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Difração de raios X do músculo esquelético murino intacto como uma ferramenta para estudar a base...
Difração de raios X do músculo esquelético murino intacto como uma ferramenta para estudar a base...
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Developmental Biology
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JoVE Journal Developmental Biology
X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease

Difração de raios X do músculo esquelético murino intacto como uma ferramenta para estudar a base estrutural da doença muscular

Full Text
7,836 Views
08:26 min
July 18, 2019

DOI: 10.3791/59559-v

Weikang Ma1, Thomas C. Irving1

1BioCAT, Dept. of Biological Sciences,Illinois Institute of Technology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Nós apresentamos protocolos detalhados para executar experimentos do difraction do raio X do pequeno-ângulo usando os músculos esqueletais do rato intact. Com a ampla disponibilidade de modelos de camundongo transgênicos para doenças humanas, esta plataforma experimental pode formar um leito de teste útil para elucidar a base estrutural de doenças musculares genéticas

O músculo esquelético fisiologicamente intacto do camundongo pode produzir padrões de difração de raios-X de alta qualidade contendo muitas informações estruturais que podem fornecer insights sobre processos fisiológicos. A difração de raios-X é a única técnica que permite a aquisição de informações estruturais de alta resolução do tecido muscular vivo em condições fisiológicas reais em tempo fisiológico real. Muitas doenças musculares são herdadas.

Com o aumento da disponibilidade para modificar geneticamente a maioria dos modelos de miopatias, a difração de raios-X pode fornecer insights estruturais em mecanismos de doença e indicar estratégias terapêuticas. A maioria dos músculos extensor digitorum longus e soleus são particularmente convenientes para este fim. Mas muitos outros músculos em animais pequenos podem ser dissecados intactos e manuseados de forma semelhante.

Antes de iniciar o procedimento, ligue o transdutor combinado de força motora, o controlador transdutor de força motor com um estimulador de corrente bifásica de alta potência, e um sistema de controle de aquisição de dados de controle de computador. Em seguida, pulverize a pele no membro traseiro do mouse com solução fria de Ringer e use uma tesoura de dissecção fina para cortar a pele ao redor da coxa. Usando fórceps número cinco, puxe rapidamente a pele para baixo para expor os músculos e amputar o membro traseiro.

Coloque o membro em um prato de dissecação revestido de elastômero contendo a solução de Ringer oxigenado e coloque o prato sob um microscópio de dissecação binóculo. Para colher o músculo soleus, fixe o membro traseiro com o músculo gastrocnemius voltado para cima. Use uma tesoura fina para cortar o tendão distal do grupo muscular gastrocnemius/soleus.

Corte a fáscia de ambos os lados do músculo gastrocnemius para permitir que os músculos sejam levantados suavemente e lentamente longe do osso. Em seguida, liberte o tendão proximal do músculo soleus. Fixar o grupo muscular contendo o músculo gastrocnemius e o tendão distal no prato.

Levante o músculo soleus suavemente através do tendão proximal para separá-lo do músculo gastrocnemius, deixando o máximo do tendão distal soleus intacto possível. Para colher o extensor digitorum longus ou músculo EDL, fixe o membro traseiro no prato com o músculo tíibal anterior voltado para cima e corte a fáscia ao longo do músculo tibialis anterior. Use fórceps para puxar a fáscia clara e cortar o tendão distal do músculo tibialis anterior.

Levante o músculo anterior tibialis e corte-o cuidadosamente sem puxar o músculo EDL, e corte o lado lateral do joelho para expor os dois tendões. Corte o tendão proximal, deixando-nos muito do tendão possível ainda ligado ao músculo e puxe suavemente o tendão para levantar o músculo EDL. Em seguida, corte o tendão distal uma vez que ele é exposto.

Para montar o músculo colhido, fixe o músculo através dos tendões e corte o máximo possível de gordura extra, fáscia e tendão. Insira um tendão em um nó pré-amarrado e use fórceps de amarrar sutura para amarrar a sutura firmemente. Amarre o segundo nó ao redor do gancho de metal e repita o procedimento na outra extremidade do tendão.

Em seguida, conecte o gancho curto à parte inferior da câmara experimental, e o gancho longo ao motor transdutor de força de modo duplo. Bolha a solução na câmara experimental com 100% de oxigênio. Para otimizar o protocolo de estimulação e o comprimento muscular ajuste os micro manipuladores ligados ao motor transdutor para gerar uma tensão de linha de base entre 15 a 20 milnewtons para encontrar os melhores parâmetros de estímulo para esticar o músculo.

Coloque a tensão de estimulação em 40 volts. A corrente de estimulação será sistematicamente aumentada até que não haja aumento adicional na força do contração. Para encontrar o comprimento ideal, aumente o comprimento muscular e ative o músculo com uma única contração até que a força ativa pare de aumentar.

Realize uma contração tetanica de um segundo para testar a montagem e esticar o músculo de volta para a força de base ideal, conforme necessário. Em seguida, registo o comprimento muscular em milímetros com uma pinça digital. Para determinar a posição do feixe, use um pedaço de papel sensível ao raio-X que produz uma mancha escura em resposta aos raios-X e um gerador de mira de vídeo para criar uma mira alinhada com a marca de queimadura no papel.

Usando a interface gráfica de usuário fornecida pelo BioCAT para o posicionador de amostra, centralizar o músculo na posição do feixe e mover o estágio da amostra para oscilar a câmara amostral a 10 a 20 milímetros por segundo para espalhar a dose de raios-X por todo o músculo durante a exposição. Observe a amostra enquanto se move para evitar grandes regiões de fáscia que contêm colágeno e para garantir que ela permaneça iluminada durante todo o trajeto de sua viagem. Armar o detector e esperar o gatilho do sistema de aquisição de dados.

Em seguida, acione os dados mecânicos e de raios-X ao mesmo tempo para sincronizá-los. Os padrões de raios-X serão coletados continuamente ao longo do protocolo com um tempo de exposição de 10 milissegundos e um período de exposição de 50 milissegundos. Nesta contração tetanica isométrica representativa, o músculo EDL ficou em repouso por 0,5 segundos antes de ser ativado por um segundo, seguido por um relaxamento de 1,5 segundos.

O padrão de difração de raios-X muscular pode dar informações estruturais de resolução de nanômetros de estruturas dentro do sarcomere. Linhas de camada baseadas em miosina contendo filamentos grossos são fortes e afiadas em padrões de músculo de repouso, enquanto linhas de camada baseadas em actina contendo filamentos finos são mais proeminentes em padrões de contrair músculos. Padrões de diferença obtidos subtraindo o padrão de repouso do padrão de contração podem lançar luz sobre mudanças estruturais durante o desenvolvimento da força em músculos saudáveis e doentes.

Seguindo essas mudanças estruturais na escala de tempo de milissegundos dos eventos moleculares durante a contração muscular e relaxamento, os padrões de difração de raios-X podem revelar informações estruturais substanciais. Nesta análise representativa de reflexões equatoriais utilizando a rotina do Equador no pacote MuscleX de código aberto, a razão de intensidade equatorial indica a proximidade da mosina para atuar no músculo de repouso e está intimamente correlacionada com o número de pontes cruzadas anexadas na contração do músculo esquelético murino. A distância entre os dois 1,0 reflexo está inversamente relacionada ao espaçamento do cruzamento.

Uma dissecção limpa é a chave para um experimento de raio-X muscular intacto bem sucedido, então tente evitar qualquer dano mecânico durante a preparação muscular. Qualquer protocolo fisiológico padrão com músculos inteiros pode ser implementado nesses experimentos e pode ser usado para estudar a ativação muscular, relaxamento e comportamento de ponte cruzada durante a transitoriedade mecânica rápida. A manipulação genética de ratos está se tornando cada vez mais sofisticada.

Novos modelos de camundongos transgênicos permitirão que experimentos mais específicos e perspicazes sejam projetados para indicar novas direções terapêuticas para miopatias humanas.

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Biologia do desenvolvimento edição 149 músculo esquelético difração de raios-X interação de otina estrutura do sarcômero miopatia do músculo esquelético fisiologia do músculo esquelético

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