Name: Pneumografia de impedância para medição minimamente invasiva da freqüência cardíaca em invertebrados em estágio tardio (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-04-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 25 s
Description: Aprenda a usar a pneumografia de impedância para medir a frequência cardíaca em lagostas juvenis durante estresse térmico. Esta técnica minimamente invasiva permite monitorar em tempo real o desempenho cardíaco e determinar limites térmicos.

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Os autores agradecem a Paul Rawson pela assistência laboratorial e ao prêmio IIA-1355457 da Maine EPSCoR na Universidade do Maine por fundos para a compra de equipamentos. Este projeto foi apoiado pelo Instituto Nacional de Alimentos e Agricultura do USDA, o número do projeto Hatch MEO-21811 através da Estação de Experimentos Agrícolas e Florestais do Maine, bem como pelo Serviço Nacional de Pesca Marinha da NOAA Saltonstall Kennedy Grant #18GAR039-136. Os autores também agradecem a três revisores anônimos por seus comentários sobre uma versão anterior deste manuscrito. Maine Agricultural and Forest Experiment Station Publicação número 3733.

1. Configuração do equipamento
<ol><li>Enrole tubos claros e maleáveis em torno de si mesmo para criar uma bobina de troca de calor que tem aproximadamente 8-10 cm de diâmetro e tem extensões de 40-70 cm de comprimento. Fixar a bobina usando fita elétrica.</li>
	<li>Conecte a bobina de troca de calor à fonte externa e retorne os encaixes de um banho de água circulante de resfriamento/aquecimento. Certifique-se de que a conexão está segura usando grampos de mangueira.</li>
	<li>Encha o poço do banho de água circulante de resfriamento/aquecimento com água de osmose reversa (RO) e conecte o cabo de alimentação a uma tomada. Ligue o banho de água e certifique-se de que não há vazamentos em sua conexão com a bobina de troca de calor.</li>
	<li>Configure o conversor de impedância conectando o cabo BNC preto à saída CA na unidade e conectando-o ao data logger(Tabela de Materiais)usando a porta do Canal 1.</li>
	<li>Conecte a sonda termopar (gravador de temperatura) ao pod tipo T e, em seguida, conecte a cápsula do tipo T à porta do Canal 2 do data logger.</li>
	<li>Conecte o cabo de alimentação do registro de dados a uma fonte de alimentação e conecte o registrador de dados a um computador de PC usando o conector de cabo USB.</li>
	<li>Encha a câmara de aclimatação e a arena experimental com 7,5 L de água artificial do mar (salinidade = 35 ppt, pH = 8,1, temperatura = ~12 °C). NOTA: O volume, a temperatura e a química da água necessária para a câmara de aclimatação e as condições de partida na arena experimental dependem do projeto experimental. É importante ressaltar que esses recipientes devem ser grandes o suficiente para submergir confortavelmente o sujeito de teste.</li>
</ol>2. Implantação de eletrodos
<ol><li>Coloque a lagosta em uma grade de plástico que se encaixa facilmente na arena experimental de tal forma que o corpo confortavelmente faça uma forma de Y em uma extremidade do retângulo.</li>
	<li>Fixe cuidadosamente as garras e o abdômen da lagosta na grade plástica usando pequenas amarras de cabo. Os cabos devem ser apertados o suficiente para evitar o movimento, mas permitem espaço para a tesoura cirúrgica removê-las após a conclusão do experimento.</li>
	<li>Seque a carapaça com uma toalha de papel e limpe-a com uma bola de algodão encharcada em 70% de etanol.</li>
	<li>Crie os buracos para os eletrodos.<ol>
<li>Usando uma pequena broca (por exemplo, 1,6 mm), faça a broca devagar e cuidadosamente dois pequenos furos (quase) através da carapaça em ambos os lados do pericárdio.</li>
		<li>Termine cada orifício inserindo suavemente uma agulha de dissecação estéril.</li>
		<li>Se a agulha não passar facilmente pela carapaça, continue a perfurar lentamente antes de tentar a agulha novamente. NOTA: Para minimizar o estresse em animais experimentais, é altamente recomendável praticar essa técnica antes da experimentação. Com o tempo, os usuários podem facilmente determinar sentindo quando a broca está quase na carapaça e mudar para a agulha. A perfuração manual é apropriada para lagostas e caranguejos, especialmente se o exoesqueleto é macio (ou seja, o animal foi recentemente fundido). No entanto, se o sujeito de teste tiver um exoesqueleto ou concha mais espesso (ou seja, uma biválvula), uma ferramenta Dremel é mais apropriada.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Obtenha os eletrodos (fio magnético de 36-38 G, 0,10-0,12 mm de diâmetro) e raspe um pouco de isolamento na ponta do fio usando uma lâmina de faca dissecando. Dobre cuidadosamente a ponta de cada fio em um pequeno gancho usando fórceps e insira um em cada um dos furos recém-perfurados.</li>
	<li>Fixar cada fio usando uma pequena gota de cola cianoacrilato e deixá-lo secar por 5-10 min. NOTA: É crucial usar a cola com moderação, pois adicionar muito irá resisolar o fio e evitar que o sinal seja gravado.</li>
	<li>Uma vez que a cola esteja seca, conecte o fio ao conversor de impedância e ligue-o. Coloque a lagosta na câmara de aclimatação e deixe-a se adaptar aos eletrodos implantados por 15-20 min. NOTA: Movimentos rápidos ou de, bem como cola seca incompletamente, podem fazer com que os eletrodos se sedem da carapaça. Se isso acontecer, retorne ao passo 2.6.</li>
	<li>Ligue o data logger e abra o software LabChart no computador. Clique em Novo Experimento e deixe a tela Chart View aberta.</li>
	<li>Em Chart View,localize o menu Função do Canal 1 a partir da seção à direita da tela. Escolha o amplificador de entrada no menu e selecione Acoplamento CA. O sinal de entrada da cobaia será agora exibido na tela em tempo real. NOTA: A sensibilidade do canal pode ser ajustada selecionando o menu pop-up Range. Ajuste o intervalo até que os picos de sinal sejam de 25%-75% da escala completa. Feche o amplificador de entrada clicando em OK.</li>
	<li>No conversor de impedância, ajuste o Ganho (tamanho) e o Equilíbrio até que um sinal forte seja observado na saída do data logger, visando manter o Saldo perto de zero.</li>
	<li>No Canal 2, selecione o pod T-Type para gravar dados de temperatura em tempo real.</li>
	<li>Quando ambos os canais estiverem configurados corretamente, clique no botão Iniciar e o registrador de dados começará a registrar dados.</li>
</ol>3. Rampa de temperatura
<ol><li>Após o período de aclimatação, coloque a grade plástica com a lagosta presa cuidadosamente na arena experimental e coloque a bobina de troca de calor no topo da grade.</li>
	<li>Coloque a sonda termopar perto da lagosta, garantindo que ela esteja totalmente submersa antes de colocar a tampa na arena experimental para reduzir o estresse visual ao sujeito do teste.</li>
	<li>Ajuste o equilíbrio conforme necessário e coloque um comentário sobre a saída afirmando que o julgamento já começou.</li>
	<li>A saída pode e deve ser salva periodicamente durante todo o experimento.<ol>
<li>Clique em 'Arquivo' e selecione Salvar como para salvar inicialmente a saída no computador.</li>
		<li>Ao salvar durante o experimento, clique em 'Arquivo' e selecione Salvar. NOTA: Embora o software LabChart possa recuperar arquivos no caso de um desligamento acidental do programa (por exemplo, uma queda de energia), recomenda-se salvar arquivos ativos a cada 15-20 min durante o experimento para evitar a perda de dados.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Aumente a temperatura da água da arena experimental a uma taxa de ~1,5 °C a cada 15 min para obter uma rampa de 12 °C a 30 °C durante um período de 2,5 h, ajustando a temperatura do banho de água que recircula. NOTA: A distribuição geográfica da lagosta americana abrange um gradiente térmico de 25 °C, e os indivíduos podem se adaptar e sobreviver a temperaturas de até 30 °C16. Como tal, 30 °C foi escolhido como o limite superior para esta rampa de temperatura, pois garante que as lagostas experimentem um cenário estressante que não atinja o máximo térmico críticode 13, o que poderia levar à mortalidade. A taxa específica de aquecimento foi selecionada porque se enquadra em uma faixa de taxas de aquecimento implementadas em estudos utilizando outras espécies8,14 bem como pesquisas anteriores sobre a lagosta americana13,27. Antes de implementar este protocolo, é importante determinar a faixa de temperatura apropriada para um determinado experimento e 2) realizar uma rampa de temperatura pré-julgamento com uma arena experimental vazia, pois isso ajudará a determinar o ajuste de temperatura necessário do banho de água para alcançar a rampa desejada. Isso também pode diferir dependendo do volume de água na arena.</li>
	<li>Ao longo da rampa de temperatura, registre sempre que ocorrer um ajuste que possa afetar a saída.<ol>
<li>Observe que o equilíbrio no conversor de impedância provavelmente precisará ser ajustado ao longo do experimento, e isso pode causar um pico não intencional na saída.</li>
		<li>À medida que a temperatura na arena experimental começa a atingir níveis fora da faixa térmica preferida do sujeito do teste, contrações musculares involuntárias podem resultar em um "pico" errôneo na saída. Se isso ocorrer, faça um comentário para identificar áreas da saída que devem ser removidas durante o processo de conversão de dados.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Quando a rampa estiver concluída, retire a lagosta da arena experimental e coloque-a em um banho de recuperação (12 °C) por ~20 min. Se desejar, continue monitorando a freqüência cardíaca da lagosta até que ela retorne aos níveis basais.</li>
	<li>Depois de 20 min, aperte o botão Stop na saída do PowerLab e salve o arquivo. Remova cuidadosamente os eletrodos e corte os laços do cabo com uma tesoura cirúrgica antes de retornar o teste sujeito ao seu tanque de retenção. NOTA: Em vez de colocar uma lagosta diretamente no banho de recuperação, outra opção é retornar lentamente a arena experimental à sua temperatura inicial. Isso é feito resfriando a arena experimental em ~1,5 °C a cada 15 min ao longo de 2,5 h adicionais.</li>
</ol>4. Conversão de dados
<ol><li>Abrir data pad. Defina a coluna A a tempo clicando duas vezes na Coluna A e clicando em Seleção e Ponto Ativo no lado esquerdo do menu Configuração da Coluna data pad. Selecione Tempo no lado direito do menu e feche a janela clicando em OK.</li>
	<li>Defina a Coluna B à temperatura média clicando duas vezes na Coluna B e selecionando a opção Estatísticas do lado esquerdo do menu de configuração da Coluna B do Data Pad. Selecione Mean do lado direito do menu e canal 2 como a fonte de cálculo na parte inferior da janela do menu. Clique em OK para fechar a janela.</li>
	<li>Convertendo a tensão gravada em batidas por minuto<ol>
<li>Clique duas vezes na Coluna C e selecione Seleção e Ponto Ativo no lado esquerdo do menu. Selecione Duração de seleção do lado direito do menu e clique em OK para fechar a janela.</li>
		<li>Clique duas vezes na Coluna D e selecione Medidas Cíclicas no lado esquerdo do menu. Selecione Contagem de eventos do lado direito do menu e canal 1 como fonte de cálculo. Clique em OK para fechar a janela. Isso contará os picos dos dados para determinar a freqüência cardíaca em uma parte selecionada dos dados. NOTA: Se necessário, selecione o botão Opções na parte inferior do menu e ajuste as Configurações de detecção para ler com mais precisão os dados. Escaneie o arquivo de dados e determine se as opções de forma "Sine" ou "Spikey" resultam em contagens apenas dos picos principais da saída de batimentos cardíacos. Além disso, ajuste o limiar de ajuste de detecção no lado direito do menu para ignorar o ruído no arquivo de saída.</li>
		<li>Clique duas vezes na Coluna E e selecione Medidas Cíclicas no lado esquerdo do menu. Selecione Taxa Cíclica Médiae Canal 1 como fonte de cálculo. Ajuste as configurações de detecção e ajuste de detecção para corresponder às configurações da Coluna D (se manipulada na etapa 4.4.2). Clique em OK para fechar a janela. Isso fornece a estimativa final da freqüência cardíaca (como batidas por minuto) sobre uma parte selecionada dos dados.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Quando as colunas estiverem configuradas, retorne ao arquivo de dados e destaque as seções desejadas da saída, omitindo áreas de dados errôneos identificadas por comentários na seção 3.6.<ol>
<li>Selecione comandos e adicionar múltiplos ao data pad.</li>
		<li>Selecione Tempo no Find usando menu suspenso e puxe dados a cada 30 s, verificando a caixa Cada e digitando "30" no menu Selecionar.</li>
		<li>Clique na opção Corrente de seleção no menu Passo a passo e clique em Adicionar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Retorne à tela do Data Pad e selecione Arquivo e Salvar como para salvar a saída como um arquivo Excel. NOTA: Aqui, a freqüência cardíaca é relatada (em batimentos por minuto) a cada 30 s, em oposição a cada minuto com base na pesquisa anterior8,27. Isso também ajuda a capturar com mais precisão as alterações nos dados de tensão coletados em tempo real. É possível selecionar dados em intervalos de tempo mais curtos ou mais longos com base na preferência individual.</li>
</ol>5. Cálculo da temperatura de ruptura de Arrhenius
<ol><li>Abra o arquivo de dados no Excel e manipule a saída do software LabChart.<ol>
<li>Converta a temperatura de Celsius para a recíproca de Kelvin usando a seguinte equação: [1000/(temperatura °C + 273,15 K)].</li>
		<li>Obter o registro natural da freqüência cardíaca: In (BPM).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Gerar um enredo de Arrhenius plotando a freqüência cardíaca em função da temperatura, expressa como Ln(BPM) vs. recíproco (K)13,15.</li>
	<li>Em SigmaPlot, encaixe os dados com uma regressão em pedaços e determine o ponto de intersecção, que é o ABT.<ol>
<li>Copie e cole os dados transformados em uma nova pasta de trabalho. Selecione a opção Estatísticas no menu principal e o Assistente de Regressão na lista suspenso.</li>
		<li>Na janela Equação, selecione em parte no menu Categoria equação e 2 segmentos lineares sob a caixa Nome da equação. Clique em Next.</li>
		<li>Na janela Variáveis, selecione os dados de temperatura transformada para serem a variável t e os dados de freqüência cardíaca transformados para serem a variável y, usando as opções suspensas no menu Colunas Variáveis. Certifique-se de que o XY Pair esteja selecionado no menu Dados De antes de clicar em Next.</li>
		<li>Depois de revisar a janela 'Resultados de ajuste', clique em 'Avançar' e verifique a caixa para Criar relatório na janela Opções de saída numérica. Clique em Next.</li>
		<li>Na janela Opções de gráfico, verifique a opção Criar novo gráfico na seção Gráfico de resultados de ajuste e adicione a equação ao título do gráfico na Seção De Características do Gráfico. Clique em Concluir.</li>
		<li>Na página de saída de Resultados, recupere as equações e os valores dos parâmetros para as duas regiões da regressão em parte, bem como a produção estatística para a regressão (por exemplo, R2, F-statistic e p-value).</li>
		<li>Utilizando os valores e equações dos parâmetros gerados, defina os dois segmentos iguais entre si e resolva a variável "t" para determinar o ABT. Converta este valor de volta para Celsius usando a seguinte equação: °C = (1000/t) - 273,15. NOTA: O ABT também pode ser calculado no ambiente de computação estatística R utilizando o pacote "segmentado"17 no programa SAS18, ou utilizando a rotina de "regressão linear segmental" no Prisma819.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Stocker, T. F., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStocker%2C+TF+%22Climate+Change+2013%3A+The+Physical+Basis.+Contribution+of+Working+Group+I+to+the+Fifth+Assessment+Report+of+the+Intergovernmental+Panel+on+Climate+Change%22">Climate Change 2013: The Physical Basis. Contribution of Working Group I to the Fifth Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change</a>. , Cambridge University Press. Cambridge, UK, and New York, NY, USA. (2013).</li>
<li>Pershing, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slow+adaptation+in+the+face+of+rapid+warming+leads+to+collapse+of+the+Gulf+of+Maine+cod+fishery%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Slow adaptation in the face of rapid warming leads to collapse of the Gulf of Maine cod fishery.</a> Science. 350 (6262), 809-812 (2015).</li>
<li>Smale, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marine+heat+waves+threaten+global+biodiversity+and+the+provision+of+ecosystem+services%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Climate+Change%22%5BJournal%5D)">Marine heat waves threaten global biodiversity and the provision of ecosystem services.</a> Nature Climate Change. 9 (4), 306-316 (2019).</li>
<li>Pörtner, H. O., Farrell, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiology+and+climate+change%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Physiology and climate change.</a> Science. 322 (5902), 690-692 (2008).</li>
<li>Pörtner, H. O., Bock, C., Mark, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen-+and+capacity-limited+thermal+tolerance%3A+bridging+ecology+and+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Oxygen- and capacity-limited thermal tolerance: bridging ecology and physiology.</a> Journal of Experimental Biology. 220 (15), 2685-2696 (2017).</li>
<li>Somero, G. N., Lockwood, B. L., Tomanek, L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSomero%2C+GN+%22Biochemical+adaptation%3A+response+to+environmental+challenges%2C+from+life%27s+origins+to+the+Anthropocene%22">Biochemical adaptation: response to environmental challenges, from life's origins to the Anthropocene</a>. , Sinauer Associates, Incorporated Publishers. Sunderland, MA, USA. (2017).</li>
<li>Sokolova, I. M., Frederich, M., Bagwe, R., Lanning, G., Sukhotin, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Energy+homeostasis+as+an+integrative+tool+for+assessing+limits+of+environmental+stress+tolerance+in+aquatic+invertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Environmental+Research%22%5BJournal%5D)">Energy homeostasis as an integrative tool for assessing limits of environmental stress tolerance in aquatic invertebrates.</a> Marine Environmental Research. 79, 1-15 (2012).</li>
<li>Tepolt, C. K., Somero, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Master+of+all+trades%3A+thermal+acclimation+and+adaptation+of+cardiac+function+in+a+broadly+distributed+marine+invasive+species%2C+the+European+green+crab%2C+Carcinus+maenas%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Master of all trades: thermal acclimation and adaptation of cardiac function in a broadly distributed marine invasive species, the European green crab, Carcinus maenas.</a> Journal of Experimental Biology. 217 (7), 1129-1138 (2014).</li>
<li>Frederich, M., Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen+limitation+of+thermal+tolerance+defined+by+cardiac+and+ventilatory+performance+in+spider+crab%2C+Maja+squinado%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Regulatory%2C+Integrative+and+Comparative+Physiology%22%5BJournal%5D)">Oxygen limitation of thermal tolerance defined by cardiac and ventilatory performance in spider crab, Maja squinado.</a> American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 279 (5), 1531-1538 (2000).</li>
<li>Metzger, R., Sartoris, F. J., Langenbuch, M., Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+elevated+CO2+concentrations+on+thermal+tolerance+of+the+edible+crab+Cancer+pagurus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Thermal+Biology%22%5BJournal%5D)">Influence of elevated CO2 concentrations on thermal tolerance of the edible crab Cancer pagurus.</a> Journal of Thermal Biology. 32, 144-151 (2007).</li>
<li>Walther, K., Sartoris, F. J., Bock, C., Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+anthropogenic+ocean+acidification+on+thermal+tolerance+of+the+spider+crab+Hyas+araneus%5BTitle%5D)+AND+%22Biogeosciences%22%5BJournal%5D)">Impact of anthropogenic ocean acidification on thermal tolerance of the spider crab Hyas araneus.</a> Biogeosciences. 6 (10), 2207-2215 (2009).</li>
<li>Styf, H. K., Sköld, H. N., Eriksson, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+response+to+long-term+exposure+of+the+marine+crustacean+Nephrops+norvegicus+to+ocean+acidification%5BTitle%5D)+AND+%22Ecology+and+Evolution%22%5BJournal%5D)">Embryonic response to long-term exposure of the marine crustacean Nephrops norvegicus to ocean acidification.</a> Ecology and Evolution. 3 (15), 5055-5065 (2013).</li>
<li>Camacho, J., Qadri, S. A., Wang, H., Worden, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temperature+acclimation+alters+cardiac+performance+in+the+lobster+Homarus+americanus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Physiology+A%22%5BJournal%5D)">Temperature acclimation alters cardiac performance in the lobster Homarus americanus.</a> Journal of Comparative Physiology A. 192 (12), 1327-1334 (2006).</li>
<li>Braby, C., Somero, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ecological+gradients+and+relative+abundance+of+native+%28Mytilus+trossulus%29+and+invasive+%28Mytilus+galloprovincialis%29+blue+mussels+in+the+California+hybrid+zone%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">Ecological gradients and relative abundance of native (Mytilus trossulus) and invasive (Mytilus galloprovincialis) blue mussels in the California hybrid zone.</a> Marine Biology. 148 (6), 1249-1262 (2006).</li>
<li>Stenseng, E., Braby, C. E., Somero, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolutionary+and+acclimation-induced+variation+in+the+thermal+limits+of+heart+function+in+congeneric+marine+snails+%28Genus+Tegula%29%3A+implications+for+vertical+zonation%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Evolutionary and acclimation-induced variation in the thermal limits of heart function in congeneric marine snails (Genus Tegula): implications for vertical zonation.</a> Biological Bulletin. 208 (2), 138-144 (2005).</li>
<li>Factor, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFactor%2C+J+%22Biology+of+the+Lobster%3A+Homarus+americanus%22">Biology of the Lobster: Homarus americanus</a>. , Academic Press. Boston, MA, USA. (1995).</li>
<li>Muggeo, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segmented%3A+an+R+package+to+fit+regression+models+with+broken-lin+relationships%5BTitle%5D)+AND+%22R+News%22%5BJournal%5D)">Segmented: an R package to fit regression models with broken-lin relationships.</a> R News. 8 (1), 20-25 (2008).</li>
<li>Ryan, S. E., Porth, L. S. A tutorial on the piecewise regression approach applied to bedload transport data. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRyan%2C+SE+%22General+Technical+Report+RMS-GTR-189%22">General Technical Report RMS-GTR-189</a>. , US Department of Agriculture, Forest Service, . Rocky Mountain Research Station, Fort Collins, CO, USA. (2007).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Prism8+Statistics+Guide%22">Prism8 Statistics Guide</a>. , GraphPad Software, Inc. San Diego, California, USA. www.graphpad.com (2020).</li>
<li>Cuculescu, M., Hyde, D., Bowler, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermal+tolerance+of+two+species+of+marine+crab%2C+Cancer+pagurus+and+Carcinus+maenas%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Thermal+Biology%22%5BJournal%5D)">Thermal tolerance of two species of marine crab, Cancer pagurus and Carcinus maenas.</a> Journal of Thermal Biology. 23 (2), 107-110 (1998).</li>
<li>Stillman, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparative+analysis+of+plasticity+of+thermal+limits+in+porcelain+crabs+across+latitudinal+and+intertidal+zone+clines%5BTitle%5D)+AND+%22International+Congress+Series%22%5BJournal%5D)">A comparative analysis of plasticity of thermal limits in porcelain crabs across latitudinal and intertidal zone clines.</a> International Congress Series. 1275, 267-274 (2004).</li>
<li>Maderia, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((cellular+and+biochemical+thermal+stress+response+of+intertidal+shrimps+with+different+vertical+distributions%3A+Palaemon+elegans+and+Palaemon+serratus%5BTitle%5D)+AND+%22Comparative+Biochemistry+and+Physiology%2C+Part+A%22%5BJournal%5D)">cellular and biochemical thermal stress response of intertidal shrimps with different vertical distributions: Palaemon elegans and Palaemon serratus.</a> Comparative Biochemistry and Physiology, Part A. 183, 107-115 (2015).</li>
<li>Padilla-Ramirez, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+thermal+acclimation+on+the+behavior%2C+thermal+tolerance%2C+and+respiratory+metabolism+in+a+crab+inhabiting+a+wide+range+of+thermal+habitats+%28Cancer+antennarius+Stimpson%2C+1856%2C+the+red+shore+crab%29%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+and+Freshwater+Behaviour+and+Physiology%22%5BJournal%5D)">The effects of thermal acclimation on the behavior, thermal tolerance, and respiratory metabolism in a crab inhabiting a wide range of thermal habitats (Cancer antennarius Stimpson, 1856, the red shore crab).</a> Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 48 (2), 89-101 (2017).</li>
<li>Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ecosystem+effects+of+ocean+acidification+in+times+of+ocean+warming%3A+a+physiologist%27s+view%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Ecology+Progress+Series%22%5BJournal%5D)">Ecosystem effects of ocean acidification in times of ocean warming: a physiologist's view.</a> Marine Ecology Progress Series. 373, 203-217 (2008).</li>
<li>Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen-+and+capacity-limitation+of+thermal+tolerance%3A+a+matrix+for+integrating+climate-related+stressor+effects+in+marine+ecosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Oxygen- and capacity-limitation of thermal tolerance: a matrix for integrating climate-related stressor effects in marine ecosystems.</a> Journal of Experimental Biology. 213 (6), 881-893 (2010).</li>
<li>Zittier, Z. M. C., Hirse, T., Pörtner, H. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+synergistic+effects+of+increasing+temperature+and+CO2+levels+on+activity+capacity+and+acid-base+balance+in+the+spider+crab%2C+Hyas+araneus%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Biology%22%5BJournal%5D)">The synergistic effects of increasing temperature and CO2 levels on activity capacity and acid-base balance in the spider crab, Hyas araneus.</a> Marine Biology. 160 (8), 2049-2062 (2013).</li>
<li>Harrington, A. M., Hamlin, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocean+acidification+alters+thermal+cardiac+performance%2C+hemocyte+abundance%2C+and+hemolymph+chemistry+in+subadult+American+lobsters+Homarus+americanus+H.+Milne+Edwards%2C+1837+%28Decapoda%3A+Malcostraca%3A+Nephropidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Crustacean+Biology%22%5BJournal%5D)">Ocean acidification alters thermal cardiac performance, hemocyte abundance, and hemolymph chemistry in subadult American lobsters Homarus americanus H. Milne Edwards, 1837 (Decapoda: Malcostraca: Nephropidae).</a> Journal of Crustacean Biology. 39 (4), 468-476 (2019).</li>
<li>Depledge, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoplethysmography+-+a+non-invasive+technique+for+monitoring+heart+beat+and+ventilation+rate+in+decapod+crustaceans%5BTitle%5D)+AND+%22Comparative+Biochemistry+and+Physiology+Part+A%3A+Physiology%22%5BJournal%5D)">Photoplethysmography - a non-invasive technique for monitoring heart beat and ventilation rate in decapod crustaceans.</a> Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. 77 (2), 369-371 (1984).</li>
</ol>

Os autores não têm nada para revelar.

Este protocolo descreve o uso de pneumografia de impedância para medir alterações na freqüência cardíaca de invertebrados de estágio tardio durante um experimento de rampa de temperatura. O principal benefício dessa técnica em comparação com outras abordagens baseadas em laboratório9,10,11 é que ela é minimamente invasiva e não envolve grande manipulação cirúrgica do exoesqueleto, reduzindo assim o tempo de recuperação necessári...

Nas últimas décadas, o aumento da entrada de gases de efeito estufa (isto é, dióxido de carbono, metano e óxido nitroso) na atmosfera resultou em padrões generalizados de mudança ambiental1. Os oceanos do mundo estão aquecendo rapidamente2,3,uma tendência que pode ter impactos severos na fisiologia organismal. A temperatura influencia fortemente as taxas fisiológicas, e os organismos têm uma faixa de temperatura ideal para o desempenho4,5,6. Como tal, os indivíduos podem encontrar dificuldades em manter a entrega adequada de oxigênio aos tecidos à medida que as temperaturas se afastam dessa faixa. Isso tem o potencial de levar a declínios no desempenho aeróbico em face do aquecimento das temperaturas dos oceanos5,7.
Em um ambiente laboratorial, um método para entender os impactos fisiológicos das mudanças ambientais é examinar o desempenho cardíaco no contexto do estresse térmico. Isso fornece uma visão de como a exposição às condições de aquecimento previstas pode alterar as curvas de desempenho5,6, bem como o potencial de plasticidade de aclimatação8. Uma variedade de métodos foram implementados com sucesso para medir previamente a freqüência cardíaca em invertebrados marinhos. No entanto, muitas dessas técnicas envolvem remoção cirúrgica ou grande manipulação do exoesqueleto e implantação prolongada de dispositivos de medição9,10,11, que introduz estresse adicional ao sujeito do teste e aumenta o tempo necessário para uma recuperação bem sucedida antes da experimentação. Além disso, técnicas menos invasivas (por exemplo, observação visual, videografia) podem ser restritas aos estágios iniciais da história da vida quando os organismos podem ser totalmente ou semitransparentes12. Além disso, podem ser apresentados desafios adicionais aos pesquisadores que não são bem versados em metodologias tecnologicamente avançadas (por exemplo, observações via transdutores infravermelhos ou perfusão do Ppler8,11).
Este protocolo usa a lagosta americana (Homarus americanus) como um modelo de invertebrado marinho em estágio tardio para demonstrar o uso de pneumografia de impedância para avaliar mudanças na freqüência cardíaca durante um experimento de rampa de temperatura. A pneumografia de impedância envolve a passagem de uma corrente elétrica oscilante (AC) através de dois eletrodos posicionados em ambos os lados do pericárdio para medir mudanças de tensão à medida que o coração contrai e relaxa13,14. Esta técnica é minimamente invasiva, pois emprega o uso de pequenos eletrodos (ou seja, 0,10-0,12 mm de diâmetro) que são suavemente implantados logo abaixo do exoesqueleto. Finalmente, ele fornece avaliações em tempo real da freqüência cardíaca e temperatura da água durante a rampa através do uso de um data logger.
O protocolo também fornece instruções para calcular a temperatura de ruptura de Arrhenius (ABT), a temperatura em que a freqüência cardíaca começa a diminuir com o aumento das temperaturas13,15. O ABT serve como um indicador não letal do limite térmico de capacidade em cobaias que podem ser favorecidos sobre a medição do máximo térmico crítico (CTmax, o limite superior da função cardíaca5,6), pois os limites letais são muitas vezes extremos e raramente encontrados no ambiente natural5.

<table><tbody><tr><td>Broca de 1,6 mm (1/16 pol)</td><td>Milwaukee Tool na Home Depot</td><td>1001294900</td><td>Esta é para uma broca de 1,6 mm (1/16 pol) de diâmetro. Este item pode ser encontrado na maioria das lojas de materiais de construção.</td></tr><tr><td>Fio de Ímã de Cobre 38 AWG</td><td>TEMCo</td><td>MW0093</td><td>Este fio é usado para fazer os fios de eletrodo que são implantados nas cobaias. Este anúncio é para uma bobina de 4 oz de fio magnético de calibre 38. A TemCo também possui fio magnético de calibre 36 que também é adequado para uso na construção de eletrodos de fio.</td></tr><tr><td>Cola de cianoacrilato</td><td>Loctite</td><td>852882</td><td>Este item inclui uma ponta de pincel, que facilita o controle da quantidade de cola usada para prender os eletrodos à carapaça.</td></tr><tr><td>Etanol, solução a 70%,</td><td>biorreagentes Fisher</td><td>de grau de</td> biologia molecular BP82931GAL <td>Este reagente é usado em combinação com as bolas de algodão estéreis para desinfetar a carapaça antes da implantação do eletrodo.</td></tr><tr><td>Excel</td><td>Microsoft N</td><td>/A</td><td>Este programa é usado no protocolo para organizar, manipular e analisar dados. É compatível com os sistemas operacionais PC e Mac.</td></tr><tr><td>Kit de Dissecção de 8 Peças Fisherbrand</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-855</td><td>Este kit inclui o fórceps, tesoura, faca de dissecação (e lâminas) e agulha de dissecação necessários para realizar as etapas de implantação do eletrodo no protocolo.</td></tr><tr><td>Fisherbrand Isotemp Circuladores de Banho Refrigerado/Aquecido: 5.4-6.5L, 115V/60Hz</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-874-180</td><td>Este é um sistema completo que consiste em um circulador de imersão e um banho. Pode ser usado como um banho com temperatura controlada ou para circular fluido externamente a uma aplicação. A faixa de temperatura deste banho-maria é de -20 a +100 &graus; C, e a unidade aquece/esfria rapidamente e é fácil de drenar após a conclusão do uso.</td></tr><tr><td>Bolas de Algodão Estéreis Fisherbrand</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-456-885</td><td>Esses cotonetes devem ser embebidos em etanol a 70% antes de serem usados para desinfetar a carapaça antes do implante do eletrodo.</td></tr><tr><td>Terminal de Garfo, Vinil Vermelho, Costura de Topo, 22 a 16 AWG, 100 PK</td><td>Os terminais Grainger</td><td>5WHE6</td><td>são soldados ao fio magnético para construir os eletrodos de fio. Eles podem ser adquiridos de uma variedade de fornecedores de materiais de construção.</td></tr><tr><td>Conversor de impedância</td><td>UFI</td><td>Modelo 2991</td><td>Mede mudanças de impedância correlacionadas com mudanças de tensão muito pequenas, variando de 0,2 ohm a mais de 5 ohms. Este modelo pode converter alterações de impedância decorrentes de variações de resistência, capacitância ou indutância, bem como uma combinação dos três.</td></tr><tr><td>Software LabChart</td><td>ADInstruments</td><td>N/A</td><td>A compra do registrador de dados PowerLab inclui o software LabChart, mas uma licença para o software também pode ser baixada diretamente online. O LabChart permite ao usuário registrar dados, abrir e ler arquivos do LabChart, analisar dados, bem como salvar e exportar arquivos. Existe uma versão gratuita do software, o LabChart Reader, mas os usuários só podem abrir e ler arquivos do LabChart e analisá-los (ou seja, não pode ser usado para gravar, salvar ou exportar arquivos de dados). Também há a opção de selecionar o LabChart Pro, que inclui módulos de ensino do LabChart que podem ser usados para fins educacionais.</td></tr><tr><td>Ferro de solda LED</td><td></td><td>Grainger 28EA35</td><td>Este é um ferro de solda genérico que pode ser usado para soldar o fio magnético aos terminais do garfo para criar os eletrodos de fio.</td></tr><tr><td>Registrador de dados PowerLab</td><td>ADInstruments</td><td>ML826</td><td>Há uma variedade de modelos do PowerLab. Este número de catálogo é para o modelo 2/26 que é um gravador de 2 canais e resolução de 16 bits com dois canais de entrada analógica, sensibilidades de entrada selecionáveis independentemente, duas saídas analógicas independentes para estimulação ou geração de pulso e uma entrada de disparo. O PowerLab possui uma ampla gama de filtros passa-baixa, acoplamento CA ou CC e filtro de rede adaptável. Esta unidade possui uma interface USB para conexão a computadores Windows ou Mac OS e uma taxa de amostragem de 100.000 amostras/s por canal.</td></tr><tr><td>Prism8</td><td>GraphPad</td><td>N/A</td><td>Este programa fornece uma opção adicional para calcular a Temperatura de Ruptura de Arrhenius através do seu " Regressão linear segmentar" opção de análise de dados. Este programa não requer nenhuma programação e é compatível com os sistemas operacionais Mac e Windows.</td></tr><tr><td>R</td><td>R Project</td><td>N/A</td><td>Este é um software gratuito para computação estatística compatível com plataformas UNIX, bem como sistemas operacionais Windows e Mac. Este programa também pode ser usado para calcular a temperatura de ruptura de Arrhenius usando o " segmentado" pacote. Há uma série de tutoriais e guias do usuário disponíveis online através do site r-project.org</td></tr>.<tr><td>Grainger de solda com núcleo de resina</td><td></td><td>331856</td><td>Este produto tem um diâmetro de 0,031 pol (0,76 mm) e é ideal para uso em fios de alto-falantes de solda (bitola semelhante ao fio magnético usado para eletrodos).</td></tr><tr><td>SAS</td><td>SAS Institute</td><td>N/A</td><td>Este programa fornece uma opção adicional para calcular a temperatura de ruptura de Arrhenius. No entanto, requer programação e não é compatível com sistemas operacionais Mac.</td></tr><tr><td>SigmaPlot</td><td>Systat Software, Inc.</td><td>N/A</td><td>Este é o programa preferido dos autores para determinação estatística da temperatura de ruptura de Arrhenius. O " Assistente de regressão" é fácil de usar e não requer nenhuma programação. Pode-se obter uma licença de avaliação gratuita de 30 dias antes da compra. No entanto, é compatível apenas com computadores PC.</td></tr><tr><td>Pod tipo T</td><td>ADInstruments</td><td>ML312</td><td>Adequado para medição de temperaturas de 0-50 &deg; C usando termopares tipo T.</td></tr><tr><td>Sonda de termopar tipo T</td><td>ADInstruments</td><td>MLT1401</td><td>Compatível com o pod tipo T para conexão. Mede temperatura até 150 > C, e é adequado para imersão em várias soluções, semi-sólidos e tecidos (inclui uma agulha para implantação). Este produto é uma sonda isolada de 0,6 mm de diâmetro revestida com Teflon resistente a produtos químicos e um comprimento de avanço de 1,0 m.</td></tr><tr><td>Abraçadeira UV, Preto</td><td>Home Depot</td><td>295813</td><td>Este é para um pacote de 100 abraçadeiras pretas de 8 polegadas (20,32 cm). No entanto, com base no tamanho dos sujeitos de teste, podem ser necessárias braçadeiras menores ou maiores. Este item, e outros semelhantes, pode ser comprado em qualquer loja de materiais de construção.</td></tr></tbody></table>

pneumografia de impedância para medição minimamente invasiva da freqüência cardíaca em invertebrados em estágio tardio

Impedance Pneumography for Minimally Invasive Measurement of Heart Rate in Late Stage Invertebrates

As temperaturas nos oceanos estão aumentando rapidamente como consequência de mudanças generalizadas nos climas mundiais. Como a fisiologia organisma é fortemente influenciada pela temperatura ambiental, isso tem o potencial de alterar o desempenho fisiológico térmico em uma variedade de organismos marinhos. Usando a lagosta americana (Homarus americanus) como organismo modelo, este protocolo descreve o uso da pneumografia de impedância para entender como o desempenho cardíaco em invertebrados em estágio tardio muda sob estresse térmico agudo. O protocolo apresenta uma técnica minimamente invasiva que permite a coleta em tempo real da freqüência cardíaca durante um experimento de rampa de temperatura. Os dados são facilmente manipulados para gerar uma parcela de Arrhenius que é usada para calcular a temperatura de ruptura de Arrhenius (ABT), a temperatura em que a freqüência cardíaca começa a diminuir com o aumento das temperaturas. Esta técnica pode ser usada em uma variedade de invertebrados em estágio tardio (ou seja, caranguejos, mexilhões ou camarões). Embora o protocolo se concentre apenas no impacto da temperatura no desempenho cardíaco, ele pode ser modificado para entender o potencial de estressores adicionais (por exemplo, hipóxia ou hipercapnia) interagirem com a temperatura para influenciar o desempenho fisiológico. Assim, o método tem potencial para aplicações abrangentes para entender melhor como os invertebrados marinhos respondem a mudanças agudas no ambiente.

Este protocolo descreve o uso de pneumografia de impedância para obter dados em tempo real para freqüência cardíaca (em tensão) e temperatura durante um experimento de rampa de temperatura. Ao perforar esta técnica, a amplitude das tensões e temperaturas registradas variará com base no desenho experimental e espécies focais. No entanto, a saída de tensão exibida em tempo real segue uma distribuição seno genérica quando o protocolo é implementado corretamente (Figura 1A). À medida que a tempe...

Medir a freqüência cardíaca durante um desafio térmico fornece uma visão das respostas fisiológicas dos organismos como conseqüência de mudanças ambientais agudas. Usando a lagosta americana (Homarus americanus) como um organismo modelo, este protocolo descreve o uso da pneumografia de impedância como uma abordagem relativamente não invasiva e não letal para medir a freqüência cardíaca em invertebrados em estágio tardio.

Pneumografia de impedância para medição minimamente invasiva da freqüência cardíaca em invertebrados em estágio tardio

Temperatures in oceans are increasing rapidly as a consequence of widespread changes in world climates. As organismal physiology is heavily influenced by ...

Este protocolo usa lagostas americanas juvenis como modelo para demonstrar o uso da pneumografia de impedância para avaliar o desempenho fisiológico durante um estresse térmico. Esta técnica passa uma pequena corrente elétrica oscilante através de dois eletrodos implantados em ambos os lados do coração e mede a mudança de tensão à medida que o músculo contrai e relaxa. Esta tensão pode então ser facilmente convertida em batidas por minuto para traçar a frequência cardíaca através da faixa de temperatura avaliada para determinar janelas de desempenho térmico.Esta técnica é minimamente invasiva e permite a coleta de dados em tempo real em organismos em estágio final em que pode ser difícil observar diretamente o desempenho cardíaco. Este método também se concentra no cálculo da temperatura de quebra de Arrhenius ou ABT e usa-o como um ponto final não letal para determinar limites térmicos. Enrole tubos maleáveis claros em torno de si mesmo para criar uma bobina de troca de calor que tem aproximadamente oito a 10 centímetros de diâmetro e tem extensões de 40 a 70 centímetros de comprimento.Fixar a bobina usando fita elétrica. Fixar a bobina de troca de calor à fonte externa e devolver

impedance-pneumography-for-minimally-invasive-measurement-heart-rate

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Ambiente

Apresentamos várias maneiras de monitorar a função cardíaca na larva...

Função de monitorização cardíaca em larval Drosophila melanogaster Para estudos fisiológicos

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Ultra-alta freqüência ultra-som é uma ferramenta de imagem ao vivo poderoso para examinar anormalidades cardíacas em pequenos animais. Sua noninvasiveness permite manter o estado fisiológico de embriões. Aqui, vamos mostrar o uso do M-modo ultra-som para medir os batimentos cardíacos de embriões em E18.5 no útero.

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