2 de maio de 2020
O objetivo deste protocolo é avaliar se diferentes formulações artificiais podem proteger as células epiteliais da córnea humana da dessecação usando um modelo in vitro. Após a exposição a formulações artificiais de lágrimas e proficação, as células epiteliais da córnea humana são avaliadas para a atividade metabólica.
O objetivo deste protocolo é avaliar em um modelo in vitro se as formulações de lágrimas artificiais podem proteger as células epiteliais da córnea humana da dessecação. Este método pode ser usado para ajudar a identificar formulações de olho seco que podem ajudar na proteção ocular para indivíduos com sintomas de olho seco. Este ensaio utiliza uma medida muito sensível de detecção da atividade metabólica das células epiteliais da córnea.
Como resultado, pequenas alterações na saúde das células da córnea devido à dessecação podem ser detectadas. Demonstrando o procedimento hoje estarão Parisa Mirzapour, Nijani Nagaarudkumaran e Adeline Suko. Comece cultivando células epiteliais da córnea humana imortalizadas em frascos revestidos de colágeno com 20 mililitros de DMEM/F12 contendo 10% de soro bovino fetal e 1% de penicilina/estreptomicina a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono, trocando o meio a cada dois ou três dias.
Quando as células estiverem quase confluentes, remova o meio de cultura celular e adicione quatro a seis mililitros de meio de dissociação celular a cada frasco. Incube as células a 37 graus Celsius até que se desprendam, verificando-as periodicamente ao microscópio. Adicione dois a seis mililitros de DMEM/F12 com 10% de FBS a cada frasco e transfira o conteúdo para um tubo de centrífuga de 50 mililitros.
Centrifugue as células a 450 a 500 vezes g por cinco minutos. Em seguida, aspire o sobrenadante e ressuspenda as células em meio pré-aquecido. Determine a concentração celular com um hemocitômetro e calcule o volume que contém 100.000 células.
Adicione mídia a cada poço de uma placa de cultura revestida com colágeno I de 48 poços, juntamente com o volume calculado de células, certificando-se de que o volume final em cada poço seja de 0,5 mililitros. Em seguida, incube as células por 24 horas. Para o procedimento de controle, remova os meios de cultura dos poços e trate imediatamente as células com 150 microlitros de uma formulação de teste ou solução de controle de meios.
Em seguida, incube as células por 30 minutos. Remova a solução de teste das células e adicione 0,5 mililitros de solução de corante metabólico a 10%. Incube as células por mais quatro horas.
Após a incubação, remova 100 microlitros de solução de corante de cada poço e transfira-o para uma placa de 96 poços. Use um leitor de placas para medir a fluorescência de cada poço, ajustando a excitação para 540 nanômetros e a emissão para 590 nanômetros. Para realizar o procedimento de recuperação, incube as células com as soluções de teste ou controles conforme descrito anteriormente.
Em seguida, adicione 0,5 mililitros de mídia DMEM/F12 a cada poço. Incube as células por 18 horas. Em seguida, remova a mídia e teste a atividade metabólica.
Para realizar o procedimento de controle, remova os meios de cultura das células na placa de 48 poços e trate-os imediatamente com a formulação de teste ou solução de controle de meios. Incube a placa a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono por 30 minutos. Após a incubação, remova as soluções de teste das células e coloque-as em uma câmara de 37 graus Celsius e 45% de umidade por cinco minutos para dessecar.
Em seguida, adicione 0,5 mililitros de solução de corante metabólico a 10% e incube as células por quatro horas a 37 graus Celsius e 5% de dióxido de carbono. Após a incubação, transfira 100 microlitros da solução de corante metabólico de cada poço para uma placa de 96 poços e meça a fluorescência. Para realizar o procedimento de recuperação, repita o protocolo descrito anteriormente e inclua uma incubação de 18 horas com meio DMEM/F12 após a etapa de dessecação.
Em seguida, realize a análise estatística dos dados conforme descrito no manuscrito do texto. Três formulações de olho seco foram comparadas quanto ao seu efeito na viabilidade das células epiteliais da córnea humana. As soluções um e dois tiveram um efeito significativo na atividade metabólica das células antes da dessecação.
As células expostas à solução um mostraram uma queda adicional na atividade metabólica celular após uma recuperação de 18 horas, o que significa que foram inicialmente lesionadas e a lesão não foi reparada. Em comparação, a solução três teve apenas um efeito leve na atividade metabólica das células epiteliais. Ao comparar a capacidade dessas formulações de olho seco contendo lipídios de proteger as células, verificou-se que as soluções um e dois não protegiam as células do estresse por dessecação.
A solução três, no entanto, ofereceu alguma proteção. Ao semear as células em placas revestidas de colágeno, certifique-se de que a suspensão celular contenha células uniformemente misturadas para que cada poço seja semeado com números de células iguais. A solução três demonstrou melhora estatisticamente significativa na viabilidade celular e proteção contra o estresse de dessecação em relação aos outros dois produtos contendo lipídios.
É possível que o óleo mineral com fosfolipídios, juntamente com o HP-guar e o propilenoglicol, permita que a solução três forneça proteção de hidratação às células da córnea e reduza a evaporação sob dessecação.
Este estudo avalia os efeitos protetores de diferentes formulações de lágrimas artificiais sobre células epiteliais corneanas humanas submetidas à dessecação em um modelo in vitro. A atividade metabólica das células é avaliada para determinar a eficácia dessas formulações na prevenção de lesões celulares.
Este ensaio in vitro fornece um método quantitativo e reprodutível para avaliar formulações de lágrimas artificiais quanto à sua capacidade de manter a atividade metabólica das células epiteliais da córnea sob estresse por dessecação. Ele permite a redução de riscos em estágios iniciais de candidatos a tratamentos para olho seco, associando a composição da formulação à proteção celular funcional, apoiando decisões de avanço ou interrupção no desenvolvimento pré-clínico. A abordagem está alinhada aos fluxos de trabalho de validação de alvos e desenvolvimento de ensaios na descoberta de terapêuticos oculares.
O método insere-se na fase inicial da descoberta, auxiliando na identificação de compostos líderes ao priorizar formulações que demonstram tanto a manutenção da viabilidade celular quanto a proteção contra dessecação antes de avançar para modelos in vivo.