Name: Otimização da Técnica de Manguito para Transplante de Coração de Murine (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-06-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 1 s
Description: Aprenda a técnica de manguito otimizada com tubo interno para transplante cardíaco heterotópico cervical em camundongos. Este método facilita a eversão vascular e reduz o tempo operatório com colaboração cirúrgica.

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Este trabalho foi apoiado pelo Fujian Provincial Health Education Joint Research Project (WKJ2016-2-20), a National Natural Science Foundation of China (81771271 e 81800664), o Programa Nacional de P&D da China (2018YFA0108304) e o Projeto de Educação e Pesquisa Científica para Professores Jovens e De Meia Idade na Província de Fujian (JAT170714), Fundação de Ciências Naturais da Província de Hunan da China (2019JJ50842) e Huxiang Jovens Talentos da Província de Hunan (2019RS2013).

Os animais (BALB/c, C57BL/6, macho, 8-12 semanas) estão alojados em uma instalação específica sem patógenos no Centro de Animais do Laboratório da Universidade de Xiamen. C57BL/6 é usado como receptor e BALB/c é usado como doador. Todos os procedimentos são realizados de acordo com as diretrizes do Comitê Institucional de Atenção e Uso de Animais (IACUC).
NOTA: Um conjunto de instrumentos microcirúrgicos, incluindo micro tesoura, micro fórceps retos, micro fórceps curvos e micro-agulhas, são necessários para a operação (Tabela e Materiais, Figura 1B, C, D, E). Um par de grampos bulldog de uso único (Figura 1F) é necessário. Duas algemas para a veia jugular externa e artéria carótida são preparadas cortando os tubos de poliamida personalizados com um bisturi nº 10 sob um microscópio. O diâmetro da veia e da braçadeira da artéria é de 0,9 mm e 0,55 mm, respectivamente. Além disso, o diâmetro do tubo interno para o manguito venoso correspondente é de 0,6 mm, e estes do tubo interno para o manguito artéria correspondente é de 0,28 mm(Figura 1G).
1. Preparação do destinatário
<ol><li>Anestesiar o mouse receptor com pentobarbital (60 mg/kg, i.p). Use cortadores mecânicos atrauáticos para remover o cabelo na região cervical lateral direita.</li>
	<li>Use um aplicador de ponta de algodão estéril para limpar a área cirúrgica com antisséptico de iodo seguido de 70% de etanol.</li>
	<li>Coloque o mouse na posição supina na plataforma de operação. Cubra o mouse com gaze estéril.</li>
	<li>Use uma tesoura oftálmica para fazer uma incisão transversal da linha média inferior de um terço do pescoço até a articulação ombro-clavícula direita.</li>
	<li>Isole a veia jugular externa direita com micro fórceps curvos para expor o comprimento suficiente, corte os galhos através de eletrocoagulação e liga o vaso na extremidade distal usando uma sutura de seda 6-0.</li>
	<li>Fixar a veia jugular externa proximalmente usando um grampo bulldog e, em seguida, transectar a veia proximalmente para a ligadura usando uma micro tesoura.</li>
	<li>Lave o lúmen do vaso com 100 U/mL 0-4 °C salina heparinizada para remover qualquer sangue residual.</li>
	<li>Puxe a veia jugular externa através do manguito da veia usando micro fórceps retos; inserir o tubo interno da veia no lúmen como um stent, e evertir a parede do vaso sobre o punho com micro fórceps retos(Figura 2A).</li>
	<li>Fixar o endotélio do vaso sempreado na extremidade proximal da braçadeira usando um 8-0 circunferencial sutura de seda(Figura 2B).</li>
	<li>Use micro fórceps retos para retirar o tubo interno da veia do vaso venoso.</li>
	<li>Realize dissecção contundente com micro fórceps curvos para isolar a artéria carótida direita adjacente à borda interna da esteocleidomastoide.</li>
	<li>Fixar a artéria carótida direita proximicamente usando um grampo buldogue, ligar a artéria carótida distally usando uma sutura de seda 6-0, e usar uma micro tesoura para transectar a artéria carótida proximally para a ligadura.</li>
	<li>Lave a artéria carótida com 100 U/mL 0-4 °C salina heparinizada para remover qualquer sangue residual.</li>
	<li>Passe a artéria carótida através do manguito da artéria e insira o tubo interno da artéria no vaso da artéria usando micro fórceps retos(Figura 2C).</li>
	<li>Everta o vaso sobre o manguito usando micro fórceps retos; corrigir o endotélio vaso everted usando um circunferencial 8-0 sutura de seda(Figura 2D).</li>
	<li>Retire o tubo interno da artéria do vaso da artéria com micro fórceps retos. NOTA: Preserve a glândula submandibular do destinatário.</li>
</ol>2. Preparação do doador
<ol><li>Anestesiar o rato doador com pentobarbital (60 mg/kg, i.p). Use cortadores mecânicos atrauáticos para remover os cabelos na região abdominal.</li>
	<li>Coloque o mouse na posição supina na plataforma de operação. Cubra o mouse com gaze estéril.</li>
	<li>Use um aplicador de ponta de algodão estéril para limpar a área cirúrgica com antisséptico de iodo seguido de 70% de etanol.</li>
	<li>Faça uma incisão abdominal midline com uma tesoura oftálmica e exponha a cavidade abdominal.</li>
	<li>Use micro fórceps curvos para expor a veia cava inferior, e então injete por via intravenosa 200 μL de 100 U/mL 0-4 °C salina heparinizada por 20 g de peso corporal através da cava vena inferior.</li>
	<li>Faça toracotomia com tesoura oftálmica, corte as costelas através das incisões bilaterais da linha midaxillary, vire a parede do peito anterior para fora para expor a cavidade torácica.</li>
	<li>Extirpe o timo com micro fórceps curvos.</li>
	<li>Exponha a aorta e, em seguida, perfunda 200 μL de 100 U/mL 0-4 °C salina heparinizada até a artéria coronária através do arco aórtico. NOTA: Evite perfundar quaisquer bolhas de gás no coração do doador.</li>
	<li>Use uma micro tesoura para transectar a aorta ascendente no início do arco aórtico.</li>
	<li>Transecte a artéria pulmonar no início dos dois ramos principais com uma micro tesoura.</li>
	<li>Liga a veia cava superior e a veia cava inferior proximally usando uma sutura de seda 6-0 e use uma micro tesoura para transectar a veia distally para a ligadura.</li>
	<li>Ligate as veias pulmonares juntas, circunferencialmente, usando uma única sutura de seda 6-0, e corte os ramos da veia distally à ligadura usando uma micro tesoura.</li>
	<li>Remover o enxerto cardíaco dos tecidos moles circundantes; preservá-lo em salina heparinizada de 0-4 °C.</li>
</ol>3. Implantação cardíaca
<ol><li>Coloque o coração doador de cabeça para baixo na região do pescoço direito do receptor.</li>
	<li>Insira a artéria pulmonar do coração doador para um laço de seda 6-0 com micro fórceps retos.</li>
	<li>Enrole o lúmen do vaso ao redor do manguito da veia e, em seguida, aperte os laços de sutura de seda 6-0 ao redor da braçadeira para a banda da junta do vaso.</li>
	<li>Realize a anastomose da aorta do enxerto e da braçadeira da artéria seguindo as etapas descritas na etapa 3.2.</li>
	<li>Solte a veia jugular fixa seguida da artéria jugular fixada. Mantenha a articulação do vaso sem fiação e certifique-se de que o fluxo sanguíneo está desobstruído. NOTA: O ritmo sinusal voltando a mais de 200 vezes dentro de 1 min é considerado normal.</li>
	<li>Umedeça o coração doador usando soro fisiológico quente (37 °C) e inspecione se o enxerto está sangrando. Coloque o enxerto cardíaco pulsante no espaço subcutâneo e, em seguida, sutura a incisão.</li>
</ol>4. Avaliação de Cuidados Pós-Operatórios e Enxertos
<ol><li>Regisse o tempo para o ritmo sinusal normal e a preservação do ritmo sinusal normal por pelo menos 5 minutos após a liberação do grampo para monitorar a função de enxerto pós-operatório.</li>
	<li>Coloque o destinatário sozinho em um cobertor quente até que o destinatário acorde da anestesia. Administrar analgesia de buprenorfina, 0,05 mg/kg, s.c, no final da cirurgia e a cada 12 horas durante 72 horas após a cirurgia.</li>
	<li>Regisso o estado de recuperação do peso e pós-operatório do destinatário diariamente. No caso de perda de peso de >15% em relação à data da cirurgia, paralisia hemplégica ou infecção, eutanize o receptor via inalação terminal isoflurane21.</li>
	<li>Monitore a sobrevivência do enxerto por palpação diariamente. A cirurgia é considerada bem sucedida se o alusão murina sobreviver por >72 horas. Classificar a função do enxerto, conforme relatado anteriormente22: Escala 3 - pulsar vigorosamente e frequência; Escala 2 - menos pulsar; Escala 1- fibrilação e rejeição iminente; ou Escala - 0, perda de batimento cardíaco e rejeição completa.</li>
</ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

Modelos de transplante de coração de rato são ferramentas importantes para a pesquisa em imunologia de transplante, pois ferramentas e materiais para avaliar os mecanismos imunológicos deste modelo e um grande número de camundongos modificados por genes estão disponíveis. No entanto, desafios técnicos microcirúrgicos, como sutura e eversão de vasos, limitaram seu uso generalizado. No presente estudo, investigamos certos desafios técnicos fundamentais do transplante de coração murino e obtivemos bons resultados. Um passo ...

O estabelecimento de transplante de coração heterotópico de camundongos por meio de anastomose de ponta a ponta no abdômen em 1973 foi um marco importante na pesquisa básica de imunologia de transplante1. Este modelo forneceu uma ferramenta importante e válida para a análise dos mecanismos de isquemia de reperfusãolesão 2,rejeição imunológica e tolerância3,4. No entanto, a natureza complexa e demorada da cirurgia, bem como o potencial de infecções podem resultar em aderências abdominais perioperatórias graves e reações inflamatórias, resultando em baixa eficiência para o modelo heterotópico de transplante cardíaco.
A técnica de transplante de coração heterotópico cervical foi descrita pela primeira vez por Chen em 19915. Neste modelo, a veia jugular externa do receptor é anastomosada à artéria pulmonar do enxerto e a artéria carótida é anastomosada à aorta ascendente. As principais vantagens desse método são a conveniência de monitorar e reduzir o trauma ao receptor. No mesmo ano, Matsuura descreveu uma técnica melhorada, na qual a extremidade da veia jugular externa e da artéria carótida foram sempre sempre realizadas sobre um manguito de Teflon e fixadas com uma ligadura de seda circunferencial6. Alguns pesquisadores também fixaram a braçadeira na artéria pulmonar direita no coração doador antes de inserir o manguito na veia jugular externa do receptor7. Até agora, a técnica da braçadeira tem sido amplamente aplicada em vários modelos de transplante de pediculo vascular, incluindo os do pulmão8, fígado9e transplante renal10.
Até o momento, existem várias dificuldades associadas à técnica da braçadeira. Por exemplo, a artéria carótida é difícil de eterncar sobre a braçadeira devido à elasticidade adicional, resultando na inversão do tecido. Assim, uma prática adicional e um dilador microcirúrgico podem ser necessários para completar esta etapa. Além disso, a preparação do vaso cervical pode levar até 25 minutos.
Para resolver esses problemas, introduzimos a técnica do tubo interno, que é baseada na técnica da braçadeira e inclui a fixação da braçadeira na veia jugular externa e na artéria carótida usando um tubo interno para ajudar na eversão da parede do vaso. Além disso, com treinamento simples, a preparação do receptor é reduzida para 15,5 minutos. Esta técnica reduz a complexidade da operação e não requer prática adicional ou o uso de um dilatador vascular. Pode ser aplicado em todas as pesquisas imunológicas de transplante, especialmente para verificar a tolerância imune de terceiros durante a qual o receptor recebe dois arófilos cardíacos, um dentro do abdômen e outro no pescoço11. Também recomendamos a cooperação entre dois cirurgiões qualificados para estabelecer esse modelo, com um cirurgião preparando o animal receptor e o outro colhendo e implantando o coração doador. Tal colaboração pode reduzir o tempo de operação para 25 minutos. Utilizando este procedimento otimizado, estabelecemos modelos de transplante de coração de camundongos síngênicos, aogênicos12,,13,,14,,15,,16,,17,,18,,19e xenogênicos de transplante de coração decamundongos 20.
A justificativa para o desenvolvimento da técnica do tubo interno foi reduzir o tempo de operação para o estabelecimento de um modelo de transplante de coração de camundongos com alta taxa de sucesso. A otimização do modelo de transplante cardíaco cervical facilita a aquisição de altas taxas de sucesso em um curto período de tempo de cirurgia em comparação com a técnica tradicional de sutura e manguito21. Além disso, o modelo de cooperação pode reduzir ainda mais o tempo isquêmico quente do coração doador em comparação com as cirurgias realizadas com um único operador.

<table><tbody><tr><td>Balonete de artéria</td> Tubo de poliamida <td>de fabricação</td><td></td> própria<td>. diâmetro: 0,55 mm, comprimento: 1,0 mm</td></tr><tr><td>Tubo interno de artéria</td><td>Tubo de</td> poliamida de fabricação <td></td> própria<td>. Diâmetro: 0,28 mm</td></tr><tr><td>Micro pinça curva</td><td>Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Surgical Instruments Factory</td><td>WA3050</td><td>1/8 arco, ponta de 0,3 mm sem gancho</td></tr><tr><td>Porta-agulhas Shanghai</td><td>Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Surgical Instruments</td><td>Factory WA2050</td><td>ponta de 0,2 mm</td></tr><tr><td>Micro tesoura Shanghai</td><td>Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Fábrica</td> <td>de Instrumentos CirúrgicosWA1050</td><td>Reto, comprimento da lâmina: 10 mm</td></tr><tr><td>Micro pinça reta</td><td>Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Surgical Instruments Factory</td><td>WA3060</td><td>Ponta de 0,15 mm sem gancho</td></tr><tr><td>Grampos Scanlan Vascu-Statt Bulldog</td><td>Scanlan International Inc</td><td>1001-531</td><td>Pressão de aperto 20&ndash; 25 gramas</td></tr><tr><td>Manguito de veia</td><td>Tubo de poliamida feito por</td><td></td> si<td>. diâmetro: 0,9 mm, comprimento: 1,2 mm</td></tr><tr><td>Tubo interno de veia Tubo de</td> poliamida <td>feito por</td><td></td> si<td>. Diâmetro: 0,6 mm</td></tr></tbody></table>

otimização da técnica de manguito para transplante de coração de murine

Optimization of the Cuff Technique for Murine Heart Transplantation

O transplante cardíaco de Murine é realizado há mais de 40 anos. Com os avanços na microcirurgia, algumas novas técnicas têm sido usadas para melhorar a eficiência cirúrgica. Em nosso laboratório, otimizamos a técnica da braçadeira com dois passos principais. Primeiro, utilizamos a técnica do tubo interno para inserir um tubo interno temporário na veia jugular externa e no vaso sanguíneo da artéria carótida para facilitar a eversão do vaso sobre a braçadeira. Em segundo lugar, realizamos transplante cardíaco heterotópico completo através da colaboração de dois cirurgiões experientes. Essas modificações efetivamente reduziram o tempo de operação para 25 minutos, com uma taxa de sucesso de 95%. Neste relatório, descrevemos esses procedimentos em detalhes e fornecemos um vídeo suplementar. Acreditamos que este relatório sobre a técnica aprimorada da braçadeira oferecerá orientação prática para transplante de coração heterotópico murine e aumentará a utilidade deste modelo de camundongos para pesquisa básica.

Tempo de operação cirúrgica
Após o treinamento, um cirurgião qualificado pode realizar a operação com sucesso dentro de 35 minutos usando a técnica do tubo interno, onde aproximadamente 15,5 minutos são necessários para a preparação do receptor, 10,9 minutos são necessários para a preparação do doador e 4,4 minutos são necessários para anastomoses cardíacos doadores. O tempo de isquemia fria e quente (da preparação do doador à implantação do coração) é reduzido para 15,3 minut...

Introduzimos uma abordagem interna do tubo da técnica de manguito para transplante de coração heterotópico cervical do rato para ajudar a everter o vaso sobre a braçadeira. Descobrimos que a cooperação entre dois cirurgiões experientes diminui significativamente o tempo de operação.

Otimização da Técnica de Manguito para Transplante de Coração de Murine

Murine cardiac transplantation has been performed for more than 40 years. With advancements in microsurgery, certain new techniques have been used to ...

Olá a todos. Meu nome é Dr. Zhongquan Qi.é amplamente conhecido que a técnica da braçadeira tem sido usada como transplante cardíaco desde 1991. Embora tenha havido grandes avanços na cirurgia médica e na nova técnica cirúrgica, ainda há algumas dificuldades baseadas na técnica de manguito.É uma forma de desvendar, onde eles lhe mostrarão uma meia técnica optitica, que pode igualar significativamente a eficiência cirúrgica. Os principais procedimentos é inserir um tubo temporariamente na viseira. A prova leu a ISO quase metade.Inserindo a técnica do tubo. Um cirurgião qualificado pode realizar a operação dentro de 35 minutos com 95% de taxa de sucesso. Em seguida, eles podem empregar o Módulo de Operação do Cirurgião Térmico, o que melhora ainda mais a eficiência da operação mostrando no skeptimic e o tempo de operação será reduzido para cerca de 35 minutos.Obrigado. E isso é que liga a receita e milhas com pentobarbital. Use cortadores mecânicos atrauáticos para remover o cabelo na região cervical direita posterior.Use um aplicador de ponta de algodão estéril para limpar a área cirúrgica com antisséptico de iodo seguido de 70% de etanol. Coloque o mouse na posição supina na plataforma de operação. Cubra o mouse com gaze estéril.Use uma tesoura oftálmica para fazer uma incisão transversal da linha nacmec inferior a uma articulação da clavícula do ombro direito. Isole a veia jungular externa direita com micro fórceps curvos para expor o comprimento suficiente. Corte os brunches via coagulação eletro.E localize a nave no disto e usando uma sutura de seis 20 seis. Fixar a veia junglar externa proximally usando um grampo de pólvora. E então traduzir a veia de perto para a ligadura usando uma micro tesoura.Lave o lúmen do vaso com 100 unidades por mililitro 02 quatro graus Celsius de heparina para remover qualquer sangue residual. Puxe a veia junglar externa através da veia cava usando micro fórceps retos. Insira o tubo interno da veia no lúmen como um stent e sobre a parede do vaso sobre a curva com micro fórceps retos.Fixar o endotélio faso irritante na extremidade proximal da curva usando uma sutura circunferencial de oito a 06. Use micro fórceps retos para retirar o tubo interno da veia do vaso venoso. Realize dissecção contundente com micro fórceps para isolar a artéria carótida direita, adjacente à borda interna da esteocleidomastoide.Fixar a artéria carótida direita proximally usando um grampo babcock. Localize a artéria carótida usando uma sutura de 6 a 06. E use uma micro tesoura para transacionar a artéria carótida proximalmente à ligadura.Lave a artéria carótida com 100 unidades por mililitro 02 quatro Celsius heparina saliente para remover qualquer sangue residual. Passe a artéria carótida através da curva da artéria e insira o tubo interno da artéria no vaso da artéria usando micro fórceps retos. Mire no vaso sobre a curva usando micro fórceps retos.Fixar o endotélio facil invertido usando uma sutura circunferencial de oito a 06. Retire a ponta interna da artéria do vaso da artéria com micro fórceps retos. Anestesia e infecção são as mesmas do receptor.Faça uma incisão abdominal da linha média com uma tesoura oftálmica e exponha a cavidade abdominal. Use fórceps de micro curvas para expor a veia cava inferior. E então injete por 200 microliter por 100 unidades por mililitro 02 quatro graus Celsius de heparina por 20 gramas de peso corporal através da veia cava inferior.Faça torácica com tesoura oftálmica. Corte as costelas através das paletas Romita incisões leves axilares. Flav a parede do tórax anterior para fora para expor a cavidade torácica.Excise o timo com micro fórceps. Exponha a aorta e, em seguida, profuse 200 microliter de 100 unidades por mililitro 02 quatro grau Celsius heparina saliente à artéria coronária através do arco aórtico. Use uma micro tesoura para transectar a aorta ascendente no início do arco aórtico.Transecte a artéria pulmonar no início dos dois ramos principais com uma micro tesoura. Localize a veia cava superior e a cava vena inferior aproximadamente usando uma sutura de seis a 02 e use uma micro tesoura para transectar o destilado venoso para a ligadura. Localize as veias pulmonares juntas circunferencialmente usando uma única sutura de seis, a 06 e corte os ramos da veia distally à ligadura usando uma micro tesoura.Remova o enxerto cardíaco dos tecidos moles circundantes. Coloque o coração doador de cabeça para baixo na região do pescoço direito do receptor. Insira a artéria pulmonar do coração doador para um loop de seis a 06 com micro fórceps retos.Enrole o lúmen do vaso ao redor da veia cava e, em seguida, aperte a alça de seis a 06 sutura ao redor do bezerro para dobrar a articulação do vaso. Realizar anastomose da aorta do enxerto e curva da artéria. Solte a veia jugular desajeitada seguida de artéria jugular desajeitada.Mantenha o vaso unido e torcido e certifique-se de que o fluxo sanguíneo está desobstruído. Coloque o enxerto cardíaco que passa no espaço subcutâneo e, em seguida, sutura a incisão. Regissu o tempo para o ritmo sinusal normal e a preservação do ritmo sinusal normal por pelo menos cinco minutos após a liberação do grampo para monitorar a função de enxerto pós-operatório.Coloque o destinatário sozinho em um cobertor até que o destinatário acorde da anestesia. Juntos, embora nossa cirurgia use técnicas de punho que foram relatadas, estabelecemos a técnica do núcleo interno com base nisso. Reduza a dificuldade na cirurgia e encurte o tempo de anastomose pela técnica de otimização.Sugerimos o lema de incorporação de dupla cirurgia para melhorar ainda mais a eficiência da operação mostrada no esquema. E o tempo de operação será reduzido para cerca de 25 minutos. Um coração de aoenxerto BALBC totalmente incompatível pode ser rejeitado com oito dias após o transplante em camundongos receptores C57BL6.Transplantes de coração síndicos usados em nossa pesquisa sobreviveram mais de 100 dias, exceto um caso raro devido a uma perda de peso de 15% em comparação com o peso normal antes da operação. A histopatologia do aloenxerto no sétimo dia revelou características típicas de rejeição aguda, incluindo um infiltrado celular pesado com necrose tecidual. Enxertos síndicos estão quase normais sem evidência de necrose de miócito ou infiltração de células inflamatórias.100 dias após o transplante de coração singêmico, o endotélio vascular do sítio de anastomose pode ser coletado e manchado por imunofluorescente. Nesta análise, não foram observados snaring avesso de parede vascular, trombose ou espessamento da intima. Imagens eletro microscópicas revelaram que um endotélio liso e uma formação regular de crosta longitudinal com as células endoteliais organizadas ordenadamente e de perto sem sedimentos óbvios na superfície.

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Imunologia e Infecção

O modelo de transplante de coração de murídeo cervical é bem adequado para imunológico, bem como estudos de lesão de reperfusão de isquemia. Nós modificamos o procedimento usando uma técnica cuff não sutura e realizou mais de 1.000 transplantes de sucesso com essa abordagem.  Aqui, nós fornecemos mais detalhes desta técnica para complementar o vídeo.

Murino Cervical Modelo de coração Transplante usando uma técnica Cuff Modificado

O manuscrito descreve as etapas necessárias para realizar o transplante cardíaco heterotópico no mouse.

Técnica de transplante heterotópico Murino Coração

A técnica do manguito encurta e facilita o modelo de transplante cardíaco cervical heterotópico em camundongos, evitando anastomoses de sutura tecnicamente desafiadoras de pequenos vasos. Os detalhes técnicos mostrados neste vídeo devem permitir que as pesquisas estabeleçam esse modelo em seus laboratórios.

Heterotopic Cervical Transplante Cardíaco em Ratos

Aqui, apresentamos um protocolo de transplante heterotópico da aorta em camundongos usando a técnica de manguito não sutura em um modelo de urina cervical. Este modelo pode ser usado para estudar a patologia subjacente da vasculopatia aloenxerto crônica (CAV) e pode ajudar a avaliar novos agentes terapêuticos, a fim de evitar a sua formação.

Murine Modelo de Transplante de Aorta Cervical usando uma técnica de manguito não sutura modificada

No presente protocolo, um modelo de transplante cardíaco em camundongos é utilizado para investigar o mecanismo de rejeição do enxerto cardíaco. Neste modelo heterotópico de transplante cardíaco, a eficiência da operação é melhorada, e a sobrevida dos enxertos cardíacos é garantida por uma anastomose cervical término-terminal do implante cardíaco usando uma técnica de Cuff modificada.

Técnica de Cuff Modificada para Modelo de Transplante Cardíaco Heterotópico Cervical:

Modelos de transplante cardíaco de camundongos representam valiosas ferramentas de pesquisa para o estudo da imunologia do transplante. O presente protocolo detalha o transplante cardíaco cervical heterotópico de camundongos que envolve a colocação de manguitos na artéria carótida comum do receptor e no tronco da artéria pulmonar do doador para permitir o fluxo sanguíneo laminar.

Transplante cardíaco cervical heterotópico de camundongo utilizando manguitos vasculares

Este protocolo fornece informações técnicas para a reconstrução de vasos usando a técnica do manguito no transplante hepático ortotópico de camundongos.

Reconstrução Vascular com a Técnica do Manguito no Transplante Hepático Ortotópico de Camundongo

Este protocolo apresenta uma técnica de transplante cervical heterópico de coração heterópico sem manguito e baseada em sutura em camundongos, projetada para permitir a colocação confiável de um segundo enxerto cardíaco heterotópico para avaliação da tolerância imunológica específica do doador sob condições fisiológicas com interferência mínima de material estranho.

Modelo cervical sem sutura para transplante cardíaco heterotópico secundário para avaliar a tolerância imunológica específica do doador em camundongos

Este protocolo apresenta uma técnica simplificada de anastomose de sutura ponta a ponta para transplante cardíaco cervical murino, fornecendo um modelo robusto e reprodutível para o estudo da imunologia de transplantes.

Transplante cardíaco de camundongo heterópico cervical usando a técnica de anastomose ponta a lateral para estudar imunologia de transplante

Neste vídeo, demonstramos o procedimento de ativação CD40-e expansão de células B murino de esplenócitos de camundongos C57BL / 6, que pode ser usado como um modelo de células apresentadoras de antígenos (APC) para estudar a indução de imunidade.

Modelo murino de CD40-ativação de células B

Aprenda a técnica de manguito otimizada com tubo interno para transplante cardíaco heterotópico cervical em camundongos. Este método facilita a eversão vascular e reduz o tempo operatório com colaboração cirúrgica.

Otimização da Técnica de Manguito para Transplante de Coração de Murine

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