Name: Um método de congelamento-descongelamento para preparar chitosan-poly (álcool de vinil) hidrogéis sem agentes crosslinking e estudos de liberação diflunisal (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-01-14T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 59 s
Description: Aprenda a preparar hidrogéis de quitosana-polivinil álcool sem agentes de reticulação química usando ciclos de congelamento-descongelamento. Este método seguro permite controlar as propriedades dos materiais para aplicações biomédicas e farmacêuticas.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Os autores são gratos a C. Luzuriaga pelo apoio nas medições porosimetry. Autores também graças ao Ministerio de Economía y Competitividad da Espanha para apoio financeiro (Projeto MAT2014-59116-C2-2-R) e PIUNA (ref. 2018-15). Os autores também gostariam de reconhecer o Dr. Amir Maldonado do Departamento de Física-UNISON para apoio e comentários úteis e Dr. SE Burruel-Ibarra de DIPM-UNISON para imagens SEM e Rubio Pharma y Asociados S. A. de C. V. para apoio financeiro. Me Martínez-Barbosa gostaria de agradecer aos projetos da CONACyT (México) nº 104931 e Nº 256753, além do apoio financeiro da Red Temática de Nanociencias y Nanotecnología del programa de Redes Temáticas del CONACyT. E, também projeto USO316001081. MD Figueroa-Pizano gostaria de reconhecer CONACyT para apoio financeiro (bolsa 373321).

1. Preparação de hidrogéis chitosan-PVA
<ol><li>Prepare 2% (w/w) chitosan e 10% (w/w) soluções PVA. Dissolva 0,2 g de quitosana em 10 mL de 0,1 M CH3COOH solução (previamente filtrada) à temperatura ambiente e manter agitação mecânica contínua durante a noite. Dissolva 1 g de PVA em 10 mL de água destilada e mexa a 80 °C por 1 h.</li>
	<li>Misture ambas as soluções 1:1 usando um agitador magnético até que sejam homogêneas à temperatura ambiente, e despeje as misturas em placas de Petri. Deixe as amostras para 2 h na pressão atmosférica para degas.</li>
	<li>Congele os hidrogéis em -4 °C, -20 °C ou -80 °C para 20 h e 4 ciclos (amostras CP4-4, CP4-20 e CP4-80, respectivamente). Congele outro hidrogel a -80 °C por 20 h usando 5 ou 6 ciclos de congelamento (amostras CP5-80 e CP6-80). Após o terceiro ciclo de congelamento, lave os hidrogéis com água desionizada. No final, congele os hidrogéis a -46 °C por 48 h e guarde para maior caracterização (metodologia adaptada a partir de2).</li>
</ol>2. Caracterização FT-IR
<ol><li>Coloque um pequeno pedaço (1 mm x 2 mm) de hidrogel no espectrômetro FT-IR no modo ATR. Pegue os espectros FT-IR de 4000 a 600 cm-1 (2 cm-1 de resolução e média de 32 exames).</li>
</ol>3. Ensaios inchaço
<ol><li>Corte discos (13 mm de diâmetro e 10 mm de altura) do hidrogel e pesem-nos. Incubar os discos em 50 mL de água desionizada com agitação a 25 °C. Repita três vezes.</li>
	<li>Cada 30 min remover a amostra do meio, mancha para eliminar o excesso de água, e pesar. Calcule o grau de inchaço usando a equação <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq1.jpg"> 1 e calcule o estado de equilíbrio do inchaço, às 24 h usando a equação 2. <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq2.jpg">) Onde <img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq3.jpg"> está o peso do <img alt="Equation 4" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq4.jpg"> hidrogel seco e é o peso do hidrogel molhado. <img alt="Equation 5" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq5.jpg">
</li>
</ol>4. Microscopia Eletrônica
<ol><li>Cubra um pequeno pedaço de hidrogel com uma fina camada de ouro (30 s e 10 mA) em um coater sputter.</li>
	<li>Coloque a amostra em um microscópio eletrônico de varredura (SEM). Analise as amostras vácuo a 20 kV e tire as imagens com uma ampliação de 500x e 1500x.</li>
</ol>5. Porosimetry 5. Porosimetry
<ol><li>Coloque discos de 15 mm de diâmetro pesando cerca de 0,26 g no penetrômetro (um penetrômetro sólido, com um volume maior de 0,3660 mL e 5,7831 mL de volume de caule). Analise o tamanho da porosidade e dos poros por Porosimetry de intrusão de mercúrio (MIP).</li>
	<li>Conduzir o experimento no modo histerese (intrusão-extrusão). Medir o volume total de intrusão (mL/g), área total de poros (m2/g),diâmetro dos poros (μm), porosidade (%), permeabilidade (mDarcy) e tortuosidade. Repita duas vezes.</li>
</ol>6. Carregamento e liberação da droga
<ol><li>Antes de carregar, prepare 4 L de 15 mg/L solução diflunisal e mexa durante a noite. Confirme a concentração da solução pela espectroscopia UV-Vis (concentração inicial). Na verdade, inchar 400 mg de amostras liofilizadas de hidrogel em 6 mL de água destilada para 24 h.</li>
	<li>Para carregar, encha um frasco com 50 mL de solução diflunisal e mantenha a 25 °C com agitação constante. Submergir cada hidrogel inchado no frasco.<ol>
<li>Tome alíquotas de solução diflunisal restante (2 mL) em momentos diferentes, a fim de determinar a região do planalto da curva, por exemplo: 3, 6, 24, 27, 30 e 48 h. Após 24 h substituir a solução com um fresco.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Medir a absorção em 252 nm de cada alibado, e determinar a concentração de diflunisal presente na solução, usando uma curva de calibração de diflunisal. Calcule a quantidade de diflunisal retida no hidrogel às 24 e 48 h, como a diferença de concentrações iniciais e finais, levando em conta o volume total (56 mL).<ol>
<li>Determine a eficiência de encapsulamento (EE) usando a equação 3. <img alt="Equation 6" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq6.jpg">
</li>
		<li>Congele os hidrogéis carregados a -80 °C e liofilize-os a -50 °C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Para a liberação de drogas, submergir 300 mg de hidrogéis liofilizados diflunisal carregado em 50 mL de tampão de fosfato (pH 7,4) a 25 °C. Mantenha a agitação constante. Retire alíquotas de 2 mL em momentos diferentes e substituir por meio fresco para manter um volume constante.<ol>
<li>Determinou o diflunisal liberado espectrophotometricamente em 252 nm, de acordo com uma curva de calibração.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Deduza o mecanismo predominante de liberação de drogas nos hidrogéis ajustando os dados de liberação de drogas correspondentes aos primeiros 60%, ao modelo Korsmeyer-Peppas (Equação 4), para obter as constantes cinéticas(k)e a difusão(n). Os valores n indicam o mecanismo de liberação de drogas24,25. Em seguida, os valores próximos a 0,5 estão relacionados à difusão fickiana, enquanto os valores de 0,5-1,0 para o transporte anômalo, onde estão envolvidos difusão e cadeias de relaxamento, e, finalmente, os valores de 1,0 estão relacionados ao transporte caso II. <img alt="Equation 7" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq7.jpg"><ol>
<li>Para confirmar os resultados, use os modelos matemáticos de Higuchi, Primeira ordem e Ordem Zero (Equações 5 a 7) e selecione o melhor ajuste.</li>
		<li>
<img alt="Equation 8" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq8.jpg"> <img alt="Equation 9" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq9.jpg"> <img alt="Equation 10" src="/files/ftp_upload/59636/59636eq10.jpg"> onde t representa o tempo de liberação, Mt a quantidade de droga entregue em um determinado momento, e Ma quantidade total de drogas entregues no final do processo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Os autores não têm nada a divulgar.

O método de congelamento-descongelamento é um processo adequado para preparar hidrogéis biocompatíveis focados em aplicações biomédicas, farmacêuticas ou cosméticas34,35,36. A vantagem mais importante deste método, em comparação com outros métodos bem conhecidos para preparar hidrogéis, é que o uso de agentes crosslinking é evitado, o que poderia causar uma resposta inflamatória ou efeitos adversos no corpo humano<sup class="xre...

Recentemente, os hidrogéis têm atraído grande interesse no campo biomédico, porque eles são redes tridimensionais com alto teor de água e são macios e flexíveis, para que eles possam imitar os tecidos naturais facilmente1. Além disso, eles não se dissolvem em meio aquoso a temperatura fisiológica e pH, mas apresentam um grande inchaço2. Hidrogéis podem atuar como andaimes de engenharia de tecidos, produtos de higiene, lentes de contato e curativos; porque eles podem prender e liberar compostos ativos e drogas, eles são usados como sistemas de entrega de drogas3. Dependendo de sua aplicação, hidrogéis podem ser feitos de polímeros naturais ou sintéticos, ou uma combinação de ambos, a fim de obter as melhores características4.
As propriedades dos hidrogéis são uma conseqüência de muitos fatores físicos e químicos. No nível físico, sua estrutura e morfologia dependem de sua porosidade, tamanho dos poros e distribuição de poros5. No nível químico e molecular, o tipo de polímero, o conteúdo do grupo hidrofílico na cadeia de polímeros, o tipo de ponto transversal e a densidade cruzada são os fatores que determinam a capacidade de inchaço e as propriedades mecânicas6,7.
De acordo com o tipo de agente crosslinking usado para formar a rede, os hidrogéis são classificados como hidrogéis químicos ou hidrogéis físicos. Hidrogéis químicos são unidos por interações covalentes entre suas cadeias, que são formadas através de irradiação UV e gama ou usando um agente crosslinking7,8. Hidrogéis químicos geralmente são fortes e resistentes, mas, geralmente, o agente crosslinking é tóxico para as células e sua remoção é difícil, por isso a sua aplicação é limitada. Por outro lado, hidrogéis físicos se formam pela conexão das cadeias de polímeros através de interações não covalentes, evitando o uso de agentes crosslinking4,9. As principais interações não covalentes na rede são interações hidrofóbicas, forças eletrostáticas, limites complementares e de hidrogênio7.
Poly (álcool de vinil) (PVA, Figura 1a)é um polímero sintético e solúvel em água com excelente desempenho mecânico e biocompatibilidade que pode de hidrogéis livres de agentes crosslink através do método de congelamento-descongelamento10,11. Este polímero tem a capacidade de formar zonas concentradas de ligações de hidrogênio entre grupos -OH de suas cadeias (zonas cristalinas) quando eles estão congelando12. Estas zonas cristalinas atuam como pontos de cruzamento na rede, e são promovidas por dois eventos: a aproximação das cadeias de polímeros quando a água cristalina se expande e as mudanças conformais pva de isotática para pva sindicotático durante o congelamento13. Por causa da liofilagem, os cristais de água são sublimados, deixando espaços vazios que são os poros no hidrogel14. Para obter hidrogéis com melhores propriedades, pva pode ser facilmente combinado com outros polímeros.
Nesse sentido, a quitosana constitui uma opção, pois é o único biopolímero de fontes naturais com cargas positivas. É obtido pela deacetilação da citona e é composto por combinações aleatórias de β-1,4 ligada saciedade D (unidade deacetilada) e N-acetil-D-glucosamina (unidade acetilada)15,16 (Figura 1b). Quitosana é biodegradável por enzimas humanas e é biocompatível. Além disso, por sua natureza cationic, pode interagir com a carga negativa da superfície celular, e esta propriedade tem sido associada com sua atividade antimicrobiana17. Este polímero é fácil de processar; no entanto, suas propriedades mecânicas não são suficientes e alguns materiais foram adicionados para formar complexos com melhores características.
Considerando características específicas da quitosa na quitarina e da PVA, a fabricação bem-sucedida de hidrogéis foi atingida pelo métododecongelamento-descongelamento2,18 para evitar o uso de agentes tóxicos de crosslinking. Em hidrogéis chitosan-PVA, as zonas cristalinas do PVA também são formadas, e as cadeias de quitosana são interpenetradas e formam ligações simples de hidrogênio com grupos -NH2 e grupos -OH no PVA. O hidrogel quitosan-PVA final é mecanicamente estável, com altas taxas de inchaço e baixa toxicidade, e com efeito antibacteriano18. No entanto, dependendo das condições de congelamento utilizadas na preparação (temperatura, tempo e número de ciclos), as características finais podem mudar. Alguns estudos relatam que aumentar o número de ciclos de congelamento diminui o grau de inchaço e aumenta a força de tração19,20. A fim de fortalecer a rede, outros agentes, como a radiação gama e UV e crosslinkers químicos têm sido utilizados adicionalmente após a preparação congelado21,22,23. Hidrogéis com maior proporção de quitosana têm uma rede mais porosa e alta capacidade de inchaço, mas menos força e estabilidade térmica. Neste contexto, é importante considerar as condições de preparação para obter hidrogéis adequados para a sua aplicação alvo.
O objetivo deste trabalho é apresentar em detalhes como as condições de congelamento (temperatura de congelamento e número de ciclos) afetam as características finais dos hidrogéis CS-PVA. Foram avaliadas características de espectros FT-IR, morfológicas e porosidades e capacidade de inchaço, bem como capacidade de carregamento e liberação de medicamentos. Nos estudos de liberação, diflunisal (Figura 1c)foi usado como droga modelo, devido ao seu tamanho adequado à estrutura hidrogel.

<table><tbody><tr><td><forte>Materiais: </forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Quitosana peso molecular médio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>448877</td><td>Mw determinado por viscosmetria capilar (637.000 Da) e grau de desacetilação de 70%</td></tr> <tr><td>Diflunisal (2'-4'-difluoro-4-hidroxi-3-bifenil-carboxílicoácido)</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ácido acético glacial</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1005706</td><td></td></tr><tr><td>Poli (álcool vinílico)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>341584</td><td>Mw 89.000-98.000, 99 + % hidrolisado</td></tr><tr><td>< forte > Equipamento: < / forte ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Cressington Sputter Coater 108 auto</td><td>TED PELLA INC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cryodos Liofilizador</td><td>Telstar</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Falcon tubos</td><td>Thermo Fisher Company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Espectroscopia FT-IR</td><td>Nicolet iS50</td><td>em modo</td><td></td>ATR</tr><tr><td>Liofilizador</td><td>LABCONCO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micromeritics Autopore IV 9500</td><td>Micromeritics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscópio eletrônico de varredura</td><td>Pemtron SS-300LV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotômetro UV-visível</td><td>Agilent 8453</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

um método de congelamento-descongelamento para preparar chitosan-poly (álcool de vinil) hidrogéis sem agentes crosslinking e estudos de liberação diflunisal

A Freeze-Thawing Method to Prepare Chitosan-Poly(vinyl alcohol) Hydrogels Without Crosslinking Agents and Diflunisal Release Studies

Os hidrogéis chitosan-poly (álcool de vinil) podem ser produzidos pelo método de congelamento de descongelamento sem o uso de agentes tóxicos de crosslinking. As aplicações desses sistemas são limitadas por suas características (por exemplo, porosidade, flexibilidade, capacidade de inchaço, carregamento de drogas e capacidade de liberação de medicamentos), que dependem das condições de congelamento e do tipo e proporção de polímeros. Este protocolo descreve como preparar hidrogéis a partir de quitosana e poli (álcool de vinil) em 50/50 w/w % da composição do polímero e variando a temperatura de congelamento (-4 °C, -20 °C, -80 °C) e ciclos de congelamento-descongelamento (4, 5, 6 ciclos de congelamento). Foram obtidos espectraFT-IR, micrografia SEM e dados de porosimetria de hidrogéis. Além disso, a capacidade de inchaço e carregamento de drogas e liberação de diflunisal foram avaliados. Os resultados das micrografias sem e porosimetry mostram que o tamanho dos poros diminui, enquanto a porosidade aumenta em temperaturas mais baixas. A porcentagem de inchaço foi maior na temperatura de congelamento menor. A liberação do diflunisal dos hidrogéis foi estudada. Todas as redes mantêm a liberação de drogas por 30 h e observou-se que um mecanismo simples de difusão regula a liberação diflunisal de acordo com os modelos Korsmeyer-Peppas e Higuchi.

Preparação de hidrogéis Hidrogéis Chitosan-PVA foram obtidos a -4 °C, -20 °C e -80 °C com 4 ciclos de congelamento e a -80 °C com 5 e 6 ciclos de congelamento pelo método de congelamento-descongelamento relatado anteriormente2. Todos os hidrogéis eram homogêneos, semitransparentes, flexíveis e resistentes à manipulação.
Caracterização FT-IR Os espectros FT-IR são mo...

O método de congelamento-descongelamento é usado para produzir hidrogéis quitosan-poli (álcool de vinil) sem agentes de crosslinking. Para este método, é importante considerar as condições de congelamento (temperatura, número de ciclos) e razão de polímero, que podem afetar as propriedades e aplicações dos hidrogéis obtidos.

Um método de congelamento-descongelamento para preparar chitosan-poly (álcool de vinil) hidrogéis sem agentes crosslinking e estudos de liberação diflunisal

Chitosan-poly(vinyl alcohol) hydrogels can be produced by the freeze-thawing method without using toxic crosslinking agents. The applications of these ...

Este protocolo é significativo porque nosso método de congelamento é um processo adequado para preparar hidrogéis biocompatíveis para uso em aplicações biomédicas, farmacêuticas ou cosméticas. A principal vantagem deste método é que ele não usa agentes químicos de crosslinking que podem causar um defeito de nascimento. Além disso, a condição de congelamento utilizada neste método controla a propriedade final de hidrogéis, como graus.Este método pode ser aplicado a hidrogéis com outras aplicações. Isso é usado para tratar a poluição da água. De fato, poderia ser usado para produzir contas de polímero usadas como recipiente de água para uma nova cultura.É importante homogeneizar completamente a solução de polímero que ele mede. Caso contrário, os hidrogéis apresentarão pontos de rachaduras. Além disso, você deve ter cuidado com os tempos de congelamento em cada ciclo.Para iniciar este procedimento dissolva 0,2 gramas de chitosan e 10 mililitros de ácido acético molar de 0,1 à temperatura ambiente e mantenha a agitação mecânica contínua durante a noite para preparar uma solução de 2% de chitosan. No dia seguinte, dissolva um grama de PVA e 10 mililitros de água destilada e mexa a 80 g

a-freeze-thawing-method-to-prepare-chitosan-poly-vinyl-alcohol

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioengenharia

Um grande obstáculo em terapias com células-tronco atuais é determinar o método mais eficaz para entregar essas células para tecidos do hospedeiro. Aqui, nós descrevemos um método de entrega de quitosana-base que é eficiente e simples na abordagem, ao mesmo tempo permitindo que as células-tronco adiposas para manter a sua multipotency.

Construindo um hidrogel de colágeno para a entrega de células-tronco carregado microesferas

Este protocolo é focado na utilização a capacidade inerente de células estaminais para tomar cue a partir de sua matriz circundante extracelular e ser induzidas a diferenciar-se em múltiplos fenótipos. Este manuscrito métodos estende nossa descrição e caracterização de um modelo utilizando um hidrogel de camada dupla, composto de PEG-fibrina e colagénio, ao mesmo tempo, co-diferenciar células-tronco...

Engenharia de um hidrogel de camada dupla para controlar a diferenciação ASC

Liofilização é muitas vezes uma forma fácil e conveniente de obter produtos secos de células bacterianas viáveis. Uma questão do processo é a sobrevivência da célula. Nós detalhe aqui um processo para investigar a forma como a sobrevivência das células durante a liofilização é influenciada pelas propriedades da formulação utilizada.

As formulações para liofilização de bactérias e sua influência na sobrevivência das células

O objetivo deste protocolo é incorporar SDF-1α, um fator de homing de células-tronco, em nanopartículas de sulfato de dextrano-quitosana.  As partículas resultantes são medidas quanto ao seu tamanho e potencial zeta, bem como o conteúdo, atividade e taxa de liberação in vitro de SDF-1α das nanopartículas.

Preparação e Caracterização de SDF-1α-Quitosana As nanopartículas de sulfato de dextrano

Os andaimes para engenharia de tecidos precisam recapitular o complexo microambiente bioquímico e biofísico do nicho celular. Aqui, mostramos o uso de fibras de complexação de polieletrólitos interfaciais como uma plataforma para criar andaimes poliméricos compostos e multicomponentes com liberação bioquímica sustentada.

Andaimes de mistura de fibras Interfacial polieletrólito para lançamento Temporalmente controlada de biomoléculas

Um andaime engenharia de tecidos injectáveis ​​compostas de poli (N-isopropilacrilamida), sulfato de condroitina--graft (PNIPAAm-g-CS) molecular contendo micropartículas de alginato foi preparada. A força de aderência, propriedades e inchaço na biocompatibilidade in vitro são analisadas neste estudo. As técnicas de caracterização desenvolvidos aqui podem ser aplicados a outros sistemas termogelificantes.

Síntese de termogelificantes poli (N-isopropilacrilamida) -graft-condroitina Composites Sulfato com alginato micropartículas para Engenharia de Tecidos

A eletroforese capilar em solução livre é um método analítico rápido, barato e robusto que permite o monitoramento quantitativo de reações químicas em tempo real. Sua utilidade para análise rápida, conveniente e precisa é demonstrada aqui através da análise de enxerto de peptídeo covalente em filmes de quitosana para melhorar a adesão celular.

Eletroforese Capilar para monitorar Peptide Enxertia em quitosana Films em Tempo real

Para fornecer medicamentos contra o câncer a locais de tumor com alta especificidade e efeitos colaterais reduzidos, são necessários novos métodos baseados em nanopartículas. Aqui, descrevemos micelas reticuladas de dissulfeto que podem ser facilmente preparadas por oxidação mediada por peróxido de hidrogênio e são capazes de se dissociar eficientemente sob um ambiente tumoral redutor para liberar cargas úteis.

Uma abordagem fácil e eficiente para a produção de micelas reversível Disulfide Cross-linked

Aqui nós descrevemos uma preparação superficial de hidrogel injetável à base de quitosana usando química imina dinâmico. São apresentados métodos para ajustar a força mecânica do hidrogel e sua aplicação em cultura de células 3D.

Preparação do hidrogel injetável à base de quitosana e sua aplicação em cultura de células 3D

Este estudo descreve um método para expandir a quitina em uma espuma por técnicas químicas que não requerem equipamentos especializados.

Preparação de espumas de cebolinha expandidas e seu uso na remoção de cobre aquoso

O presente protocolo descreve um método não baseado emulsão para a fabricação de microgéis de genipin quitosano. O tamanho desses microgésis pode ser precisamente controlado, e eles podem exibir inchaço dependente de pH, degradar in vivo, e ser carregados com moléculas terapêuticas que liberam ao longo do tempo de forma sustentada, tornando-os altamente relevantes para aplicações de engenharia de tecidos.

Fabricação de microgéis chitosan-genipin controlados por tamanho e sem emulsão para aplicações de engenharia de tecidos

Aprenda a preparar hidrogéis de quitosana-polivinil álcool sem agentes de reticulação química usando ciclos de congelamento-descongelamento. Este método seguro permite controlar as propriedades dos materiais para aplicações biomédicas e farmacêuticas.

Um método de congelamento-descongelamento para preparar chitosan-poly (álcool de vinil) hidrogéis sem agentes crosslinking e estudos de liberação diflunisal (Vídeo) | JoVE Journal

Um método de congelamento-descongelamento para preparar chitosan-poly (álcool de vinil) hidrogéis sem agentes crosslinking e estudos de liberação diflunisal

Explorar mais vídeos