td><td>060-04543</td><td></td></tr><tr><td>FGF8</td><td>Peprotech</td><td>100-25</td><td></td></tr><tr><td>Fibroblasto dérmico humano</td><td>Aplicações celulares</td><td>160-05a</td><td></td></tr><tr><td>Tenócito humano</td><td>Angio proteomia</td><td>cAP-0041</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Insulina Wako</td><td>090-06474</td><td></td></tr><tr><td>Iscove ' s Dulbecco modificado » s médio/presunto» s F12</td><td>Gibco</td><td>21056023</td><td></td></tr><tr><td>Knockout SR</td><td>Gibco</td><td>10828028</td><td></td></tr><tr><td>LDN193189</td><td>Axon</td><td>1509</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel</td><td>BD bioscience</td><td>354230</td><td>Matriz extracelular artificial</td></tr><tr><td>MEOX1_Rabbit anticorpo</td><td>Abcam</td><td>ab75895</td><td></td></tr><tr><td>MHC_Rabbit anticorpo</td><td>Santacruz</td><td>sc-20641</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpos</td><td>Atlas de</td> anticorpos <td>de MKX_Rabbit A83377</td><td></td></tr><tr><td>Monotioglicerol</td><td>Sigma</td><td>M6145</td><td></td></tr><tr><td>mTeSR1</td><td>Tecnologia de células-tronco</td><td>85850</td><td></td></tr><tr><td>Multi poço-tipo câmara de borracha de silicone</td><td>Strex</td><td>STB-CH-4W</td><td></td></tr><tr><td>MYOD_Rabbit anticorpo</td><td>Abcam</td><td>ab133627</td><td></td></tr><tr><td>MYOG_Mouse Santacruz</td><td></td><td>sc-12732</td><td></td></tr><tr><td>NKX3.2_Rabbit anticorpo</td><td>secundário Sigma</td><td>HPA027564</td><td></td></tr><tr><td>Novex Donkey anti Goat IgG(H+L)555</td><td>Invitrogen</td><td>A21432</td><td></td></tr><tr><td>Novex Donkey anti Goat IgG(H+L) anticorpo647</td><td>Invitrogen</td><td>A21447</td><td></td></tr><tr><td>Novex Goat anti Mouse IgG(H+L) anticorpo555</td><td>Invitrogen</td><td>A21422</td><td></td></tr><tr><td>Novex Goat anti Rabbit IgG(H+L) anticorpo secundário555</td><td>Invitrogen</td><td>A21428</td><td></td></tr><tr><td>Novex Goat anti Rabbit IgG(H+L) anticorpo647</td><td>Invitrogen</td><td>A21245</td><td></td></tr><tr><td>PARAXIS_Rabbit anticorpo</td><td>Santacruz</td><td>sc-98796</td><td></td></tr><tr><td>PAX1_Rabbit anticorpo</td><td>Abcam</td><td>ab95227</td><td></td></tr><tr><td>PAX9_Rabbit anticorpo</td><td>Gene tex</td><td>GTX104454</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td> <td>-</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>PDGFRa_Goat</td><td>R & amp D</td><td>AF307</td><td></td></tr><tr><td>Penicilina / Estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Meio de célula ES de primata</td><td>Reprocell</td><td>RCHEMD001</td><td></td></tr><tr><td>SAG</td><td>Calbiochem</td><td>566661</td><td></td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Selleckchem</td><td>SEL-S1067-10</td><td></td></tr><tr><td>anticorpo SCX_Rabbit</td><td>Abcam</td><td>ab58655</td><td></td></tr><tr><td>TBX6_Goat</td><td>R& D</td><td>AF4744</td><td></td></tr><tr><td>Meio de crescimento de células tendinosas</td><td>Angio-proteomia</td><td>cAP-40</td><td>Meio de crescimento de tenócitos</td></tr><tr><td>TGF&beta; 3</td><td>R& D</td><td>243-B3-200</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina</td><td>Gibco</td><td>15090046</td><td></td></tr></tbody></table>

na geração de vitro do somite derivados de humanos induzida por células tronco pluripotentes

In Vitro Generation of Somite Derivatives from Human Induced Pluripotent Stem Cells

Em resposta a sinais tais como WNTs, comer proteínas morfogenéticas (BMPs) e sonic hedgehog (SHH) secretada de tecidos circundantes, somitas (SMs) dão origem a vários tipos de células, incluindo o Miótomo (MYO), sclerotome (SCL), dermátomo (D) e syndetome (SYN) , que por sua vez desenvolvem em músculo esquelético, esqueleto axial, derme dorsal e axial do tendão/ligamento, respectivamente. Portanto, a geração de SMs e de seus derivados de células-tronco humanas pluripotentes induzidas (iPSCs) é fundamental para obter células-tronco pluripotentes (EPS) para aplicação em medicina regenerativa e para a investigação da doença no campo da cirurgia ortopédica. Embora os protocolos de indução para MYO e SCL de EPS foram anteriormente relatados por vários pesquisadores, nenhum estudo demonstrou ainda a indução de SYN e D de iPSCs. Portanto, indução eficiente de SMs totalmente competentes continua a ser um grande desafio. Aqui, podemos recapitular padronização de SM humana com humano iPSCs in vitro imitando o ambiente de sinalização durante o desenvolvimento de SM garota/rato e relatório sobre os métodos de indução sistemática de derivados de SM (MYO, SCL, D e SYN) de iPSCs humana sob quimicamente condições definidas através do mesoderm presomitic (PSM) e Estados de SM. Conhecimento a respeito de filhote de rato/SM desenvolvimento foi aplicado com êxito para a indução de SMs com iPSCs humano. Esse método pode ser uma nova ferramenta para estudar a somitogenesis humana e padronização sem o uso de embriões e para terapia baseada em células e modelagem de doença.

Todas as figuras neste relatório foram obtidas com 201B7-PAX3-GFP iPSCs, no qual EGFP substitui um alelo da sequência de codificação PAX3 no exon 1. Estabelecimento de iPSCs 201B7-PAX3-GFP será descrito em outro lugar (H. Sakurai, comunicação pessoal). A significância estatística foi avaliada utilizando o software estatístico. P-valores inferiores 0,05 foram considerados significativos.
Caracterização de células humanas de iPSC-derivado PSM e SM Para avaliar a diferenciação das iPSCs humana em direção a SM através do estado PSM (Figura 2A), análise de FACS, foram realizadas análises de ICC e análise de RT-qPCR. Como mostrado na Figura 2B, mais 85% das células foram positivas para DLL1, um marcador de PSM, mas negativo para PAX3, um marcador de SM, depois de 4 dias de indução de PSM com iPSCs humano. Subsequentemente, esta população tornou-se células positivas de SM PAX3 após 4 dias de indução de SM. A transição de PSM-SM também foi confirmada pelo TPI (Figura 2) e RT-qPCR (Figura 2D). Marcadores PSM TBX6, MSGN1 e WNT3A, foram expressas no estado PSM (dia 4), mas não expressa no estado SM (dia 8). PARAXIS, MEOX1 e PAX3, marcadores de SM, foram expressas em SM, mas não expressa no PSM. Além disso, só mancha de CDH11, um marcador de epithelialized SM, acumulado na junção celular, após a adição de SB431542 com CHIR99021 (Figura 2E).
Caracterização de SM derivados induzidas de células humanas de SM derivado de iPSC Para avaliar a potência de diferenciação dos humano SM iPSC-derivado, diferenciação na direção de DM, MYO, D, SCL e SYN (Figura 3A) foi avaliada por análise de ICC e PAX3 (GFP)-fluorescência. Como mostrado na Figura 3B, diferenciação de DM foi confirmada pelo ALX4 e EN1 manchando e PAX3 (GFP)-fluorescência; Diferenciação de MYO foi confirmada por MYOD, MYOG e miosina cadeia pesada (MHC) mancha; Diferenciação de D foi confirmada pela EN1 e PDGFRa mancha; Diferenciação de SCL foi confirmada por PAX1, PAX9 e NKX3.2 mancha; e diferenciação de SYN foi confirmada pela SCX, MKX, COL1A1 e COL1A2 coloração.
Caracterização de induzido D e SYN 1. ensaio imunoenzimático (ELISA) para análise funcional de iPSC-derivado D No corpo humano, uma das principais funções dos fibroblastos dérmicos é secretam proteínas de matriz extracelular (ECM), tais como colágeno e ácido hialurônico que hidrata a pele e ajudar a sustentar a estrutura da pele. Para demonstrar que uma quantidade comparável de proteínas de colágeno tipo 1 e ácido hialurônico foram secretadas no meio de cultura de iPSC-derivado D e HDF, ELISA foi realizada, conforme mostrado na Figura 4A.
2. mecânica esticar ensaio de estimulação para análise funcional de iPSC-derivado SYN Como vários estudos já relataram, estimulação mecânica afeta o tendão desenvolvimento antes e após o nascimento e promove a diferenciação de tenocytes de precursor células18,19. Portanto, é sabido que a reatividade ao estresse mecânico é uma das características de tenocytes. Para demonstrar a reatividade comparável de SYN iPSC-derivado humano e humano adulto tenocytes, realizou-se um ensaio de estimulação mecânica de estiramento como mostrado na Figura 4B.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59359/59359fig1.jpg"> Figura 1: visão esquemática da diferenciação hierárquica da mesoderme paraxial. Mesoderm presomitic é uma população de células que transitoriamente surge durante a embriogênese precoce e segmentação de somitas formulário é submetido. Somitas são uma população de células-tronco transitória que dá origem a vários tipos de células, como células sclerotome, dermomyotome, syndetome, Miótomo e dermátomo, que eventualmente se diferenciar em tendão/ligamento, osso/cartilagem, músculo esquelético e derme células. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59359/59359fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59359/59359fig2.jpg"> Figura 2: análise FACS, RT-qPCR e ICC de PSM iPSC-derivado humano e SM (A) visão esquemática de um protocolo para diferenciação de SM através do PSM. (B) trama do ponto representativo de DLL1 manchando e PAX3 (GFP)-fluorescência no dia 4 de indução de PSM e dia 4 (dia 8 de iPSC) de indução de SM. (C) representante immunocytochemical imagens e PAX3 (GFP)-fluorescência no dia 4 de indução de PSM e dia 4 (dia 8 de iPSC) de indução de SM. As células foram coradas com anti-TBX6, PARAXIS, MEOX1 e anticorpos (vermelho) e co manchado com DAPI (azul) ou detectado com PAX3 (GFP)-fluorescência (verde). (D) análise de RT-qPCR de marcadores para PSM e SM no iPSC, PSM e SM. Significa ± erro padrão (S.E.) de três conjuntos de experimentos são mostrados. (E) representante immunocytochemical imagens no dia 4 (dia 8 de iPSC) do SM, cultivadas em S10I10 (combinação de SB431542 e IWR1, um inibidor de sinalização de WNT), S10 (SB431542) e S10C5 condições (combinação de SB431542 e CHIR99021). As células foram coradas com anticorpo anti-CDH11 (vermelhas) e co coradas com DAPI (azul). iPS, células-tronco pluripotentes induzidas; PSM, mesoderm presomitic; SM, somite; S10, SB431542 10 ΜM; C5, CHIR99021 5 ΜM; I10, IWR1 10 ΜM; Barras de escala = 50 μm. Esta figura foi modificada de Nakajima et al (2018)15. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59359/59359fig2large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59359/59359fig3.jpg"> Figura 3: análise de ICC de DM, MYO, D, SCL e SYN diferenciada da humana iPSC-derivado SM (A) visão esquemática dos protocolos para diferenciação de derivados de SM. (B) representante immunocytochemical imagens e PAX3 (GFP)-fluorescência no dia 3 (dia 11 de iPSC) de indução do DM, dia 30 (dia 41 de iPSC) de indução de MYO, dia 9 (dia 20 de iPSC) de indução D, dia 3 (dia 11 de iPSC) de indução de SCL e dia 21 (dia 32 de iPSC) de indução de SYN. DM, células foram coradas com anti-ALX4 e anticorpos EN1 (vermelho) e co manchadas com DAPI (azul) ou detectadas com PAX3 (GFP)-fluorescência (verde); MYO, células estavam manchadas com anti-MYOD, MYOG (vermelho) e anticorpos MHC (ciano), também co manchados com DAPI (azul); D, as células foram coradas com anti-EN1 (vermelho) e anticorpos PDGFRa (ciano) e co coradas com DAPI (azul); SCL, as células foram coradas com anti-PAX1, PAX9, NKX3.2 e anticorpos (vermelhos) e co manchado com DAPI (azul); SYN, as células foram coradas com anti-SCX, MKX, COL1A1 e COL1A2 anticorpos (vermelhos) e co manchado com DAPI (azul). DM, dermomyotome; MYO, Miótomo; D, dermátomo; SCL, sclerotome; SYN, syndetome; Barras de escala = 50 μm. Esta figura foi modificada de Nakajima et al (2018)15. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59359/59359fig3large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59359/59359fig4.jpg"> Figura 4: ensaio funcional de induzido D e SYN. (A) a quantidade de colágeno tipo 1 e hialurônico ácido proteínas do meio de cultura foram analisadas por ELISA. (B) o efeito do estiramento mecânico estimulação induzida SYN e tenocytes adulto humano foi avaliada por RT-qPCR. Significa ± erro padrão (S.E.) de três conjuntos de experimentos são mostrados. * p &lt; 0,05; * * p &lt; 0,01; p &lt; 0,001 por múltiplas comparações t-teste Dunnett comparado ao estiramento (-); ratinho63, não significativa, HDF, humano adulto fibroblastos dérmicos. Esta figura foi modificada de Nakajima et al (2018)15. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59359/59359fig4large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Médio/solução</td>
			<td>Reagant</td>
			<td>Concentração</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="7">Meio basal de MDL</td>
			<td>Iscove modificado F12 médio/Ham de Dulbecco</td>
			<td>1:1</td>
		</tr>
<tr>
<td>Penicilina/estreptomicina</td>
			<td>0,5%</td>
		</tr>
<tr>
<td>Quimicamente definidos concentrado lipídico</td>
			<td>1%</td>
		</tr>
<tr>
<td>APO-transferrina</td>
			<td>15 mg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>Monothioglycerol</td>
			<td>450 mM</td>
		</tr>
<tr>
<td>Albumina de soro bovino</td>
			<td>5 mg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>Insulina</td>
			<td>7 mg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="5">Solução CTK</td>
			<td>Água</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Tripsina</td>
			<td>0,25%</td>
		</tr>
<tr>
<td>Colagenase IV</td>
			<td>0,1 mg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>Cloreto de cálcio</td>
			<td>1 mM</td>
		</tr>
<tr>
<td>SR nocaute</td>
			<td>20%</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Médio de indução D</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>CHIR99021</td>
			<td>5 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>BMP4</td>
			<td>10 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Médio de indução do DM</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>CHIR99021</td>
			<td>5 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>BMP4</td>
			<td>10 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Solução de ECM</td>
			<td>Artificial da matriz extracelular</td>
			<td>0,3 mg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>DMEM/F12</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Buffer de FACS</td>
			<td>PBS</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Albumina de soro bovino</td>
			<td>0,1%</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Meio de cultura celular livre de alimentador</td>
			<td>mTeSR1</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Penicilina/estreptomicina</td>
			<td>0,5%</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Meio de cultura HDF</td>
			<td>DMEM</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Soro fetal bovino</td>
			<td>10%</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">hESC médio</td>
			<td>Meio de primata ES celular</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>Penicilina/estreptomicina</td>
			<td>0,5%</td>
		</tr>
<tr>
<td>FGF2</td>
			<td>4 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Meio de indução de MYO</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>CHIR99021</td>
			<td>5 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="5">Meio de indução de PSM</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>SB431542</td>
			<td>10 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>CHIR99021</td>
			<td>10 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>DMH1</td>
			<td>2 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>FGF2</td>
			<td>20 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Meio de indução de SCL</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>SAG</td>
			<td>100 nM</td>
		</tr>
<tr>
<td>LDN193189</td>
			<td>0,6 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Meio de indução de SM</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>SB431542</td>
			<td>10 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td>CHIR99021</td>
			<td>5 ΜM</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="2">Meio de indução de SYN-1</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>FGF8</td>
			<td>20 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">Meio de indução de SYN-2</td>
			<td>Meio basal de MDL</td>
			<td>-</td>
		</tr>
<tr>
<td>BMP7</td>
			<td>10 ng/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>TGFΒ3</td>
			<td>10 ng/mL</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabela 1: Receitas de mídia e solução.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>NOME</td>
			<td>Para a frente</td>
			<td>Inverter</td>
		</tr>
<tr>
<td>ACTB</td>
			<td>CACCATTGGCAATGAGCGGTTC</td>
			<td>AGGTCTTTGCGGATGTCCACGT</td>
		</tr>
<tr>
<td>COL1A1</td>
			<td>GGACACAGAGGTTTCAGTGGT</td>
			<td>GCACCATCATTTCCACGAGC</td>
		</tr>
<tr>
<td>MEOX1</td>
			<td>GAGATTGCGGTAAACCTGGA</td>
			<td>GAACTTGGAGAGGCTGTGGA</td>
		</tr>
<tr>
<td>MSGN1</td>
			<td>GGAGAAGCTCAGGATGAGGA</td>
			<td>GTCTGTGAGTTCCCCGATGT</td>
		</tr>
<tr>
<td>PARAXIS</td>
			<td>TCCTGGAGAGCTGTGAGGAT</td>
			<td>CACACCCTGTCACCAACAGT</td>
		</tr>
<tr>
<td>PAX3</td>
			<td>AGGAAGGAGGCAGAGGAAAG</td>
			<td>CAGCTGTTCTGCTGTGAAGG</td>
		</tr>
<tr>
<td>SCX</td>
			<td>CCCAAACAGATCTGCACCTTC</td>
			<td>GCGAATCGCTGTCTTTCTGTC</td>
		</tr>
<tr>
<td>TBX6</td>
			<td>AGCCTGTGTCTTTCCATCGT</td>
			<td>AGGCTGTCACGGAGATGAAT</td>
		</tr>
<tr>
<td>TNMD</td>
			<td>CCCTTCATGCTGAAGCCACTT</td>
			<td>CTCACTTTCAGCAGAATTGGGG</td>
		</tr>
<tr>
<td>WNT3A</td>
			<td>CAAGATTGGCATCCAGGAGT</td>
			<td>ATGAGCGTGTCACTGCAAAG</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabela 2: Sequências de Primer para análise de RT-qPCR.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td>Concentração</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="17">1. Anticorpo</td>
			<td>ALX4_Goat</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>CDH11_Mouse</td>
			<td>1/1000</td>
		</tr>
<tr>
<td>COL1A1_Rabbit</td>
			<td>1/100</td>
		</tr>
<tr>
<td>COL2A1_Mouse</td>
			<td>1-2 μg/mL</td>
		</tr>
<tr>
<td>EN1_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>MEOX1_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>MHC_Rabbit</td>
			<td>1/200</td>
		</tr>
<tr>
<td>MKX_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>MYOD_Rabbit</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
<tr>
<td>MYOG_Mouse</td>
			<td>1/400</td>
		</tr>
<tr>
<td>NKX3.2_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>PARAXIS_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>PAX1_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>PAX9_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>PDGFRa_Goat</td>
			<td>1/100</td>
		</tr>
<tr>
<td>SCX_Rabbit</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td>TBX6_Goat</td>
			<td>1/50</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="5">2. Anticorpo</td>
			<td>Burro anti antibody555 secundário de cabra IgG(H+L)</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
<tr>
<td>Burro anti antibody647 secundário de cabra IgG(H+L)</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
<tr>
<td>Cabra anti IgG(H+L) Mouse antibody555 secundário</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
<tr>
<td>Cabra anticoelho IgG(H+L) antibody555 secundário</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
<tr>
<td>Cabra anticoelho IgG(H+L) antibody647 secundário</td>
			<td>1/500</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabela 3: Primeira e segunda anticorpos para ICC.

Apresentamos aqui um protocolo para a diferenciação de células-tronco pluripotentes induzidas humanas em cada derivado do somite (Miótomo, sclerotome, dermátomo e syndetome) em condições quimicamente definidas, que tem aplicações em modelagem de doenças futuras e terapias baseadas em células em cirurgia ortopédica.

Na geração de Vitro do Somite derivados de humanos induzida por células tronco pluripotentes

In response to signals such as WNTs, bone morphogenetic proteins (BMPs), and sonic hedgehog (SHH) secreted from surrounding tissues, somites (SMs) give ...

A indução de derivados de somite de células-tronco pluripotentes induzidas, ou iPSC, é um passo crítico para o uso de células-tronco pluripotentes para aplicações de terapia regenerativa ou pesquisa de doenças. Esta técnica pode ser usada para diferenciar células iPS humanas em derivados de somite, como myotome, dermatome, esclerotome e células de sintetoma em condições quimicamente definidas. Utilizando iPSC estabelecido a partir de um paciente que sofre de um distúrbio musculoesquelético intratável, este método pode ser usado para modelar o fenótipo da doença e para testar as novas terapias medicamentosas.Este método também pode ser aplicado para promover nossa compreensão da biologia e dos mecanismos subjacentes ao desenvolvimento do mesoderme paraxial durante a embriogênese humana. Quatro dias antes de iniciar a indução de mesoderme presomótico, cubra um prato de 10 centímetros com quatro mililitros de solução de matriz extracelular para uma incubação noturna a quatro graus Celsius. Na manhã seguinte, substitua a solução de matriz extracelular por oito mililitros de meio de cultura celular livre de alimentadores.Para começar a cultivar sem alimentador, lave a cultura humana iPSC com PBS, e adicione um mililitro de solução CTK ao prato de cultura. Quando as células começarem a se desprender do fundo do prato, lave a cultura duas vezes com PBS fresco para remover totalmente todas as células alimentadoras SNL antes de adicionar um mililitro de meio de cultura celular livre de alimentador ao prato. Use um raspador de células para desprender manualmente as células-tronco e transfira as células para um tubo cônico de 15 mililitros.Pipete suavemente a solução celular três vezes com uma ponta de pipeta de 1.000 microliter, e transfira as células para o prato de cultura extracelular revestido de matriz. Em seguida, devolva as células à incubadora de cultura celular por três dias. Ao final da incubação, substitua o meio de cultura celular livre de alimentador por oito mililitros de meio de indução de mesoderme presomótico, e inicie a diferenciação de mesoderme pré-médico na incubadora de cultura celular pelos próximos quatro dias, mudando o meio no terceiro dia.No final da incubação, isole a proteína delta 1 células positivas por citometria de fluxo, e colete as células classificadas por centrifugação. Resuspend a pelota em um mililitro de meio de indução de mesoderme somitic para contar, e sementes uma vez 10 a quinta células em cada poço de uma placa de 12 poços revestido de matriz extracelular contendo um mililitro de meio de indução de mesoderme somitic complementado com 10 micromolar da rho quinase, ou ROCK, inibidor Y-27632. Em seguida, devolva as células à incubadora de cultura celular por mais quatro dias, mudando o meio não contendo o inibidor nos dias um e três da cultura.Para diferenciação de sclerotome das células esclerotomes, lave as células esclerotomes com PBS antes de destacar as células com 0,2 mililitros de reagente de dissociação celular por poço. Após três minutos em temperatura ambiente, adicione 0,8 mililitros de meio basal quimicamente definido para cada poço, e desprende as células com um raspador de células. Transfira as células para um tubo cônico de 15 mililitros para centrifugação, e resuspenque a pelota em um mililitro de indução de syndetome para contar.Semente cinco vezes 10 para a quarta células em cada poço de uma placa de 24 poços revestido de matriz extracelular contendo um mililitro de indução de syndetome, e retornar a placa à incubadora de cultura celular por três dias. No terceiro dia de indução de syndetome, substitua o meio por indução de syndetome dois, e devolva a placa à incubadora por 18 dias, alterando o meio a cada três dias. Após a diferenciação do mesoderme presomótico, mais de 85% das células são positivas para a proteína delta 1, um marcador de mesoderme presomótico, mas negativo para PAX3, um marcador de mesoderme somítico.Esta população torna-se pax3 células de mesoderme somitic positivo após quatro dias de indução de mesoderme somítico. Além disso, a coloração da cadherina-11, um marcador de mesoderme somitico epitelializado, só se acumula nas junções célula-célula, após a adição de CHIR99021. A diferenciação para dermomyotome, miotome, dermatome, esclerotome e síndico pode ser avaliada por imunocitoquímica e fluorescência PAX3.Semelhante aos fibroblastos dérmicos humanos, as células dermatome derivadas do iPSC produzem colágeno e ácido hialurônico, conforme avaliado pela ELISA. Para demonstrar a reatividade comparável do sintetme derivado do iPSC humano e dos tenócitos adultos humanos, um ensaio de estimulação de estiramento mecânico pode ser realizado. Antes da passagem do IPSC, confirme que a confluência de cultura está entre 70 e 80% e as células divididas na proporção de um para dois para um para quatro em conformidade.Essa passagem é fundamental para a diferenciação bem sucedida dos iPSCs. Para futuras terapias baseadas em células que utilizam este método, é necessário estabelecer uma nova condição livre de germes que não inclua nenhum componente derivado de animais não humanos.

in-vitro-generation-somite-derivatives-from-human-induced-pluripotent

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia do Desenvolvimento

Nós demonstramos o protocolo para a geração de células-tronco pluripotentes induzidas a partir de células somáticas humanas usando lentivírus mediada entrega dos fatores humanos Oct4, Sox2, Nanog e Lin28. Pluripotência foi confirmado pela morfologia e pela presença de tronco embrionárias (ES) de células específicas marcadores.

Geração de células-tronco pluripotentes induzidas pela reprogramação fibroblastos humanos com o Lentivirus TF Stemgent Humanos Set

Este protocolo descreve o procedimento detalhado para a criopreservação de células iPS humanas no meio de criopreservação KnockOut SR e recuperação destas células em completa KnockOut Feeder SR Free (KSR-FF) médio ou alimentação baseada em médias KnockOut SR.

Criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando KnockOut Completa Feeder livre de substituição de soro Médio

Nós estabelecemos um protocolo para indução de neuroblastos direta de pluripotentes células estaminais embrionárias humanas mantidas sob condições definidas com pequenas moléculas, que permite a derivação de uma grande oferta de recursos humanos progenitores neurais e células neuronais tipos no desenvolvimento neural do SNC para reparação.

Derivação eficiente dos recursos humanos Progenitores Neuronal e Neurônios de pluripotentes células estaminais embrionárias humanas com a indução de moléculas pequenas

Nós estabelecemos um protocolo para indução de cardioblasts direta de pluripotentes células estaminais embrionárias humanas mantidas sob condições definidas com pequenas moléculas, que permite a derivação de uma grande oferta de recursos humanos progenitores cardíaca e funcional cardiovascular cardiomiócitos para reparação.

Derivação eficiente dos recursos humanos Precursores cardíaca e Cardiomyocytes pluripotentes a partir de células estaminais embrionárias humanas com a indução de moléculas pequenas

Gerando pluripotentes induzidas de células-tronco (IPSC) produz linhas de linhas de diferentes potencial de desenvolvimento, mesmo quando eles passam por testes padrão pluripotência. Aqui nós descrevemos um protocolo para produzir ratos derivadas inteiramente de iPSCs, que define as linhas iPSC como possuindo pluripotência...

Geração de camundongos derivadas de células-tronco pluripotentes induzidas

Aqui, apresentamos o nosso método estabelecido para reprogramar células somáticas humanas em iPSCs humanos sem transgene com o vírus Sendai, que mostra resultado consistente e maior eficiência.

Eficiente Geração induzida pelo homem células-tronco pluripotentes a partir de células somáticas humanas com Sendai-vírus

Este manuscrito fornece um procedimento passo a passo para a derivação e manutenção de queratinócitos humanos a partir de cabelos arrancados e subsequente geração de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos livres de integração (hiPSCs) por vetores epissómicos.

Geração de Integração Induced-livre Human células estaminais pluripotentes usando o cabelo derivado queratinócitos

Este protocolo descreve como gerar células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) a partir de células T periféricas humanas em condições livres de alimentador usando uma combinação de vetores de vírus matrigel e Sendai contendo fatores de reprogramação.

Geração de pluripotentes induzidas a partir de células-tronco periférico humano T células usando Sendai Virus em condições livres de Alimentador

A derivação robusta das células do tronco pluripotente humano induzido (hiPS) foi conseguida utilizando a reprogramação mediada por vetores de vírus Sendai não-integrante (SeV) de fibroblastos dérmicos. A manutenção da célula hiPS e a expansão clonal foram realizadas usando condições de cultura sem xeno e quimicamente definidas com matriz de laminina humana recombinante 521 (LN-521) e meio Essential E8 (E8).

Derivação livre de integração de células-tronco pluripotentes induzidas por seres humanos com Laminin 521 Matrix

Este artigo descreve um procedimento para produzir iTenócitos gerando células estromais mesenquimais derivadas de iPSC com superexpressão combinada de Scleraxis usando um vetor lentiviral e estiramento uniaxial através de um biorreator 2D.

Geração de itenócitos derivados de células-tronco pluripotentes induzidos via superexpressão combinada de escleraxis e tensão uniaxial 2D

Aprenda a diferenciar células-tronco pluripotentes induzidas humanas em derivados de somito, incluindo miotomo, dermatoma, esclerótomo e sindetomo, em condições quimicamente definidas. Este método avança a modelagem de doenças musculoesqueléticas e terapias celulares.

Na geração de Vitro do Somite derivados de humanos induzida por células tronco pluripotentes

Explorar mais vídeos