Name: Modelo padronizado de Fibrilação Ventricular e Suporte avançado de vida cardíaca em suínos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-01-30T15:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 36 s
Description: Aprenda um modelo padronizado de ressuscitação em suínos para estudo de fibrilação ventricular e técnicas de suporte cardíaco avançado. Este método melhora a compreensão dos mecanismos de reanimação.

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Os autores querem agradecer a Dagmar Dirvonskis pelo excelente apoio técnico.

Os experimentos neste protocolo foram aprovados pelo Comitê estadual e Institucional de Cuidados com animais (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Alemanha; Presidente: Dr. Silvia Eisch-Wolf; aprovação não. G16-1-042). Os experimentos foram realizados de acordo com as diretrizes da ARRIVE. Sete suínos machos anestesiados (sus scrofa domestica) com peso médio de 30 ± 2 kg e 12-16 semanas de idade foram incluídos no protocolo.
1. Anestesia, entubação e ventilação mecânica13,14
<ol><li>Mantenha os animais em seu ambiente normal o maior tempo possível para minimizar o estresse. Retenha a comida 6h antes do experimento programado para reduzir o risco de aspiração, mas não recuse o acesso à água.</li>
	<li>Suínos sedados com injeção combinada de cetamina (4 mg/kg) e azaperone (8 mg/kg) no pescoço ou músculo glúteo com uma agulha (20 G) para injeção intramuscular. Deixe os animais imperturbáveis em seus estábulos até que a sedação se instale (15-20 min). ATENÇÃO: Luvas são absolutamente necessárias ao manusear animais.</li>
	<li>Transporte os animais sedados para o laboratório. O tempo de transporte não deve exceder o tempo efetivo de sedação (aqui, 30-60 min).</li>
	<li>Monitore a saturação de oxigênio periférico (SpO2) com um sensor cortado na cauda ou orelha.</li>
	<li>Desinfete a pele com um desinfetante alcoólico antes da inserção de um cateter de veia periférica (20 G) em uma veia da orelha. Pulverize a área, limpe 1x, borrife novamente, e deixe o desinfetante secar.</li>
	<li>Administrar analgesia através de injeção endovenosa de fentanil (4 μg/kg). Induzir anestesia com injeção intravenosa de propofol (3 mg/kg)</li>
	<li>Coloque o porco em posição de supina em uma maca com um colchão de vácuo e fixe-o com ataduras. Aplique relaxante muscular através de injeção endovenosa de atracurium (0,5 mg/kg)</li>
	<li>Inicie diretamente a ventilação não invasiva com uma máscara de ventilação do cão (tamanho 2). Os parâmetros de ventilação são os seguintes: FiO2 (fração de oxigênio inspirador) = 100%, taxa respiratória = 18-20 respirações/min, pico de pressão inspiradora = <20 cmH20, PEEP (pressão positiva end-expiratório) = 5 cmH20.</li>
	<li>Mantenha a anestesia através da infusão contínua de fentanil (0,1-0,2 mg kg-1 h-1) e propofol (8-12 mgkg-1 h-1). Inicie uma infusão contínua de solução de eletrólito balanceada (5 mL kg-1 h-1).</li>
	<li>Proteja as vias aéreas através de entubação com um tubo endotracário comum (ID 6-7) e um introdutor. Use um laringoscópio comum com uma lâmina Macintosh (tamanho 4). Duas pessoas são necessárias para este passo.<ol>
<li>Certifique-se de que uma pessoa fixa a língua lá fora com um pedaço de tecido e abra o focinho com a outra mão.<ol>
<li>Certifique-se de que a segunda pessoa realize uma laringoscopia da laringe porinina. Quando a epiglottis entrar em vista, mova o laringoscópio ventoralmente. A epiglottis deve ser levantada e as cordas vocais serão visíveis. NOTA: Se a epiglottis não se mover à ventoral, ele vai grudar no palatino macio e pode ser mobilizado pela ponta do tubo.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Mova o tubo cuidadosamente através das cordas vocais. NOTA: O ponto mais estreito da traqueia não está no nível das cordas vocais, mas é subglotótico. Se a inserção do tubo não for possível, tente girar o tubo no sentido horário ou use um tubo menor.</li>
	<li>Puxe o introdutor para fora do tubo. Use uma seringa de 10 mL para bloquear a braçadeira com 10 mL de ar. Controle a pressão da braçadeira com um gerente de punho (30 cmH2O).</li>
	<li>Inicie a ventilação mecânica após a conexão do tubo com um ventilador (PEEP = 5 cmH2O, volume de maré = 8 mL/kg, FiO2 = 0,4, I:E [relação inspiração para expiração] = 1:2, taxa respiratória = variável para alcançar um CO2 de maré final de <6 kPa, geralmente 20-30/min). Certifique-se de que a posição do tubo está correta por exalação regular e periódica de dióxido de carbono via capnografia.</li>
	<li>Verifique a ventilação dupla via auscultação. NOTA: Em caso de colocação incorreta do tubo, um estômago cheio de ar rapidamente forma uma protuberância claramente visível através da parede abdominal. Neste caso, é necessária a substituição imediata da sonda e a inserção de uma sonda gástrica. Se a intubação não for bem sucedida, volte para a ventilação da máscara e experimente um tubo menor ou melhor posicionamento do focismo.</li>
	<li>Coloque a sonda gástrica no estômago para evitar o refluxo e vomitar com duas pessoas.<ol>
<li>Conserte a língua lá fora com um pedaço de tecido e abra o focinho com a outra mão.<ol>
<li>Certifique-se de que uma segunda pessoa realize uma laringoscopia da laringe de suínos e visualize o esôfago. Empurre a sonda gástrica dentro do esôfago com os fórceps de Magill até que o fluido gástrico seja drenado. NOTA: A visualização pode ser difícil. Neste caso, levante o tubo com o laringoscópio ventilado para abrir o esôfago.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. Instrumentação
<ol><li>Use ataduras para puxar para trás os retrovisões para suavizar as dobras na área femoral para caterização do vaso.</li>
	<li>Prepare os seguintes materiais: seringas (5 mL, 10 mL e 50 mL), agulha Seldinger, bainhas introdutoras (6 Fr, 8 Fr, 8 Fr), fios guiados para as bainhas, cateter venoso central com três portas (7 Fr, 30 cm) com fio guia, monitor de saída cardíaca(Tabela de Materiais)e um cateter (5 Fr, 20 cm).</li>
	<li>Desinfete a área inguinal (ver passo 1.6). Repita este processo 2x.</li>
	<li>Encha todos os cateteres com solução salina. Aplique gel de ultrassom na sonda de ultrassom. Cubra a área inguinal com uma cortina estéril fenestrated.</li>
	<li>Escaneie os vasos femorais certos com ultrassom e use técnica doppler para identificar a artéria e veia15. Visualize a artéria femoral certa axialmente. Mude para uma visão longitudinal da arteria girando a sonda 90°.</li>
	<li>Perfurar a artéria femoral certa visualização de ultrassom com a agulha Seldinger aspiração permanente com a seringa de 5 mL. NOTA: Em nossa opinião, a técnica de Seldinger guiada por ultrassom está associada a significativamente menos perda sanguínea e trauma tecidual do que outros métodos de acesso vascular.</li>
	<li>Confirme a posição da agulha desejada observando sangue pulsante vermelho brilhante. Desconecte a seringa e insira rapidamente o fio guia na artéria femoral certa.</li>
	<li>Visualize o eixo longitudinal da veia femoral direita. Insira a agulha Seldinger aspiração permanente com a seringa de 5 mL. Aspirar qualquer sangue venoso vermelho escuro. NOTA: Se a posição correta da agulha nos diferentes vasos não puder ser confirmada visualmente, pegue amostras de sangue e analise o teor de gás sanguíneo. Um alto nível de oxigênio é um bom sinal para o sangue arterial, enquanto a saturação de oxigênio baixo indica posição endovenosa.</li>
	<li>Insira o fio guia para o cateter venoso central na veia femoral direita depois de desconectar a seringa. Retraia a agulha seldinger.</li>
	<li>Visualize ambas as naves certas usando ultrassom para controlar a posição correta do fio. Empurre a bainha de introdutor arterial (6 Fr) sobre o fio guia para a artéria direita e proteja a posição com aspiração sanguínea. NOTA: Colocar a bainha através da pele pode ser difícil. Pode ser útil realizar uma pequena incisão ao longo do fio para facilitar uma melhor colocação.</li>
	<li>Use a técnica de Seldinger para posicionar a linha venosa central na veia femoral direita. Aspirar todas as portas e dar descarga com solução salina.</li>
	<li>Realize o mesmo procedimento no lado inguinal esquerdo para inserir as outras bainhas introdutoras na técnica de Seldinger na artéria femoral esquerda (8 Fr) e veia femoral (8 Fr).</li>
	<li>Conecte a bainha de introdutor arterial direito e o cateter venoso central com dois sistemas transdutores para medição da hemodinâmica invasiva. Posicione os dois transdutores no nível cardíaco.</li>
	<li>Ligue os para-galos de ambos os transdutores abertos à atmosfera para calibrar o sistema para zero. NOTA: É necessário evitar que bolhas de ar e manchas de sangue no sistema gerem valores plausíveis.</li>
	<li>Mude todas as infusões para manter anestesia da veia periférica para uma linha venosa central. Pegue valores básicos (hemodinâmica, espirometria e outras saídas do monitor cardíaco; veja a seção 3) após uma recuperação de 15 min.</li>
	<li>Inicie fibrilação ventricular (ver seção 4).</li>
</ol>3. Saída cardíaca do contorno de pulso
<ol><li>Insira o cateter de termodiliona transpulmonal na bainha de introdução arterial direita. NOTA: Na clínica, os cateteres de termodilionsão são diretamente colocados pela técnica de Seldinger. No entanto, a colocação através de uma bainha introdutora também é viável. No protocolo proposto, as bainhas são colocadas como um acesso vascular padronizado para máxima flexibilidade na instrumentação ao longo de diferentes experimentos.</li>
	<li>Conecte o cateter com o fio arterial do sistema de monitor cardíaco. Troque o transdutor arterial diretamente com a porta do monitor cardíaco e recalibra conforme descrito na etapa 2.14. Conecte a unidade de medição venosa do sistema de monitor cardíaco com a bainha de introdução venosa esquerda. NOTA: É necessário conectar as sondas venosas e arteriais o mais distante possível; caso contrário, a medição será perturbada, pois a aplicação de água fria no sistema venoso afetará a medição arterial. Mais detalhes sobre o PiCCO2 foram fornecidos anteriormente16.</li>
	<li>Ligue o sistema de monitor cardíaco. Confirme que um novo paciente está sendo medido. Digite o tamanho e o peso.</li>
	<li>Mude a categoria para adultos. Digite o nome do protocolo e a iD. Clique em Sair.</li>
	<li>Ajuste o volume de injeção em 10 mL. NOTA: O volume da solução de injeção escolhida pode ser alterado no software. Um volume maior torna os valores medidos mais válidos. Um pequeno volume foi escolhido para este experimento para evitar quaisquer efeitos de hemodiluição.</li>
	<li>Entre na pressão venosa central.</li>
	<li>Abra o para-lo para da atmosfera.</li>
	<li>Clique em Zero para calibração do sistema. Clique em Sair.</li>
	<li>Calibrar a medição contínua da saída cardíaca.<ol>
<li>Clique em TD (termodiliação). Prepare uma solução salina fisiológica com uma temperatura de 4 °C em uma seringa de 10 mL. Clique no Start.</li>
		<li>Injete 10 mL de solução salina fria de forma rápida e constante na unidade de medição venosa. Aguarde até que a medição seja concluída e o sistema solicite uma repetição.</li>
		<li>Repita a etapa anterior até que três medições sejam concluídas. O sistema calculará a média de todos os parâmetros. Clique em Sair. NOTA: As medições começarão imediatamente após a conclusão da calibração. Embora as medidas de saída cardíaca durante a RCP não sejam realizadas regularmente, os resultados plausíveis foram capazes de ser afirmados após calibração adequada17,18.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Fibrilação ventricular e ressuscitação mecânica
<ol><li>Coloque eletrodos de remendo desfibrilador em posição anterior-posterior no tronco. O eletrodo posterior deve ser posicionado no hemithorax esquerdo central. NOTA: Use uma navalha para remover o excesso de cabelo e sujeira para facilitar a condução ideal.</li>
	<li>Conecte os eletrodos a um desfibrilador e estabeleça um ECG.</li>
	<li>Imobilize o porco dentro do colchão de vácuo. Esvazie o colchão para evitar movimentos indesejados durante a RCP. Controle fixação dos membros.</li>
	<li>Coloque o dispositivo de compressão torácica (aqui, LUCAS-2) ao redor do peito e o colchão de vácuo de acordo com as recomendações do fabricante. Ajuste a almofada de pressão para o terço inferior do esterno na posição mediana.</li>
	<li>Ligue o dispositivo de compressão torácica (botão "potência") e abaixe a almofada de pressão ao nível da pele. Defina a frequência de compressão a 100/min, se não for definida de outra forma no protocolo. Pressione o botão Pausa para preparar o dispositivo de compressão para compressões torácicas.</li>
	<li>Insira um cateter fibrilação/pacing na veia femoral esquerda através da bainha i.v.</li>
	<li>Inflar o manguito do cateter com 1-2 mL de ar. Empurre lentamente ainda mais a braçadeira inflada até que ela seja colocada ao lado do átrio direito (geralmente cerca de 50 cm de distância).</li>
	<li>Conecte eletrodos cateterais a um gerador de oscilação/função adequado. Ajuste os parâmetros de fibrilação aos valores desejados (aqui, uma corrente de 13,8 V com frequências entre 50-200 Hz).</li>
	<li>Ligue o gerador e monitore as alterações do ECG. Mova o cateter lentamente para a frente até que as arritmias possam ser detectadas no ECG. ATENÇÃO: Evite que os eletrodos separados no final do cateter toquem na pele humana ou uns aos outros para evitar curtos-circuitos e possivelmente situações de risco de vida.</li>
	<li>Varie cuidadosamente a posição do cateter até que a fibrilação ventricular possa ser detectada. NOTA: Pode ser difícil induzir fibrilação imediatamente. Se uma posição é alcançada em que os efeitos do ECG podem ser vistos, alterar a frequência ou ligar e desligar repetidamente o gerador às vezes pode ser útil.</li>
	<li>Uma vez confirmada a fibrilação ventricular, desligue o gerador, esvazie o balão e remova o cateter fibrilação. Mantenha a fibrilação com ou sem ventilação pelo tempo necessário.</li>
	<li>Inicie compressões mecânicas do peito pressionando o botão Jogar no dispositivo de compressão. Para interromper as compressões torácicas, pressione o botão Pausa no dispositivo de compressão.</li>
	<li>Analise os padrões de ECG. Se a fibrilação ventricular persistir, prepare a desfibrilação.<ol>
<li>Digite o modo Manual no menu desfibrilador. Ajuste a energia para 200 J bifasic.</li>
		<li>Pressione o botão Carregar. Espere até que o sinal acústico se aquece para indicar um valor de choque preparado. Inicie choque elétrico. ATENÇÃO: Somente usuários experientes devem lidar com desfibriladores e cateteres de fibrilação. Nenhum choque deve ser iniciado se houver alguma indicação de materiais defeituosos ou usados. A iniciação de um choque elétrico deve ser sempre anunciada claramente audível para cada pessoa na sala, e a pessoa que lança a desfibrilação é responsável por garantir que ninguém esteja tocando o animal ou maca antes de liberar o choque. NOTA: Aqui, foi utilizado o protocolo de ressuscitação baseado em diretrizes (ou seja, 2 min de compressões torácicas, avaliação do ECG, choque, 2 min de compressões torácicas, administração de adrenalina, etc.). Para obter mais informações, consulte as diretrizes4.</li>
	</ol></li>
	<li>No caso de retorno da circulação espontânea (ROSC), pare compressões torácicas, continue a ventilação e aplique monitoramento tão extensivamente quanto pelo tempo necessário. NOTA: A administração de medicamentos anestésicos pode ou não ser interrompida durante a RCP, dependendo do protocolo. Se a sedação for interrompida, a infusão deve ser reiniciada após a rosc confirmada.</li>
	<li>Recomenda-se uma abordagem direcionada ao objetivo para a orientação da administração de fluidos e catecolamina, bem como ajustes respiratórios e de ventilação padronizados para evitar a deterioração cardiorrespiratória na fase rosc que leva à falha experimental.</li>
</ol>5. Fim do experimento e eutanásia (no caso da ROSC)
<ol><li>Injete 0,5 mg de fentanil na linha venosa central. Espere 5 min. Injete 200 mg de propofol na linha venosa central.</li>
	<li>Eutanize o animal com uma injeção de cloreto de potássio de 40 mmol.</li>
	<li>Realizar remoção/fixação de órgãos ou análises conforme necessário.</li>
</ol>

<ol><li>Grasner, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EuReCa+ONE-27+Nations%2C+ONE+Europe%2C+ONE+Registry%3A+A+prospective+one+month+analysis+of+out-of-hospital+cardiac+arrest+outcomes+in+27+countries+in+Europe%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">EuReCa ONE-27 Nations, ONE Europe, ONE Registry: A prospective one month analysis of out-of-hospital cardiac arrest outcomes in 27 countries in Europe.</a> Resuscitation. 105, 188-195 (2016).</li>
<li>Raffee, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidence%2C+Characteristics%2C+and+Survival+Trend+of+Cardiopulmonary+Resuscitation+Following+In-hospital+Compared+to+Out-of-hospital+Cardiac+Arrest+in+Northern+Jordan%5BTitle%5D)+AND+%22Indian+Journal+of+Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Incidence, Characteristics, and Survival Trend of Cardiopulmonary Resuscitation Following In-hospital Compared to Out-of-hospital Cardiac Arrest in Northern Jordan.</a> Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 436-441 (2017).</li>
<li>Brooks, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Part+6%3A+Alternative+Techniques+and+Ancillary+Devices+for+Cardiopulmonary+Resuscitation%3A+2015+American+Heart+Association+Guidelines+Update+for+Cardiopulmonary+Resuscitation+and+Emergency+Cardiovascular+Care%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Part 6: Alternative Techniques and Ancillary Devices for Cardiopulmonary Resuscitation: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care.</a> Circulation. 132 (18 Suppl 2), S436-S443 (2015).</li>
<li>Callaway, C. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Part+4%3A+Advanced+Life+Support%3A+2015+International+Consensus+on+Cardiopulmonary+Resuscitation+and+Emergency+Cardiovascular+Care+Science+With+Treatment+Recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Part 4: Advanced Life Support: 2015 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations.</a> Circulation. 132 (16 Suppl 1), S84-S145 (2015).</li>
<li>Sandroni, C., Nolan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ERC+2010+guidelines+for+adult+and+pediatric+resuscitation%3A+summary+of+major+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Minerva+Anestesiology%22%5BJournal%5D)">ERC 2010 guidelines for adult and pediatric resuscitation: summary of major changes.</a> Minerva Anestesiology. 77 (2), 220-226 (2011).</li>
<li>Tanaka, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modifiable+Factors+Associated+With+Survival+After+Out-of-Hospital+Cardiac+Arrest+in+the+Pan-Asian+Resuscitation+Outcomes+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Emergency+Medicine%22%5BJournal%5D)">Modifiable Factors Associated With Survival After Out-of-Hospital Cardiac Arrest in the Pan-Asian Resuscitation Outcomes Study.</a> Annals of Emergency Medicine. , (2017).</li>
<li>Kleinman, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Part+5%3A+Adult+Basic+Life+Support+and+Cardiopulmonary+Resuscitation+Quality%3A+2015+American+Heart+Association+Guidelines+Update+for+Cardiopulmonary+Resuscitation+and+Emergency+Cardiovascular+Care%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Part 5: Adult Basic Life Support and Cardiopulmonary Resuscitation Quality: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care.</a> Circulation. 132 (18 Suppl 2), S414-S435 (2015).</li>
<li>Link, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Part+7%3A+Adult+Advanced+Cardiovascular+Life+Support%3A+2015+American+Heart+Association+Guidelines+Update+for+Cardiopulmonary+Resuscitation+and+Emergency+Cardiovascular+Care%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Part 7: Adult Advanced Cardiovascular Life Support: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care.</a> Circulation. 132 (18 Suppl 2), S444-S464 (2015).</li>
<li>Olasveengen, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2017+International+Consensus+on+Cardiopulmonary+Resuscitation+and+Emergency+Cardiovascular+Care+Science+With+Treatment+Recommendations+Summary%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">2017 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations Summary.</a> Circulation. 136 (23), e424-e440 (2017).</li>
<li>Rubulotta, F., Rubulotta, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiopulmonary+resuscitation+and+ethics%5BTitle%5D)+AND+%22Revista+Brasileira+de+Terapia+Intensiva%22%5BJournal%5D)">Cardiopulmonary resuscitation and ethics.</a> Revista Brasileira de Terapia Intensiva. 25 (4), 265-269 (2013).</li>
<li>McInnes, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+first+quantitative+report+of+ventilation+rate+during+in-hospital+resuscitation+of+older+children+and+adolescents%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">The first quantitative report of ventilation rate during in-hospital resuscitation of older children and adolescents.</a> Resuscitation. 82 (8), 1025-1029 (2011).</li>
<li>Maertens, V. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patients+with+cardiac+arrest+are+ventilated+two+times+faster+than+guidelines+recommend%3A+an+observational+prehospital+study+using+tracheal+pressure+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Patients with cardiac arrest are ventilated two times faster than guidelines recommend: an observational prehospital study using tracheal pressure measurement.</a> Resuscitation. 84 (7), 921-926 (2013).</li>
<li>Ziebart, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+Hemorrhagic+Shock+Induction+Guided+by+Cerebral+Oximetry+and+Extended+Hemodynamic+Monitoring+in+Pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs.</a> Journal of Visualized Experiments. (147), (2019).</li>
<li>Kamuf, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oleic+Acid-Injection+in+Pigs+As+a+Model+for+Acute+Respiratory+Distress+Syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome.</a> Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).</li>
<li>Weiner, M. M., Geldard, P., Mittnacht, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound-guided+vascular+access%3A+a+comprehensive+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiothoracic+and+Vascular+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Ultrasound-guided vascular access: a comprehensive review.</a> Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesiology. 27 (2), 345-360 (2013).</li>
<li>Mayer, J., Suttner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+output+derived+from+arterial+pressure+waveform%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinions+in+Anaesthesiology%22%5BJournal%5D)">Cardiac output derived from arterial pressure waveform.</a> Current Opinions in Anaesthesiology. 22 (6), 804-808 (2009).</li>
<li>Hartmann, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventilation%2Fperfusion+ratios+measured+by+multiple+inert+gas+elimination+during+experimental+cardiopulmonary+resuscitation%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Anaesthesiologica+Scandanivica%22%5BJournal%5D)">Ventilation/perfusion ratios measured by multiple inert gas elimination during experimental cardiopulmonary resuscitation.</a> Acta Anaesthesiologica Scandanivica. 58 (8), 1032-1039 (2014).</li>
<li>Ruemmler, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultra-low+tidal+volume+ventilation-A+novel+and+effective+ventilation+strategy+during+experimental+cardiopulmonary+resuscitation%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Ultra-low tidal volume ventilation-A novel and effective ventilation strategy during experimental cardiopulmonary resuscitation.</a> Resuscitation. 132, 56-62 (2018).</li>
<li>Wani, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Upper+airway+in+infants-a+computed+tomography-based+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Paediatric+Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Upper airway in infants-a computed tomography-based analysis.</a> Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).</li>
<li>Tuna Katircibasi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+Ultrasound+Guidance+and+Conventional+Method+for+Common+Femoral+Artery+Cannulation%3A+A+Prospective+Study+of+939+Patients%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cardiol+Sin%22%5BJournal%5D)">Comparison of Ultrasound Guidance and Conventional Method for Common Femoral Artery Cannulation: A Prospective Study of 939 Patients.</a> Acta Cardiol Sin. 34 (5), 394-398 (2018).</li>
<li>Hartmann, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+of+thermodilution-derived+extravascular+lung+water+and+ventilation%2Fperfusion-compartments+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Correlation of thermodilution-derived extravascular lung water and ventilation/perfusion-compartments in a porcine model.</a> Intensive Care Medicine. 39 (7), 1313-1317 (2013).</li>
<li>Hartmann, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+inhaled+tumor+necrosis+factor-alpha-derived+TIP+peptide+improves+the+pulmonary+function+in+experimental+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Anaesthesiol+Scand%22%5BJournal%5D)">An inhaled tumor necrosis factor-alpha-derived TIP peptide improves the pulmonary function in experimental lung injury.</a> Acta Anaesthesiol Scand. 57 (3), 334-341 (2013).</li>
<li>Ziebart, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+tidal+volume+pressure+support+versus+controlled+ventilation+in+early+experimental+sepsis+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Respiratory+Research%22%5BJournal%5D)">Low tidal volume pressure support versus controlled ventilation in early experimental sepsis in pigs.</a> Respiratory Research. 15, 101(2014).</li>
<li>Tan, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Duration+of+cardiac+arrest+requires+different+ventilation+volumes+during+cardiopulmonary+resuscitation+in+a+pig+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Monitoring+and+Computing%22%5BJournal%5D)">Duration of cardiac arrest requires different ventilation volumes during cardiopulmonary resuscitation in a pig model.</a> Journal of Clinical Monitoring and Computing. , (2019).</li>
<li>Kill, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+ventilation+during+cardiopulmonary+resuscitation+with+intermittent+positive-pressure+ventilation%2C+bilevel+ventilation%2C+or+chest+compression+synchronized+ventilation+in+a+pig+model%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care+Medicine%22%5BJournal%5D)">Mechanical ventilation during cardiopulmonary resuscitation with intermittent positive-pressure ventilation, bilevel ventilation, or chest compression synchronized ventilation in a pig model.</a> Critical Care Medicine. 42 (2), e89-e95 (2014).</li>
<li>Speer, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+Ventilation+During+Resuscitation%3A+How+Manual+Chest+Compressions+Affect+a+Ventilator%27s+Function%5BTitle%5D)+AND+%22Advances+in+Therapy%22%5BJournal%5D)">Mechanical Ventilation During Resuscitation: How Manual Chest Compressions Affect a Ventilator's Function.</a> Advances in Therapy. 34 (10), 2333-2344 (2017).</li>
<li>Kill, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chest+Compression+Synchronized+Ventilation+versus+Intermitted+Positive+Pressure+Ventilation+during+Cardiopulmonary+Resuscitation+in+a+Pig+Model%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Chest Compression Synchronized Ventilation versus Intermitted Positive Pressure Ventilation during Cardiopulmonary Resuscitation in a Pig Model.</a> PLoS ONE. 10 (5), e0127759(2015).</li>
<li>Newell, C., Grier, S., Soar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Airway+and+ventilation+management+during+cardiopulmonary+resuscitation+and+after+successful+resuscitation%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care%22%5BJournal%5D)">Airway and ventilation management during cardiopulmonary resuscitation and after successful resuscitation.</a> Critical Care. 22 (1), 190(2018).</li>
</ol>

O dispositivo LUCAS-2 foi fornecido incondicionalmente por Stryker/Physio-Control, Redmond, WA, EUA para fins experimentais de pesquisa. Nenhum autor relata conflitos de interesse.

Algumas grandes questões técnicas relativas à anestesia em um modelo suíno já foram descritas pelo nosso grupo13,14. Estes incluem a estrita evasão do estresse e dor desnecessária para os animais, possíveis problemas anatômicos durante o manejo das vias aéreas e requisitos específicos de pessoal19.
Além disso, os benefícios do cateterismo guiado por ultrassom foram destacados anteriormente e continua sendo a abo...

Parada cardíaca e ressuscitação cardiopulmonar (RCP) são regularmente encontradas emergências médicas em enfermarias hospitalares, bem como cenários pré-clínicos de emergência1,2. Embora tenha havido esforços extensivos para caracterizar o tratamento ideal para essa situação3,4,5,6, diretrizes internacionais e recomendações especializadas (por exemplo, ERC e ILCOR) geralmente dependem de evidências de baixo grau devido à falta de futuros ensaios randomizados3,4,5,7,8. Isso se deve, em parte, a óbvias reservas éticas sobre protocolos de ressuscitação randomizados em ensaios humanos10. No entanto, isso também pode apontar para a falta de adesão rigorosa ao protocolo quando confrontado com uma situação de risco de vida11,12. O protocolo apresentado neste relatório visa fornecer um modelo de ressuscitação padronizado em um ambiente clínico realista, que gera dados valiosos e prospectivos, sendo o mais válido e preciso possível sem a necessidade de sujeitos humanos. Adere às diretrizes comuns de ressuscitação, pode ser facilmente aplicado e permite que as pesquisas examinem e caracterizem vários aspectos e intervenções em um ambiente crítico, mas controlado. Isso levará a 1) uma melhor compreensão dos mecanismos patológicos subjacentes à parada cardíaca e fibrilação ventricular e 2) evidências de maior qualidade, a fim de otimizar as opções de tratamento e aumentar as taxas de sobrevivência.

<table><tbody><tr><td>1 M- Kaliumchlorid-L&ouml; sung 7,46% 20ml</td><td>Fresenius, Kabi Deutschland GmbH</td><td></td><td>cloreto de potássio</td></tr><tr><td>Arterenol 1mg/ml 25 ml</td><td>Sanofi- Aventis, Seutschland GmbH</td><td></td><td>norepinefrina</td></tr><tr><td>Atracurium Hikma 50mg/5ml</td><td>Hikma Pharma GmbH, Martinsried</td><td></td><td>atracurium</td></tr><tr><td>BD Discardit II Spritze 2,5,10,20 ml</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Espanha</td><td></td><td>seringa</td></tr><tr><td>BD Luer Connecta</td><td>Becton Dickinson Terapia de Infusão AB Helsingborg, Schweden</td><td></td><td>Torneira de 3 vias</td></tr><tr><td>BD Microlance 3 20 G</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Espanha</td><td></td><td>cânula</td></tr><tr><td>CorPatch Easy Electrodes</td><td>CorPuls, Kaufering, Alemanha</td><td></td><td>eléctrodos desfibriladores</td></tr><tr><td>Corpuls 3</td><td>Corpuls, Kaufering, Alemanha</td><td></td><td>desfibrilador</td></tr><tr><td>Datex Ohmeda S5</td><td>GE Healthcare Finland Oy, Helsinque, Finlândia</td><td></td><td>monitor hemodinâmico</td></tr><tr><td>Engstr&ouml; m Carestation</td><td>GE Heathcare, Madison USA</td><td></td><td>ventilador</td></tr><tr><td>Fentanyl-Janssen 0,05mg/ml</td><td>Janssen-Cilag GmbH, Neuss</td><td></td><td>fentanil</td></tr><tr><td>F&uuml; hrungsstab, Durchmesser 4.3</td><td>R&uuml; </td><td></td> sch <td>introdutor de tubo endotraqueal</td></tr><tr><td>Incetomat-line 150 cm</td><td>Fresenius, Kabi Deutschland GmbH</td><td></td><td>perfusorlina</td></tr><tr><td>Ketamin-Hameln 50mg/ml</td><td>Hameln Pharmaceuticals GmbH</td><td></td><td>laringoscópio de cetamina</td></tr><tr><td></td><td>R&uuml; </td><td></td><td>sch laringoscópio</td></tr><tr><td>logicath 7 Fr 3 lúmens 30cm lang</td><td>Smith- Medical Deutschland GmbH</td><td></td><td>cateter venoso central</td></tr><tr><td>LUCAS-2</td><td>Physio-Control/Stryker, Redmond, WA, EUA</td><td></td><td>dispositivo de compressão torácica</td></tr><tr><td>Masimo Radical 7</td><td>Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 EUA</td><td></td><td>saturação de oxigênio periférico</td></tr><tr><td>Neofox Sensor de oxigênio 300 mícrons de fibra</td><td>Ocean óptica Largo, FL EUA</td><td></td><td>medições ultrarrápidas de pO2</td></tr><tr><td>&Ouml; LS&auml; ure reinst Ph. Eur NF C18H34O2 M0282,47g/mol Dichte 0,9</td><td>Applichem GmbH Darmstadt, Alemanha</td><td></td><td>ácido oleico</td></tr><tr><td>Seringa Perfusor Original 50ml Luer Lock</td><td>B.Braun Melsungen AG, Alemanha</td><td></td><td>perfusorsseringa</td></tr><tr><td>Osypka pace, 110 cm</td><td>Osypka Medical GmbH, Rheinfelden-Herten, Alemanha</td><td></td><td>Cateter de estimulação/fibrilação</td></tr><tr><td>PA-Katheter Swan Ganz 7,5 Fr 110cm</td><td>Edwards Lifesciences LLC, Irvine CA, EUA</td><td></td><td>PAC</td></tr><tr><td>Conjunto introdutor de bainha percutânea 8,5 und 9 Fr, 10 cm com válvula de hemostasia integral/porta lateral</td><td>Arrow international inc. Reading, PA, EUA</td><td></td><td>introdutor</td></tr> bainha <tr><td>Perfusor FM Braun</td><td>B.Braun Melsungen AG, Alemanha</td><td></td> bomba <td>de seringa</td></tr><tr><td>Propofol 2% 20mg/ml (frascos de 50ml)</td><td>Fresenius, Kabi Deutschland GmbH</td><td></td><td>propofol</td></tr><tr><td>Radifocus Introducer II, 5-8 Fr</td><td>Terumo Corporation Tokio, Japão</td><td></td><td>introdutor bainha</td></tr><tr><td>R&uuml; schelit Super Safety Clear >ID 6/ 6,5 /7,0 mm</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malásia</td><td></td><td>tubo endotraqueal</td></tr><tr><td>Seldinger Nadel mit Fixierfl&uuml; gel</td><td>Smith- Medical Deutschland GmbH</td><td></td><td>seldinger canula</td></tr><tr><td>Sonosite Micromaxx Ultrasoundsystem</td><td>Sonosite Bothell, WA, USA</td><td></td><td>ultrassom</td></tr><tr><td>Inoxidável Macintosh Gr&ouml; &szlig; e 4</td><td>Welsch Allyn69604</td><td></td><td>lâmina para laringoscópio</td></tr><tr><td>Stresnil 40mg/ml</td><td>Lilly Deutschland GmbH, Abteilung Elanco Animal Health</td><td></td><td>azaperone</td></tr><tr><td>Vasofix Safety 22G-16G</td><td>B.Braun Melsungen AG, Alemanha</td><td></td><td>cateter venoso</td></tr><tr><td>Voltcraft Modelo 8202</td><td>Voltcraft, Hirschau, Alemanha</td><td></td><td>osciloscópio/gerador de função</td></tr></tbody></table>

modelo padronizado de fibrilação ventricular e suporte avançado de vida cardíaca em suínos

Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine

A ressuscitação cardiopulmonar após a parada cardíaca, independente de sua origem, é uma emergência médica regularmente encontrada em hospitais, bem como ambientes pré-clínicos. Ensaios randomizados em potencial em seres humanos são difíceis de projetar e eticamente ambíguos, o que resulta em falta de terapias baseadas em evidências. O modelo apresentado neste relatório representa uma das causas mais comuns de paradas cardíacas, fibrilação ventricular, em um cenário padronizado em um grande modelo animal. Isso permite observações reprodutíveis e várias intervenções terapêuticas em condições clinicamente precisas, facilitando assim a geração de melhores evidências e, eventualmente, o potencial para um melhor tratamento médico.

A parada cardíaca foi induzida em sete porcos. O retorno da circulação espontânea após a RCP foi alcançado em quatro Suínos (57%) com média de 3 ± 1 desfibrilações bifasic. Suínos saudáveis e adequadamente anestesiados devem permanecer em posição supina sem tremores e sinais de agitação durante todo o experimento. As prensas arterials médias não devem cair abaixo de 50 mmHg antes do início da fibrilação18. Para obter resultados ideais, as análises de gás sanguíneo ...

A ressuscitação cardiopulmonar e a desfibrilação são as únicas opções terapêuticas eficazes durante a parada cardíaca causada pela fibrilação ventricular. Esse modelo apresenta um regime padronizado para induzir, avaliar e tratar esse estado fisiológico em um modelo suíno, proporcionando assim uma abordagem clínica com diversas oportunidades de coleta e análise de dados.

Modelo padronizado de Fibrilação Ventricular e Suporte avançado de vida cardíaca em suínos

Cardiopulmonary resuscitation after cardiac arrest, independent of its origin, is a regularly encountered medical emergency in hospitals as well as ...

Padronizar um modelo de ressuscitação em animais com uma fisiologia cardiopulmonar comparável aos seres humanos ajuda no estudo e na compreensão de novas opções terapêuticas para melhorar os resultados dos pacientes. Para a aplicação adequada do modelo e interpretações adequadas dos resultados, a perícia em medicina de emergência e a terapia intensiva de pacientes em estado grave são altamente recomendadas. A principal vantagem deste procedimento é a melhor aplicabilidade sensacional de resultados positivos e em um cenário experimental extra desafiador.A demonstração inicial da configuração experimental pode ajudar significativamente, uma vez que a colocação do eletrodo e da almofada de compressão são cruciais para uma execução bem sucedida e são frequentemente descritas apenas apenas através do texto. Este protocolo fornece insights mais profundos sobre o mecanismo de ressuscitação para prestadores de cuidados críticos e intensivos em ambientes pré-hospitalares e clínicos. Após a colocação do cateter de termodilução trans-pulmonal no porco sedado e experimental, coloque um eletrodo desfibrilador anterior no torso e um eletrodo posterior no hemitórx central esquerdo.Conecte os eletrodos a um desfibrilador para estabelecer ecg e imobilizar o porco dentro de um colchão a vácuo. Esvazie o colchão para evitar movimentos indesejados durante a RCP e proteja os membros. Coloque um dispositivo de compressão torácica ao redor do peito e sob o colchão a vácuo de acordo com as recomendações do fabricante e ajuste a almofada de pressão para o terço inferior do esterno em posição mediana.Para um posicionamento ideal do dispositivo de compressão torácica, o animal pode ter que ser deslocado para o lado dentro do colchão deflacionado. Quando o dispositivo estiver no lugar, ligue o dispositivo e baixe a almofada de pressão para a pele. Pressione pausa para preparar o dispositivo para compressões torácicas e insira um cateter de fibrilação dentro da veia femoral esquerda através da bainha IV.Infle o manguito com um a dois mililitros de ar e empurre lentamente o manguito inflado cerca de 50 centímetros até que esteja posicionado ao lado do átrio direito. Conecte os eletrodos do cateter a um gerador adequado de função osciloscópio e ajuste os parâmetros de fibrilação aos valores experimentais apropriados. Em seguida, ligue o gerador enquanto monitora as alterações do ECG, movendo o cateter lentamente para a frente até que as arritmias possam ser detectadas no ECG.Varie cuidadosamente a posição do cateter até que a fibrilação ventricular possa ser detectada. Uma vez confirmada a fibrilação ventricular, desligue o gerador e esvazie e remova o cateter de fibrilação. Em seguida, pressione play no dispositivo de compressão para iniciar compressões mecânicas no peito.Para interromper as compressões torácicas, pressione o botão de pausa no dispositivo de compressão. Analise os padrões de ECG. Se persistir a fibrilação ventricular, digite o modo manual no menu desfibrilador e ajuste a energia para 200 joules por fásica.Pressione o botão de carga e espere até que o sinal acústico se aciça para indicar um valor de choque preparado antes de iniciar o choque elétrico. No caso do retorno da circulação espontânea, pare as compressões torácicas, continue a ventilação e aplique o monitoramento tão extensivamente quanto necessário. A parada cardíaca induzida pelo cateter de ritmo pode ser assumida se as leituras do ECG mostrarem fibrilação ventricular e nenhuma saída cardíaca ou variações de pressão forem medidas pela linha arterial.Uma vez iniciadas as compressões torácicas, a geração suficiente de saída cardíaca é indicada por uma pressão arterial média de 30 a 50 mililitros de mercúrio e, se aderir às diretrizes de ressuscitação, a administração de um miligrama de adrenalina resulta em um aumento substancial da pressão arterial em um minuto. O retorno da circulação espontânea é confirmado por um aumento dramático nas medidas expiratórias de dióxido de carbono e um ritmo cardíaco organizado no ECG na respectiva produção cardíaca observada pela medição arterial. Hipercapnia e um índice horovitz reduzido são comumente observados após o retorno da circulação espontânea e o restabelecimento da ventilação mecânica controlada leva à recompensa e condições respiratórias estáveis.O deslocamento ou desalojamento do dispositivo de compressão torácica durante o experimento compromete os resultados. Portanto, deve-se tomar cuidado para evitar o reposicionamento. Com este procedimento, pode ser realizada uma avaliação padronizada da produção cardíaca e da razão de ventilação-perfusão durante a ressuscitação para caracterizar efeitos cardiopulmonares extensivamente.Modelos padronizados de ressuscitação têm que identificar novas técnicas de ventilação durante a RCP, potencialmente ajudando a melhorar o resultado do paciente. Ao tentar protocolos que utilizem desfibrilação e osciloscópios, a perícia e a cautela adequadas são primordiais para prevenir situações de risco de vida e lesões.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Este protocolo descreve o modelo suíno infarto do miocárdio (IM) usando um 90 min-peito fechado oclusão coronária balão da artéria descendente anterior esquerda (LAD), seguida de reperfusão. Além disso, o protocolo para vários parâmetros de resultados, tais como a função cardíaca, hemodinâmica, resistência microvascular e tamanho do infarto, também são apresentados.

Infarto do Miocárdio e Avaliação de Resultados Funcional em porcos

Este artigo descreve um modelo de rato de fibrilação ventricular induzida eletricamente e ressuscitação por compressão torácica, ventilação e aplicação de choques elétricos que simula um episódio de parada cardíaca súbita e ressuscitação cardiopulmonar convencional. O modelo permite reunir insights sobre a fisiopatologia da parada cardíaca e explorar novas estratégias de ressuscitação.

Um modelo de rato de Fibrilação Ventricular e Reanimação por Técnica de tórax fechado convencional

Aqui vamos demonstrar um protocolo para padronizar os procedimentos de amostragem de um modelo estabelecido de suínos de infarto agudo do miocárdio, a fim de aumentar seu valor de translação no entendimento da fisiopatologia da lesão de isquemia/reperfusão miocárdica e para testar candidatos a novos fármacos.

Aprimoramento do modelo de suínos do miocárdio peito fechado pela padronização do tecido e os procedimentos de recolha de amostras de sangue

Aqui, apresentamos um protocolo para produzir cardiomiopatia induzida por taquicardia em suínos. Este modelo representa uma forma potente para estudar a hemodinâmica da falha de coração crônica progressiva e os efeitos do tratamento aplicado.

Cardiomiopatia induzida por taquicardia como um modelo de insuficiência cardíaca crônica em suínos

Aqui, apresentamos um protocolo demonstrando um modelo de choque hemorrágico em suínos que usa a oclusão da aorta como uma ponte para tratamento definitivo no trauma. Este modelo tem aplicação em testar uma ampla gama de estratégias terapêuticas farmacológicas e cirúrgicas.

Oclusão da aorta total e parcial para o tratamento do choque hemorrágico em suínos

Descrevemos um modelo de pericardite estéril em miniporcos para estudar miopatia atrial e fibrilação atrial (AF). Apresentamos técnicas cirúrgicas e anestésicos, estratégias de acesso vascular e protocolo para estudar a induibilidade da AF.

Pericardite estéril em Miniporcos Aachener como modelo para miopatia atrial e fibrilação atrial

Os modelos animais de infarto do miocárdio (MI) que emulam o processo natural da doença em humanos são cruciais para entender mecanismos fisiodicos e testar a segurança e eficácia de novas terapias emergentes. Aqui, descrevemos um modelo de suíno MI criado pela implantação de uma bobina de embolização percutânea.

Infarto do Miocárdio por implantação de bobina de embolização percutânea em um modelo de suíno

Este protocolo apresenta um modelo de fibrilação ventricular de longa duração em corações de ratos induzida por estimulação contínua com corrente alternada de baixa voltagem. Esse modelo tem alta taxa de sucesso, é estável, confiável e reprodutível, tem baixo impacto na função cardíaca e causa apenas lesão miocárdica leve.

Modelo de Fibrilação Ventricular de Longa Duração em Corações Isolados de Rato

Esse protocolo demonstra o uso de um desfibrilador cardioversor implantável (DCI) para induzir de forma confiável arritmias ventriculares, realizar cardioversão interna e obter registros de ECG intracardíacos em um modelo suíno.

Modelo de Parada Cardíaca Suína usando um Desfibrilador Implantável

Modelos animais de grande porte têm bons valores de translação no exame de fisiologia e farmacologia da asfixia neonatal. Usando leitões recém-nascidos, desenvolvemos um protocolo experimental para simular a asfixia neonatal, que tem as vantagens de estudar a hemodinâmica sistêmica e regional, o transporte de oxigênio com vias bioquímicas e patológicas e correlações.

Um Modelo de Suínos de asfixia neonatal

Aprenda um modelo padronizado de ressuscitação em suínos para estudo de fibrilação ventricular e técnicas de suporte cardíaco avançado. Este método melhora a compreensão dos mecanismos de reanimação.

Modelo padronizado de Fibrilação Ventricular e Suporte avançado de vida cardíaca em suínos

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