Name: Avaliação do Comportamento Sexual de Camundongos Machos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-03-05T12:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 38 s
Description: Aprenda a avaliar o comportamento sexual de camundongos machos usando um protocolo padronizado com indução de estro em fêmeas. Este método permite registrar e analisar padrões comportamentais em neurociência.

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Agradecemos a Lu Cong, Zhang Hongxia, Zhang Beiyue e Hu Mi por suas sugestões para os experimentos.

Todos os experimentos foram realizados em conformidade com as diretrizes dos Princípios de Cuidados Com Animais Laboratoriais (NI Publication nº 80-23, revisado em 1996) e a aprovação e supervisão da Academia de Centro Experimental de Animais do Instituto de Medicina Desenvolvimento vegetal (China).
1. Criação animal
<ol><li>Abrigar camundongos fêmeas e machos a 25 °C para ciclos escuros de 12 h de luz/12 h.</li>
	<li>Fornecer acesso gratuito à água e uma dieta de pelotas padrão.</li>
	<li>Permita que os ratos se acostumem ao seu ambiente por 7 dias antes da operação se transportados de uma instalação diferente.</li>
</ol>2. Ovariectomia em camundongos femininos
<ol><li>Anestesiar a fêmea (8 semanas pós-natal, não menos que 6 semanas de idade) com isoflurano (~4-5% para indução, ~1-2% para manutenção) em 100% de oxigênio através de uma máscara de cone facial.</li>
	<li>Verifique se a profundidade adequada da anestesia foi alcançada certificando-se de que não há movimentos voluntários para maiores de 30 s, em combinação com uma taxa respiratória adequada (por exemplo, 1 respiração por 2 s ou mais). Alternativamente, teste a resposta do mouse à pressão suave nos dedos das patas traseiras. NOTA: A taxa respiratória normal é de ~180/min. Uma queda de taxa de 50% é aceitável durante a anestesia17.<ol>
<li>Use pomada oftálmica para evitar a secagem da córnea e trauma ocular enquanto estiver anestesia.</li>
		<li>Mantenha a temperatura corporal do mouse acima de 36 °C. Forneça suporte térmico suplementar durante o período de anestesia quando necessário.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Esterilizar e desinfetar todos os instrumentos cirúrgicos e superfícies duras da mesa de operação com 75% de etanol antes do uso.</li>
	<li>Coloque o animal em uma cortina estéril.</li>
	<li>Raspe a pele bilateralmente sobre a coluna lombar na parte de trás do camundongo para expor a pele.</li>
	<li>Esterilizar a pele exposta com 75% de etanol.</li>
	<li>Faça uma única incisão midline (cerca de 0,5 cm de comprimento) na parte de trás do centro das duas raízes da coxa em direção à cabeça de ~1 cm de distância (a posição é mostrada na Figura 1).</li>
	<li>Use uma tesoura pequena para penetrar na pele para libertar suavemente o tecido subcutâneo do músculo subjacente, a fim de expor a camada muscular.</li>
	<li>Localize o ovário a fina camada muscular e faça uma pequena incisão (cerca de 5 mm de comprimento) para entrar na cavidade peritoneal.<ol>
<li>Use uma pinça pequena para puxar o tecido ligeiramente no lado esquerdo da cavidade abdominal para mostrar o ovário esquerdo envolvendo em torno do tecido adiposo branco (uma massa translúcida e irregular como visto a olho nu, ver Figura 1).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Retraia a almofada de gordura ovariana ao redor do ovário com fórceps contundentes para expor o oviduto.</li>
	<li>Realize uma única ligadura ao redor do oviduto para evitar sangramento.</li>
	<li>Use uma tesoura pequena para cortar o oviduto suavemente e remova o ovário.</li>
	<li>Verifique cuidadosamente o oviduto para confirmar se todos os tecidos ovarianos foram removidos. O ovário é de cerca de 5 mm × 4 mm × 3 mm com nódulos irregulares na superfície.</li>
	<li>Coloque a parte restante do oviduto de volta na cavidade abdominal.</li>
	<li>Suturar a camada muscular com suturas absorvíveis.</li>
	<li>Puxe a pele para o lado direito para expor a camada muscular do lado direito e remova o ovário direito repetindo os passos 2.9-2.16.</li>
	<li>Feche a incisão cutânea usando suturas absorvíveis.<ol>
<li>Injete cada rato intraperitonealmente com sódio penicilina (10.000 unidades/10 g por rato) para prevenir infecções.</li>
		<li>Injete lidocaína (4 mg/kg, 0,4 mL/kg de uma solução de 1%) abaixo da pele ao longo do local da incisão. Também forneça ibuprofeno (50-60 mg/kg/dia; 10 mL de Motrin infantil em 500 mL de água) continuamente na água potável por 3 dias para tratamento da dor.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Coloque cada rato em uma gaiola esterilizada individualmente.</li>
	<li>Mantenha-se observação por aproximadamente 1-2 h até que esteja totalmente recuperado da anestesia.<ol>
<li>Recupere animais em toalhas de papel em uma gaiola limpa sem roupa de cama. Esta etapa minimiza o risco de obstrução traqueal ou pneumonia. Fornecer suporte térmico suplementar durante a recuperação anestésia. Monitore o local cirúrgico para evitar a ruptura da ferida.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Após o período de recuperação (aproximadamente 24 horas após a cirurgia), coloque os ratos de volta à gaiola de casa.</li>
	<li>Não realize o experimento por pelo menos 2 semanas após a cirurgia.</li>
</ol>3. Estrus induzidas por hormônios em fêmeas
<ol><li>Determine o estágio estreto das fêmeas realizando uma mancha vaginal como descrito em McLean et al.18. Nenhuma mudança no ciclo de estrus indica que a ovariectomia da fêmea foi bem sucedida.</li>
	<li>Injete benzoato estradiol (20 μg por rato, dissolvido em 0,1 mL de azeite esterilizado, intraperitonealmente) 48 h antes do teste de comportamento sexual.</li>
	<li>Injete progesterona (500 μg por rato, dissolvida em 0,1 mL de óleo, intraperitonealmente) 4 h antes do teste de comportamento sexual. NOTA: A elegibilidade de uma fêmea estrus é determinada pela mulher aceitando a inserção genital de um rato masculino 3 ou mais vezes, quando convivem com um macho sexualmente ativo e experiente em uma gaiola.</li>
</ol>4. Preparação para o teste de comportamento sexual
<ol><li>Realizar o teste de comportamento sexual de ratos machos em uma caixa de campo retangular e aberta (40 cm x 40 cm x 40 cm) com paredes de plexiglass pretas, exceto por uma parede frontal transparente que permite a observação do movimento do rato.</li>
	<li>Defina a iluminação geral da sala para 650 lux. NOTA: Os ratos não devem ser iluminados diretamente para evitar padrões de comportamento anormais.</li>
	<li>Use uma câmera digital ligada a um computador para filmar o movimento e o comportamento dos ratos.</li>
	<li>Realize o teste comportamental nos camundongos machos durante as primeiras horas do ciclo escuro.</li>
</ol>5. Habitação
<ol><li>Mantenha a sala de experiências em silêncio.</li>
	<li>Coloque os ratos para serem testados no centro da caixa de campo aberto, permitindo que eles explorem o ambiente livremente por 30 min.</li>
	<li>Habituar ratos por 2 dias consecutivos antes do dia de teste no aparelho para evitar o estresse do novo ambiente. NOTA: Os ratos devem se mover e explorar livremente sem sentir estresse. Tanto camundongos machos quanto fêmeas precisam ser habituados ao ambiente de teste.</li>
</ol>6. Ensaios comportamentais
<ol><li>Ligue a câmera antes do início do teste.</li>
	<li>Coloque o mouse para ser testado no centro do campo aberto na caixa de teste, permitindo exploração livre por 5 min para se adaptar ao ambiente.</li>
	<li>Coloque uma fêmea em estrus na caixa de teste.</li>
	<li>Registre os comportamentos sociais e de acasalamento e as interações entre camundongos machos e fêmeas por 30 min.</li>
	<li>Desligue a câmera e confirme se o vídeo está salvo.</li>
	<li>Tire a fêmea da caixa de teste e registre a formação de um plugvaginal. NOTA: Um rato feminino que aceitou o acasalamento não pode ser empregado em outro teste de comportamento sexual em um dia.</li>
	<li>Coloque a fêmea de volta em sua jaula.</li>
	<li>Devolva o macho para sua jaula.</li>
	<li>Limpe a urina, as fezes e o preenchimento dentro do aparelho.</li>
	<li>Remova o cheiro dos ratos testados com 75% de etanol.</li>
	<li>Inicie o teste do próximo mouse masculino repetindo os passos 6.1-6.10.</li>
</ol>7. Extração de dados comportamentais
<ol><li>Reprodução da gravação de vídeo e extraia os parâmetros comportamentais (ver Figura 2).<ol>
<li>Registre o número de montagens em 30 min.</li>
		<li>Registre o número de intromissões em 30 min. Conte um impulso pélvico como uma intromissão.</li>
		<li>Registre o tempo desde a introdução da fêmea até a primeira montagem como latência de montagem.</li>
		<li>Registre o tempo desde a introdução da fêmea até a primeira intromissão como latência de intromissão.</li>
		<li>Registre o tempo desde a primeira intromissão até a primeira ejaculação como latência de ejaculação.</li>
		<li>Registre o tempo da ejaculação até a próxima montagem como latência pós-ejaculatória do monte.</li>
		<li>Número recorde de séries copulatórias em 30 min. Uma série copulatória é cada seqüência da montagem à ejaculação.</li>
		<li>Registre o tempo de todas as séries copulatórias em 30 min como a duração da série copulatória.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>The staff of the Jackson laboratory. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Biology+of+the+Laboratory+Mouse%22">Biology of the Laboratory Mouse</a>. , Second Edition, Dover publications, inc. New York. Chapter 11 (2007).</li>
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<li>Leypold, B. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+sexual+and+social+behaviors+in+trp2+mutant+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Altered sexual and social behaviors in trp2 mutant mice.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (9), 6376-6381 (2002).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para revelar.

Existem alguns passos críticos no protocolo apresentado. Em relação à ovariectomia das fêmeas, a abertura da incisão cirúrgica pelas costas é menos prejudicial do que a do abdômen. Dado que a posição do ovário é profunda, puxar outros órgãos quando a incisão é cortada do abdômen muitas vezes leva a sangramento e resulta em visão cirúrgica pouco clara20. Realizamos a incisão nas costas para alcançar o ovário facilmente e encurtar o tempo cirúrgico, bem como garantir a segurança da cirurgia.
<p ...

O comportamento sexual em camundongos machos maduros resulta da interação de uma série de sistemas hormonais e sistemas neurais relacionados e interdependentes em diferentes circuitos cerebrais1. Também requer experiências de desenvolvimento, aprendizado, contexto e um parceiro apropriado. A análise comportamental é uma importante reflexão sobre a função neural ou neurocrina. Assim, o estudo do comportamento sexual em modelos animais tem sido amplamente utilizado na neurociência comportamental e em outras pesquisas relacionadas2. O etograma dos comportamentos sexuais em roedores tem sido explicado em muitos artigos e livros1,3,4. Por exemplo, a descrição de Scahs e Barfield sobre o comportamento sexual no rato5 ajudou a entender um padrão comportamental semelhante em camundongos5. O rato é um dos sujeitos mais usados para estudos comportamentais. Hull et al.6 deram uma introdução detalhada dos comportamentos sexuais do rato masculino: Quando um rato macho encontra uma fêmea, ele começa a investigar a região anogenital da fêmea. Em seguida, o macho pressiona suas patas dianteiras contra os flancos da fêmea para montar a fêmea por trás. A fêmea apresenta uma postura sexualmente receptiva característica, dobrando sua coluna em um arco e movendo sua cauda para um lado do corpo, expondo um introitido de abertura para a penetração sexual do macho (ou seja, lordose). Após a montagem, o macho faz impulsos pélvicos rápidos e rasos, seguidos por impulsos vaginais lentos e profundos. Após inúmeras intromissões, um impulso de longa duração resulta na ejaculação do sêmen, durante o qual o camundongo macho pode congelar por cerca de 25 s antes de desmontar ou cair da fêmea6. Na ejaculação, as glândulas acessórias do rato macho podem produzir uma mistura contendo sêmen que endurece para formar o plugue copulatório. Finalmente, após a ejaculação, o macho começa a se arrumar genitalmente e demonstra falta de interesse pela fêmea. Em resumo, a seqüência básica do comportamento sexual masculino consiste em farejar, seguir, montar, intromissão, ejaculação e tratamento pós-ejaculação. O comportamento sexual do rato apresenta diferenças de tensão. Por exemplo, as latências de ejaculação variam de 594 a 6943 s, e os números de intromissões variam de 5 a mais de 100. As latências pós-ejaculação variam de 17 a 60 min. No entanto, a introdução de uma nova fêmea pode diminuir esse intervalo de tempo. Em alguns casos, o macho ejacula na primeira intromissão com a nova fêmea7.
Os principais eventos para a avaliação do comportamento sexual são a montagem, a intromissão e a ejaculação. Os cientistas comportamentais recomendaram a medição não apenas da frequência de cada ação, mas também de sua latência e intervalo de tempo5,8. Alguns dos principais indicadores de medição em estudos anteriores incluem: número de montagens, número de intromissões, latência de montagem, latência de ejaculação, latência de montagem pós-ejaculatória (ou intervalos pós-ejaculatórios), latência pós-ejaculatória, número de séries copulatórias e duração de séries copulatórias. Park et al.8 e Sachs et al.5 descreveram como identificar cada ação de montagem, intromissão e ejaculação de roedores. A montagem é definida como o macho montando a fêmea por trás, palpando seus flancos com suas patas dianteiras, e empurrando seu pênis rapidamente e repetidamente sem inserção peniana. A intromissão, também conhecida como inserção peniana, é identificada por um ou mais dos seguintes atos: um impulso longo e profundo após impulsos rasos rápidos, um chute rápido com uma perna traseira, e uma retirada lateral marcada do macho da fêmea. A ejaculação é identificada por um impulso pélvico terminal que é mais lento e profundo do que o de uma intromissão e uma redução na elevação da perna traseira. Uma série copulatória é identificada por cada seqüência desde a montagem até a ejaculação. As definições de parâmetros comportamentais utilizados no presente estudo estão listadas da seguinte forma: 1) Latência de montagem: o tempo desde a introdução da fêmea até a primeira montagem do macho; 2) Latência de intromissão: o tempo desde a introdução do sexo feminino até a primeira intromissão; 3) Latência ejaculação: o tempo da primeira intromissão à primeira ejaculação (geralmente após o último impulso pélvico); 4) Latência de montagem pós-ejaculatória: o tempo da ejaculação para a próxima montagem; 5) Latência de intromissão pós-ejaculatória: o tempo de ejaculação e a próxima intromissão; 6) Número de montagens: o número de tempos de montagem antes da primeira ejaculação; 7) Número de intromissões: o número de intromissões antes da primeira ejaculação; 8) Número de séries copulatórias: o número de séries copulatórias durante o período de observação; 9) Duração das séries copulatórias: o tempo de todas as séries copulatórias durante o período de observação.
O comportamento sexual e o comportamento relacionado podem ser conduzidos tanto na gaiola do homem quanto em uma arena fechada, entre as quais um aparelho chamado caixa espelhada "Sem Segredos" de Rissman é introduzido para observar o comportamento de acasalamento3. Uma câmera de vídeo é colocada na frente da caixa para gravar simultaneamente a ação dos ratos a partir de uma visão lateral e através de um espelho inclinado a partir de uma visão ventral. No entanto, este método requer luzes brilhantes, o que inevitavelmente leva a uma maior habitação, a fim de eliminar o estresse ambiental em camundongos. Quanto ao método de medição, recomenda-se a análise comportamental baseada em vídeo para registrar e quantificar o comportamento4. Um gravador de vídeo que tenha uma opção de avanço de vídeo quadro a quadro com velocidades recomendadas de obturador maiores que 1/1000 s pode ser usado para registrar movimentos rápidos do mouse. A câmera infravermelha de alta resolução é necessária ao gravar em um ambiente escuro. Para analisar o filme, é necessário um computador com um agarrador de quadros para permitir que os quadros individuais de comportamento sejam capturados para manipulação do computador. Os camundongos são extremamente versáteis e podem apresentar comportamento compensatório após quase qualquer tratamento. A ambiguidade pode existir sobre cada parte do corpo em movimento4. Assim, a análise de alguns comportamentos pode exigir ainda maior resolução e câmeras de velocidade mais altas.
Os comportamentos sexuais masculinos em camundongos são afetados por muitos fatores, incluindo diferenças de tensão, alterações hormonais e mutantes genéticos1,3,9,10. McGill e Blight11 ilustraram as diferenças de tensão nos comportamentos de acasalamento do rato. Por exemplo, os machos C57BL/6 normalmente ganham a intromissão rapidamente e ejaculam em cerca de 20 min11. DBA/2 machos são lentos para ganhar intromissão, mas ejaculam rapidamente. Os machos balb/c são lentos para alcançar a ejaculação (latência média de 1 h) devido a um longo período de namoro11. A testosterona facilita e mantém o comportamento sexual masculino2, e mudanças nos níveis de testosterona podem alterar o desempenho do comportamento sexual12. Tanto a castração cirúrgica quanto o tratamento antiandrogênio podem reduzir o nível de testosterona e resultar em um rápido declínio dos comportamentos sexuais e até mesmo motivação sexual e excitação sexual13. A testosterona administrada pode restaurar comportamentos pré-copulatórios e copulatórios em camundongos castrados. Por fim, ratos de nocaute e knockdown exibem diferenças nas facetas dos comportamentos sexuais em comparação com ratos do tipo selvagem. Por exemplo, camundongos machos com mutações direcionadas de Adcy3, Cnga2 e Gnao apresentam uma capacidade reduzida de detectar feromôno, enquanto os ratos de nocaute Trpc2 mostram preferência de parceiro alterada14,15,16. Outros efeitos de transgênicos e nocautes sobre o comportamento sexual de camundongos são explicados por Crawley3.
Aqui, um dos procedimentos mais comuns para avaliar o comportamento sexual na combinação de um camundongo macho com uma fêmea ovariectomizada que foi hormonalmente preparado para ser receptivo é descrito. Um protocolo experimental é apresentado para a realização de experimentos de comportamento sexual em camundongos. Além disso, um exemplo de mudança nos padrões de comportamento sexual resultantes do isolamento social em camundongos CD-1 é mostrado.

<table><tbody><tr><td>Hidrato coral</td><td>Sinopharm Chenmical Reagent Co., Ltd.</td><td></td><td></td>20160225</tr><tr><td>Revestido VICRYL Plus Suturas</td><td>Ethicon, Inc.</td><td>faltando</td><td></td></tr><tr><td>benzoato de estradiol</td><td>J&amp; K Científica, Ltda.</td><td></td><td></td>L930Q170</tr><tr><td>Etanol absoluto</td><td>Beijing Chemical Works Co., Ltd.</td><td></td><td></td>20160715</tr><tr><td>Ibuprofeno (Motrin Infantil)</td><td>Shanghai Johnson &amp; Johnson Co., Ltd.</td><td></td><td></td>160629478</tr><tr><td>Isoflurano</td><td>RWD Life Science Co., Ltd.</td><td></td><td></td>217180501</tr><tr><td>Lidocaína</td><td>HebeI Tiancheng Pharmacreutical Co., Ltd.</td><td></td><td></td>1170506107</tr><tr><td>Camundongos CD-1 machos e fêmeas</td><td>Rio Vital Pequim</td><td>SCXK (<img src="/%20files%20/%20ftp_upload%20/%2060154%20/%20SCXK.jpg%20">) 2013-0023</td><td></td></tr><tr><td>Azeite</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penicilina sódica</td><td>North China Pharmaceutical Co., Ltd.</td><td></td><td></td>F5126420</tr><tr><td>Progesterona</td><td>J&amp; K Científica, Ltda.</td><td></td><td></td>LR50Q07</tr><tr><td>Sony câmera digital</td><td>Sony Corporation</td><td>HDR-CX290E</td><td></td></tr><tr><td>Caixa</td><td></td><td></td> de teste <td>DIY</td></tr><tr><td>ThinkStation Computador</td><td>Lenovo</td><td>S / N PCOGLQKG</td><td></td></tr><tr><td>Vaporizador para Isoflurano</td><td>RWD Life Science Co., Ltd.</td><td>E05904-009M</td><td></td></tr></tbody></table>

avaliação do comportamento sexual de camundongos machos

Assessment of Sexual Behavior of Male Mice

O comportamento sexual é altamente específico das espécies. Embora os roedores tenham comportamentos sexuais ligeiramente diferentes, ratos e ratos têm um padrão de comportamento sexual semelhante. O objetivo deste artigo é descrever o modelo feminino induzido por hormônios e o procedimento experimental para avaliação do comportamento sexual de camundongos machos. Os elementos comportamentais sexuais mais importantes são demonstrados no vídeo e nas ilustrações. Os passos críticos, as vantagens e limitações do teste de comportamento sexual também são explicados. Finalmente, os parâmetros de comportamento são apresentados, e os processos de montagem, intromissão e ejaculação no acasalamento são distinguidos. Os parâmetros comportamentais são avaliados em termos da duração e contagem ocorridas durante o período de teste.

Mostra-se uma comparação do comportamento sexual entre camundongos CD-1 criados isoladamente e ratos CD-1 abrigados em grupo. Os camundongos CD-1 masculinos foram aleatoriamente atribuídos a um grupo criado pelo isolamento (IS, um rato por gaiola, n = 30) e um grupo em grupo (GH, cinco ratos por gaiola, n = 15). Os camundongos foram submetidos à criação de isolamento do dia 23 ao dia 93. Em seguida, ambos os grupos de camundongos foram avaliados por comportamento sexual. Nosso estudo constatou que a taxa de sucesso da có...

Este artigo descreve como realizar testes de comportamento sexual em camundongos machos.

Avaliação do Comportamento Sexual de Camundongos Machos

Sexual behavior is highly species-specific. Although rodents have slightly different sexual behaviors, mice and rats have a similar sexual behavioral ...

O comportamento sexual é um processo dinâmico e complexo que é influenciado por fatores biológicos, sociais e ambientais. O estudo do comportamento sexual do rato pode fornecer mais informações sobre essas interações. Este procedimento facilita o registro do número e a duração dos comportamentos sexuais dos camundongos masculinos para permitir a identificação e a caracterização das interações de comportamento sexual do rato e os padrões.48 horas antes do teste de comportamento sexual, injete 20 microgramas de benzoato de Estradiol em 100 microliters de azeite esterilizado intraperitoneal em um rato fêmea de seis a oito semanas para induzir estrus. No mesmo dia, coloque os ratos machos para serem testados no centro de uma caixa de campo aberto de 40 por 40 centímetros quadrados com três paredes de plexiglass preto e uma parede frontal transparente. Permita que os animais explorem o ambiente livremente por 30 minutos por dia durante os próximos dois dias.No dia do teste, quatro horas antes do experimento injetar 500 microgramas de progesterona em 100 microliters de azeite estéril intraperitoneal nos camundongos fêmeas e definir a iluminação da sala para 650 lux. Em seguida, configure

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Research

JoVE Journal

Behavior

Comportamento

Aqui nós descrevemos um protocolo detalhado para o exame de sociabilidade em camundongos usando sociabilidade Crawley e preferência por teste de novidade social. Descrevemos as vantagens e aplicações possíveis para esse procedimento, incluindo detalhes críticos importantes para a correta interpretação dos resultados.

Avaliação de comportamentos de interação social

O dry-terra Barnes labirinto é amplamente utilizado para medir a capacidade de navegação espacial em resposta a estímulos aversivos levemente. Nos dias consecutivos, o desempenho (por exemplo, a latência para localizar gaiola escape) de indivíduos do grupo controle melhora, indicativo de aprendizagem normal e memória. As diferenças entre ratos e camundongos exigem aparelhos e metodologia mudanças que estão detalhadas aqui.

Barnes Estratégias Teste Labirinto com pequenas e grandes roedores Modelos

Estamos medindo a sensibilidade ea ativação de células mastro mecânico perigenital na próstata masculina de camundongos C57BL / 6 que foram submetidos a um paradigma de estresse precoce - separação materna neonatal, de modo a induzir um modelo pré-clínico de síndrome de dor pélvica / crônica prostatite crônica.

Avaliação da Perigenital Sensibilidade e Prostatic Mast Ativação celular em um rato modelo de Separação Materna Neonatal

Liquefação do sêmen é necessária para que o esperma ser libertado do gel seminal. Este estudo fornece os procedimentos para a recolha de sémen de coito de pós o trato reprodutivo feminino e medir o tempo de liquefação do sêmen.

Coleção de pós acasalamento sêmen do trato reprodutivo feminino e medição de liquefação do sêmen em ratos

Desenvolvemos um protocolo para avaliar o bem-estar em ratos durante procedimentos com anestesia geral. Uma série de parâmetros comportamentais, indicando níveis de bem-estar, bem como metabólitos de glicocorticoides foram analisados. O protocolo pode servir como uma ajuda geral para estimar o grau de gravidade de forma científica, centrada no animal.

Avaliação sistemática de bem-estar em camundongos para procedimentos com anestesia geral

Este protocolo mede aprendizagem espacial e memória usando o labirinto de Barnes. Um novo paradigma de donzela em apuros é usado para avaliar a atividade locomotora e comportamento pró-social em camundongos.

Analisando a aprendizagem espacial e comportamento pró-social nos ratos usando o labirinto de Barnes e paradigmas de donzela em apuros

Muitos tratamentos e mutações genéticas impactam o momento da maturidade sexual e fertilidade. Este protocolo descreve um método não-invasivo para avaliar o início puberal em camundongos e ratos antes da criação de um estudo de fertilidade em animais sexualmente maduros.

Determinação da competência reprodutiva, confirmando o início puberal e realizando um ensaio de fertilidade em camundongos e ratos

Desenvolvemos um modelo de estresse de derrota social acelerada para camundongos adolescentes C57BL/6, que funciona em machos e fêmeas e permite a exposição durante períodos discretos da adolescência. A exposição a esse modelo induz evitação social, mas apenas em um subconjunto de camundongos machos e fêmeas derrotados.

Modelo de estresse de derrota social para camundongos adolescentes C57BL / 6 machos e fêmeas

Modelos de roedores são ferramentas valiosas para estudar comportamentos centrais relacionados ao transtorno do espectro do autismo (TEA). Neste artigo, expomos dois testes comportamentais para modelar as principais características do TEA em camundongos: auto-limpeza, que avalia o comportamento repetitivo, e o teste de interação social de três câmaras, que documenta deficiências sociais.

Estratégias para avaliar comportamentos semelhantes aos autistas em camundongos

Ao integrar quatro estressores sociais diários, o presente estudo descreve um modelo de estresse social integrado múltiplo (MISS) para transtornos psiquiátricos em camundongos C57BL / 6J fêmeas. Após dez dias de exposição repetida ao MISS, os camundongos desenvolveram fenótipos depressivos e ansiosos, fornecendo assim um modelo animal natural baseado em etiologia para estudar transtornos psiquiátricos em mulheres.

Um modelo de estresse social integrado múltiplo para transtornos psiquiátricos em camundongos C57BL / 6J fêmeas

Este protocolo descreve um ensaio comportamental para avaliar a dominância social em roedores usando o teste do tubo. A dominância social permanece estável ao longo do tempo, e vários modelos de distúrbios neurológicos e do desenvolvimento exibem anormalidades robustas de dominância social. Portanto, o teste do tubo serve como uma medida de resultado conveniente para estudos mecanicistas ou triagem terapêutica pré-clínica.

Avaliando a dominância social em modelos de camundongos usando o teste de tubo

Aprenda a avaliar o comportamento sexual de camundongos machos usando um protocolo padronizado com indução de estro em fêmeas. Este método permite registrar e analisar padrões comportamentais em neurociência.

Avaliação do Comportamento Sexual de Camundongos Machos

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